-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Bir yutulma Deneyi: CNS Fagositler ve nöronlar arasındaki etkileşimi değerlendirmek için bir prot...
Bir yutulma Deneyi: CNS Fagositler ve nöronlar arasındaki etkileşimi değerlendirmek için bir prot...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
An Engulfment Assay: A Protocol to Assess Interactions Between CNS Phagocytes and Neurons

Bir yutulma Deneyi: CNS Fagositler ve nöronlar arasındaki etkileşimi değerlendirmek için bir protokol

Full Text
18,916 Views
07:38 min
June 8, 2014

DOI: 10.3791/51482-v

Dorothy P. Schafer1, Emily K. Lehrman1, Christopher T. Heller1, Beth Stevens1

1Department of Neurology, F.M. Kirby Neurobiology Center,Boston Children's Hospital, Harvard Medical School

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Mikroglia hücre dışı bir ortamda malzemenin fagosite veya yutmak için yüksek bir kapasitesi olan merkezi sinir sistemi (CNS) içinde yerleşik bağışıklık hücreleri bulunmaktadır. Burada, sinaptik bileşenlerin mikroglia aracılı yutulmasına görselleştirme ve ölçmek için, genel olarak, uygun ve güvenilir olup, kantitatif analiz tarif edilmektedir.

Bu prosedürün genel amacı, presinaptik girdilerin mikroglia tarafından yutulmasını görselleştirmek ve ölçmektir. Bu, lateral genant çekirdekteki retinal ganglion hücresi presinaptik girdilerini etiketlemek için önce floresan anterior derece izleyicilerin gözlere enjekte edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, beyni incelemek, düzeltmek ve dengelemektir.

Daha sonra, beyin bölümlere ayrılır. Son adım, görüntüleme ve analiz için beyin bölümlerini bir kapak dudağı üzerine monte etmektir. Sonuç olarak, presinaptik girdilerin mikroglia tarafından yutulmasını değerlendirmek için konfokal mikroskopi kullanılır.

Bu yöntem, fagositik toprakların sinaptik devre plastisitesine ve yeniden şekillenmeye nasıl katkıda bulunduğu gibi sinirbilim alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu yöntem, sağlıklı beyinde sinaptik devrenin yeniden şekillenmesi hakkında fikir verebilse de, sinir sistemi hastalığı sırasında sinaptik devrenin yeniden şekillenmesi gibi diğer sistemlere de uygulanabilir. Prosedürü gösteren, bir teknisyen olan Chris Heller ve Stevens Laboratuvarı'ndan bir yüksek lisans öğrencisi olan Emily Laman olacak.

Bu prosedüre, bir pleksiglas indüksiyon odasında %4 ISO flor içeren bir fareyi uyuşturarak başlayın. Bir ila üç dakika sonra, kuyruğu sıkıştırarak uygun bir anestezi seviyesinin elde edildiğinden emin olun. Ardından fareyi stereo mikroskobun altına yan yatırın ve burun üzerine %3 ila %4 ISO flor veren burun konisini yerleştirin.

Sklerayı ortaya çıkarmak için, göz kapağını açmak ve cildi geri çekmek için bir çift küçük yaylı makas kullanın. Yenidoğanlar için bazen gözün köşesinde başka bir dikey kesi gereklidir. Kan damarı olduğu için göz kapağının köşesini keserken dikkatli olun.

Skleranın başladığı gözün yan tarafında küçük bir delik açmak için steril bir 30.5 gauge iğne kullanın. İğneyi, eğimin göze girecek şekilde yeterince uzağa sokarak lense zarar vermemeye dikkat edin. Vitreusun delikten dışarı akmasına izin verin ve sıvıyı emmek için steril bir kesim ve uçlu aplikatör kullanın.

Vitreus delikten dışarı akmayı bıraktığında, ön derece izleme ile önceden yüklenmiş bir Hamilton şırıngasına bağlı künt uçlu bir iğneyi yavaşça yerleştirin. Deliğe boyayın, boyayı yavaşça göze enjekte edin. Tipik olarak, Alexa 5 94, 6 47 veya 4 88'e konjuge kolera toksini beta alt birimi anterior derece için kullanılır.

Geç izleme R GC girişleri İğneyi birkaç saniye delikte bırakın ve ardından yavaşça çıkarın. Fazla sıvıyı emmek ve boyanın dışarı sızmasını önlemek için pamuk uçlu bir aplikatör kullanın. Daha sonra göze az miktarda antibiyotik merhem sürün.

Göz cerrahi olarak açılmışsa. Enjeksiyondan sonra göz kapaklarını nazikçe yeniden konumlandırın. Anesteziden kurtulmaya başlayana kadar fareyi bir ısı lambasının altında veya bir ısı yastığı üzerinde bırakın.

Fareyi temiz bir ev kafesine geri koyun ve koloniye geri göndermeden önce tamamen uyanık olduğundan emin olmak için izleyin. Enjeksiyondan yaklaşık 24 saat sonra, fareyi feda edin ve beyni inceleyin. Beyni, ertesi gün dört santigrat derecede gece boyunca% 4 PFA ile doldurulmuş bir Falcon tüpüne sabitleyin.

Önce beyni ve PFA'yı boş bir peynir altı suyu teknesine dökerek beyni PBS'de üç kez durulayın, ardından beyni PBS ile dolu başka bir peynir altı suyu teknesine aktarmak için spatula kullanın. Beyni% 30 sükroz çözeltisi ile doldurulmuş bir Falcon tüpüne aktarmadan önce PBS'de iki kez daha yıkayın. Tüpün dibine batana kadar dört santigrat derecede sakaroz içinde bırakın.

Daha sonra, beynin ihtiyaç duyulmayan kısımlarını bir jiletle çıkarın. Beyni kuru buz üzerinde bir parça alüminyum folyo üzerinde dondurun. Bu arada, mikrotom aşamasını dondurun ve donmuş beyni dondurma aşamasına monte etmek için 24 oyuklu bir plakanın her bir oyuğuna yarım mililitre 0.1 molar PP ile doldurun.

Sahneye az miktarda OCT uygulayın. OCT donmaya başladığında, beyni içine yerleştirin. Beynin kesilecek tarafı yukarı bakmalıdır.

Daha sonra, beyni ve OCT'yi çok ince kırılmış kuru buzla örtün. Kuru buzu beynin üzerinde yaklaşık 30 saniye bekletin. Ardından kuru buzu çıkarmak için büyük bir boya fırçası kullanın.

Dilimleri 40 mikron kalınlığında dilimlemeye başlayın. Daha sonra küçük bir nemli boya fırçası kullanarak ilgilenilen bölgeyi içeren bölümleri bıçaktan çıkarın ve bunları 0.1 molar pb içeren 24 oyuklu plakaya aktarın. Kesitler toplandıktan sonra, ön derece etiketlemeyi bir floresan diseksiyon mikroskobu altında görselleştirin ve bölümleri bir slayt üzerine monte etmek için ilgilenilen bölgeyi içeren bölümleri seçin.

İlk olarak, yüklü bir mikroskoba 0.1 molar PB'lik küçük bir havuz uygulayın. Sonraki kaydırın, doku bölümlerini pb havuzuna aktarın. Ardından dokuları yönlendirmek ve yaymak için boya fırçasını kullanın.

XSPB'yi fitillemek için bir Kim mendili kullanın ve bölümün fitilini atmamaya dikkat edin. Tamamen kurumaya bırakın. Daha sonra her bölüme küçük bir damla montaj ortamı uygulayın ve sonunda üstüne bir kapak fişi monte edin.

Slaytın kenarlarını oje ile kapatın. Slaytı eksi 20 santigrat derecede, gösterilen görüntüleme oturumuna kadar saklayın. İşte ön derece izleme stratejisinin bir şeması.

Sol ve sağ göz RGC girişleri sırasıyla CTB 6 47 ve CTB 5 94 ile izlenir. Girdilerin mikroglia aracılı yutulması daha sonra değerlendirilir. İşte sol ve sağ göz girişlerinin intergrade izlemesini takiben doğum sonrası beşinci gün Fare DLGN'sinin temsili, düşük büyütmeli bir görüntüsü.

Bu, sol ve sağ göz girişlerinin sınır bölgesinden örneklenen bir mikrogliadır. Mikroglial hacmin dışındaki tüm CTB floresansı çıkarıldı, bu da yutulan RGC girişlerini ve mikroglia'nın yüzey oluşumunu ve yutulduğunu ortaya çıkardı. RGC girişleri burada gösterilmiştir.

İşte P beş, P dokuz ve P 30 fareden mikroglia oluşturulmuş temsili yüzey. DLGN RGC girdilerinin yutulması, DLGN'de pik budama sırasında daha büyük yaşlara göre önemli ölçüde artar. Kompleman reseptörü üçünde eksik olan farelerden elde edilen mikroglia, bir kez ustalaştıktan sonra vahşi tip çöp arkadaşlarına kıyasla önemli ölçüde daha az RGC girdisi yutar.

Bu teknik uygun şekilde uygulandığı takdirde 72 saat içinde yapılabilir. Bu videoyu izledikten sonra, nöronları nasıl etiketleyeceğinizi ve mikroglia sinaps etkileşimlerini nasıl değerlendireceğinizi iyi anlamış olmalısınız.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Nörobilim Sayı 88 Merkezi Sinir Sistemi (MSS) yutulma Fagositoz Mikroglia Synapse Anterograd İzleme Presinaptik Giriş Retinogeniculate Sistemi

Related Videos

Yenidoğan Rat Beyin Dokusu Karışık Glial Hücre Kültürleri Primer mikroglia İzolasyonu

10:20

Yenidoğan Rat Beyin Dokusu Karışık Glial Hücre Kültürleri Primer mikroglia İzolasyonu

Related Videos

40.3K Views

Normal MSS Real-time PCR ve Nöro sırasında mikroglia içinde microRNA tespiti

13:36

Normal MSS Real-time PCR ve Nöro sırasında mikroglia içinde microRNA tespiti

Related Videos

19.8K Views

İnsan Sinaptozomları Kullanılarak Mikroglia Benzeri Hücrelerin Canlı Hücre Fagositoz Testi

03:28

İnsan Sinaptozomları Kullanılarak Mikroglia Benzeri Hücrelerin Canlı Hücre Fagositoz Testi

Related Videos

371 Views

Retina Mikroglial Fagositik Fonksiyonu değerlendirilmesi İn Vivo A Akış Sitometri bazlı analiz kullamlarak

07:19

Retina Mikroglial Fagositik Fonksiyonu değerlendirilmesi İn Vivo A Akış Sitometri bazlı analiz kullamlarak

Related Videos

10K Views

Akış Sitometresi ile Merkezi Sinir Sisteminden Mikroglia ve Monosit Türevi Makrofajların Analizi

10:43

Akış Sitometresi ile Merkezi Sinir Sisteminden Mikroglia ve Monosit Türevi Makrofajların Analizi

Related Videos

24.8K Views

Bir roman In Vitro canlı görüntüleme Astrocyte tahlil-aracılı fagositoz kullanarak pH göstergesi Birleşik Synaptosomes

06:43

Bir roman In Vitro canlı görüntüleme Astrocyte tahlil-aracılı fagositoz kullanarak pH göstergesi Birleşik Synaptosomes

Related Videos

12.6K Views

Deneysel Otoimmün Ensefalomiyelit Sırasında Merkezi Sinir Sisteminde Lenfosit Infiltrasyonunun Akış Sitometrik Analizi

09:01

Deneysel Otoimmün Ensefalomiyelit Sırasında Merkezi Sinir Sisteminde Lenfosit Infiltrasyonunun Akış Sitometrik Analizi

Related Videos

7.6K Views

İPSC-Makrofajlar tarafından Ölü Nöroblastom Hücrelerinin Fagositozu için İn vitro Nicel Görüntüleme Tahlili

09:48

İPSC-Makrofajlar tarafından Ölü Nöroblastom Hücrelerinin Fagositozu için İn vitro Nicel Görüntüleme Tahlili

Related Videos

6.1K Views

Akış Sitometrisi Kullanılarak Sinaptik Materyalin Mikroglial Yutulmasının Miktar Tayini

07:41

Akış Sitometrisi Kullanılarak Sinaptik Materyalin Mikroglial Yutulmasının Miktar Tayini

Related Videos

1.7K Views

Miyelin Kalıntılarının Mikroglial Fagositozunun Değerlendirilmesi in vitro Tekrarlanan Manyetik Stimülasyon Altında

08:34

Miyelin Kalıntılarının Mikroglial Fagositozunun Değerlendirilmesi in vitro Tekrarlanan Manyetik Stimülasyon Altında

Related Videos

761 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code