Name: Eşzamanlı Niceleme için Dubleks Dijital PCR Testi Enterococcus spp. Ve Waters İnsan Fekal ilişkili HF183 Marker (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 14 s
Description: Keşfedin, rekreasyonel sulardaki Enterococcus spp. ve HF183 markerlarını aynı anda nicelendirmek için dubleks dijital PCR yöntemini. Bu analiz, standart eğrilerin neden olduğu sapmaları ortadan kaldırarak su kalitesi izlemede doğrudan ve tarafsız ölçüm sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarların hiçbir teşekkür hakkı yok.

1. Deney karışımı hazırlanması <ol><li> TE pH 8 tamponu tüm moleküler sınıf su içinde primer ve prob [Entero F1A, Entero R1, GPL813TQ 12 100 mol / L stok konsantrasyonları olun; HF183-1, BthetR1, BthetP1 3]. Not: iki hedef için sondalar floresan Malzemeleri / Ekipman Listesinde belirtildiği gibi farklı fluorophores 7 ile etiketlenir. </li><li> Planlı reaksiyon başına, karıştırarak 12 ul dijital PCR karışımı master karışımı hazırlayın, 0.216 ul ileriye her (2x stok, Malzeme / Ekipman listesi) ve astar, 0.06 ul her floresan prob ters ve nükleaz içermeyen su ul 5,016 (son konsantrasyon : 900 nM herbir primer, 250 nM her sonda). çözelti içinde hava kabarcıkları tanıtmak için dikkatli çekerken karışımı aşağı en az 10 kere pipet ve. </li><li> 6 ul DNA şablonunda karıştırma düzenli PCR tüp ya da plaka içine, (adım 1.2 dan itibaren) Pipet 18 ul ana karışımı (tarif Previou olarak çıkarılankurnaz 13) damlacık üretimi için tahlil karışım yapmak. nüsha halinde numune çalışıyorsa, pipet ana karışımı 36 ul ve her kuyuya 12 ul DNA şablonu. plaka üzerinde gelen çoğaltmak kuyu boş bırakın. Pozitif kumandaları (Malzeme / Ekipman Listesi) ve hiçbir şablon kumandaları (NTC) ekleyin (yani şablon olarak kullanılan moleküler sınıf su ile). Not: Pozitif kontrol deneyi düzgün çalıştığından emin olmak için gereklidir ve NTC plaka içinde herhangi bir kirlenme olmadığından emin olmak için ve veri analizi daha sonra floresan taban ayarlamak gerekir. İlk kez kullananlar hem sulandırılmamış ve seyreltilmiş DNA örnekleri kullanılması tavsiye edilir. </li></ol> 2. Damlacık Nesil ve PCR Plate Kurulumu <ol><li> Çok kanallı pipet kullanarak aşağı yaklaşık 15 kat kadar pipetleme tahlil karışımları karıştırın. pipet ucu karışımı içinde aşırı kabarcıklar yapmaktan kaçınmaya sıvı içinde kalır emin olun. </li><li> insert beyaz bir kartuş tutucu içine kartuşu 1 (içeren 8 kuyu) ve kartuş tutucu kapalı tıklayın. Kartuş 1 sıkıca yerinde şimdi ve damlacıklar üretirken sahibinden yerinden edilemez. Bir çok kanallı pipet kullanarak, yavaşça hava kabarcıkları tanıtan olmadan kartuş işaretli &#39;Örnek&#39; orta pozisyona tahlil karışımı 20 ul aktarın. </li><li> Pipetleyin kartuşunun sol tarafına damlacık oluşturma yağı 70 ul ( &#39;Petrol&#39; işaretli). </li><li> Bir conta conta, düz ve 4 ile eşit tutulan emin yapma kapak kartuş kartuşun kenarına doğru keneler. açın ve kartuşu yerleştirmek için damlacık jeneratör yeşil ışıklı düğmesine basın. Basın jeneratör kapatmak için düğmeye tekrar yeşil-lit. Not: Kapı kapanır sonra, düğmesi soluk, kapı yeniden açılamaz ve damlacık oluşturma hemen yaklaşık 1 dakika boyunca devam başlar. </li><li> bir saniye fazla 8 reaksiyonları, yer kartuş 2 yapıyor,damlacık oluşturma toplam kurulum zaman kazanmak için devam ederken, beyaz kartuş tutucu ve kartuş 1 ile aynı şekilde hazırlayın. </li><li> loş ışıklı buton damlacık nesil tamamlandığını belirten yeşile döndüğünde damlacık jeneratör kapağını açın. damlacık jeneratör üzerine beyaz kartuş 1 içeren kartuş tutucu, kenara, ve yer kartuşunu çıkarın 2. </li><li> kartuşun 1 contayı çıkarın ve atın. Yavaşça ısıl çevrimden (oda sıcaklığında muhafaza edilen) son bir PCR plaka üzerine kartuş ( &#39;damlacıklar&#39; işaretli) üçüncü sütunda elde edilen damlacıkların toplam hacmi (yaklaşık 40 ul) aktarın. Not: Yeni oluşturulan damlacıkların kırılabilir eylem olarak beyaz kartuşu yuvasını unclick etmeyin; damlacıkları son plakasına aktarıldıktan sonra sadece kartuş yuvasını açın. </li><li> Tekrarlayın ek örnekler için 2,1-2,7 adımları. </li><li> Bütün damlacıklar, nihai PCR plaka olduğu zaman, bir delinebilir yerplaka üzerine folyo kapağı ve bir plaka kapatıcı üzerine yerleştirin. mühürleyen 180 ° C, basın &#39;Play&#39; ile mühürleyen ayarlayın ve 10 saniye boyunca mühür verelim. </li></ol> 3. Termal Bisiklet ve Damlacık Okuma <ol><li> termal döngü sızdırmaz plakasını, aşama 2.7&#39;de kullanılan nihai PCR plaka ve 2.0 ° C / saniyenin altındaki bir ısı rampa hızı ile uyumlu olan bir. </li><li> şu şekilde ısı programı çalıştırmak: 10 dakika tutuldu, ardından 94 ° C&#39;de 30 saniye 40 döngü, ardından 95 ° C&#39;de 10 dakika ve 60 ° C&#39;de 60 saniye, isteğe 98 ° C&#39;de (en: son tutma 4 ° C&#39;de ya da 15 ° C). </li><li> bisiklet tamamlanması üzerine, her bir her bir damlacık floresans otomatik olarak belirlenmesi için, bir damlacık Reader plaka aktarın. Seçenek olarak ise, damlacık okuma önce 3 gün süreyle 4 ° C&#39;de plaka saklayın. damlacıklar okuma ile devam etmeden önce oda sıcaklığında olduğundan emin olun. <ol><li> kurulum damlacık okuma eşlik yazılımını açın. İçinde&#39;Örnek&#39;, &#39;Deney 1&#39; ve &#39;Deney 2.&#39;: Boş 96 plaka bir şemasını içeren varsayılan &#39;Ayarlar&#39; menüsü, çift, üç bölümden içeren bir menüyü açmak için de A1 tıklayın </li><li> &#39;Örnek&#39; bölümündeki &#39;Adı&#39; ve enter tuşuna basın veya işaretli sağa onay kutusunu etiketli kutunun içine örnek kimliğini yazın &#39;uygulayın.&#39; Sonraki menü etiketli &#39;Deney&#39; açılır tıklayın ve &#39;KIRMIZI&#39; (nadir bir olay algılama) seçin ve girin tıklayın. </li><li> &#39;Deney 1.&#39; belirtilen bölüme taşıyın &#39;Ad&#39; bölümünde tahlili (örneğin Enterococcus) doldurun ve girin tıklayın. etiketli &#39;Türü&#39; aşağıdaki kutuya açılır menüyü tıklayın ve &#39;Kanal Bilinmeyen 1&#39; seçin ve girin tıklayın. </li><li> &#39;Deney 2.&#39; belirtilen bölüme taşıyın &#39;Ad&#39; bölümünde tahlili (örn HF183) doldurun ve girin tıklayın. etiketli &#39;Türü&#39; aşağıdaki kutuya menü açılır tıklayın&#39;Kanal Bilinmeyen 2&#39; seçin ve girin tıklayın d. 3.3.4 3.3.2 şimdi Adımlar tüm bilgiler A1 kuyusunda sunuyoruz. </li><li> damlacıkları içeren sonraki tüm kuyu adı. toplam kurulum Zaman kazanmak için, aynı anda birden fazla kuyu seçmek için &#39;Shift&#39; veya &#39;Ctrl&#39; tıklayın. </li><li> plaka dijital tasviri menüsünün sağ alt köşesinde fiziksel plaka, &#39;Tamam&#39;a basın aynalar zaman. &#39;Şablon&#39; bölümünde plaka şematik üst kısmında görünen yeni menüsünde, &#39;Farklı Kaydet&#39; ve adını seçin ve plaka kaydedin. </li><li> Ekranın solunda &#39;Çalıştır&#39; ı tıklatın ve pop-out &quot;Run Seçenekleri&quot; penceresinde uygun boya Set seçin. Veri toplama başlatır ve yazılım gerçek zamanlı olarak görüntülenir. </li></ol></li></ol> 4. Veri Analiz ve Raporlama <ol><li> okuyucu bitti ve bir kutu &#39;Tam Run&#39; belirterek göründüğünde, &#39;Tamam&#39; ı tıklatın. Not: Yumuşakware yazılım &#39;Analiz&#39; bölümünün altında son veri dosyasını görüntüler. Bu görüşe göre, yazılım &#39;2B Genlik&#39; veri arsa seçilen tüm plaka kuyular ve varsayılan vardır. </li><li> Pozitif ve negatif damlacıklar arasındaki mesafeyi kontrol edin. NTC kuyularda tüm damlacıkları floresan başlangıca yakın olduğundan emin olun. </li><li> etiketli butonuna tıklayın &#39;Olaylar.&#39; sunulan histogramın sağındaki &#39;Toplam&#39; adlı kutu ve başına kabul görmüş damlacıkların toplam sayısını görüntülemek için alt kısımdaki &quot;tek&quot; adlı kutusunu tıklatın. Ctrl tuşunu basılı tutarak ve hariç tutulacak kuyu (ler) üzerine tıklayarak &lt;10.000 damlacıkları 7 içeren herhangi bir kuyu hariç. </li><li> Her iki hedefler için NTC kuyularda olumsuz damlacıklar üzerinde yaklaşık bir standart sapma (500-700 floresan birimleri) floresan eşik ayarlamak için &#39;1D Genlik&#39; olarak ifade butonuna tıklayın. Ekran un çok sol atİki eşik düğmelerini gösteren &#39;Otomatik Analiz&#39; üzerinden çalışan bir katı pembe yatay çizgi vardır sağdaki simgeyi seçin der. </li><li> genlik grafikleri her birinin altında &#39;Set Eşik&#39; Solundaki kutuya tıklayın ve uygun floresan eşik değerleri girin. ul reaksiyon başına kopya hedef konsantrasyonları daha sonra otomatik olarak hesaplanır. Not: eşikleri farklı hedefler için aynı olması gerekmez. </li><li> 1D Genlik ekranın sol üst köşesindeki &#39;Export&#39; düğmesini tıklayarak bir .csv dosyasına sonuçları ihracat. .csv Dosyası, DNA şablonuna ul başına hedef kopyalamak için ul reaksiyon başına hedefin kopyası (Enterococcus spp 23S geni. Veya HF183 işaretleyici) onu dönüştürmek için 4 tarafından ihraç edilen hedef konsantrasyon çarpın. </li></ol>

<ol><li>Recreational Water Quality Criteria. EPA. , Office of Water. Washington, DC. 820-F-12-058. Available from: 
 <a target="_blank" href="http://water.epa.gov/scitech/swguidance/standards/criteria/health/recreation/">http://water.epa.gov/scitech/swguidance/standards/criteria/health/recreation/</a> (2012).</li>
<li>Boehm, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+of+forty-one+microbial+source+tracking+methods%3A+A+twenty-seven+lab+evaluation+study%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Performance of forty-one microbial source tracking methods: A twenty-seven lab evaluation study.</a> Water Res. 47 (18), 6812-6828 (2013).</li>
<li>Layton, B. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Performance+of+human+fecal+anaerobe-associated+PCR-based+assays+in+a+multi-laboratory+method+evaluation+study%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Performance of human fecal anaerobe-associated PCR-based assays in a multi-laboratory method evaluation study.</a> Water Res. 47 (18), 6897-6908 (2013).</li>
<li>Cao, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+platform%2C+reference+material%2C+and+quantification+model+on+enumeration+of+Enterococcus+by+quantitative+PCR+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Effect of platform, reference material, and quantification model on enumeration of Enterococcus by quantitative PCR methods.</a> Water Res. 47 (1), 233-241 (2013).</li>
<li>Sivaganesan, M., Siefring, S., Varma, M., Haugland, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MPN+estimation+of+qPCR+target+sequence+recoveries+from+whole+cell+calibrator+samples%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Microbiol.+Methods%22%5BJournal%5D)">MPN estimation of qPCR target sequence recoveries from whole cell calibrator samples.</a> J. Microbiol. Methods. 87 (3), 343-349 (2011).</li>
<li>Huggett, J. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Digital+MIQE+Guidelines%3A+Minimum+Information+for+Publication+of+Quantitative+Digital+PCR+Experiments%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Chem%22%5BJournal%5D)">The Digital MIQE Guidelines: Minimum Information for Publication of Quantitative Digital PCR Experiments.</a> Clin. Chem. 59 (6), 892-902 (2013).</li>
<li>Cao, Y., Raith, M. R., Griffith, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Droplet+digital+PCR+for+simultaneous+quantification+of+general+and+human-associated+fecal+indicators+for+water+quality+assessment%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Droplet digital PCR for simultaneous quantification of general and human-associated fecal indicators for water quality assessment.</a> Water Res. 70, 337-349 (2015).</li>
<li>Sanders, R., Huggett, J. F., Bushell, C. A., Cowen, S., Scott, D. J., Foy, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+Digital+PCR+for+Absolute+DNA+Quantification%5BTitle%5D)+AND+%22Anal.+Chem%22%5BJournal%5D)">Evaluation of Digital PCR for Absolute DNA Quantification.</a> Anal. Chem. 83 (17), 6474-6484 (2011).</li>
<li>Whale, A. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+microfluidic+digital+PCR+and+conventional+quantitative+PCR+for+measuring+copy+number+variation%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acid+Res%22%5BJournal%5D)">Comparison of microfluidic digital PCR and conventional quantitative PCR for measuring copy number variation.</a> Nucleic Acid Res. 40 (11), 82-89 (2012).</li>
<li>Hindson, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Absolute+quantification+by+droplet+digital+PCR+versus+analog+real-time+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Absolute quantification by droplet digital PCR versus analog real-time PCR.</a> Nature Methods. 10 (10), 1003-1005 (2013).</li>
<li>Morisset, D., Štebih, D., Milavec, M., Gruden, K., Žel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+analysis+of+food+and+feed+aamples+with+droplet+digital+PCR%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Quantitative analysis of food and feed aamples with droplet digital PCR.</a> PLoS One. 8 (5), e62583(2013).</li>
<li>Method 1611: Enterococci in Water by TaqMan® Quantitative Polymerase Chain Reaction (qPCR) Assay. EPA. , Office of Water. Washington, DC. EPA-821-R-12-008. Available from: 
 <a target="_blank" href="http://water.epa.gov/scitech/methods/cwa/bioindicators/upload/Method-1611-Entercocci-in-Water-by-TaqMan-Quantitative-Polymerase-Chain-Reaction-qPCR-Assay.pdf">http://water.epa.gov/scitech/methods/cwa/bioindicators/upload/Method-1611-Entercocci-in-Water-by-TaqMan-Quantitative-Polymerase-Chain-Reaction-qPCR-Assay.pdf</a> (2012).</li>
<li>Cao, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+molecular+community+analysis+methods+for+discerning+fecal+sources+and+human+waste%5BTitle%5D)+AND+%22Water+Res%22%5BJournal%5D)">Evaluation of molecular community analysis methods for discerning fecal sources and human waste.</a> Water Res. 47 (18), 6862-6872 (2013).</li>
</ol>

Yazarlar, rekabet eden hiçbir finansal çıkarları olmadığını beyan ederler.

protokolde birkaç kritik adımlar vardır. Ana Karışım, geleneksel qPCR ana karışımları daha viskoz olduğundan ilk deney karışımları karıştırılması zor olabilir. Basit vorteksleme da deney karışımları ve daha sonra damlacıklar DNA şablonları eşit olmayan dağılımına neden olur yeterli karıştırma, neden olabilir. protokol açıklanan karıştırma-by-pipetleme tekniği doğru dPCR ölçümünü sağlamak için takip edilmelidir. İkinci olarak, damlacıklar tek yapılı bir şekle ve boyuta üretilen sağlamak için önemlidir. Zaman damlacık jen...

daha hızlı, daha esnek ve geleneksel kültür temelli yöntemlerle karşılaştırıldığında özel çünkü kantitatif PCR (qPCR) yöntemleri yaygın eğlence su kalitesi izleme ve mikrobiyal kaynak takibi uygulamalarında kullanılmaktadır. Sonuç olarak, qPCR gibi Enterococcus spp gibi genel fekal göstergeler için hızlı su izleme sonuçları elde etmek için tavsiye edilir. Revize USEPA eğlence su kalite kriterleri 1. Birçok qPCR deneyleri de geliştirilmiş ve çevresel sularda 2 fekal kontaminasyon kaynaklarının belirlenmesi için onaylanmıştır. Bunlar arasında, HF183 işaretleyici deneyleri en sık insan ilişkili fekal kontaminasyonu 3 tanımlamak için kullanılan arasındadır. onlar ölçümü için standart eğriler güveniyor Ancak, qPCR sonuçlar genellikle önyargılı olabilir. qPCR bir stan kendi ölçümü döngüsünü (Cq) enterpolasyonlayarak örneklerinde hedefin bilinmeyen konsantrasyonlarını rakamlarlaCq ve seri seyreltilmiş standartların bir dizi logaritmik miktarı arasında doğrusal bir ilişki açıklanır dart eğrisi. güvenilir ve tutarlı standart referans malzeme eksikliği dolayısıyla büyük ölçüde qPCR sonuçlarını taraflı olabilir. Çalışmalar qPCR sonuçları farklı satıcılardan 4 yaklaşık yarım günlük kullanarak standartlarına göre farklılık ve aynı satıcıdan 5&#39;ten standartların farklı toplu kullanarak 2 kat ile gösterdi. Dijital PCR (dPCR) teknolojisi üniforma Nanoliter veya pikolitrelik reaksiyonlar 6 binlerce ya da milyonlarca içine toplu qPCR bölümleme tarafından oluşturulan minyatür PCR&#39;ler çok sayıda pozitif sıklığını sayarak bilinmeyen bir örnek rakamlarla. Bölmeler-içinde-su yağ damlacıkları (örneğin, bu makale) ya da çip küçük fonksiyonlu odalar olması durumunda bu, sırası ile (yani, bu makale) damlacık dijital PCR veya odası, dijital PCR olarak ifade edilir. Daha yüksek bir Örnek konsantrasyonu hedef DNA&#39;nın mevcudiyetinde sonuçlanırbölümleri daha yüksek bir oranda (dolayısıyla pozitif PCR), Poisson dağılımı ile yaklaştırılır bir ilişki. Bu nedenle, ikili sonuçlar (pozitif ya da negatif PCR) kaydedilir ve pozitif damlacıkların frekansı qPCR olarak standart bir eğri olan ihtiyacı ortadan kaldırarak, doğrudan Poisson yaklaşım ile bilinmeyen numune konsantrasyonları hesaplamak için kullanılır. Dijital PCR nicelikleme Bu ikili doğası qPCR 7 üzerinde ek avantajlar sağlamaktadır. gecikmiş amplifikasyon hala olumlu bir PCR sağlayabilir, çünkü dPCR miktar amplifikasyon verimliliği azaltır inhibisyonuna karşı daha sağlamdır. QPCR 8-10 göre dPCR yüksek hassasiyet yol qPCR olarak Benzer şekilde, dPCR miktar Cq değerleri değişkenlik etkilenmez. Buna ek olarak, bölme işlemi etkin bir şekilde amplificatio sırasında (alt-tabaka rekabet en aza indirerek, her damla hedef DNA mevcut çok az miktarda sağlanırqPCR (yani bir tahlil aynı anda iki DNA hedefleri ölçen) duplekslemeyi ulaşmak için ortak engeller farklı DNA hedefleri) n. Bu nedenle, dubleks veya simpleks çalışma (yani bir hedef, tek bir deneyde ölçülen) olmadığını dPCR her iki hedeflerin 7,11 neredeyse ayırt edilemez miktarının üretir. Bu makalede açıklanan dijital PCR deneyi (EntHF183 dPCR) amacı, genel dışkı göstergesi Enterococcus spp Eş zamanlı miktarının elde etmektir. Ve geliştirilmiş hassasiyet, tekrarlanabilirlik ve inhibisyonuna karşı sağlamlığı olan insan dışkı ilişkili HF183 markör olarak qPCR karşılaştırıldığında uzantılarıdır. Bu deney, başarılı bir şekilde, çevresel tatlı su, deniz suyu ve çeşitli dışkı maddesinin 7 dışkı kirlenme ölçülmesi için kullanılmıştır, ama aynı zamanda suları ve atık suların bir diğer türlerine de uygulanabilir. Bu tahlil, kendisine bağlı tortuları veya topraklar analiz etmek için büyük söz sahibidirinhibisyonuna yüksek tolerans s, ancak inhibitör örnekleri, bu tür karışımlar daha fazla test için karmaşıklığı gereklidir.

<table><tbody><tr><td>Düşük Bağlamalı Mikrotüpler</td><td>Costar</td><td>3207</td><td>Reaktiflerin depolanması, ana karışımların numuneleri/üretimi için</td></tr><tr><td>Nükleaz İçermeyen Su</td><td>FisherSci</td><td>BP2484-50</td><td></td></tr><tr><td>TE pH 8 tamponu</td><td>FisherSci</td><td>BP2473-100</td><td></td></tr><tr><td>Sert Kabuklu 96 Kuyulu Plaka</td><td>BioRad</td><td>HSP-9601</td><td>İlk ana karışım ve numune aşılaması için</td></tr><tr><td>Alüminyum Sızdırmazlık Filmi</td><td>BioRad</td><td>359-0133</td><td>Numune plakasını kapatmak için</td></tr><tr><td>Damlacık Jeneratörü</td><td>BioRad</td><td>186-3002</td><td></td></tr><tr><td>Damlacık Üretimi Yağı</td><td>BioRad</td><td>186-3005</td><td></td></tr><tr><td>Kartuş BioRad</td><td></td><td>186-4008</td><td></td></tr><tr><td>DG8 Kartuş Tutucu</td><td>BioRad</td><td>186-3051</td><td></td></tr><tr><td>Conta</td><td>BioRad</td><td>186-3009</td><td></td></tr><tr><td>20 &#956; l pipet uçları</td><td>Rainin</td><td>GP-L10F</td><td>Numune/ana karışımı 200 &#956'ya tansferring yapmak için</td></tr><tr><td>; l pipet uçları</td><td>Rainin</td><td>GP-L200F</td><td>Damlacıkları nihai Twin.Tec Plakaya aktarmak için Twin.Tec</td></tr><tr><td>96 Kuyulu</td><td>Plaka Eppendorf</td><td>951020320</td><td>Son damlacıklar için termal döngü ve okuma</td></tr><tr><td>Delinebilir Isı Yalıtım Folyosu</td><td>BioRad</td><td>181-4040</td><td>Thermalcycling'den önce Twin.Tec plakasını kapatmak için</td></tr><tr><td>PX1 PCR Plaka Kapatıcı</td><td>BioRad</td><td>181-4000</td><td></td></tr><tr><td>CFX96 Termal Döngüleyici</td><td>BioRad</td><td>CFX96 ve C1000</td><td>Yalnızca termal döngüleyiciye ihtiyaç vardır, optik yok</td></tr><tr><td>QX100 Damlacık Okuyucu</td><td>BioRad</td><td>186-3001</td><td></td></tr><tr><td>Damlacık Okuyucu Yağı</td><td>BioRad</td><td>186-3004</td><td></td></tr><tr><td>Damlacık PCR Supermix&nbsp;</td><td>BioRad</td><td>186-3024<</td><td>em>i.e. el yazması QuantaSoft yazılımındaki dijital PCR karışımı</td></tr><tr><td>(v1.3.2)</td><td>Quantasoft&nbsp;</td><td>QX100&nbsp;</td><td>ddPCR verilerini görüntülemek, analiz etmek ve dışa aktarmak için</td></tr><tr><td>Entero İleri Astar (Ent F1A)</td><td>Operon</td><td>GAGAAATTCCAAACGAACTTG</td><td>Alternatif satıcı kullanılabilir</td></tr><tr><td>Entero Ters Astar (Ent R1)</td><td>Operon</td><td>CAGTGCTCTACCTCCATCATT</td><td>Alternatif satıcı</td></tr> kullanılabilir <tr><td>Entero Probe (GPL813TQ)</td><td>Operon</td><td>[6-FAM]-TGG TTC TCT CCG AAA ETİKETİ CTT ETİKETİ GGC TA-[BHQ1]</td><td>Alternatif satıcı kullanılabilir, ancak floroforun FAM</td></tr><tr><td>HF183 İleri Astar ( HF183-1)</td><td>Operon</td><td>ATCATGAGTTCACATGTCCG</td><td>Alternatif satıcı kullanılabilir</td></tr><tr><td>HF183 Ters Astar (BthetR1)</td><td>Operon</td><td>CGTAGGAGTTTGGACCGTGT</td><td>Alternatif satıcı kullanılabilir</td></tr><tr><td>HF183 Probu (BthetP1)</td><td>Operon</td><td>[6-HEX]-CTGAGAGGAAGGTCCCCC ACATTGGA-[BHQ1]</td><td>Alternatif satıcı kullanılabilir, ancak florofor HEX olmalıdır (VIC kullanılıyorsa, uygun matris telafisi seçilmelidir. &nbsp;</td></tr><tr><td>Pozitif kontrol</td><td></td><td></td><td>E. faecalis genomik DNA ve HF183 standart plazmid karışımı (IDT'den sipariş edilir). E. faecalis kültürlemede ayrıntılı yöntemler ve sipariş edilen HF183 plazmidinin dizileri için lütfen Cao et al. 2015'e bakın (doi:10.1016/j.watres.2014.12.008). Ticari olarak mevcut Enterococcus DNA standartları (ATCC 29212Q-FZ), laboratuvarda hazırlanmış E. faecalis genomik DNA yerine pozitif kontrolde de kullanılabilir.</td></tr></tbody></table>

eşzamanlı niceleme için dubleks dijital pcr testi<em&gt; enterococcus spp.</em&gt; ve waters İnsan fekal ilişkili hf183 marker

A Duplex Digital PCR Assay for Simultaneous Quantification of the Enterococcus spp. and the Human Fecal-associated HF183 Marker in Waters

Bu yazının Enterococcus spp eşzamanlı ölçümü. Ve insan fekal-ilişkili HF183 işaretleyici için bir dubleks dijital PCR testi (EntHF183 dPCR) açıklar. EntHF183 dubleks dPCR (EntHF183 dPCR olarak anılacaktır buradan sonra) deneyi yayınlanmış bireysel kantitatif PCR (qPCR) meslektaşlarıyla aynı primer ve prob dizileri kullanır. Aynı şekilde, önce qPCR uygulandı aynı su filtreleme ve DNA ekstraksiyon prosedürleri dPCR çalıştırmadan önce takip edilmektedir. Ancak, dubleks dPCR tahlil qPCR deneyleri üzerinde birçok avantajı vardır. En önemlisi, dPCR tahlil hedefleri doğrudan ölçümü ile dolayısıyla standart bir eğri çalışan ve ihtiyacını, ilgili önyargı ve değişkenliği, ortadan kaldırır. QPCR (yani eşzamanlı kantifikasyon) enterokokların ve HF183 arkalı önlü ise ek olarak, çoğu kez bir numunede daha az bol hedefin ciddi küçümsenmesi yol açar, dPCR hem hedeflerin tutarlı ölçümü sağlar, uyandırmakona aynı reaksiyonda eş zamanlı olarak tek başına ya da miktarı. dPCR deneyi de qPCR tolere daha yüksek büyüklükte bir ya da iki emirler PCR inhibitörü konsantrasyonları tolere edebilmektedir. aynı anda iki ayrı qPCR deneyleri çalıştırmak için gerek kalmadan çevre sularda hem genel hem de insan-ilişkili fekal kontaminasyon doğru ve tekrarlanabilir bilgi sağlar, çünkü bu avantajlar EntHF183 dPCR tahlil özellikle çekici olun. qPCR üzerindeki avantajlara rağmen, şu anda mevcut cihaz olan dPCR deneyinde üst miktar sınırı yaklaşık qPCR elde edilebilenden daha düşük bir magnitüd dört işlemlerdir. Sonuç olarak, seyreltme, tipik pis su sızıntıları ardından gözlenen hedef organizmaların yüksek konsantrasyonlarının ölçümü için gereklidir.

İyi bir EntHF183 dupleks dPCR çalıştırma kabul damlacıklar (yaklaşık 10,000-17,000) ve negatif ve pozitif damlacıklar 7 floresans değerleri arasında nispeten daha büyük bir fark (yaklaşık 5.000) nispeten yüksek sayıda neden olmalıdır. damlaların alışılmadık az sayıda büyük olasılıkla damlacık oluşturma sürecinde sorunları gösterir ve 10.000 damlacıkların bir kesim bu makalede kullanılan damlacık dPCR sisteminden ampirik verilere dayalı önerilmektedir. Pozitif...

Bu yazıda, aynı anda Enterococcus spp ölçmek için kullanılabilecek bir çift yönlü dijital PCR deneyi. Ve eğlence sularda genel olarak insan ilişkili dışkı kirlenme göstergeleri olarak HF183 genetik işaretleyiciler açıklanmaktadır.

Eşzamanlı Niceleme için Dubleks Dijital PCR Testi<em&gt; Enterococcus spp.</em&gt; Ve Waters İnsan Fekal ilişkili HF183 Marker

This manuscript describes a duplex digital PCR assay (EntHF183 dPCR) for simultaneous quantification of Enterococcus spp. and the human fecal-associated ...

Bu Dupleks Dijital PCR Analizinin genel amacı, sulardaki genel ve insan kaynaklı fekal kontaminasyonu eş zamanlı olarak nicelleştirmektir. Bu Analiz, rekreasyonel su kalitesi izlemede, sularda ne kadar genel fekal indikatörün (örneğin Enterococcus) ve daha da önemlisi, insan fekal kontaminasyonu ile ilişkili HF183 Marker'ın bulunduğuna dair temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.Bu Analizin temel avantajı, tek bir reaksiyonda iki hedefi miktarlandırmasıdır ve qPCR ile karşılaştırıldığında, standart eğrilerle çalışma gereksinimini, dolayısıyla buna bağlı yanlılığı ve değişkenliği ortadan kaldırır. Prosedürü Kıdemli Araştırma Teknisyenimiz Meredith Raith uygulamalı olarak gösterecektir. Bu prosedüre başlamak için, öncelikle protokol metninde açıklandığı şekilde, tüm primerler için Moleküler Sınıf Su içinde ve problar için TEPH 8 Tamponu içinde 100 Micromole per liter stok konsantrasyonlar hazırlayın.Ardından, uygun miktarlarda Digital PCR karışımı, ileri ve geri primerler, floresan prob ve Nükleaz İçermeyen Su karıştırarak bir Master Mix hazırlayın. Çözeltiye hava kabarcığı girmemesine dikkat ederek, karıştırmak için pipetle en az 10 kez aşağı yukarı çekme işlemi yapın. dPCR Master Mix, konvansiyonel qPCR Master Mix'ten daha viskoz olduğundan, homojen bir çözelti oluşturmak için pipetle karıştırma tekniğini kullanmak gereklidir.Bu, daha sonraki aşamalarda doğru dPCR kantifikasyonu yapılmasını sağlar. Örnekleri çift kopya (duplicate) olarak çalıştırmak için Damlacık Üretimi Deney Karışımını hazırlamak üzere, standart bir PCR plakasına 36 µL Master Mix pipetleyin. Her bir 36 µL Master Mix'e, plaka üzerindeki karşılık gelen replika kuyucuklarını boş bırakacak şekilde 12 µL DNA şablonu karıştırın.Analizin düzgün çalıştığından emin olmak için pozitif kontroller ekleyin. Plak içinde kontaminasyon olmadığını doğrulamak ve veri analizi için daha sonra floresan baz çizgisini belirlemek amacıyla Kalıp İçermeyen Kontroller veya NTC'ler ekleyin. Droplet Generatörü'nü kurmadan önce, çok kanallı bir pipet kullanarak Analiz Karışımlarını yaklaşık 15 kez aşağı yukarı pipetleyip karıştırın.Karışım içerisinde hava kabarcıkları oluşmasını önlemek için pipet ucunun sıvının içinde kaldığından emin olun. Ardından, sekiz kuyu içeren birinci kartuşu beyaz bir kartuş tutucuya yerleştirin ve kartuş tutucuyu kapatarak kilitleyin. Birinci kartuş artık sabitlenmiştir ve damlacıklar oluşturulurken tutucudan yerinden çıkmayacaktır.Çok kanallı bir pipet kullanarak, hava kabarcığı oluşturmadan 20 µL Assay Mixture'ı kartuşun üzerinde örnek olarak işaretlenmiş orta pozisyonuna nazikçe aktarın. Kartuşun üzerinde yağ olarak işaretlenmiş sol tarafına 70 µL Droplet Generation yağı pipetleyin. Kartuşu, contanın düz olduğundan ve kartuşun kenarına doğru olan dört işaret tarafından eşit şekilde tutulduğundan emin olarak bir conta ile kapatın.Kapağı açmak ve kartuşu yerleştirmek için Droplet Generator üzerindeki yeşil ışıklı düğmeye basın. Jeneratörü kapatmak için düğmeye tekrar basın. Kapak kapandıktan sonra yeşil düğme söner ve kapak tekrar açılamaz.Damlacık Oluşturma işlemi hemen başlayacak ve yaklaşık bir dakika boyunca devam edecektir. Damlacık Oluşturma işlemi sürerken, ikinci kartuşu ikinci beyaz kartuş tutucuya yerleştirin ve birinci kartuşta olduğu gibi hazırlayın. Damlacık Oluşturma tamamlandığında, sönük yanan düğme yeşile dönecektir.Damlacık Üreteci kapağını açın, birinci kartuşu içeren beyaz kartuş tutucuyu çıkarıp kenara ayırın. İkinci kartuşu Damlacık Üreteci'ne yerleştirin. Birinci kartuştaki contayı çıkarıp atın.Yeni oluşturulan damlacıklar bozulabileceği için beyaz kartuş tutucuyu yerinden çıkarmayın. 40 µL'ye ayarlanmış çok kanallı bir pipet kullanarak, uçları kartuşun damlacıklar şeklinde işaretlenmiş üçüncü sütununa 45 derecelik bir açıyla yerleştirin ve tüm damlacıkları yavaşça çekin. Pipet ucunu kuyucuk duvarının yaklaşık orta kısmına dayayarak ve damlacıkları yavaşça boşaltarak onları son PCR plakasına aktarın.Aynı şekilde, ikinci kartuş için Damlacık Üretimi tamamlandığında, contayı ikinci kartuşun üzerinden çıkarın ve üretilen damlacıkları nihai PCR plakasına aktarın. Plakanın üzerine delinebilir bir folyo kapak yerleştirin ve plakayı bir plaka kapatıcıya yerleştirin. Kapatıcıyı 180 degrees celsius'ye ayarlayın, kapatıcıdaki başlatma düğmesine basın ve 10 saniye boyunca mühürleyin.Bu prosedüre başlamak için, mühürlenmiş final PCR plağını termosikletöre yerleştirin. Final PCR plağıyla uyumlu ve saniyede iki santigrat derece sıcaklık artış hızına sahip bir termosikletör kullanın. Şu termal programı çalıştırın: 95 °C'de on dakika, ardından 94 °C'de 30 saniye ve 60 °C'de 60 saniyelik 40 döngü ve son olarak 98 °C'de on dakikalık bir bekletme.Döngüler tamamlandığında, her kuyucuktaki her damlacıktaki floresanların otomatik olarak ölçülmesi için plakayı bir Droplet Reader'a aktarın. Damlacık Okuma işlemine geçmeden önce damlacıkların oda sıcaklığında olduğundan emin olun. Damlacık Okuma işlemini kurmak için beraberindeki yazılımı açarak başlayın.Boş bir 96 kuyucuklu plaka şemasının bulunduğu varsayılan kurulum menüsünde, Örnek, Assay 1 ve Assay 2 şeklinde üç bölüm içeren menüyü açmak için A1 kuyucuğuna çift tıklayın. Örnek bölümünde, Name etiketli kutuya Örnek ID'sini yazın ve sağdaki Apply kutucuğunu işaretleyin. Ardından, experiment etiketli açılır menüye tıklayın, Rare Event Detection (Nadir Olay Tespiti) için RED seçeneğini seçin ve Enter'a tıklayın.Assay 1 olarak belirtilen bölüme gidin. Name (İsim) bölümünde, Assay kısmını doldurun ve Enter'a tıklayın. Aşağıda Type (Tür) olarak etiketlenen kutuda, açılır menüye tıklayın, Channel 1 Unknown seçeneğini belirleyin ve Enter'a tıklayın.Assay 2 olarak belirtilen bölüme geçin. Name (İsim) bölümünde, Assay kısmını doldurun ve Enter'a tıklayın. Altındaki Type (Tür) etiketli kutuda, açılır menüye tıklayarak Channel 2 Unknown seçeneğini belirleyin ve Enter'a tıklayın.Önceki adımlardan gelen tüm bilgiler şu an A1 kuyucuğunda bulunmaktadır. Damlacık içeren tüm sonraki kuyucukları isimlendirin. Toplam kurulum süresini kısaltmak için, birden fazla kuyucuğu aynı anda seçmek üzere shift veya control tuşuna tıklayın. Plakanın dijital temsili fiziksel plaka ile eşleştiğinde, menünün sağ alt köşesindeki OK düğmesine basın.Plaka şemasının üst kısmında beliren yeni menüde, Şablon altında Farklı Kaydet'i seçip plakaya bir isim vererek kaydedin. Ekranın solunda yer alan Çalıştır'a tıklayın ve açılan Çalıştırma Seçenekleri penceresinde uygun Boya Setini seçin. Veri toplama işlemi başlayacak ve yazılımda gerçek zamanlı olarak görüntülenecektir.Okuyucu işlemi tamamladığında ve "Run Complete" (Çalışma Tamamlandı) belirten bir kutu göründüğünde, OK'ye tıklayın. Pozitif ve negatif damlacıklar arasındaki ayrımı kontrol edin. NTC kuyucuklarındaki tüm damlacıklarda floresan değerlerinin temel çizgiye yakın olduğundan emin olun. Events (Olaylar) etiketli düğmeye tıklayın.Alt kısımda, Single adlı kutucuğa tıklayın ve sunulan Histogram'ın sağında, kuyucuk başına kabul edilen toplam damlacık sayısını görüntülemek için Total adlı kutucuğa tıklayın. Kontrol tuşuna basılı tutarak ve hariç tutulacak kuyucuklara tıklayarak, 10,000 damlacıktan daha az içeren tüm kuyucukları hariç tutun. Her iki hedef için NTC kuyucuklarındaki negatif damlacıkların yaklaşık bir standart sapmasında floresan eşiğini ayarlamak için 1D Amplitude ile belirtilen düğmeye tıklayın.Ekranın en solunda, iki eşik düğmesini gösteren Auto Analyze kısmının altında, içinden düz pembe yatay bir çizgi geçen sağdaki simgeyi seçin. Her bir Genlik Grafiğinin (Amplitude Graphs) altındaki Set Threshold kutusunun solundaki kutucuğa tıklayın ve uygun floresan eşik değerlerini girin. Mikrolitre reaksiyon başına kopya cinsinden hedef konsantrasyonlar daha sonra otomatik olarak hesaplanır.1D Genlik (Amplitude) ekranının sol üst köşesindeki Export butonuna tıklayarak sonuçları bir CSV dosyası olarak dışa aktarın. CSV dosyasında, dışa aktarılan hedef konsantrasyonunu mikrolitre reaksiyon başına hedef kopya sayısından, mikrolitre DNA kalıbı başına hedef kopya sayısına dönüştürmek için dörtle çarpın. Bu şekil, Dijital PCR Analizinin dupleks ve simpleks formatlarını karşılaştırmaktadır.Sol ve sağ paneller sırasıyla Enterococcus ve HF183 miktar belirlemelerini ve duplex ile simplex sonuçları arasındaki ilgili korelasyon katsayılarını göstermektedir. Düz çizgiler regresyon çizgilerini, gri gölgelendirme ise ilgili standart hataları belirtmektedir. Farklı örnek türleri sembollerle gösterilmiştir.Enterococcus ve HF183'ün tek bir reaksiyonda eş zamanlı olarak veya iki ayrı reaksiyonda ayrı ayrı ölçülmesi durumunda sonuçlar oldukça tutarlıdır ve genellikle ayırt edilemez. Dijital PCR Analizi, qPCR karşılıklarının tolere edebildiğinden bir ila iki büyüklük sırası daha yüksek konsantrasyonlardaki inhibitörlere karşı da dayanıklılık gösterebilir. Bu şekil, PCR'ı inhibe eden hümik asit konsantrasyonu artırılmış temiz kanalizasyon DNA'sı ile desteklenmiş HF183 markörünün qPCR ve Dijital PCR Kantifikasyonunu göstermektedir.İnhibitörlerin yokluğunda beklenen HF183 kantifikasyonu, iki yatay noktalı çizgi arasındaki %95 güven aralığı olarak tanımlanmıştır. Üçgenlerle belirtilen dijital PCR, reaksiyon başına 15 nanogram/µL hümik asit konsantrasyonuna kadar doğru kantifikasyon sağlamaya devam ederken; çarpılarla belirtilen qPCR, 1 nanogram/µL seviyesinde düşük tahmin etmeye başlar ve 5 nanogram/µL seviyesinde tamamen inhibe olur. Bu videoyu izledikten sonra, bu enteral HF183 Düpleks Droplet Dijital PCR Analizini veya farklı primerler ve problar kullanan benzer diğer analizleri nasıl gerçekleştireceğiniz konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.2015 yılında Water Research dergisinde yayınlanan bu Duplex Assay'in geliştirilmesinden bu yana, genel fekal indikatör bakterileri, mikrobiyal izleme belirteçlerini ve suyla bulaşan patojenleri hedefleyen bir dizi başka Dijital PCR Assay geliştirdik ve doğruladık. Bu Assay'ler, hedeflerinin doğrudan ve tarafsız nicelendirmesini sağlamakta olup Su Kalitesi Testi alanında qPCR Assay'lerine yararlı alternatifler haline gelmektedirler.

a-duplex-digital-pcr-assay-for-simultaneous-quantification

Research

JoVE Journal

Environment

Çevre

Oligonükleotid çiftli florasan boncuklar kullanarak bir örnek içinde mikroorganizmaların tespiti için çoklama yöntemi açıklar. Bir örnek içindeki tüm organizmalar Amplikon bir panel prob-çiftli boncuk melezleşmiştir. LUMINEX veya Bio-Plex enstrüman, boncuk, boncuk türü ve hibridizasyon sinyali için her bir sorgu için kullanılır.

Oligonükleotid çiftli Floresan Mikroküreler kullanarak Kompleksi Klinik ve Çevre Örneklerinde Bakterilerin Multiplex Algılama

Biz son zamanlarda basit bir bakteriyel tespiti için floresan assay "mix-ve-okuma" kurmak için uygulanabilir Flourogenik DNAzyme probları üretmek için yeni bir yaklaşım bildirdin. Bu özel DNA sondaları böylece floresans sinyali kuşağa bakteriyel algılama çevirme belirli bakteri tarafından üretilen ham hücre dışı karışımı (CEM) varlığında, bir kromofor-değiştirilmiş-DNA RNA kimerik substratın bölünme katalize. Bu yazıda, "RFD-EC1" ifade belirli bir DNAzyme prob modeli bakterinin tespiti için...

Flourogenik DNAzymes kullanarak Bakterilerin Tespiti

Bu protokol, su bazlı tespiti için alternatif adımlar olarak teğet akış boş elyaf ultrafiltrasyon numune konsantrasyonu sisteminin kullanımı ve ısı ayrışma...

Su bazlı Algılamak için Teğet Akış Hollow-fiber Ultrafiltrasyon ve Isı Disosiyasyon Adımlar kullanır A Modifiye EPA Method 1623<em&gt; Cryptosporidium</em&gt; Ve<em&gt; Giardia spp.</em

Bu videoda, iki farklı genetik belirteci aynı anda tespit etmede yararlı olan geleneksel PCR tekniğinin bir modifikasyonu olan çift yönlü dijital PCR (ddPCR) tekniğini gösteriyoruz. Tek bir PCR reaksiyonu, bağımsız olarak amplifiye edilen nanolitre boyutunda emülsifiye edilmiş damlacıklara bölünür ve hedef dizilerin başlangıç konsantrasyonunu hesaplamak için damlacıkların fraksiyonundan farklı renkli floresan amplifikasyon sinyallerinin tespiti kullanılır.

Çift genetik belirteçlerin eş zamanlı olarak ölçülmesi için dubleks dijital PCR

H7 benzersiz bir genetik işaretleyici, Z3276 hedefleme: A QPCR tahlil Escherichia coli O157 tespiti için geliştirilmiştir. QPCR canlı hücre algılaması için propidyum monoazide (PMA), tedavi ile kombine edilmiştir. Bu protokol, çok sayıda numune, kolay ve uygun kullanım için bir 96 oyuklu plaka formatı değiştirilmiş ve uyarlanmıştır...

Live Algılama<em&gt; Escherichia coli</em&gt; O157: PMA-qPCR H7 Hücreler

Büyük hacimli tarımsal sularda gıda kaynaklı patojenlerin entegre konsantrasyon, zenginleştirme ve son nokta kolorimetrik tespitini içeren bir protokol burada sunulmaktadır.  Su, seçici veya seçici olmayan ortamlarla zenginleştirilmiş Modifiye Moore Swablarından (MMS) süzülür ve algılama, bakteriyel-gösterge kolorimetrik substratlarla gömülü kağıt bazlı analitik cihazlar (μPAD) kullanılarak gerçekleştirilir.

Kolorimetrik Algılama Paper-based<em&gt; Escherichia coli</em&gt;<em&gt; Salmonella</em&gt; Spp. Ve<em&gt; Listeria monocytogenes</em&gt; Tarım Su geniş hacimli

Burada, ters transkripsiyon-kantitatif PCR kullanarak çevresel ve içme sularında enterovirüs ve norovirüsü ölçmek için bir prosedür sunuyoruz. EPA Metodu 1615'ten alınan bu standardize prosedürle yeraltı sularından ortalama virüs geri kazanımı, poliovirüs için %20 ve murin norovirüsü için %30 idi.

Enterovirüs Kültür ve RT-qPCR Su Norovirus Oluşum EPA Method 1615 Ölçümü. Bölüm III. RT-qPCR Virüs Algılama

Hızlı algılama özellikle patojenik bakterilerin manyetik gevşeme ve floresan emisyon modaliteleri kombinasyonu ile hedef ve bu protokol genel amacı, düşük maliyetli, taşınabilir için fonksiyonel nanosensors sentez etmektir.

Gıda kaynaklı patojen tarama kullanarak Manyeto-floresan Nanosensor: E. Coli O157: H7 hızlı tespiti

Çevresel DNA tahlilleri, alan verilerinin toplanmasına başlamadan önce titiz bir tasarım, test, optimizasyon ve doğrulama gerektirir. Burada, çevresel örneklerden hedef tür DNA'sının tespiti ve nicelleştirilmesi için türe özgü, prob tabanlı bir qPCR testi tasarlamanın her adımında kullanıcıları götürecek bir protokol sunuyoruz.

ÇevreSEL DNA Uygulamaları için Türlere Özgü Nicel PCR Testlerinin Geliştirilmesi ve Testi

Bu protokol, bir mikroakışkan çipe dayalı bir sürekli akışlı polimeraz zincir sisteminin nasıl oluşturulacağını ve laboratuvarda bir kapiler elektroforez sisteminin nasıl oluşturulacağını açıklar. Laboratuvarda nükleik asitlerin analizi için basit bir yöntem sunar.

Escherichia coli'nin Sürekli Akış-PCR Mikroakışkan Çipinde Amplifikasyonu ve Kapiler Elektroforez Sistemi ile Tespiti

Keşfedin, rekreasyonel sulardaki Enterococcus spp. ve HF183 markerlarını aynı anda nicelendirmek için dubleks dijital PCR yöntemini. Bu analiz, standart eğrilerin neden olduğu sapmaları ortadan kaldırarak su kalitesi izlemede doğrudan ve tarafsız ölçüm sağlar.

Eşzamanlı Niceleme için Dubleks Dijital PCR Testi

Daha fazla video keşfet