Name: Araştırma yöntemleri B. subtilis Biyofilmler (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 17 s
Description: Öğrenin, B. subtilis biyofilmlerinde küçük molekül inhibitörlerinin etkilerini değerlendirmek için güçlü ve tekrarlanabilir yöntemler geliştirmeyi. Bu teknikler, antibiyotik direnci ve terapötik stratejiler için nicel ve nitel bilgiler sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Elektron mikroskobu görüntülemesi, kısmen Irving ve Cherna Moskowitz Nano ve Biyo-Nano Görüntüleme Merkezi tarafından desteklenen Weizmann Bilim Enstitüsü'nün Elektron Mikroskobu Biriminde gerçekleştirilmiştir. Bu araştırma aynı zamanda ISF I-CORE hibesi 152/1, Bay ve Bayan Dan Kane, Bayan Lois Rosen, Yeda-Sela araştırma hibesi, Larson Charitable Foundation, Ruth ve Herman Albert Scholars Yeni Bilim İnsanları Programı, Ilse Katz Malzeme Bilimleri ve Manyetik Rezonans Araştırma Enstitüsü hibesi, Sağlık Bakanlığı alternatif araştırma yöntemleri hibesi ile desteklenmiştir. ve Fransa-İsrail İşbirliği - Maimonide-İsrail Araştırma Programı tarafından. IKG, Rowland ve Sylvia Kariyer Geliştirme Kürsüsü sahibidir.

1. zar ve Biyofilm Colony Oluşumu Üzerine Küçük Molekül İnhibitörlerinin Etkisi Değerlendirilmesi <ol><li> Kalsiyum klorür ve demir (III) klorür heksahidrat olmayan tanımlanan biyofilm uyaran MSgg ortamı 25 2x çözeltisi hazırlayın. filtre sterilizasyonu sonra, kalsiyum klorür ilave edin. ortamı, doğrudan kullanıma hazır ya da karanlıkta 4 ° C&#39;de saklanabilir. </li><li> Deney gününde 1 MSgg seyreltme hazırlayın. <ol><li> (Steril damıtılmış su (ince zarlar) ya da steril% 3, sıcak (80 ° C) agarı (biyofilm) 1x 50 uM (ince zarlar) ya da 250 uM nihai konsantrasyona kadar demir (III) klorür heksahidrat ekleme 2x MSgg ortamı seyreltilmiş biyofilm). istenen konsantrasyona antibiyotik veya küçük molekül inhibitörleri ekleyin ve iyice karıştırın. Örneğin, zarlarına ya biyofilm tesis 76.3 mM (10 mg / ml) D-lösin stok çözeltisi 196.6 ul 30 ml 0.5 mM, D-lösin bir nihai konsantrasyon elde edilmiştir. YOK HAYIRT:. Nihai 1x MSgg bileşimi Tablo 1 &#39;de açıklanan orijinal tarifi 25 ile karşılaştırıldığında, ortamı 50 ug / threonin mi ve katı MSgg ortamı üzerinde biyofilm koloniler büyümeye demir konsantrasyonu buruşuk koloni morfolojisi optimize etmek için 2.5 X yükseltildi ihtiva . </li></ol></li><li> agar Katılaştıktan sonra, aşılama öncesinde 30-45 dakika boyunca, bir biyolojik başlık katı MSgg plakaları kurutunuz. </li><li> Zar oluşumu (Şekil 1) mekanizmalarına müdahale belirli inhibitörleri seçmek için, kullanılan konsantrasyonlar planktonik ve statik büyümeyi etkileyen ekarte. <ol><li> Stasyoner büyüme fazında kadar 600 nm&#39;de her saat optik yoğunluk ölçülerek basit bir büyüme eğrisi planktonik büyüme (sıvı kültürde zaman optik yoğunluktaki artış) belirler. </li><li> (CFU), ölçülen kültür bulanıklığı, canlı hücre sayısını temsil onaylamak koloni oluşturan birim sayısının belirlenmesiçeşitli zaman geçtikten sonra bir çalkalama kültürü planktonik büyüme fazında hücre. </li><li> de, aynı koşullar altında kuluçkaya bölümlerde 1.7-1.9 tarif edildiği gibi, bir 24-yuvalı hücre-kültür, 23 ° C&#39;de 3 günlük inkübasyon sonunda, statik pelikül büyümesi, hasat hücreleri üzerinde küçük molekül inhibitörlerinin etkisini değerlendirmek için, ve CFU belirler. Bu kontrol için, hücre dışı matris bileşenleri için kodlama operonlan yoksun bir pelikül eksikliği gerginlik kullanmak (yani, B. subtilis Δ epsH, Δ Tasa). NOT: Bu soy, statik koşullar altında büyüme yeteneğine sahiptir, ama bir pelikül oluşturucu vahşi tip aksine, bu büyüme, artan oksijen seviyesi 26 tercih edilir, sıvı-hava ara-yüzü, yüzer yeteneği eksiktir. Böylece, bu hücre dışı matris ve zar-eksik suşu statik şartlar altında büyümeyi değerlendirmek için önerilen referans türdür. NOT: Belirli bir exStandart olmayan D-amino asit D-lösin bol pelikül oluşumu 12,17 ekarte edildi müdahale konsantrasyonlarda, aşağıda planktonik ve statik büyüme üzerinde bir etkisi nitelendirdi. Planktonik ve statik büyüme belirlemek için yöntemler detaylı 17 tarif edilmiştir. </li></ol></li></ol><img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/54612/54612fig1.jpg" /> Şekil 1. sağlam bir deney düzeneği tanımlanması için Kavramsal genel biyofilm oluşumunun belirli önlenmesini değerlendirmek için. Planktonik büyüme üzerindeki belirgin etkisi olmadan biyofilm oluşumu ile özel girişime işaret küçük molekül inhibitörleri için seçme kriterleri. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54612/54612fig1large.jpg" target="_blank">Büyük halini görmek için tıklayınız bu rakamın.</a> <ol start="5"><li> B. dışarı Streak -80 ° C stokundan subtilis (LB Cultu% 20 gliserol içinde dondurulmuştur yeniden 10 9 hücre / ml), steril bir ucu veya kürdan ile LB-% 1.5 agar plakası üzerinde tek koloniler izole etmek. </li><li> 30 ° C&#39;de gece boyunca büyütün. </li><li> KRİTİK ADIM: D-lösin gibi kurallı olmayan D-amino asidi ile güçlü bir pelikül inhibisyonu için, tek bir koloni içinde 4 saat boyunca 37 ° C &#39;de 3 mi LB suyu LB-% 1.5 agar plakasından aldı büyümeye inkübatör sallayarak (hızı 200 rpm sallayarak). dikkatle Süpernatan uzaklaştırılmış ve 1.5 ml ortam içinde MSgg pelet yeniden süspansiyon, 6000 x g&#39;de, 4 dakika için 1.5 ml başlatıcı kültür santrifüjle aşılamadan önce biyofilm indükleyici MSgg ortamı ile LB suyu değiştirin. kültür geri kalanı iptal edilebilir. Önemli: sistemin sağlamlığı temin etmek için, yıkanmıştır başlatıcı kültür, 600 nm (OD 600) de optik yoğunluk 0.6 ile 1 arasında olmalıdır. </li><li> Başlangıç ​​kültürünün büyüme sırasında, 12-iyi hücre kültür plakası çok kaplı containin hazırlanmasıolmayan veya küçük bir molekül inhibitörü (örneğin, 0.3, 0.5, 1 mM D-lösin 17) bir konsantrasyon aralığı MSgg ortamının g 3 mi. kenar etkileri ekarte etmek, çok kaplı plaka üzerinde farklı konsantrasyonlarda yerini dağıtmak. Seçenek olarak ise, MSgg ortamın 1.5 ml ihtiva eden 24-yuvalı hücre-kültür plakaları çok kaplı kullanımı. </li><li> (: 1000 sulandırma 1) ile yıkandı kültürlü 3 ul 12-yuvalı hücre kültürü çok kaplı plaka boşlukların aşılanması. NOT: daha düşük seyrelme oranı, örneğin 1: 500 de kullanılabilir. Bu ince zarlar geliştirme süresini azaltır. </li><li> Üç gün boyunca statik koşullar altında, 23 ° C&#39;de zarlarına büyütün. bu ince tabakanın nihai yüzey morfolojisini etkileyebilir olarak, bu süre içinde zarlarına hareket ettirmeyin. </li><li> yıldırım binoküler ve homojen pozlama ile resimler elde edin. Alternatif olarak, yüksek çözünürlüklü bir kamera ile ince zarlar bir resim çekin. inconsis kaynaklanan eserler önlemek içinçadır ışık açıları ve gölgeler, bir tripod üzerinde sabit kamera ile yukarıdan aşağıya fotoğraf çekmek ve her iki taraftan 45 ° yumuşak ve büyük ışık kaynağı kullanın. NOT: B. incelemek için alternatif bir yöntem subtilis multicellularity katı, biyofilm uyaran MSgg ortamında biyofilm koloni testtir. ince zarlar gibi, bu deney, uzaysal işlemler çalışma sağlar. küçük molekül inhibitörleri aktif aralığı tespit edildiğinde, biyofilm koloni oluşumu üzerindeki etkisi incelenebilir. </li><li> 8.5 cm çaplı bir Petri tabağı başına 4 damla - biyofilm koloniler büyümek için, simetrik yıkanmamış ön kültür, 1.5 ul bir şablon yardımıyla kurutuldu MSgg% 1.5 agar plakası üzerinde (Aşama 1.7) nokta. damla taşımadan önce plakaya adsorbe edelim. NOT: Şablon hücreleri yetiştirilen alan içinde biyofilm koloniler eşit dağılımını almak için yardımcı olur. şablonu hazırlamak için, orijinal ölçeklerde büyüme toplam alanı çizmek eşit mezhep bölmekors ve merkezini işaretlemek. 8.5 cm çaplı bir hafta Petri kabı, bu 14 cm2 bir biyofilm koloni atar. </li><li> Üç gün boyunca 30 ° C&#39;de inkübe edin. Bu süre boyunca, biyofilm koloniler geliştirmek ve üç boyutlu, buruşuk bir yapı oluşturur. </li><li> Adım 1.11 olarak fotoğraf çekmek. </li></ol> 2. Etanol Direnç Deneyi <ol><li> adımlarda 1.1-1.7 ve 1,12-1,14 açıklandığı gibi biyofilm büyütün. </li><li> 30 ° C&#39;de büyüme 68 saat sonra, bir jilet şablonun yardımıyla iki eşit parçaya biyofilm koloniler kesti. </li></ol><img alt="şekil 2" src="/files/ftp_upload/54612/54612fig2.jpg" /> Şekil 2. Örnek sterilize ajanlara biyofilm koloni hücrelerin direncini değerlendirmek için deneysel tasarım. Petri kabı üzerinde biyofilm kolonilerinin eşit dağılımı için ve kesim için kullanılan (A) Şablon. (B)tedavi edilmemiş vahşi tür biyofilm yukarıdan aşağıya görüntüleri 30 ° C &#39;de katı tanımlanan biyofilm uyaran MSgg ortamı üzerinde 68 saat için büyütülmüştür. Genişlemenin biyofilm koloni iki eşit parçaya kesilerek nasıl gösterir. (C), iki eşit biyofilm yarıları aynı şekilde (kontrol, PBS) ile muamele veya PBS veya ajanın sterilize ya ile tarif edildiği gibi işlenir. Ölçek çubuğu:. 1 cm <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54612/54612fig2large.jpg" target="_blank">bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a> <ol start="3"><li> Dikkatli bir şekilde küçük bir spatula ile agar plakasından biyofilm koloninin her yarım kaldırın ve fosfat tamponlu tuzlu su (PBS) 500 ul ihtiva eden bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü taşıyın. Gerekirse, plakadan kalan hücrelerin kazıma ve de mikrosantrifüj tüpüne transfer edin. NOT: biyofilm koloninin ikinci yarısında, diferansiyel tedavi, kontrol olmasına bağlı olarak ya da STERI direnci test edilirLizing ajanlar. </li><li> Kontrol için, adım 2.3 olarak 500 ul PBS içinde biyofilm koloninin ikinci yarısında kuluçkaya yatmaktadır. , Sterilize edici maddelere karşı direncinin değerlendirilmesi 500 ul% 50 (h / h) etanol ile biyofilm koloni ikinci yarısını aktarın. NOT: sodyum hipoklorit gibi alternatif sterilize edici maddeler de kullanılabilir. Kullanılan tüm sterilizasyon maddeleri için bir hazırlık deneyinde aktif konsantrasyon ve inkübasyon süresi belirler. </li><li> Oda sıcaklığında tezgah üstünde 10 dakika süre ile biyofilm koloniler inkübe edin. </li><li> 18.000 xg&#39;de 5 dakika boyunca biyofilm kolonilerini Santrifüj ve dikkatli bir pipet ile süpernatant kaldırmak. PBS 300 ul ekle. </li><li> Bir sonikatöre bir mikro uç hücreleri hafif (genlik% 10, nabız 5 sn) sonikasyon. NOT: Sonication enerji ayrı biyofilm agrega yeterli olmalıdır. Ancak, çok sert sonication hücreleri lize olabilir. ışık mikroskobu sonication enerjisi önceden onaylayınhücrelerin lize Kullanılan ve agregalar çözündürülür olduğu. </li><li> 1 ml&#39;lik bir son hacme kadar PBS 700 ul ekle. PBS (10 -7) seri bir seyreltme gerçekleştirmek ve steril cam boncuklar kullanılarak, bir LB-% 1.5 agar plakası üzerinde 3 dilüsyonları 100 ul yayıldı. Not: Bu sterilizasyon ajana yanıt olarak ilgi ve hücrelerin hayatta kalma oranının biyofilm koloni hücre miktarına bağlıdır optimal seyreltileri kaplanacak bir ön deneyde tespit edilmelidir. </li><li> Gece boyunca 30 ° C&#39;de inkübe CFU sayımı ve CFU / ml belirlemek. Her yarım biyofilm kolonilerin son CFU / ml, hayatta kalanların yüzdesi hesaplanır. Not: gerçekleştirilen analiz tarif edildiği gibi, simetriye veya koloni direncini doğrulama kontrol biyofilm koloninin iki yarım ve canlı hücre sayısının% 10 altında farklılıkları vermelidir muamele edilmemiş biyofilm koloni etanol ile muamele edilmiş devre karşı muamele edilmemiş, , respectively. Seçenek olarak ise, sonuçlar, toplam CFU temsil edilebilir. Kontrol ve muamele edilmemiş biyofilm koloninin hücre sayımları aynı büyüklükte kalmalıdır. Buna karşılık, küçük bir molekül ile muamele biyofilm koloni etanol ile muamele edilmiş yarım hücre sayımları sterilizasyon maddesinin artan bir duyarlılık için İstem iki büyüklük en az düşmesi beklenmektedir. </li></ol> Taramalı Elektron Mikroskobu için 3. Biyofilm Colony Numune Hazırlama <ol><li> adımlarda 1.1-1.7 ve 1,12-1,14 tarif edildiği gibi biyofilm koloniler büyütün. </li><li> % 2 (hac / hac) glutaraldehit,% 3, 100 mM sodyum kakodilat içinde (hac / hac) paraformaldehit çözeltisi, 5 mM kalsiyum klorür tamponu, pH 7.3 yeni bir parti hazırlayın. 8.5 cm çapında her Petri çanağı için sabitleyici 5 ml hazırlayın. DİKKAT: Glutaraldehyde ve paraformaldehit tehlikelidir. Bir kimyasal kaput içinde güvenlik donanımları ile anlaştım. haz çözümler ve kirlenmiş malzemeleri imhatehlikeli atık. </li><li> Dikkatle biyofilm üstünde doğrudan dağıtım olmadan, biyofilm koloniler fiksatif ekleyin. NOT: biyofilm koloni hidrofobik karakteri nedeniyle, koloniler yavaş yavaş ağar ayırmak ve yüzer başlar. </li><li> Dikkatle Parafilm bir şerit ile plakaları mühür. Oda sıcaklığında 2 saat için bir döner sallayıcı üzerinde inkübe ve daha sonra, gece boyunca 4 ° C&#39;de plakalar transfer. </li><li> Bir sonraki gün, dikkatli bir şekilde bir vakum pompasına birleştirilmiş bir Pasteur cam pipet ile sıvıyı ayırın. </li><li> Dikkatle biyofilm yıkama ve 5 dakika boyunca inkübasyona 10 mi, 100 mM sodyum kakodilat, 5 mM kalsiyum klorür tamponu ilave edin. Yavaşça biyofilm zarar görmesini önlemek ve nazik pipetleme taze yıkama solüsyonu eklemek için plaka köşesinden Pasteur cam pipet ile sıvı çıkarın. kez bu adımı yineleyin. </li><li> Biyofilm kolonilerinin dehidrasyon için, aşağıdaki adımlarla devam edin: GKD 2 O 2x 5 dakika; 3 2 x 20 dakika0% etanol; 2 x 20 dakika% 50 etanol; 2 x 20 dakika% 70 etanol; 2 x 20 dakika% 96 etanol; 2x% 100 etanol içinde 30 dk. <ol><li> Her bir adımda 8.5 cm çapında her Petri çanağı için sıvı 15 ml ilave edilir ve dikkatli bir şekilde, her inkübasyondan sonra sıvıyı ayırın. </li></ol></li><li> Etanol örnekleri kurutma için iki farklı yöntemden birini kullanın. <ol><li> Etanol hava-kurutma için: <ol><li> dörtte bir selüloz filtre kağıdı (9 cm çapında) kesin. Kısaca% 100 etanol içinde dörtte biri daldırın ve sonra dikkatlice bunun üzerine bir yüzen biyofilm koloni aktarın. bir filtre kağıdı ile kaplı bir Petri kabındaki Islak filtre kağıdı koyun. Petri kabı Kapak ve biyofilm koloniler kimyasal kaputu kuru gecede izin verin. </li></ol></li><li> Geçiş sıvısı olarak (CO 2), karbon dioksit kullanılarak KURUTMA FIRINI kritik nokta (CP) için: <ol><li> % 100 etanol ile kritik nokta kurutma makinesi bölmesinin% 75&#39;ini doldurun. Kendi c içine bir tutucunun içine her bir örnek örnekleri aktarınhamber. Gerekirse, küçük parçalar halinde makas ile biyofilm kesti. Tüm taşıma sırasında etanol içinde batık örnekleri bırakın. Daha sonra, bölme içine tutucu transferi ve sıkı bölme kapatın. </li><li> 7 ° C&#39;ye soğutun ve bölmeyi karıştırıldıktan başlar. Sıvı CO2 ile bölmeyi doldurmak. 7 dakikalık inkübasyon süresi içinde, CO2 ile etanol karışımı sağlar. Daha sonra, çözelti% 25 deşarj. NOT: numunenin seviyesinin altında odasına sızmasına izin vermeyin. </li><li> Adımı yineleyin 3.8.2.2 dört kez. </li><li> Adımı tekrar 3.8.2.2 sadece 5 dakikalık bir inkübasyon süresi ile beş kez. Son olarak, etanol tamamen CO 2 ile değiştirilmesi gerekir. </li><li> Odanın son turda, boş sadece% 5 sırasında. karıştırma ve soğutma kapatın. 42 ° C&#39;ye kadar bölme ısıtmaya başlayın. 31.1 ° C&#39;lik bir sıcaklıkta ve 73.9 bar bir basınçta sıvı CO2 kritik noktaya, durumuna ulaştığı, gaz halindeki pHase Çözücü 27, sıvı faz ile aynı yoğunluğa sahiptir. Sıcaklık 42 ° C&#39;ye ulaştığında, 10 dakika süre ile inkübe edilir. 42 ° C &#39;de, bölmenin CO2 süper kritik gaz olarak var olur. NOT: Sürekli odasının basıncını kontrol edin. Basınç 42 ° C&#39;de 120 bar aşmamalıdır. </li><li> yavaş yavaş sürekli ısıtma ile gazı boşaltmak için başlayın. Bu CO2-gaz fazında örnekleri tutar ve sıvı yüzey gerilimi vasıtasıyla Örnek morfolojisi deformasyonunu önler. ince ayar ile debimetreyi kontrol ölçüm valfi 5 L / saat debi ölçer ayarlayın. odasında tüm basınç serbest bırakılıncaya kadar bekleyin. Şimdi odasına açın ve sahibinden dikkatlice örnekleri çıkarın. </li></ol></li></ol></li><li> Coat karbon bant ile bir elektron mikroskobu saplama. cımbız yardımıyla dikkatlice saplama üzerine biyofilm koloniler aktarın. arabadan ince bir köprü ekleyerek saplama her koloni bağlayınelektron ışını altında ücret ortadan kaldırılması için çok önemlidir bon bant. Onlar çok kırılgan olduğu gibi bu aşamada, dikkatli biyofilm koloniler anlaştım. En az 24 saat süreyle ya da incelemeye kadar bir kurutucuda örnekleri saklayın. </li><li> taramalı elektron mikroskobu ile inceleme gün, bir altın paladyum sıçramasına kaplayıcı bir 60 ° açı 2 dakika süreyle biyofilm koloni-sputter ceket. İki kez bu adımı yineleyin ve aralarında 120 ° örnekleri döndürün. Sonunda, sputter-ceket örnekleri kez üstten 3 dakika boyunca. altın paladyum 20 nm ince tabaka iletkenliği artırır ve SEM görüntüleme için örnek kontrastı artırır. </li><li> Tarayıcı bir elektronik mikroskopla 29,30 görüntülemenin kadar örnek 28 rehidrasyon engellemek üzere bir desikatör içinde örnekleri saklayın. </li></ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Bacillus subtilis formları sağlam ve son derece yapılandırılmış biyofilm hem sıvıda (zarlarına) ve katı ortamda (koloni). Bu nedenle, belirli biyofilm inhibitörlerinin etki moduna karakterize için ideal bir model organizma olarak hizmet vermektedir. Katı ortam üzerinde, hücreler merkezden kenara doğru yayılan kırışıklıkları gibi ince zarlar belirgin olmayan ayırt edici özellikleri ile çok hücreli yapılar oluşturur. Bu nedenle, ince zarlar ve koloniler B çalışma tamamlayıcı sistemlerdir subtilis</em...

Çok hücresel bakteri toplulukları doğal ve antropojenik ortamlarda önemli rol oynarlar ve yararlı ya da son derece zararlı olabilir. Bu çok hücreli koloniler tek tek hücreler, kendi kendine üretilmiş hücre dışı polimerik maddeler (EPS) matrisi içinde gömülü olup, burada biyofilm, şekilde bilinmektedir. EPS kuvvetle onlar kolonize yüzeye hücreleri yapışır. Bunlar mekanik ve kimyasal güçlerine karşı bir kalkan görevi ve hücresel haberleşme 1 kolaylaştırılması, komşu hücreler arasındaki yakın teması oluşturun. Bir biyofilm hücreleri son derece düzenlenir kullanın farklılaştırılmış topluluk olarak görülebilir, türler 2-5 genelinde yanı sıra, toplum içinde kendi faaliyetlerini koordine etmek süreçlerini düzenledi. Bir biyofilm durumuna büyüme planktonik, serbest yaşayan modundan geçiş genellikle gelişim süreçleri ile ilişkilidir. Bunun iyi bir örneği, Gram-pozitif toprak bakterisi Bacillus subtilis, ve bu nedenle undome olansticated gerilme biyofilm oluşumuna yol açan gelişim aşamalarını incelemek için sağlam bir model organizma olarak hizmet vermektedir. Bu bakteride, hareketli hücreler özel görevleri 4 yürütmek göze çarpan çok hücreli yapılara kendilerini organize. Hücre bir grup, matriks-üretici eksopolisakaridleri 6 salgılar amiloid protein tasa 7,8 ve yüzey hidrofobisite proteini BslA 9,10; bütün bunlar EPS 11-13 montajı katılırlar. Doğal ve insan kaynaklı nişler biyofilm bolluğu ve yol açabilir varsayılan ölümcül hasar göz önüne alındığında, onların oluşumunu önlemek için yollar bulmak için acil bir ihtiyaç vardır. Küçük molekül inhibitörleri yeni düzenleyici yollar, enzimler ve biyofilm oluşumunda rol oynayan yapısal proteinlerin keşfi yardımcı ve böylece çok hücreli topluluk montaj karmaşık süreçlerde anlayışlar teşvik edebilir. B. de subtilis bio için iyi çalışılmış bir modeldirfilm formasyonu 14,15, çeşitli biyofilm inhibitörlerinin etkilerini değerlendirmek için kullanılabilir. Bu çalışma, küçük molekül inhibitörleri ile biyofilm verilen yanıtın değerlendirilmesi için önemli olan dört temel yöntemler ele almaktadır. İlk olarak, bu inhibitörler, bir biyofilm belirli bir hedef sahip olmasını sağlamak için, biyofilm oluşumunu etkisi planktonik büyüme üzerindeki etkisinin ayrılması önemlidir. Çoğu antibakteriyel ajanlar planktonik büyüme fazında hücreleri hedef, ancak biyofilm yaşam tarzı hedef moleküller nadirdir. Planktonik büyümeyi etkilemeyen moleküller toksik değildir Buna ek olarak, antibiyotik dirençli mutantlar 16 lehine seçici basıncı azaltabilir. Biyofilmler, D-amino asitler ya da diğer bazı hücre duvarı etkileşmeyen molekülleri ile muamele edilir, örneğin, bu da rahatsız veya sökülmesi, fakat bu önleyicilerin sadece hafif planktonik büyüme 12,17 etkiler. Bunun aksine, çok sayıda antibiyotik önemli ölçüde l, planktonik büyümesini bozanittle veya biyofilm oluşumu 17 üzerinde hiçbir etkisi. İkincisi, küçük moleküllerin etkisini araştırmak için tutarlı ve sağlam deneysel çerçevenin oluşturulması çok önemlidir. Bu küçük moleküllü önleyicilerinin etkin bir konsantrasyon aralığı ön kültür koşulları, bu küçük molekül inhibitörlerinin etkisini incelemek için kullanılan deney düzeneği duyarlı olduğu görülmektedir. Özellikle B. okuyan çeşitli raporlar, Kayan bakteriyel biyofilm 12,17-19 - subtilis D-amino asitler ince zarlar oluşumunu inhibe eden konsantrasyon aralığında varyasyonlar ortaya koymuştur. Burada sunulan sonuçlar, aşağıdaki faktörler aktif madde konsantrasyonu aralığı içinde farklılıkları hesaba işaret etmektedir: ön-kültür koşulları (geç durağan 20 büyüme fazının karşı logaritmik 12,17), ön-kültür durumda kullanılan büyüme ortamı (zengin, tanımlanan karşı tanımsız [Luria Broth LB] [monosodyum glutamatgliserol, MSgg]), aşılama oranı ve aşılamadan önce ön-kültür ortamı, özellikle çıkarılması. Statik zar büyüme sıcaklığı küçük molekül inhibitörü, D-lösin, bu çalışmada kullanılan Örnek D-amino asit aktivitesi aralığında daha az önemli bir rol göstermiştir. Son olarak, bir kez biyofilm belirli bir biyofilm önleyicileri, sağlam ve bilgilendirici yöntemler biyofilm uygunluk bu inhibitörlerinin etkilerini karakterize etmek için gerekli olan ile muamele edilir. Bir biyofilm koloni ve antimikrobiyal ajanlara karşı direnç tek hücre (1) üzerine etki: Burada, bağımsız bir şekilde, küçük moleküllü inhibitörlerinin etkisini karakterize etmek için iki yöntem ayrıntılı olarak tarif edilmiştir. Serbest yaşayan bakteriler 21-23 kıyasla Biyofilmlererde Hücreler genellikle daha dirençli antibiyotiklere vardır. Bu olgu çok faktörlü olmasına rağmen, antibiyotik penetrasyon azaltmak için EPS yeteneği genellikle çekici bir açıklama 24 olarak kabul edildi </sus&gt;. Bu yöntem, anti-bakteriyel maddelerin maruz kaldıktan sonra önceden belirlenmiş biyofilm hücrelerinin hayatta kalma değerlendirir. (2) küçük çapta büyük gelen biyofilm koloni mimarisi üzerindeki etkisi. Biyofilm koloniler üç boyutlu yapısı ve EPS varlığı ile karakterize edilir. taramalı elektron mikroskobu kullanarak, hücre morfolojisi, biyofilm koloni yapısı ve EPS mimari ve bolluk içinde değişiklikler küçük ölçekli (um) büyük (mm) den görüntülenebilir.

<table><tbody><tr><td>Luria Et Suyu, Lennox</td><td>Difco</td><td>240230</td><td></td></tr><tr><td>Bacto Agar</td><td>Difco</td><td>214010</td><td></td></tr><tr><td>potasyum fosfat monobazik&nbsp;</td><td>Sigma, 136.09 g/mol</td><td>P0662-500G</td><td></td></tr><tr><td>potasyum fosfat dibazik&nbsp;</td><td>Fisher Scientific, 174.18 g/mol</td><td>BP363-1</td><td></td></tr><tr><td>3- ( N-morfolino) propansülfonik asit</td><td>Fisher Scientific, 209.27 g / mol</td><td>BP308-500</td><td></td></tr><tr><td>magnezyum klorür hekzahidrat&nbsp;</td><td>Merck, 203.30 g/mol&nbsp;</td><td>1.05833.0250</td><td></td></tr><tr><td>kalsiyum klorür susuz</td><td>J.T. Baker, 110.98 g/mol</td><td>1311-01</td><td></td></tr><tr><td>manganez(II) klorür tetrahidrat</td><td>Sigma, 197.91 g/mol</td><td>31422-250G-R</td><td></td></tr><tr><td>demir(III) klorür hekzahidrat&nbsp;</td><td>Sigma, 270.30 g/ay)</td><td>F2877-500G</td><td></td></tr><tr><td>çinko klorür susuz&nbsp;</td><td>Acros Organics, 136,29 g/mol</td><td>424592500</td><td></td></tr><tr><td>tiamin hidroklorür</td><td>Sigma, 337,27 g/mol</td><td>T1270-100G</td><td></td></tr><tr><td>L-triptofan</td><td>Fisher Scientific, 204,1 g/mol</td><td>BP395-100</td><td></td></tr><tr><td>L-fenilalanin</td><td>Sigma, 165,19 g/mol</td><td>P5482-100G</td><td></td></tr><tr><td>L-treonin</td><td>Sigma, 119,12 g/mol</td><td>T8625-100G</td><td></td></tr><tr><td>gliserol susuz</td><td>Bio-Lab Itd</td><td>712022300</td><td></td></tr><tr><td>L-glutamik asit monosodyum tuzları hidrat&nbsp;</td><td>Sigma, 169.11 g/mol</td><td>G1626-1KG</td><td></td></tr><tr><td>D-lösin</td><td>Sigma, 169.11 g/mol</td><td>855448-10G</td><td></td></tr><tr><td>etanol</td><td>susuz Gadot</td><td>830000054</td><td></td></tr><tr><td>tıraş bıçağı</td><td>Eddison</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>dairesel selüloz filtre kağıtları</td><td>Whatman, 90 mm</td><td>1001-090</td><td></td></tr><tr><td>glutaraldehit</td><td>EMS (Elektron Mikroskopi Bilimi), suda %25</td><td>16220</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldehit&nbsp;</td><td>EMS, suda %16</td><td>15710</td><td></td></tr><tr><td>sodyum kakodilat</td><td>Merck, 214,05 g/mol&nbsp;</td><td>8.2067</td><td></td></tr><tr><td>kalsiyum klorür 2-hidrat</td><td>Merck, 147.02 g/mol&nbsp;</td><td></td><td></td>1172113</tr><tr><td>saplama-alüminyum montajlı</td><td>EMS, oluklu kafa</td><td>75230</td><td></td></tr><tr><td>karbon yapışkan bant</td><td>EMS</td><td>77825-12</td><td></td></tr><tr><td>Çalkalayıcı 37 ve derece; C</td><td>New Brunswick Scientific Innowa42</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj</td><td>Eppendorf masa üstü santrifüj 5424</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Dijital Sonifier, Model 250, Çift Adımlı</td><td>Microtip Branson</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>İnkübatör 30 & derece ile kullanılır; C</td><td>Bağlayıcı</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>İnkübatör 23 & derece; C</td><td>Binder</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Filtre Sistemi, 500 ml, polistiren</td><td>Cornig Incorporated</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Döner Çalkalayıcı - Orbitron Rotatory II</td><td>Boekel</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>S150 Püskürtme Kaplayıcı&nbsp;</td><td>Edwards</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>CPD 030 Kritik Nokta Kurutucu</td><td>BAL-TEC</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Çevresel Taramalı Elektron Mikroskobu</td><td>XL30 ESEM FEG Philips (FEI)</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

araştırma yöntemleri<em&gt; b. subtilis</emküçük molekül biyofilm İnhibitörleri karakterizasyonu için bir model olarak&gt; biyofilmler

Methodologies for Studying B. subtilis Biofilms as a Model for Characterizing Small Molecule Biofilm Inhibitors

Bu çalışma, D-amino asitler gibi küçük moleküllü biyofilm inhibitörlerinin Bacillus subtilis biyofilmlerinin gelişimi ve dayanıklılığı üzerindeki etkisini incelemek için farklı metodolojileri değerlendirmektedir. İlk olarak, küçük molekül inhibitörlerinin planktonik büyüme üzerindeki etkisini biyofilm oluşumu üzerindeki etkilerinden ayırmak için biyofilme özgü hedeflere sahip küçük molekül inhibitörlerini seçen yöntemler sunulmaktadır. Daha sonra, aşılama koşullarının çok hücreli, yüzen B. subtilis kültürlerinin küçük moleküllü inhibitörlere duyarlılığını nasıl etkilediğine odaklanıyoruz. Sonuçlar, D-amino asitler gibi bu tür inhibitörlerin bildirilen etkilerindeki tutarsızlıkların, tutarsız ön kültür koşullarından kaynaklandığını göstermektedir. Ayrıca, küçük moleküllü tedavilerin antibakteriyel maddelere karşı biyofilm direncine katkısını değerlendirmek için yakın zamanda geliştirilen bir protokol tanımlanmıştır. Son olarak, taramalı elektron mikroskobu (SEM) teknikleri, bir B. subtilis biyofilminde hücrelerin ve çevrelerindeki hücre dışı matrisin üç boyutlu uzamsal düzenlemesini analiz etmek için sunulmuştur. SEM, üç boyutlu biyofilm mimarisi ve matris dokusu hakkında bilgi edinmeyi kolaylaştırır. Burada açıklanan yöntemlerin bir kombinasyonu, biyofilm inhibitörlerinin varlığında ve yokluğunda biyofilm gelişiminin incelenmesine büyük ölçüde yardımcı olabilir ve bu inhibitörlerin etki mekanizmasına ışık tutabilir.

Zar tahlil B. derece düzenlenir ve dinamik süreçleri incelemek için bir yöntem olduğunu subtilis multicellularity. Bunun yanı sıra, ince tabaka deneyi bir deneyde, tek bir hücre kültürü çok kaplı plaka ön Başlangıç ​​koşullarına veya küçük molekül konsantrasyonları, ya bir dizi test etmek için çok uygundur. Bununla birlikte, B. subtilis ince tabaka oluşumu ön kültür koşullarına duyarlıdır (örneğin, ön-kültür büyüme ortamı ve büyüme fazı), aşılama oranı ve ön-kültür ortamının uzaklaştı...

Bu çalışma, biyofilm inhibitörlerini ve bunların Bacillus subtilis çok hücrelilik üzerindeki etkilerini incelemek için tekrarlanabilir metodolojilerin geliştirilmesini sunmaktadır.

Araştırma yöntemleri<em&gt; B. subtilis</emKüçük Molekül Biyofilm İnhibitörleri Karakterizasyonu için Bir Model Olarak&gt; Biyofilmler

This work assesses different methodologies to study the impact of small molecule biofilm inhibitors, such as D-amino acids, on the development and ...

Bakteriyel biyofilmler, içlerinde yaşayan bakterileri çevresel etkilerden ve antimikrobiyal ajanlardan koruyarak insan sağlığı üzerinde önemli etkiler yaratırlar. Bu prosedürün amacı, küçük molekül inhibitörlerinin biyofilm oluşumu üzerindeki etkilerini değerlendirmek için bir model sistem geliştirmektir. Bu yöntemler, biyofilm alanında biyofilm oluşumunu spesifik olarak hedefleyen küçük molekül inhibitörlerini seçmek için gerekli olan bir araç setinin oluşturulmasına yardımcı olabilir.Bu metodolojilerin temel avantajı, tutarlı ve sağlam bir deneysel çerçeveden başlamaları ve biyofilmle özel inhibitörlerin etki mekanizmasına ilişkin kantitatif ve kalitatif içgörüler sunmalarıdır. Bu yöntemler Bacillus subtilis biyofilmleri hakkında bilgi sağlayabilse de, Pseudomonas aeruginosa veya bitki patojeni Xanthomonas citri gibi biyofilm oluşturan diğer bakterilere de uygulanabilirler. Taramalı elektron mikroskobu, hücre dışı matrisin gözlemlenmesine olanak tanıdığı ve tek hücre çözünürlüğü sağladığı için, küçük moleküllerin biyofilm oluşumu üzerindeki etkisini analiz etmek için temel öneme sahip olabilir.Başlamak için önce uygun bir tek koloni seçin ve bunu üç mililitre LB broth içerisine aktarın. Bu başlangıç kültürünü dört saat boyunca 37 °C'de çalkalamalı inkübatöre yerleştirin. İnkübasyon sonrası, başlangıç kültüründen 1,5 mililitre alın ve dört dakika boyunca santrifüjleyin.Süpernatanı dikkatlice uzaklaştırın ve ardından peleti 1,5 mililitre MSgg ortamında yeniden süspande edin. Pellicle büyütmek için, her bir kuyuya üç mililitre MSgg ekleyerek 12 kuyucuklu bir hücre kültürü plağı hazırlayın. Kenar etkilerini önlemek için, farklı konsantrasyonların konumlarını plak genelinde dağıtarak, bu kuyucukların bazılarına belirli bir konsantrasyon aralığında küçük moleküllü inhibitör içeren MSgg ekleyin.Yeniden süspanse edilen başlangıç kültürünün 600 nanometredeki optik yoğunluğunu ölçün. Kültür, 0,6 ile bir arasında olmalıdır. Bu, sistemin dayanıklılığı için kritiktir.Kültür plakasının her kuyucuğuna, yeniden süspande edilmiş başlangıç kültüründen 3 µL ekleyin. Ardından, plakayı statik koşullar altında 23 °C'de üç gün boyunca inkübe edin. Sonrasında, plakayı inkübatörden çıkarın ve pelikülleri gözlemleyin.Biyofilmleri büyütmek için bir şablon kullanın ve yıkanmamış başlangıç kültüründen 1.5 µL'lik dört ayrı damlayı, 8.5 cm'lik kurutulmuş %1.5 Agar MSgg plak üzerine simetrik olarak damlatın. Plak yerini değiştirmeden önce damlaların ortama emilmesini bekleyin. Plakları 30 °C'de üç gün boyunca inkübe edin.Homojen aydınlatmaya sahip bir binoküler kullanarak, biyofilm kolonilerinin geliştiğini ve üç boyutlu buruşuk bir yapı oluşturduğunu kontrol edin. İlk olarak, temiz bir jilet alarak şablon yardımıyla biyofilm kolonilerini iki eşit parçaya bölün. Koloninin bir yarısını temiz bir spatula ile dikkatlice kaldırın ve 500 µL PBS içeren 1,5 ml'lik bir mikro-santrifüj tüpüne aktarın.Koloninin ikinci yarısını alın ve 500 µL %50 etanol içeren bir mikro santrifüj tüpüne aktarın. Bunlar, sterilizasyon ajanlarına karşı direnci değerlendirmek için kullanılacaktır. Ardından, benzer şekilde D-lizin ile işlem görmüş koloninin ilk yarısını alarak PBS içerisine yerleştirin.Ardından, bu koloninin ikinci yarısını alın ve etanole aktarın. Biyofilm yarılarını içeren tüm tüpleri oda sıcaklığında 10 dakika boyunca inkübe edin. Daha sonra, bunları 18,000 ×g'de beş dakika boyunca santrifüjleyin.Bir pipet kullanarak süpernatantı dikkatlice uzaklaştırın. 300 µL PBS ekleyin ve ardından hücreleri, mikro uçlu bir sonikatör ile düşük ayarda sonikasyona tabi tutun. Toplam hacim bir mL olacak şekilde 700 µL daha PBS ekleyin.Ardından, PBS içinde 10⁻⁷'ye kadar seri dilüsyon gerçekleştirin. Dilüsyonlardan birinden 100 µL alın ve %1,5 Agar LB plakına ekim yapın. Bu adımı, örnek başına diğer iki dilüsyon için tekrarlayın.İnokülumu cam boncuklar kullanarak yayın ve ardından plakları 30 °C'de gece boyunca inkübe edin. Plakları inceleyin ve koloni oluşturan birim sayısını (CFU) belirleyin. Mililitredeki CFU değerini hesapladıktan sonra, PBS ve etanol tedavilerindeki sağ kalanların yüzdesini hesaplayın.Numune fiksasyonuna başlamak için, öncelikle istenen biyofilm koloni sayısı için yeterli miktarda taze fiksatif çözeltisi hazırlayın. Her petri kabına beş mililitre fiksatif dikkatlice ekleyin ve doğrudan kolonilerin üzerine pipetlemeden kaçının. Koloniler Agardan ayrılmaya ve yüzmeye başlayacaktır.Plakaları parafilm ile dikkatlice mühürleyin ve oda sıcaklığında, döner bir çalkalayıcıda iki saat boyunca inkübe edin. Plakaları gece boyunca 4 °C'lik saklama koşullarına aktarın. Sabitleyici sıvıyı, vakuma bağlı bir Pasteur pipeti ile nazikçe uzaklaştırın.Biyofilmi yıkamak için 10 ml 100 nanomolar sodyum kakodilat, beş milimolar kalsiyum klorür tamponu ekleyin ve beş dakika inkübe edin. Biyofilm kolonisinin merkezini bir Pasteur pipeti yardımıyla Agar plakasından dikkatlice ayırın. Kolonileri havada kurutmak için selüloz filtre kağıdını dört parçaya bölün ve ardından bir bölümünü %100 etanol içine daldırın.Bir yüzen biyofilm kolonisini dikkatlice kağıdın üzerine aktarın. Kağıdı, kuru filtre kağıdı ile döşenmiş bir Petri kabına yerleştirin. Ardından kabın ağzını kapatın ve gece boyunca kuruması için kimyasal çekmece içerisinde bırakın.Biyofilm kolonisinin morfolojisini korumak için, yüzen biyofilmin tamamen selüloz kağıtla desteklenmesi önemlidir. Kağıdın üzerine alındıktan sonra biyofilm yeniden ayarlanamaz. Bir elektron mikroskobu stub'ını karbon bantla kaplayın ve ardından biyofilm kolonilerini dikkatlice stub'ın üzerine aktarmak için pens kullanın.Her bir koloni, ince bir karbon bant köprüsü eklenerek stub'a bağlandıktan sonra, stub'lar 24 saat boyunca veya ihtiyaç duyulana kadar bir desikatörde saklanır. Bu aşamada biyofilmler çok kırılgan olduğu ve kolayca çatladığı için, bu adım sabit ve hassas bir el becerisi gerektirir. Buradaki zorluk, biyofilmin önemli bir kısmını çatlak oluşmadan monte etmektir.İnceleme gününde, kolonileri altın-paladyum sputter kaplayıcıya yerleştirin. Numuneleri 60 derecelik bir açıda iki dakika boyunca kaplayın. Numuneleri her seferinde 120 derece döndürerek bu adımı iki kez tekrarlayın.Son olarak, numuneleri üstten üç dakika boyunca bir kez kaplayın. Numuneler artık SEM ile görüntüleme için hazırdır. Bu görüntüler, biyofilm oluşumunu teşvik eden MSgg ortamında büyütülen B.subtilis'in pelikül oluşumunu göstermektedir.Küçük molekül inhibitörü D-lizinin eklenmesiyle pelikül gelişimi azalır. İnhibitör konsantrasyonu arttıkça pelikül oluşumunda buna paralel bir azalma görülür. Bu grafik, D-lizin inhibitörü ilele tedavi edilen veya tedavi edilmeyen biyofilm kolonileri içindeki hücrelerin sağkalımı üzerinde etanol maruziyetinin etkisini göstermektedir.D-lizini ile işlem gören ve 10 dakika boyunca %50 etanole maruz bırakılan koloniler, işlem görmemiş kısma kıyasla sağkalım oranlarında dramatik bir azalma göstermiştir. Yukarıdan aşağıya binoküler görüntüler, D-lizini varlığında büyüyen kolonilerin genel olarak daha küçük olduğunu ve işlem görmemiş olanlara göre daha az belirgin kırışıklıklar oluşturduğunu göstermektedir. Kritik nokta ile kurutulmuş biyofilm kolonilerinin taramalı elektron mikroskobu görüntüleri, değişmiş biyofilm gelişimini daha da açıkça ortaya koymaktadır.Hücre dışı polimerik maddeler matrisi veya EPS, işlem görmemiş örneklerde daha çok bir örümcek ağına benzerken, işlem görmüş örnekler daha az organizasyon göstermiştir. Son olarak, tekil bakteriyel hücrelerin çözünürlüğünde yapılan inceleme, işlem görmüş hücrelerin görünüm olarak uzadığını, EPS ile daha az kaplı olduğunu ve işlem görmemiş hücreler kadar komşularına sıkıca bağlanmadığını göstermektedir. Bu prosedürü uygularken, biyofilm inhibitörlerini incelemek için tutarlı bir çerçeve oluşturmanın, tekrarlanabilir sonuçlar elde etmek açısından temel olduğunu hatırlamak önemlidir.Bir kez uzmanlaşıldığında, düzgün bir şekilde yürütüldüğü takdirde biyofilm inhibisyonu için küçük molekül taraması bir haftadan kısa sürede tamamlanabilir. Bu prosedürün ardından, küçük molekül inhibitörünün hedefine dair ek bilgiler edinmek amacıyla tekil biyofilm hücrelerinde gen ekspresyonu incelemesi gibi diğer yöntemler uygulanabilir. Bu videoyu izledikten sonra, spesifik biyofilm inhibitörlerinin biyofilm gelişimi ve antibiyotik direnci üzerindeki genel etkisinin nasıl analiz edileceği konusunda iyi bir anlayış kazanmış olmalısınız.

methodologies-for-studying-b-subtilis-biofilms-as-model-for

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Kaynak: Tay, S. B. ve diğerleri. Mühendislik Amaçlı Kuorum Söndüren Laktonazlar Kullanılarak Patojenik Biyofilmlerin Anti-Virülent Bozulması.  J. Vis. Exp. (2016)Video, patojenik bir bakteride biyofilm biyokütlesini nicelendirme yöntemini gösteriyor; tedavi edilmemiş kontroller ve yeterli güç söndürme enzimiyle işlenmiş örnekler karşılaştırılıyor. Bu enzim, erken kuluçka sırasında bakteriyel sinyalleri bozarak hücre yapışmasını azaltır. Yıkama ve daha fazla kuluçkadan sonra, kontrol kuyuları...

Patojenik Bakterilerde Enzim Kaynaklı Biyofilm Bastırmanın Nicelendirilmesi

Kaynak: Tay, S. B., et.al. Mühendislik Amaçlı Kuorum Söndüren Laktonazlar Kullanılarak Patojenik Biyofilmlerin Anti-Virülent Bozulması.  J. Vis. Exp. (2016)Bu video, bakteriyel hücre sinyalini bozan bir enzimin eklenmesiyle biyofilm oluşumunu inhibre etme sürecini göstermektedir. Bu enzim, bakterilerin hücre dışı polimerik maddeler üretmesini engeller ve böylece cam tabanlı mikro tabak üzerinde biyofilm gelişimini azaltır. Son olarak, biyofilm yapısı floresan lektinler ve konfokal lazer tarama...

Biyofilm oluşumunun enzim aracılı inhibisyonunun mikroskobik değerlendirmesi

Kaynak: Bucher, T. ve diğerleri. B . subtilis biyofilmlerini, küçük molekül biyofilm inhibitörlerinin karakterizasyonu için bir model olarak inceleme metodolojileri. J. Vis. Exp. (2016)Bu video, Bacillus subtilis kullanılarak matris sentezini ve biyofilm gelişimini bozan küçük moleküllü inhibitörleri değerlendiren bir pellicle oluşum testini gösteriyor; bu test, yüzeyle ilişkili büyümeyi seçici olarak engelleyen bileşikleri taramak için bir model sunuyor; bu da serbest yüzen hücreleri...

Bacillus subtilis'te Pellicle oluşumu üzerindeki inhibitör etkilerinin değerlendirilmesi

Kaynak: Bucher, T. ve diğerleri. B. subtilis biyofilmlerini, küçük molekül biyofilm inhibitörlerinin karakterizasyonu için bir model olarak inceleme metodolojileri. J. Vis. Exp. (2016).Bu video, biyofilm matris bütünlüğünün, tedavi edilmemiş ve inhibitör bozmuş biyofilmlerdeki koloni oluşturan birimleri karşılaştırarak bakterilerin etanole karşı direncini nasıl etkilediğini göstermektedir. İnhibörü ile tedavi edilen örneklerdeki azaltılmış CFU'lar, ekstrahücre matriksinin biyofilm gömülü...

Biyofilm Matris Bütünlüğünü Değerlendirmek İçin Etanol Direnç Testi

Kaynak: Bucher, T. ve diğerleri, B. subtilis biyofilmlerini küçük moleküllü biyofilm inhibitörlerinin karakterizasyonu için bir model olarak inceleme yöntemleri. J. Vis. Exp.(2016)Bu video, yüksek çözünürlüklü görüntüleme için olgun bakteriyel biyofilm kolonilerinin hazırlanmasını gösteriyor. Fiksasyon, kurutma, montaj ve metal kaplama adımlarını kapsayarak biyofilm morfolojisini koruma ve görselleştirmeyi içerir.

Morfolojik Analiz için Bakteriyel Biyofilm Kolonilerinin Hazırlanması

Video, çok kuyulu bir plaka kullanan bir biyofilm dispersiyon testini göstermektedir. Tampon ve glikoz tedavisi biyofilmi parçalarına ayırarak bakterileri serbest bırakırken, safra tuzları strese neden olur ve bakterileri koruyucu hücre dışı polimerik maddede tutar. Tampon ve glikoz ile daha yüksek dispersiyon, koloni oluşturan birimler ölçümü ile tahmin edilen başarılı biyofilm sökme işlemini doğrular.

Bir Dispersiyon Testi ile Biyofilm Demontajının Tespiti

Çoğu bakteriyel enfeksiyon bir biyofilm üretir. Çevreleri nedeniyle, biyofilm ile ilişkili bakteriler genellikle fenotipik olarak ilaca dirençlidir. Biyofilmlerdeki bakterileri öldüren yeni antibakteriyel moleküller bu nedenle yüksek bir önceliğe sahiptir. Biyofilmleri yok etmede etkili olan antimikrobiyal bileşikleri hızlı bir şekilde taramak için bir test oluşturuyoruz.

Biyofilm İlişkili Hedefleme<em&gt; Staphylococcus aureus</emKullanma&gt; Resazurin Tabanlı İlaç-duyarlılık Deneyi

Biyofilm enfeksiyonları kemoterapiye karşı yüksek tolerans gösterir. Tek bir tahlil biyofilmlerin karmaşıklığını yakalayamaz. Bunun yerine, tamamlayıcı tahlillere ihtiyaç vardır. Canlılık, biyokütle ve biyofilm matrisi tahlillerini birleştiren bir tarama platformu (S. aureus için geliştirilmiş) sunuyoruz. Uzun vadeli kemoterapötik etkilerin değerlendirilmesi de dahil olmak üzere anti-biyofilm ilaç keşfine izin verir.

Doğal Bileşik Kütüphaneleri Exploration uygundur Anti-biyofilm Tahliller Bir Platform

Doğal ürünler, yeni ilaçların ve terapötik ajanların gelişimi için umut verici başlangıç noktalarını temsil eder. Bununla birlikte, yüksek kimyasal çeşitlilik nedeniyle, bitkilerden yeni terapötik bileşikler bulmak zor ve zaman alıcı bir iştir. Bitki özlerinden ve fraksiyonlarından antimikrobiyal ve antibiyofilm moleküllerini tanımlamak için basitleştirilmiş bir yaklaşım tanımlıyoruz.

Diş Çürüklerini Önlemek İçin Bitkilerin Özlerinden ve Fraksiyonlarından Yeni Antimikrobiyal ve Antibiyofilm Moleküllerini Tanımlamak için Sistematik Yaklaşım

Bu protokol, yüksek verimli 96 kuyulu sabitlenmiş kapak statik biyofilm taraması için kendinden montajlı derin kuyu PCR plakalı cihazları kullanarak biyofilm büyümesi ve biyokütle ölçümleri yapmak için metodoloji sunar.

PCR-Plate Deep Well Microplate Cihazları Kullanılarak Daha Büyük Bakteriyel Biyofilm Biyokütlesinin Oluşturulması

Bu protokol, süt endüstrisinde biyofilmlerin eradikasyonunda organik peroksiasitlerin etkinliğini değerlendirmek için statik ve dinamik yöntemleri birleştiren bir yaklaşımı açıklamaktadır. Bu yaklaşım, biyofilmleri kontrol etmek için yeni biyolojik veya kimyasal formülasyonların etkinliğini test etmek için de kullanılabilir.

Organik Peroksiasitlerin Süt Biyofilmlerinin Eradikasyonunda Etkinliğinin Statik ve Dinamik Yöntemleri Birleştiren Bir Yaklaşım Kullanılarak Değerlendirilmesi

Öğrenin, B. subtilis biyofilmlerinde küçük molekül inhibitörlerinin etkilerini değerlendirmek için güçlü ve tekrarlanabilir yöntemler geliştirmeyi. Bu teknikler, antibiyotik direnci ve terapötik stratejiler için nicel ve nitel bilgiler sağlar.

Araştırma yöntemleri

Daha fazla video keşfet