-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biochemistry
Atomik yapısal çalışmaların makromoleküllerin meclisleri tarafından katı hal Nükleer manyetik rez...
Atomik yapısal çalışmaların makromoleküllerin meclisleri tarafından katı hal Nükleer manyetik rez...
JoVE Journal
Biochemistry
Author Produced
This content is Free Access.
JoVE Journal Biochemistry
Atomic Scale Structural Studies of Macromolecular Assemblies by Solid-state Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy

Atomik yapısal çalışmaların makromoleküllerin meclisleri tarafından katı hal Nükleer manyetik rezonans spektroskopisi

Full Text
16,115 Views
14:55 min
September 17, 2017

DOI: 10.3791/55779-v

Antoine Loquet1, James Tolchard1, Melanie Berbon1, Denis Martinez1, Birgit Habenstein1

1Institute of Chemistry, Biology of Membranes, Nanoobjects,UMR5248 CNRS, Université de Bordeaux

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a protocol for studying the structures of insoluble and non-crystalline supramolecular protein assemblies at atomic resolution using magic-angle spinning solid-state nuclear magnetic resonance spectroscopy (MAS SSNMR). The method addresses the challenges posed by the inherent insolubility and non-crystallinity of these assemblies.

Key Study Components

Area of Science

  • Structural Biology
  • Biochemistry
  • Nuclear Magnetic Resonance Spectroscopy

Background

  • Supramolecular protein assemblies play crucial roles in various biological phenomena.
  • Studying their structures is essential for understanding their functions.
  • Solid-state NMR is a powerful technique for analyzing these structures.
  • Challenges include the assemblies' insolubility and non-crystalline nature.

Purpose of Study

  • To provide a detailed protocol for high-resolution structural studies of protein assemblies.
  • To illustrate key methodological steps in solid-state NMR.
  • To enable researchers to visualize atomic structures of biomolecular assemblies.

Methods Used

  • Preparation of isotopically labeled protein samples.
  • In vitro assembly of protein subunits.
  • Magic-angle spinning solid-state NMR spectroscopy.
  • Data collection and analysis using standard experimental parameters.

Main Results

  • Successful visualization of atomic structures of protein assemblies.
  • Identification of rigid and flexible segments within the assemblies.
  • Estimation of structural homogeneity and local polymorphism.
  • Demonstration of the effectiveness of solid-state NMR in studying complex protein structures.

Conclusions

  • The protocol enables detailed structural analysis of challenging protein assemblies.
  • Solid-state NMR is a viable method for studying insoluble and non-crystalline proteins.
  • Future applications may enhance our understanding of protein function and interactions.

Frequently Asked Questions

What is the main technique used in this study?
The main technique used is magic-angle spinning solid-state nuclear magnetic resonance spectroscopy (MAS SSNMR).
Why is studying insoluble protein assemblies challenging?
Insoluble protein assemblies are difficult to study due to their non-crystalline nature and inherent insolubility.
What are the key steps in the protocol?
Key steps include sample preparation, in vitro assembly, and solid-state NMR data collection and analysis.
How does solid-state NMR benefit structural biology?
Solid-state NMR allows for the study of molecular structure and dynamics at atomic resolution without solubility limitations.
What types of protein segments can be analyzed?
Both rigid and flexible segments of protein assemblies can be analyzed using solid-state NMR techniques.
What are the implications of this research?
This research may provide insights into protein function and interactions, aiding in the understanding of various biological processes.

Supramolecular protein derlemeler atomik çözünürlükte yüksek alaka nedeniyle çok önemli rolleri biyolojik olayları çeşitli yapılardır. Burada, biz bir protokol tarafından magic-açı katı hal Nükleer manyetik rezonans spektroskopisi (MAS SSNMR) iplik çözünmez ve kristal makromoleküllerin protein derlemeler üzerinde yüksek çözünürlüklü yapısal çalışmalar gerçekleştirmek için mevcut.

Bu protokolün genel amacı, çözünmeyen ve kristal olmayan süper moleküler protein düzeneklerinin yapılarını sihirli açılı dönen katı hal NMR spektroskopisi ile atomik çözünürlükte incelemektir. Katı hal NMR ile biyomoleküler protein düzeneklerinin atomik yapılarını incelemek için temel metodolojik adımları sunacağız. Bu düzeneklerin atomik yapılarını incelemek son derece zordur çünkü doğal olarak çözünmezler ve kristal değildirler.

Katı hal NMR, monte edilmiş nesnenin boyutu veya çözünürlüğü ile sınırlı olmaksızın atomik çözünürlükte moleküler yapı ve dinamikleri inceleyebilen yeni bir tekniktir. Burada, izotopik olarak etiketlenmiş numunelerin hazırlanması, katı hal NMR'den yapısal verilerin toplanması ve analizi dahil olmak üzere, satılan durum NMR'ye göre biyomoleküler protein düzeneklerinin atomik yapılarını görselleştirmek için temel adımları gösteriyoruz. Katı hal NMR iş akışındaki ilk adım, C13 N15 etiketli protein alt birimlerinin üretimi ve bunların in vitro montajıdır.

Önceden ısıtılmış LB ortamının 15 mil ön kültürünü bir dönüştürülmüş E.coli hücresi kolonisi ile aşılayın. Gece boyunca 200 RPM çalkalayarak 37 santigrat derecede inkübe edin. Ana kültürü aşılamak için, tüm ön kültürü, gerekli izotopik olarak etiketlenmiş karbon ve nitrojen kaynaklarını içeren bir litre önceden ısıtılmış N9 ortamına aktarın.

Bunlar, N15 etiketli amonyum klorür, düzgün C13 etiketli glikoz, seçici olarak C13 etiketli glikoz veya seçici olarak C13 etiketli gliserol İnkübatını 37 derecede içerebilir ve kültür bulanıklaşır bulanıklaşmaz 600 nanometrede optik yoğunluğu ölçebilir. OD 0.8 değerine ulaştığında, dört saat boyunca 0.75 mini molar IPTG ile protein ekspresyonunu indükleyin. Optimal indüksiyon koşullarının bir proteinden diğerine değişebileceğini unutmayın.

Hücreleri 6.000 G ve dört derecede 30 dakika santrifüjleyerek geri kazanın. Protein alt birimlerinin saflaştırılmasından sonra, in vitro olarak birleştirilirler. Proteini bir santrifüj filtre ünitesinde yaklaşık bir mini azı dişine konsantre edin.

Bunu yapmak için, numuneyi filtre ünitesine yerleştirin ve 30 dakika boyunca 4.000 G'de santrifüjleyin. Santrifüjleme adımları arasında, filtre membranında protein birikmesini önlemek için filtre ünitesindeki çözeltiyi bir pipetle nazikçe karıştırın. İstenilen konsantrasyona ulaşılana kadar işlemi tekrarlayın.

Numuneyi bir şahin tüpüne aktarın ve oda sıcaklığında bir hafta boyunca çalkalama altında inkübe edin. Genellikle, alt birimlerin filamentler halinde polimerizasyonuna, çözeltinin bulanık hale gelmesi eşlik eder. Bakteriyel kontaminasyonu önlemek için hacim başına% 0.02 ağırlık sodyum azid ekleyin.

Protein düzeneğini hasat etmek için, numuneyi 20.000 G ve dört derecede bir saat santrifüjleyin. Süpernatantın çoğunu aspire edin, numunenin kurumasını önlemek için yüzeyi kaplayacak kadar sıvı bırakın ve numuneyi ölçüme kadar dört derecede saklayın. Katı hal NMR ile yapısal bir analiz için gerekli deneyleri sunacağız.

C13 çekirdekleri üzerinde tespit edilen tek boyutlu çapraz polarizasyon veya CP ve beceriksiz deneyler, montajdaki katı ve esnek protein segmentlerini tespit etmek için kullanılır. Ve yapısal homojenlik ve yerel polimorfizmin derecesini tahmin etmek. Burada standart deneysel değerler kullanıyoruz.

Tipik parametre aralıkları protokolde belirtilmiştir. Rotayı NMR mıknatısına yerleştirin ve protokolde açıklandığı gibi sihirli açı döndürmeye başlayın. İstenen eğirme frekansını ayarlayın ve artı veya eksi 10 hertz içinde stabilizasyonu sağlayın.

16 tarama kullanarak tek darbeli, tek boyutlu proton spektrumunu kaydedin. Bir 1D proton karbon CP ayarlayın. CP deneyleri, rijit bir konformasyondaki kalıntılardan ortaya çıkan sinyalleri gösterir. İlk deney parametreleri, bir referans bileşik üzerinde standart bir optimizasyon prosedüründen alınır.

Darbe kalibrasyonu ve ayırma parametreleri, hassasiyet yeterince yüksek olduğunda numunede optimize edilebilir. Burada 16 tarama ile bir CP kaydediyoruz. CP temas süresi ve güç seviyeleri, CP temas süresinin optimizasyonu için burada gösterildiği gibi maksimum sinyal yoğunluğuna göre seçilir.

Bu örnekteki maksimum yoğunluğa 800 milisaniyede ulaşılır. Ayırma parametreleri, referans bileşik kalibrasyonundan orijinal olarak ayarlananlardan da yeniden ayarlanmalıdır. Son olarak, sinyalle örtüşmeyi önlemek için, burada 18 kilohertz olarak gösterilen verilen sihirli açılı eğirme frekansında dönen yan bantların lokalizasyonunu dikkatlice gözlemleyin.

Tek boyutlu spektral parmak izi görevi gören bir referans 1D proton karbon CP spektrumu kaydedin. Burada, 800 milisaniye CP temas süresi, 100 kilohertz ayırma gücü, üç saniyelik bir geri dönüşüm gecikmesi ve 20 milisaniyelik bir edinme süresi ile 128 tarama biriktiriyoruz. CP deneyini ilgisizlik olmadan işleyin.

Yapısal düzen ve homojenliğin göstergesi olan numune içindeki C39'u tahmin etmek için izole edilmiş bir tepe noktası seçin. Burada, yarım yükseklikte tam genişlik olarak ölçülen çizgi genişliği, 60 ila 70 hertz civarındadır, bu da düzenekte iyi düzenlenmiş bir protein yapısının göstergesidir. Protein düzeneğinin son derece hareketli parçalarını araştırmak için tek boyutlu bir proton karbon beceriksiz deneyi kurun.

Mobil protein segmentleri için parmak izi görevi görmesi için bir referans beceriksiz deney kaydedin. Tipik parametreler 128 tarama ve 25 milisaniyelik bir alım süresidir. Proton karbon beceriksiz deneyini işleyin.

Sinyallerin sayısı ve konumları, sırasıyla kalıntı hareketliliğinin derecesinin ve amino asit bileşiminin göstergesidir. Burada, tüm protein montaj yapısında katı bir rejimde olduğu için sadece büküm tamponu CH2 liyakatinden gelen sinyal gözlenir. Protein yapısının konformasyonel analizi, düzeneğin tüm rijit kalıntıları için katı hal NMR rezonans atamalarına dayanır.

Bu, kimyasal kaymaların yerel kimyasal ortam için oldukça hassas problar olması ve proteinin ikincil yapısını tahmin etmek için kullanılabilmesi nedeniyle mümkün olmaktadır. Daha sonra eksiksiz bir 3D yapı belirlemesi, dokuz angstrom'a kadar hem molekül içi hem de moleküller arası atom yakınlıklarını kodlayan mesafe kısıtlamaları gibi yapısal verilerin toplanmasına dayanır. Burada, temel iki boyutlu deneylerin nasıl kaydedildiğini göstereceğiz ve sıralı bir atama örneği vereceğiz.

Daha sonra, seçici olarak C13 etiketli numuneler üzerinde kaydedilen deneylerden mesafe kısıtlamalarının nasıl toplanacağına dair kısa bir gösteri yapacağız. Kalıntı içi karbon karbon korelasyonunu tespit etmek için kısa karıştırma süresi iki boyutlu karbon karbon PDSD deneyini ayarlayın. Tek boyutlu CP deneyinden ilk proton karbon çapraz polarizasyon adımının değerlerini kopyalayın.

Karıştırma, tek tip C13 etiketli numuneler için 50 milisaniyeye ayarlanabilir. Burada, dolaylı ve doğrudan boyutlarda sırasıyla 15 ve 20 milisaniye çekim süresi seçtik. PDSD spektrumunu işlemek için, 3.5 sinüs zili kayması olan bir QSINE pencere fonksiyonu kullanıyoruz.

Kalıntıya özel atamayı etkinleştirmek için, 100 ila 200 milisaniye karıştırma süresine sahip bir ara karıştırma süresi PDSD'si kaydetmek için kısa karıştırma süresi PDSD'nin ayarlarını kullanın. Nitrojen tarafından tespit edilen deneyler de dahil olmak üzere ek spektrumların genellikle tam bir rezonans ataması için gerekli olduğunu ve protokolde ayrıntılı olarak açıklandığını unutmayın. CCPNMR Analizi gibi bir NMR analiz programı seçin.

2D spektrumları yazılıma yükleyin ve birincil protein dizisi ile moleküler bir nesne oluşturun. Kısa karıştırma süresi PDSD spektrumunda görülebilen amino asit tiplerinin tanımlanması ile başlayın. Spin sistemlerinin karbon atomlarının bağlanması, kalıntı tipine özel atamaya izin verir.

Burada, bir tenyum kalıntısının spin sistemini atıyoruz. C-alfa, C-beta ve C-gama çekirdekleri arasındaki polarizasyon transferleri, PDSD spektrumunda fiziksel çapraz zirvelere yol açar. Bu prosedürle mümkün olduğunca çok kalıntıyı tanımlamaya çalışın.

Hem kısa hem de ara karıştırma süresi PDSD spektrumunu kaplayın. Ara karıştırma süresi PDSD'de görülebilen ek pikler, genellikle sıralı kalıntılar arasındaki temastan kaynaklanır. Bir spin sisteminin rezonans tepe noktalarını işaretleyin ve diğer spin sistemlerinin rezonans frekansları ile ara karıştırma süresi PDSD'deki korelasyonları bulun.

Filamentli protein düzeneğimizde tenyum 33 ile isololan 32 arasındaki sıralı atamayı gösteriyoruz. Thenium spin sisteminin rezonans frekansları, 32'deki çözünenlerin karbon frekansında görülebilir ve bunun tersi de geçerlidir. Azot tespit edilen spektrumlarla atama ve atamalardan protein ikincil yapısını elde etme prosedürleri protokolde açıklanmıştır.

Kapsamlı rezonans atamasının ardından, uzun menzilli kısıtlamaların tanımlanmasına devam edebiliriz. Uzun menzilli kısıtlamalar, hem monomerik alt birimlerin üçüncül kıvrımını hem de montaj içindeki alt birimlerin düzenini tanımlayan uzak kalıntılar arasındaki molekül içi veya moleküller arası karbon karbon yakınlıklarıdır. Burada, seçici olarak C13 etiketli numuneler özellikle önemlidir.

Seçici olarak C13 etiketli bir numune üzerinde 400 milisaniye ile bir saniye arasında bir karıştırma süresiyle kaydedilen uzun bir karıştırma süresi karbon karbon PDSD ile bir ara karıştırma süresi PDSD'yi kaplayın. Mümkünse, her iki PDSD de seçici olarak etiketlenmiş aynı numuneye kaydedilmiş olmalıdır. Ek zirveler, daha uzak C13 atomları arasındaki korelasyonlardan kaynaklanır.

Rezonans ataması sırasında, seçici etiketleme şemasını dikkate alın. Bu durumda, 1-3-gliserol. Burada, her iki boyuta da uzun menzilli bir temas zirvesi ve açık bir atama örneğini vurguladık ve örnekledik.

Protein 45 C-alfa ile Thenium 33 C-beta. Uzun menzilli mesafe tanımlaması tamamlandıktan sonra, kısıtlamalar belirsiz veya belirsiz ve ayrıca molekül içi veya moleküller arası olarak sınıflandırılır. Yapısal modelleme için hazırlanacak kısıt listeleri protokolde listelenmiştir.

Farklı programlar kullanarak yapısal modelleme ile ilgili eğitimler çevrimiçi olarak bulunabilir. Katı hal NMR verileri, kendi başına veya tamamlayıcı verilerle birlikte, süper moleküler düzeneklerin atomik düzeyde yapı belirlemesine izin verebilir. Katı hal NMR'nin avantajları, bir yandan, modelleme sürecine entegre edilebilen molekül içi arayüzlerden hem ikincil yapı bilgisi hem de atomik mesafe kısıtlamaları sağlama yeteneğidir.

Bununla birlikte, öte yandan, katı hal NMR spektroskopisinin benzersiz özelliği, bozulmamış süper moleküler montajın moleküller arası arayüzlerinde atomik mesafe kısıtlamalarını toplama yeteneğinde yatmaktadır. Bununla birlikte, moleküller arası ve moleküller arası kısıtlama atamaları arasındaki tespit ve ayrım sıkıcı bir süreç olabilir ve tipik olarak seçici olarak C13 etiketli numunelerin hazırlanmasını gerektirir. Bununla birlikte, seçici etiketleme stratejileri, spektrometre donanım tasarımı ve katı hal NMR metodolojilerindeki yeni gelişmelerle birlikte, teknik, nesne boyutu, uzun menzilli düzen veya kristallik sınırlamaları olmaksızın atomik düzeyde moleküler bilgi sağlama teorik potansiyelini giderek daha fazla yerine getirmektedir.

Bu yöntem, biyomoleküler düzeneklerin atomik yapısını incelememizi sağlar. Yüksek çözünürlüklü veriler elde etmek için NMR durumunu optimize etmek için numuneyi dikkatli bir şekilde hazırlamak çok önemlidir. Bu protokol ile protein düzeneklerinin bilgisi olan atomik çözünürlükleri elde edebiliriz.

Ve bu teknik, üç boyutlu modeller elde etmek için yapısal biyolojideki diğer tekniklerle birleştirilebilir.

Explore More Videos

Biyokimya sayı: 127 Yapısal Biyoloji makromoleküllerin derlemeler Nükleer manyetik rezonans katı-hal NMR magic-açı iplik öz-derlemeler protein kompleksleri amiloid liflerinde bakteriyel filamentler

Related Videos

Atomik Düzeyde Protein-Protein Etkileşimlerini İncelemek için Nükleer Manyetik Rezonans

06:05

Atomik Düzeyde Protein-Protein Etkileşimlerini İncelemek için Nükleer Manyetik Rezonans

Related Videos

863 Views

Peptit-Metal Komplekslerinin Yapı ve Koordinasyon Tayini 1D ve 2D 1H NMR Kullanılarak

14:44

Peptit-Metal Komplekslerinin Yapı ve Koordinasyon Tayini 1D ve 2D 1H NMR Kullanılarak

Related Videos

10.1K Views

Ex Situ ve yapısal dönüşümleri in Situ soruşturma yöntemleri: Metalik gözlük kristalleşme olgusu

08:55

Ex Situ ve yapısal dönüşümleri in Situ soruşturma yöntemleri: Metalik gözlük kristalleşme olgusu

Related Videos

9K Views

Küçük açı x-ışını saçılması kullanarak çözüm yapısal oluştururlar çalışmaları

07:19

Küçük açı x-ışını saçılması kullanarak çözüm yapısal oluştururlar çalışmaları

Related Videos

13.4K Views

Yapısal aydınlatma kullanarak dinamik nükleer polarizasyon Solid-State NMR için bitki malzeme ve mantar hazırlanması

09:37

Yapısal aydınlatma kullanarak dinamik nükleer polarizasyon Solid-State NMR için bitki malzeme ve mantar hazırlanması

Related Videos

8K Views

Yüksek Sıcaklık ve Yüksek Basınç Yerinde Sihirli Açı Dönen Nükleer Manyetik Rezonans Spektroskopisi

08:55

Yüksek Sıcaklık ve Yüksek Basınç Yerinde Sihirli Açı Dönen Nükleer Manyetik Rezonans Spektroskopisi

Related Videos

6.2K Views

İçsel Olarak Düzensiz Proteinlerin Kendi Kendine İlişkilerini Tespit Etmek ve Karakterize Etmek için Paramanyetik Gevşeme Geliştirmesi

07:24

İçsel Olarak Düzensiz Proteinlerin Kendi Kendine İlişkilerini Tespit Etmek ve Karakterize Etmek için Paramanyetik Gevşeme Geliştirmesi

Related Videos

2.3K Views

Proteinlerin ve hidrasyon suyunun pikosaniye-nanosaniye dinamiklerini incelemek için yüksek çözünürlüklü nötron spektroskopisi

08:48

Proteinlerin ve hidrasyon suyunun pikosaniye-nanosaniye dinamiklerini incelemek için yüksek çözünürlüklü nötron spektroskopisi

Related Videos

2.2K Views

NMR 15N Proteinlerin Pikosaniye ve Nanosaniye Yapısal Dinamiğinin İncelenmesi için Gevşeme Deneyleri

09:25

NMR 15N Proteinlerin Pikosaniye ve Nanosaniye Yapısal Dinamiğinin İncelenmesi için Gevşeme Deneyleri

Related Videos

2.9K Views

Özünde Düzensiz Proteinlerin Çoklu fosforilasyon Saptanma Nükleer Manyetik Rezonans Spektroskopisi

12:47

Özünde Düzensiz Proteinlerin Çoklu fosforilasyon Saptanma Nükleer Manyetik Rezonans Spektroskopisi

Related Videos

19.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code