-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Developmental Biology
Zebra balığı bütün Dağı Floresan Situ hibridizasyon ve ayirt kombine bir protokol aracıl...
Zebra balığı bütün Dağı Floresan Situ hibridizasyon ve ayirt kombine bir protokol aracıl...
JoVE Journal
Developmental Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Developmental Biology
Visualizing Multiciliated Cells in the Zebrafish Through a Combined Protocol of Whole Mount Fluorescent In Situ Hybridization and Immunofluorescence

Zebra balığı bütün Dağı Floresan Situ hibridizasyon ve ayirt kombine bir protokol aracılığıyla Multiciliated hücrelerde görüntülenmesi

Full Text
8,747 Views
09:33 min
November 18, 2017

DOI: 10.3791/56261-v

Amanda N. Marra1, Marisa Ulrich1, Audra White1, Meghan Springer1, Rebecca A. Wingert1

1Department of Biological Sciences,University of Notre Dame

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Kirpikler geliştirme için uygun organogenesis hayati önem taşımaktadır. Bu iletişim kuralı etiket ve Zebra balığı siliyer hücreleri görselleştirmek için en iyi duruma getirilmiş bir yöntemini açıklar.

Bu protokolün genel amacı, zebra balığının çok parçalı hücrelerini yerinde etiketlemek ve görselleştirmektir. Bu yöntem, embriyonik zebra balığı böbreğindeki multicilyated sülfatları hangi faktörlerin düzenlediği gibi gelişimsel biyoloji alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu tekniğin temel avantajı, hem protein hem de RNA transkriptlerinin aynı anda etiketlenebilmesidir, bu da zebra balığına özgü antikorların yokluğunda yararlıdır.

Bu yöntem için ilk olarak, embriyoda değişiklikler yaptıktan sonra kirpiklerin varlığını analiz ederken pronephrostaki multicilyated hücreleri etiketlemeye gittiğimizde aklımıza geldi. Zebra balığı embriyolarını döllenmeden 24 saat sonra beş mililitre% 4 paraformaldehit içinde oda sıcaklığında iki ila dört saat boyunca çalkalama olmadan sabitleyerek başlayın. Daha sonra, embriyoları PBS'de %0.1 Tween 20 veya PBST ile iki kez yıkayın ve ardından beş mililitre% 100 metanol ile bir yıkama yapın.

Daha sonra, embriyoları eksi 20 santigrat derecede en az 20 dakika boyunca beş mililitre taze% 100 etanol içinde inkübe edin. Embriyoları hibridizasyona hazırlamak için, yenidoğanları beş mililitre% 50 metanol ve PBST içinde beş dakika boyunca rehidre edin, ardından beş mililitre% 30 metanol ve PBST içinde beş dakika izleyin. Embriyoları beş mililitre PBST'de her biri beş dakika boyunca iki kez yıkayın ve embriyoları beş mililitre bir ila 1.000 proteinaz K ve PBST çözeltisinde iki dakika boyunca inkübe edin, hemen ardından beş mililitre PBST'de iki yıkama daha yapın.

Embriyoları oda sıcaklığında en az 20 dakika boyunca beş mililitre% 4 paraformaldehit içinde sabitleyin, ardından beş mililitre PBST 20'de iki yıkama yapın. Embriyolar ve hibridizasyon çözeltisi arasındaki etkileşimleri kolaylaştırmak için, embriyoları bir mikro santrifüj rafında dik düz tabanlı mikro santrifüj tüplerinde beş mililitre PBST'ye aktarın ve embriyoları her biri 1.5 mililitre hibridizasyon çözeltisinde beş dakika boyunca iki kez yıkayın. İkinci yıkamadan sonra, embriyoları bir hibridizasyon fırınında 70 derecede 1.5 mililitre taze hibridizasyon solüsyonunda dört ila altı saat inkübe edin.

Ardından, 70 santigrat derecede bir gece prob hibridizasyonuna ulaşmak için hibridizasyon solüsyonunu 10 mikrolitre ilgili RNA probu ve 500 mikrolitre hibridizasyon solüsyonu ile değiştirin. Ertesi sabah, embriyoları 70 santigrat derecede yıkama başına 20 ila 30 dakika boyunca 1.5 mililitre% 50 formamid ve 2X salin-sodyum sitrat tamponu veya SSC içinde iki kez yıkayın. Daha sonra, embriyoları 15 dakika boyunca 70 santigrat derecede tek başına 1.5 mililitre 2X SSC'de bir kez yıkayın, ardından yıkama başına 20 ila 30 dakika boyunca 70 santigrat derecede 1.5 mililitre 0.2X SSC'de iki yıkama yapın.

İkinci yıkamadan sonra, dört santigrat derecede bir gece inkübasyon için 0.2X SSC'yi 1.5 mililitre bloke edici reaktif ile değiştirin. Ertesi sabah, blokaj reaktifini yaban turpu peroksidaz içinde 0.2 mililitre anti-digoksin ile değiştirin ve ışıktan korunan oda sıcaklığında üç saatlik bir inkübasyon için bire 1.000 oranında bloke edici reaktif ile değiştirin. Daha sonra, embriyoları yıkama başına 10 ila 15 dakika boyunca 1.5 mililitre malik asit tamponunda iki ila dört kez yıkayın, ardından 1.5 mililitre taze malik asit tamponunda dört santigrat derecede bir gece inkübasyon yapın.

Ertesi sabah, malik asit tamponunu 1.5 mililitre PBS ile değiştirin ve embriyoları yıkama başına beş dakika boyunca 1.5 mililitre PBS'de iki kez yıkayın. Embriyoları 0.2 mililitre Si3 floresan duran solüsyonda 60 dakika inkübe edin, ardından 1.5 mililitre artan metanol konsantrasyonlarında dört ardışık 10 dakikalık yıkama yapın. Son inkübasyondan sonra, embriyoları oda sıcaklığında 1.5 mililitre% 1 hidrojen peroksit ve metanol içinde 30 dakika inkübe edin.

Daha sonra, embriyoları 1.5 mililitre azalan metanol solüsyonlarında yıkama başına 10 dakika boyunca yıkayın, ardından 1.5 mililitre PBS'de beş dakikalık iki yıkama yapın. Daha sonra, embriyoları 1.5 mililitre çift damıtılmış suda beş dakika yıkayın, ardından 1.5 mililitre eksi 20 santigrat derece asetonda yedi dakikalık bir yıkama yapın. Embriyoları 1.5 mililitre çift damıtılmış suda beş dakika boyunca yıkayın, ardından 1.5 mililitre PBST'de% 1 DMSO veya PBDT ile beş dakikalık bir yıkama yapın.

Embriyoları oda sıcaklığında 1.5 mililitre PBDT'de% 10 FBS ile iki saat boyunca bir külbütör üzerinde inkübe edin. Daha sonra, dört santigrat derecede bir gece inkübasyon için PBDT ve FBS'yi 1.5 mililitre birincil antikorlarla değiştirin. Ertesi sabah, embriyoları 1.5 mililitre PBDT, FBS ve 0.1 molar sodyum klorür içinde bir dakika boyunca sallanarak yıkayın, ardından 1.5 mililitre PBDT, FBS ve sodyum klorür içinde 30 dakikalık beş sallanan yıkama yapın.

Son yıkamadan sonra, embriyoları 1.5 mililitre PBDT ve FBS'de bir kez sadece 30 dakika boyunca sallanarak yıkayın, ardından uygun ikincil antikorların 200 mikrolitresinde ışıktan korunan dört santigrat derecede bir gece inkübasyon yapın. Ertesi sabah, embriyoları 1.5 mililitre PBDT'de iki kez hızlı bir şekilde yıkayın, ardından bir külbütör üzerinde 1.5 mililitre DAPI'de 15 dakikalık bir inkübasyon yapın. Daha sonra, embriyoları yıkama başına 15 ila 20 dakika boyunca FBS ve sodyum klorür ile 1.5 mililitre PBDT'de üç kez yıkayın ve embriyoları ortam ışığından korunarak dört santigrat derecede 1.5 mililitre PBDT'de saklayın.

Zebra balığı böbreklerini görüntülemek için, embriyoları yaklaşık 10 mikrolitre PBDT'de cam slaytlar üzerine yanal olarak yerleştirin. Bir çift ince forseps ve bir diseksiyon mikroskobu kullanarak, başını ve yumurta sarısı topunun bir kısmını çıkarmak için ilk embriyoyu gözlerin arkasına sıkın. Ardından, kalan yumurta sarısı topunu embriyo gövdesinden nazikçe kazıyın.

Yumurta sarısı topunu çıkarırken, ilgilenilen doku kolayca yırtıldığından ve doğrudan uzantının üzerinde bulunduğundan, yumurta sarısı kesesi uzantısına dokunmamaya dikkat edin. Slayttan ayrışmış yumurta sarısını ve fazla sıvıyı çıkarmak için ince bir doku kullanın. Ardından, kalan kuyruğa bir damla montaj ortamı ekleyin ve kuyruğu yanlamasına konumlandırın.

Kuyruğu bir kapak fişi ile düzleştirin ve slaytı kapalı bir slayt kutusuna yerleştirin. Ardından, böbreğin kirpiklerini uygun floresan kanallarda görüntülemek için konfokal mikroskopta 60X objektifi kullanın. Az önce gösterildiği gibi boyanmış bir zebra balığı embriyosunun aşağıdaki temsili görüntülerinde, ODF3B transkript ekspresyonunu tanımak için kullanılan antisens riboprobun, gamet tübülin etiketli bazal cisimler ve kirpikler etiketli asetillenmiş alfa tübülinin görselleştirilmesine dayalı olarak çok parçalı hücreler tanımlanabilir.

Gerçekten de, embriyonik pronefrosun bu büyütmesinde, ODF3B transkriptleri, çoklu bazal cisimler ve silialara sahip çok parçalı bir hücre gözlenebilir. Bitişik monosiliyer hücre, tek bazal gövdesi ve tek siliyum fenotipi ile ayırt edilebilir. Bu prosedürü denerken, yeni sabitlenmiş embriyoları kullanmayı unutmamak ve ilk antikor eklendikten sonra örnekleri ortam ışığından korumak önemlidir.

Explore More Videos

Gelişim biyolojisi sayı: 129 kirpikler Zebra balığı multiciliated hücre Floresan situ hibridizasyon ayirt pronephros böbrek

Related Videos

Zebra balığı Tüm Dağı Yüksek Çözünürlüklü Çift Floresan Yerinde Hibridizasyon

12:31

Zebra balığı Tüm Dağı Yüksek Çözünürlüklü Çift Floresan Yerinde Hibridizasyon

Related Videos

24K Views

Zebra balığı Embriyolar Bireysel Nöronlar ve Sinir Crest Hücreler Aktin Sitoiskelet Hücre Motilite ve Canlı Görüntüleme

10:52

Zebra balığı Embriyolar Bireysel Nöronlar ve Sinir Crest Hücreler Aktin Sitoiskelet Hücre Motilite ve Canlı Görüntüleme

Related Videos

13.9K Views

Zebra balığı Beyin Etiketleme ve Görüntüleme Hücreleri

09:17

Zebra balığı Beyin Etiketleme ve Görüntüleme Hücreleri

Related Videos

12K Views

Zebra balığı Embriyolar Doku spesifik Floresans yarı otomatik Görüntüleme

07:06

Zebra balığı Embriyolar Doku spesifik Floresans yarı otomatik Görüntüleme

Related Videos

10.1K Views

Tüm Dağı ile Zebra balığı Embriyo örnekler Vitray gözlenmesi ve Analiz Daire Dağı Hazırlık In situ Melezleme

06:36

Tüm Dağı ile Zebra balığı Embriyo örnekler Vitray gözlenmesi ve Analiz Daire Dağı Hazırlık In situ Melezleme

Related Videos

25.2K Views

Yaşayan Zebra balığı Embriyo Hücre alt yapıları görüntüleme

11:19

Yaşayan Zebra balığı Embriyo Hücre alt yapıları görüntüleme

Related Videos

12.4K Views

Tüm Dağı Zebra balığı Embriyolar kirpikli Organları boyanmasına Fosfo-epitoplar

08:42

Tüm Dağı Zebra balığı Embriyolar kirpikli Organları boyanmasına Fosfo-epitoplar

Related Videos

8.5K Views

Interrenal steroidogenik Doku ve Zebra balığı Onun Vasküler Mikroçevre görselleştirme

07:19

Interrenal steroidogenik Doku ve Zebra balığı Onun Vasküler Mikroçevre görselleştirme

Related Videos

7.4K Views

Cryosec, zebrafish embriyo üzerinde sıralı Immünofluorescence ve Immünhistokimya

09:20

Cryosec, zebrafish embriyo üzerinde sıralı Immünofluorescence ve Immünhistokimya

Related Videos

14.9K Views

Zebrabalığı Embriyoları ve Larvalarında Tüm Mount Immunohistochemistry

07:29

Zebrabalığı Embriyoları ve Larvalarında Tüm Mount Immunohistochemistry

Related Videos

22.1K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code