-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Serebral Perisitleri Fareden Ayırmak Için Yüksek Çıkış Yöntemi
Serebral Perisitleri Fareden Ayırmak Için Yüksek Çıkış Yöntemi
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
A High Output Method to Isolate Cerebral Pericytes from Mouse

Serebral Perisitleri Fareden Ayırmak Için Yüksek Çıkış Yöntemi

Full Text
9,050 Views
06:49 min
January 14, 2020

DOI: 10.3791/60588-v

Anupriya Mehra1, Lucie Dehouck1, Elodie Vandenhaute1, Marc Fatar2, Laurence Fenart1, Fabien Gosselet1

1Laboratory of the Blood Brain Barrier,University of Artois, 2Department of Neurology, Universitätsmedizin Mannheim,Heidelberg University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a reliable protocol for the extraction of murine cerebral pericytes, which are essential for understanding their role in neurological disorders and brain function. The method emphasizes an antibiotic-free enrichment approach that yields high purity and high cell counts, minimizing the number of experimental animals required.

Key Study Components

Research Area

  • Cerebral pericytes
  • Neurological disorders
  • In vitro cellular studies

Background

  • The significance of cerebral pericytes in brain health
  • Need for reliable cell culture methods
  • Challenges in existing extraction protocols

Methods Used

  • Antibiotic-free cell extraction
  • Murine model (C57BL/6 mouse)
  • Centrifugation, enzymatic digestion, and cell culture

Main Results

  • High purity and viability of isolated pericytes
  • Clear morphological differentiation between pericytes and endothelial cells
  • Evaluation of cell culture purity by NG2, CD146, and PDGFR beta markers

Conclusions

  • The protocol provides a dependable method for isolating and culturing murine cerebral pericytes
  • This study enhances the understanding of pericyte function in neurological contexts

Frequently Asked Questions

What are cerebral pericytes?
Cerebral pericytes are contractile cells found in the walls of capillaries in the brain, playing crucial roles in neurovascular regulation.
Why is an antibiotic-free protocol important?
An antibiotic-free protocol minimizes potential impacts on cell health and function, ensuring more physiological relevance in experimental studies.
How is cell purity assessed in this study?
Cell purity is assessed using molecular markers NG2, CD146, and PDGFR beta through quantitative PCR and immunocytochemistry.
What age of mice is used for pericyte extraction?
The protocol utilizes 4 to 6-week-old male C57BL/6 mice for optimal yields of cerebral pericytes.
How often should the culture medium be changed after isolation?
The culture medium should be changed every 48 hours after the initial seeding of the pericytes.
What is the significance of this research?
This research enhances methodologies for studying cerebral pericytes, which can lead to a better understanding of their roles in neurological health and diseases.
What are the main applications of isolated pericytes?
Isolated pericytes can be used for in vitro studies to explore their roles in vascular biology and neurological disorders.

Biz murine serebral perisit lerin çıkarılması için bir protokol sıyoruz. Antibiyotiksiz zenginleştirme odaklı perisit çıkarma dayanarak, bu protokol, böylece kullanılan deneysel hayvan sayısını azaltarak, yüksek saflık ve yüksek verim sağlayan in vitro çalışmalar için değerli bir araçtır.

Son zamanlarda, serebral perisitlerin rolü nörolojik bozukluklar ve beyin fonksiyonu belirgin hale gelmiştir. Bu nedenle, bu hücreler için kültür güvenilir bir yöntem geliştirilmesi zorunludur. Murine serebral perisit lerin çıkarılması na yönelik protokolümüz, in vitro çalışmalar ve perisitlerin yüksek saflıkta ve hücre verimi ile sağlanması için güvenilir bir aracı temsil eder.

Anupriya Mehra ile prosedürü göstermek Lucie Dehouck, benim laboratuvar bir teknisyen olacak. Belirli bir patojen içermeyen dört ila altı haftalık erkek C57BL/6 fareden beyni steril kuru tiftiksiz bir mendilin üzerine yerleştirerek ve beyincik, striatum ve oksipital sinirleri çıkarmak için kavisli uç forceps kullanarak başlayın. Tüm görünür menenjler kaldırmak ve baş aşağı beyin dokusu açmak için bir pamuklu bez kullanın.

Hafif dışa inme ile loblar açın ve görünür kan damarlarının tüm kaldırın. Daha sonra menenjsiz beyin dokusunu 100 milimetrelik bir Petri kabına yerleştirin ve 15 mililitre soğuk yıkama tamponu B.To dokuyu homojenize edin, beyin örneğini bir Dounce doku öğütücü harç tüpüne aktarın ve tüpe 3-4 mililitre yıkama tamponu Ekleyin. 55 kez doku kıyma için gevşek bir havaneli kullanın, sonra tampon B yıkama ile havaneli durulayın ve sıkı bir havaneli ile doku bulamaç kıyma 25 kez.

Homojenizasyonun sonunda, iki 50 mililitrelik tüpler arasındaki bulamaç eşit aliquot ve soğuk% 30 büyükbaş serum albumin dextran hacmi 1.5 kat ekleyin. Sonra şiddetle bulamaç karıştırmak için tüpleri sallayın. Vasküler fraksiyonu izole etmek için, santrifüj ile hücreleri tortu ve iki yeni tüpler içine supernatants transfer.

B tamponu buz üzerinde yıkama pelet saklayın. B buz üzerinde üç mililitre soğuk yıkama tampon B pelet resuspend. Hasat edilen süpernatanları santrifüj edin ve bu adımı bir kez daha tekrarlayın.

Supernatants atın ve yıkama tampon B.Then resuspended pelet havuz ve taze soğuk yıkama tampon B.Further 10 milimetrelik pipet ile hücreleri ayrıştırın 10 mililitre havuzlu hücre süspansiyon son hacmi getirmek üç mililitre pelet yeniden askıya altı pelet görünür kalan kümeleri görünür ve bir vakum filtresi montaj ve bir nylon örgü süzgeç ikulaklık hücre filtrelemek için bir vakum filtresi montaj ve bir nylon örgü süzgeç kullanın. Bir Petri kabına süzgeç yerleştirin ve taze yıkama tampon B ile örgü temizleyin ve herhangi bir kılcal kurtarmak için kazıma. Sonra taze bir filtre ile ikinci bir filtreleme gerçekleştirin.

Filtrasyonu iki tüp arasında eşit olarak bölün ve hücreleri santrifüj ile toplayın. Supernatants attıktan sonra, enzimler ile önceden ısınmış yıkama tampon B içeren tek bir tüp içine pelet havuz ve tüp için önceden ısıtılmış Kollajenaz / Dispase ekleyin. 30 mililitre soğuk yıkama tamponu B.Collect santrifüj ile hücreleri toplamak ve dikkatle supernatant atın reaksiyonu durdurmadan önce 37 santigrat derece tam 33 dakika bir sallayarak masa suyu banyosutüp tüp yerleştirin.

Hızlı ama dikkatlice tampon B altı kez yıkama pelet askıya ve süspansiyon tekrar santrifüj. Supernatant attıktan sonra, tam DMEM orta 18 mililitre pelet resuspend ve üç Matrigel kaplı altı iyi plakadokuz kuyularda tam DMEM hücre süspansiyon iki mililitre tohum. Hücre kültürlerini steril 37 derece 5%5 karbondioksit kuvöze yerleştirin ve her kuyudaki enkazı dikkatlice çıkarmadan önce 24 saat boyunca taze DMEM ortamı ekleyin.

48 saat sonra, her 48 saatte bir orta yı değiştirin. 8-10. günde hücreler %100 birleştiğinde perisit kültür ortamındaki hücreleri yeni jelatin kaplı altı kuyulu plakalara aktarın ve hücreleri altı ila yedi gün boyunca hücre kültür kuvözlerine geri döndürün. Daha sonra 17.

Pasaj sıfırdan ikinci bölüme kadar, endotel hücrelerinin ve perisitlerde kademeli artışın tespit edilebildiği spesifik morfolojik özellikler vardır. Sıfır kültürlü bir pasajda, mikrodamarlardan gelişen uzamış endotel hücreleri bolmiktarda bulunur. Bu bolluk birinci geçitten sonra azalır ve ikinci ayetten sonra yoktur.

Aksine, perisitler erken kültürlerde nadir dörtgen hücreler olarak görünür ve ikinci geçit ile bol hale gelir. NG2, CD146 ve PDGFR beta ekspresyonunun değerlendirilmesi, perisit kültürünün saflığını nicel PCR, immünositokimya ve Batı lekelerine göre değerlendirmek için kullanılabilir. Enzim sindirimi protokolün başarısı için kritik bir adımdır.

Enzim konsantrasyonlarını ve kuluçka süresini kesinlikle izlediğinden emin olun.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Biyoloji Sayı 155 primer serebral perisitler izolasyon fare dekstran

Related Videos

Primer Beyin Perisitlerinin İzolasyonu ve Kültürü: Endotel Hücre Kontaminasyonu Olmadan Sığır Beyin Kılcal Damarlarından Perisitleri İzole Etme ve Kültür Prosedürü

04:21

Primer Beyin Perisitlerinin İzolasyonu ve Kültürü: Endotel Hücre Kontaminasyonu Olmadan Sığır Beyin Kılcal Damarlarından Perisitleri İzole Etme ve Kültür Prosedürü

Related Videos

2.8K Views

Fare Beyin Damarlarının İzole Edilmesi: Murin Beyin Örneğinden Sağlam Damarları İzole Etmek İçin Bir Protokol

04:20

Fare Beyin Damarlarının İzole Edilmesi: Murin Beyin Örneğinden Sağlam Damarları İzole Etmek İçin Bir Protokol

Related Videos

3.4K Views

Murin astrositlerini izole etmek ve kültürlemek için basit bir teknik

04:51

Murin astrositlerini izole etmek ve kültürlemek için basit bir teknik

Related Videos

842 Views

Fare Serebral Perisitlerinin İzole Edilmesi ve Kültürlenmesi

05:43

Fare Serebral Perisitlerinin İzole Edilmesi ve Kültürlenmesi

Related Videos

635 Views

Fare Kortikal astrositlerde İzolasyon ve Kültür

11:25

Fare Kortikal astrositlerde İzolasyon ve Kültür

Related Videos

94.4K Views

İlköğretim Kemirgen Beyin mikrovasküler endotel hücreleri İzolasyonu

08:14

İlköğretim Kemirgen Beyin mikrovasküler endotel hücreleri İzolasyonu

Related Videos

34K Views

Fare Beyin Gemiler saflaştırılması

07:32

Fare Beyin Gemiler saflaştırılması

Related Videos

24.9K Views

Retina Cryo-kesitler, Bütün bağlar ve mikrovasküler perisitlerden immunohistokimyasal görselleştirme hipotonik izole damarlara hazırlıkları

10:46

Retina Cryo-kesitler, Bütün bağlar ve mikrovasküler perisitlerden immunohistokimyasal görselleştirme hipotonik izole damarlara hazırlıkları

Related Videos

10.7K Views

Hücre içi kalsiyum ve taze izole ve olduğu gibi fare serebral endotel membran potansiyeli eşzamanlı ölçümler

09:45

Hücre içi kalsiyum ve taze izole ve olduğu gibi fare serebral endotel membran potansiyeli eşzamanlı ölçümler

Related Videos

8.7K Views

Murine Kardiyak Perisitlerin İzolasyon ve Safifikasyonu

10:49

Murine Kardiyak Perisitlerin İzolasyon ve Safifikasyonu

Related Videos

10K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code