-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
İmmünolojik Sinapslar ve Kinapse Eğitim Oluşumu için desteklenen Düzlemsel Bilayers
İmmünolojik Sinapslar ve Kinapse Eğitim Oluşumu için desteklenen Düzlemsel Bilayers
JoVE Journal
Biology
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Biology
Supported Planar Bilayers for the Formation of Study of Immunological Synapses and Kinapse

İmmünolojik Sinapslar ve Kinapse Eğitim Oluşumu için desteklenen Düzlemsel Bilayers

Full Text
12,834 Views
12:24 min
September 15, 2008

DOI: 10.3791/947-v

Santosha Vardhana1, Michael Dustin1

1Helen and Martin S. Kimmel Center for Biology and Medicine at the Skirball Institute of Biomolecular,New York University - NYU

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Desteklenen düzlemsel bilayers immünolojik sinaps moleküler etkileşimleri modellemek için kullanılabilir güçlü araçlardır. Burada, lipid bilyer üst broşür sinaps oluşumunu modüle ve sinaps oluşumu TIRF mikroskobu kullanarak görselleştirmek için bilinen hücre adezyon proteinleri demirleme için yöntemler göstermektedir.

Transcript

Merhaba, ben Geral Enstitüsü ve New York Üniversitesi Tıp Fakültesi'nden Mike Dustin. Bugün sizi immünolojik sinaps çalışması için destekleyici düzlemsel Biolay oluşturma prosedüründen geçireceğim. Öyleyse başlayalım.

Lipid çift tabakasını yapmak için, bir ila iki mililitre kloroform metanol içeren bir cam tüpte uygun miktarlarda% 20 nikel, şelatlama lipidi ve% 80 fosfatidilkolin çözeltisi hazırlıyoruz. İlk adım, çözücüyü 30 ila 37 santigrat derece ılık bir su banyosunda bir nitrojen gazı akışı altında buharlaştırmaktır. Bu genellikle yaklaşık 15 dakika sürer.

Ardından, 90 dakika boyunca bir liyofilizatör kullanarak yüksek vakum altında kalan çözücüyü çıkarın. Daha sonra, lipitleri% 2 N sekizli glukozit deterjan faiz tuzlu su tamponu içinde 0.4 milimolar nihai konsantrasyona çözün. Bu, lipozomlar oluşturmak için karışık deterjan fosfolipid mycells çözeltisi oluşturur.

Deterjanı çıkarmak ve lipozomlar oluşturmak için bu çözeltiyi üç tris salin değişikliğine karşı diyaliz edersiniz. Genellikle 10 kilodalton civarında bir kesme ile altı milimetre çapında boru ile bir mililitre mertebesinde hacimlerle çalışırız ve boruyu sıkıştırırken herhangi bir hava kabarcığını dışlamaya dikkat ederiz. Bu solüsyonu steril olarak filtreliyoruz ve diyalizi temiz koşullar altında yapıyoruz ve% 70 etanol sterilize edilmiş eldiven kullanıyoruz.

Bu çözelti kristal berraklığında olmalı ve oksidasyonu önlemek için Argon gazı altında saklanmalıdır. Çözelti bulanıksa, çok duvarlı veziküller oluşturmuşsunuzdur ve yeniden başlamanız gerekir. Deneyi ortaya koymak için, öncelikle belirli bir çözünür protein konsantrasyonunda nikel şelatlama çift tabakasının belirli bir yüzey alanında ne kadar ICAM bir ve MHC biriktiğini belirlememiz gerekir.

Bunu yapmak için, beş mikrometre çapında cam hızında çift tabakalar biriktiriyoruz. Cam boncukları, görüntüleme için kullanılan akış hücrelerindekilere yakın koşullar altında protein çözeltileri ile inkübe edin ve ardından bir akış immünofloro metrik tahlili ile bağlı proteinin yoğunluğunu okuyun. Yüzeye bağlı proteinleri tespit etmek için molekül başına bilinen floresein sayılarına sahip FSI işaretli antikorlar kullanılır ve akış mikro florimetresini kalibre etmek için floresein standart boncukları kullanılır.

ICAM bir mikrometre kare başına 200 molekül ve kare başına 0.2 ila 20 molekül içeren antijen sunan hücrelere yakın koşullar oluşturacağız. I-E-K-M-C-C 91 1 0 3 mikrometresi, lipozomlar cama kaynaştığında karmaşık düzlemsel çift tabakalar kendiliğinden oluşur, ancak yalnızca camı temizlemek için uygun şekilde temizlenirse. Taze hazırlanmış bir sülfürik asit ve% 30 hidrojen peroksit karışımı olan asit piana çözeltisi kullanıyoruz, bu da tüm organik maddeleri yok eder ve aynı zamanda cam yüzeyini çok hidrofilik bırakır.

Piranha ile çalışırken, asit önlüğü ve ağır aside dayanıklı eldivenler de dahil olmak üzere tam koruyucu giysiler giyiyoruz. Atığın organik atıklardan dikkatli bir şekilde ayrılması ve uygun şekilde bertaraf edilmesi gerekir. Asit piranha çözeltisini hazırlamak için, kuru bir behere 75 mililitre konsantre sülfürik asit ekleyin ve ardından dikkatlice 25 mililitre% 30 hidrojen peroksit ekleyin.

Çözelti hızla 100 santigrat derecenin üzerine kadar ısınır, ardından kuru örtü fişlerini 15 dakika boyunca çözeltiye daldırın. Piranhadaki bu inkübasyonun ardından, örtü fişlerini arıtılmış suya batırın ve ardından her iki tarafını bir dakika durulayın. Ardından, arıtılmış suyu boşaltmak için bir vakum kaynağı kullanarak kapak kızaklarını kurutun.

Piranha çözeltisinin soğumasını bekleyin ve çift katmanları oluşturmak için çeker ocakta iyi işaretlenmiş, kapağı gevşek bırakılan piranha atık kabına ekleyin. Laboratuvarımız, entegre ısıtmanın avantajlarına sahip bi FCS iki oda kullanır. FCS iki sistemi, 0,5 milimetrelik bir üst contaya sahip bir mikroakışkan manifoldu, bir yüzeyde ısıtma için indiyum kalay oksit ile kaplanmış bir mikro su kemeri sürgüsünü ve diğer tarafta akışkan bir oluk ile birbirine kenetleyen paslanmaz çelik bir taban üzerindedir.

Akış odasının yüksekliğini tanımlayan tozsuz 0,25 milimetrelik bir conta ve piranha, akış hücresini birleştirmek ve düzlemsel çift katmanlar oluşturmak için çift katmanın oluşturulduğu 40 milimetrelik yuvarlak kapak kızağını temizledi. Manifoldu, tüpler yukarı bakacak şekilde düz bir yüzeye yerleştirin. Ardından 0.5 milimetrelik contayı akışkan tüplerin üzerine yerleştirilmiş deliklerle yerleştirin ve bunun düz bir şekilde oturduğundan emin olun.

Mikro su kemeri sürgüsünü, akışkan kanalları yukarı bakacak şekilde nazikçe yerleştirin ve sürgüdeki deliklerin mikroakışkan tüplerle aynı hizada olduğunu doğrulayana kadar aşağı doğru herhangi bir basınç uygulamadan düz bir şekilde oturduğundan emin olun. Daha sonra, tozsuz 0.25 milimetre contayı, mikro su kemeri sürgüsünün üzerine dikdörtgen bir kesik ile yerleştirin, böylece kanal akışkan kanallarla hizalanır ve büyük hava boşlukları olmaz, mikro su kemeri sürgüsünün yüzeyine beş mikrolitrelik lipozom süspansiyonu damlası yerleştirilir, her damla arasındaki merkezden merkeze mesafe 2.5 milimetre olacak şekilde. Beş lipozom damlası farklı bileşimlere sahip olabilir, ancak bu durumda, biri nikel şelatlama lipidleri içermeyen ve diğeri %10 nikel şelatlama lipidleri olan iki çift tabaka oluşturacağız.

Bu damlalar yerine oturduktan sonra, kapak kızağını tek bir hareketle dikkatlice yüzeye yerleştirin, cl mümkün olduğunca çabuk tabana sabitleyin. Lipozom damlaları kapak fişi ile temas etmelidir. Bu temas kopmamalıdır, çünkü çift tabakalar muhtemelen zaten oluşmuştur ve herhangi bir aksaklık kusurlu çift tabakalara neden olabilir.

Bu noktada, kapak kaymasının mikroskop üzerinde konumlandırılmasına yardımcı olmak için slayt üzerinde birkaç küçük mürekkep lekesi ile çift katmanların konumlarını işaretlemeyi unutmamak önemlidir. Sistemin dengelendiğinden emin olmak için 20 dakika bekleyin, yaklaşık 20 santimetre esnek boruya bağlı 20 mililitrelik bir şırınga ve üç yollu bir durdurma musluğu kullanarak tüm çözeltileri aktarın. Durdurma musluğunun başka bir portu daha sonra vana ile akış hücresi arasındaki ölü hacmi en aza indirmek için kısa bir boru uzunluğu ile akış hücresine bağlanır.

Şırıngayı magnezyum klorür, kalsiyum klorür, glikoz ve insan serum albümini içeren heis tamponlu salin ile doldurun. Boruyu astarlayın ve musluğu durdurun, böylece hava kabarcığı olmaz. Daha sonra bunu akış hücrelerine bağlayın ve çift katmanın üzerinden hava kabarcığı geçmediğinden emin olmak için izlerken tek hareketle beş mililitreyi itin.

Artık tıslama etiketli proteinleri çift katmana sokmak için çift katmanlarınıza sahip olacaksınız. Önce kasa ile bloke edilmeli ve nikel ile doldurulmalıdır. Bir mililitrelik bir şırıngayı kasalı nikel iyon çözeltisiyle doldurun ve bunu herhangi bir hava kabarcığı yakalamadan yan bağlantı noktasına bağlayın.

Çözeltiyi enjekte ettikten sonra, tam tıkanmaya izin vermek için 20 dakika bekleyin. Daha sonra blokaj solüsyonunu 20 mililitrelik şırıngadan H-B-S-H-S-A ile yıkayın. Şimdi polyhis, etiketli, ICAM, one ve IEK içeren 0.5 mililitre H-B-S-H-S-A solüsyonu enjekte edin.

Bu deneyde, ICAM olanı SCI beş ile etiketlenmiştir. Bu nedenle, LFA bir ICAM bir etkileşimi, iki katmandaki ICAM bir yeniden düzenlemenin görüntülenmesiyle takip edilebilir, protein çift katmana yapışırken proteinin nikel yüklü çift tabakayı bağlaması için 30 dakika izin verir. Özel bir tabla eki kullanarak akış hücresini ters çevrilmiş mikroskoba sabitleyin.

Ardından, sistemin 37 santigrat derecede dengelenmesini sağlamak için ısıtma elektroniğini bağlayın. Akış hücresini, objektif çift katmanlardan biriyle hizalanacak şekilde konumlandırmak için daha önce yapılan işaretleri kullanın ve alan diyaframının yansıyan ışık görüntüsüne odaklanarak odak düzlemini bulmak için girişim yansıma mikroskobunu kullanın. Son olarak, bağlanmamış ICAM'ı akış hücrelerinden yıkayın.

Çim M ve geniş alan modlarında ICAM tek kanalında çift katmanın floresan görüntülerini elde edin. Bu, nikel içermeyen çift tabakaya göre nikel kaplı çift tabaka üzerinde ICAM bir bağlanmasını doğrulamak içindir. Akış hücresi artık hücreleri almaya hazırdır.

Bu gösteri için, bir retrovirüs ENC kaplama GFP'leri P zap 70 ile transdüksiyona uğramış bir ND T hücresi reseptörü transgenik T hücreleri kullanacağız, hücreleri bir kez H-B-S-H-S-A ile yıkayacağız ve daha sonra hücreleri Alexa 5 68 etiketli bir FAB ile T hücresi reseptörüne inkübe edeceğiz, böylece TCR mikro kümelerini izleyebiliriz. 15 dakika sonra, hücreleri bir ila 10 oranında seyreltin. Bu, H 57 antikorunu yeterince seyreltir, böylece çim M görüntülemesine müdahale etmez, ancak başlangıçta bağlı fab ayrışmaya başladığında T hücresi reseptörünün doygunluğunu korur, daha sonra bunları akış hücresine enjekte eder.

İmmünolojik sinapsı üç renkli çim M modunda görüntülüyoruz. Bu, LFA bir, ICAM bir etkileşimi, TCR kümelerinin ve C smac'ın oluşumunu ve GFP ZAP 70'i işe alan TCR mikro kümelerinin sürekli oluşumunu içerir. Bu sonuçlardan bazıları satın alma sırasında açıktır, diğerleri ise tam olarak takdir etmek için işlem sonrası analiz gerektirecektir.

Tamam, size immünolojik sinapsı incelemek için desteklenen düzlemsel çift katmanları nasıl kullanacağınızı gösterdik. Bu deneylerin işe yaraması için T hücrelerinin çok iyi durumda olması ve PPS tamponlu salin çözeltisinin uzun süreli T hücresi kültürü için çok fazla olmaması çok önemlidir. Yani hücreleri kültürden çıkarmak, onları bu ortama koymak ve sonra onları çok hızlı bir şekilde kullanmak istiyorsunuz.

Daha uzun vadeli deneyler yapmak istediğinizi fark ederseniz, o parça tamponlu salin yerine kullanabileceğiniz çok iyi serum içermeyen medya formülasyonları vardır. Sitokin üretimi veya T hücrelerinin çoğalması gibi daha uzun son uç nokta yapmak istiyorsanız, bu hücreleri çok daha uzun süre canlı tutacaktır. İşte bu kadar.

İzlediğiniz için teşekkürler ve deneylerinizde iyi şanslar.

Explore More Videos

İmmünoloji Sayı: 19 Yıllık Gözden Geçirme İmmünolojik Synapse Düzlemsel çift katlı lipit katmanını ICAM-1

Related Videos

Görüntülemede HIV-1 Zarf bağlı Virolojik Synapse ve Sentetik Lipid Bilayers üzerine Sinyal

11:45

Görüntülemede HIV-1 Zarf bağlı Virolojik Synapse ve Sentetik Lipid Bilayers üzerine Sinyal

Related Videos

12.4K Views

Desteklenen Düzlemsel Lipid Çift Katmanları ile T Hücresi Etkileşimini İncelemek İçin Bir İn Vitro Teknik

05:29

Desteklenen Düzlemsel Lipid Çift Katmanları ile T Hücresi Etkileşimini İncelemek İçin Bir İn Vitro Teknik

Related Videos

403 Views

Canlı Hücre Görüntüleme ile İmmünolojik Sinaps Topolojisinin Değerlendirilmesi

05:03

Canlı Hücre Görüntüleme ile İmmünolojik Sinaps Topolojisinin Değerlendirilmesi

Related Videos

351 Views

Bir Cam destekli Planar çift katlı lipid Doğal Öldürücü Hücre İmmünoloji Synapse Süper çözünürlüklü Görüntüleme

09:56

Bir Cam destekli Planar çift katlı lipid Doğal Öldürücü Hücre İmmünoloji Synapse Süper çözünürlüklü Görüntüleme

Related Videos

12.6K Views

Görüntüleme İmmünoloji Synapse Dynamics için bir Endotel Hücre Modeli Düzlemsel

09:25

Görüntüleme İmmünoloji Synapse Dynamics için bir Endotel Hücre Modeli Düzlemsel

Related Videos

9.1K Views

İnsan İmmünolojik Sinaps Görüntüleme

09:37

İnsan İmmünolojik Sinaps Görüntüleme

Related Videos

14.8K Views

T Hücreli İmmün Sinapsların Partikül Çıkışını İncelemek için Boncuk Destekli Lipid Bilayerlerin Hazırlanması

11:06

T Hücreli İmmün Sinapsların Partikül Çıkışını İncelemek için Boncuk Destekli Lipid Bilayerlerin Hazırlanması

Related Videos

4.5K Views

İmmünolojik Sinapslar ve Kinapse Eğitim Oluşumu için desteklenen Düzlemsel Bilayers

12:24

İmmünolojik Sinapslar ve Kinapse Eğitim Oluşumu için desteklenen Düzlemsel Bilayers

Related Videos

12 Views

Planar on Tek Molekül Floresans Mikroskopi bilayers Desteklenen

20:00

Planar on Tek Molekül Floresans Mikroskopi bilayers Desteklenen

Related Videos

14 Views

T Hücreli İmmün Sinapsların Partikül Çıkışını İncelemek için Boncuk Destekli Lipid Bilayerlerin Hazırlanması

11:06

T Hücreli İmmün Sinapsların Partikül Çıkışını İncelemek için Boncuk Destekli Lipid Bilayerlerin Hazırlanması

Related Videos

4 Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code