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기본 조직의 두 Thymidine의 Analogues의 Immunofluorescent 검색 (CldU 및 이두)

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Biology
 

Summary

우리는 세포 분열의 두 연속 라운드를 정할 성인 생쥐의 조직에 thymidine의 analogues의 연속 결합 (CldU과 이두)을 감지하는 전략을 파생합니다. 이 전략은 세포 수명이 긴 조직의 매상, 종양 발생 변형, 또는 교통 - 확장 세포를 감지하는 데 유용합니다.

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Tuttle, A. H., Rankin, M. M., Teta, M., Sartori, D. J., Stein, G. M., Kim, G. J., Virgilio, C., Granger, A., Zhou, D., Long, S. H., Schiffman, A. B., Kushner, J. A. Immunofluorescent Detection of Two Thymidine Analogues (CldU and IdU) in Primary Tissue. J. Vis. Exp. (46), e2166, doi:10.3791/2166 (2010).

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Abstract

세포 분열의 정확한 측정이 서서히 나누어 세포가 분석되면 점점 더 복잡해지는되어 실험 생물학의 근본적인 도전입니다. 세포 분열을 감지하기 위해 설립 방법은 세포 배양 등 carboxyfluorescein DI - aetate succinimidyl 에스테르 (CFSE) 같은 ki67 또는 PCNA와 같은 mitogenic 항원의 단백질 검출과 같은 중요한 염료의 희석하고, thymidine의 analogues 지속 현미경에 의해 직접적인 시각화를 포함합니다. Thymidine의 analogues는 tritiated thymidine, 브로모 - deoxyuridine (BrdU), 클로로 - deoxyuridine (CldU)와 iodo - deoxyuridine (이두)을위한 단백질 감지 및 ethinyl - deoxyuridine에 대한 화학 검출을위한 무선 감지를 포함한 다양한 방법에 의해 감지 수 있습니다 (이두). 우리는 성인 생쥐의 조직으로 다른 thymidine의 analogues의 연속 결합 (CldU과 이두)을 감지하는 전략을 파생합니다. 우리의 방법은 조사가 정확하게 세포 분열의 두 연속 라운드를 정할 수 있습니다. 최적화 immunostaining 프로토콜로 접근 시간이 연장 기간에 대한 마우스로 관리하는 안전한 식수를 통해 관리 매우 낮은 선량의 thymidine analogues를 검색할 수 있습니다. 따라서, 우리의 기술은 매우 긴 조직에서 세포 회전율을 감지하는 데 사용할 수 있습니다. 최적 immunofluoresent 얼룩 결과는 췌장, 피부, 뱃속, 간, 부신, testis, 난소, 갑상선, 림프절, 뇌를 포함한 여러 조직 유형에 형성될 수 있습니다. 우리는 또한 조직 내에 종양 발생 변환을 확인하려면이 기술을 적용했습니다. 우리는 더 이상 중계 - 확장의 세포 조직의 성장이나 갱신에 기여하는지 확인하기 위해이 기술을 적용했습니다. 이러한 의미에서, thymidine의 analogues의 연속 행정 조직 항상성에 관련된 세포의 기원과 생존을 공부에 대한 새로운 접근 방식을 나타냅니다.

Protocol

1. CldU과 이두와 라벨링 조직

  1. 물에 thymidine의 analogues을 (CldU 또는 이두) 디졸브. 각 화학 / 1mg ML을 무게와 증류수의 유리병을 별도로 추가할 수 있습니다. 우리는 일반적으로 한 번에 하나씩 각 1 리터 준비합니다.
  2. 저어 접시 또는 교반기의 다른 형태에있는 화학 물질을 디졸브. CldU 10 분 지나면 분해될 것이다. 실온에서 교반의. 이두는 37 선동의 시간 ° 통에 C 이상이 필요합니다. 워터 소스 이두의 용해도에 영향을 미칠 수있다. 이두가 밤새 떨고 후 일시 중지가 해제 남아있을 경우, 물 청소기 소스를보십시오. 솔루션은 4 어둠 속에서 ° C에 저장됩니다.
  3. 원하는 라벨 기간 동안 쥐를 가장 먼저 thymidine이 포함된 솔루션을 (CldU 또는 이두)를 관리할 수 있습니다. 마우스가 레이블의 레이블이 지정되지 않은 기간 동안 물에 대한 액세스 권한을 허용하지 않습니다. 지정된 라벨 시대가 완료되면 (thymidine이 포함된 analogues 몇 시간의 혈청 하프 생활을) 적어도 24 시간 동안 레이블이 지정되지 않은 물로 막가는을 시작합니다. 원하는 라벨 기간 동안 생쥐에 두 번째 thymidine이 포함된 솔루션을 (CldU 또는 이두)를 관리할 수 있습니다. 리필 물 병은 정기적으로 탈수 방지!
  4. 또는, 마우스는 CdlU 그리고 이두의 연속 intraperitoneal 주사로 분류하실 수 있습니다. 10mg / ML 농도에서 CldU이나 이두를 준비합니다. 이두는 정학에 가고 적극적으로 흔들어 다음 집중 수산화 나트륨 솔루션의 드롭 현명한 또한 필요할 수 있습니다. 초과 수산화 나트륨을 추가하지 마십시오. 이두의 10 ML 솔루션에 수산화 나트륨 한 방울 37 교반의 시간 다음 ° 통에 C를 추가합니다. 안 솔루션에 경우, 수산화 나트륨의 추가 반복합니다. intraperitoneal 우주로 g의 체중 당 100mcg를 주사.
  5. 제어 슬라이드는이 프로토콜에 대한 필수적입니다. 결과적으로, 우리는 강력하게 조사가 감도와 특이성을 보장하기 위해 thymidine의 아날로그 라벨의 여러 변형을 수행하는 것이 좋습니다. 이들은 1 포함되어야합니다. 단 CldU와 라벨이 붙지만 마우스 2. 단 이두와 라벨이 붙지만 마우스 3. 순차적으로 CldU 그리고 이두와 라벨이 붙지만 마우스 4. 순차적으로 이두 그리고 CldU 처음에 역순으로 표시되었습니다 쥐, 물만으로 표시 모의 아르 5 쥐. CldU과 이두와 라벨 학습 때, 조사는 항상 관심의 조직에서 제어 슬라이드의 모든 5 위의 세트와 함께 전체 프로토콜을 수행한다.

2. 조직 하베스트, 고정 및 슬라이드 준비

  1. 적절한 마취를 사용하여 치명적인 과다 복용을 수행하고 과다를 통해 마우스를 희생. 신선한 조직을 제거하고 24 시간 동안 4 4 % paraformalehyde ° C로 수정. 퍼가기 4에서 1시 4분 포르말린 버퍼와 저장 ° C로 조직을 전송합니다.
  2. 또는 치명적인 과다 복용을 수행하고 혈액이 신체에서 해결이 될 때까지 생리 식염수로 왼쪽 심장 심실을 통해 마우스를 perfuse; 후 즉시 4 % paraformaldehyde의 30-50 CC와 perfuse. 퍼가기 4 ° C에서 1시 4분 포르말린 버퍼에 대한 관심과 저장소의 조직을 제거합니다.
  3. 조직 탈수 및 파라핀의 포함 후, 5 미크론 조직 섹션 및 청구 슬라이드로 장소를 잘라. ° C 16시간에 대한 (아래 항원 검색 단계를 통해 필수) 슬라이드에 조직의 접착력을 보장하기 위해 65 슬라이드를 구워.

3. 탈수, Permeabilization 및 항원 불러오기

  1. 5 분 두 크실렌 욕탕에서 슬라이드를 immersing하여 여분의 파라핀을 제거합니다. 각.
  2. 100, 95, 90, 80 70 50 % 물로 희석 에탄올에 슬라이드를 immersing하여 조직을 Rehydrate. 3 분위한 슬라이드를 만끽해보세요. 각 농도에서 100 %로 시작하고 마지막 침수 50 %을 향해갑니다.
  3. 5 분 슬라이드를 씻으십시오. 1X PBS 인치
  4. 5 분 (신선한 때마다 만들어진)에 대한 0.2 % 트리톤 - X 솔루션에 슬라이드를 immersing하여 세포를 Permeabilize.
  5. 마이크 로파 조직 항원 검색을위한 슬라이드를 준비합니다. 솔루션 증발 손실 계정에 슬라이드의 맨 위에 5cm를 다루고 있도록 충분한 볼륨 0.01M 산도 6.0 나트륨 구연 산염 버퍼와 유리 비커에 슬라이드를 놓습니다.
  6. 솔루션 끓는 때까지 전자 레인지는 슬라이드 (30-10 분. 최대 전력으로). 솔루션은 서서히 끓는까지 전력을 절감 (10-80%)과 추가 20 분 동안 계속. 솔루션은 속도가 느린 종기로 유지하기 위해 정기적으로 전자 레인지를 확인합니다.
  7. 플레이스 비커는 벤치 위에 슬라이드가 포함된 부드럽게 실온 (약 2 시간)로 냉각 수 있습니다.
  8. 슬라이드가 온도계를 사용하여 실온에서 있는지 확인합니다.
  9. 40 분 대한 1.5N HCL에 몰두 슬라이드. 상온에서.
  10. 워시는 1X PBS, 5 분, 두 번 슬라이드. 세척 당.

4. 차 및 차 항체

  1. 슬라이드가 전체 프로토콜을 통해 매우 촉촉한 유지하는 것이 중요합니다. 드라이 조직 훨씬 더 자동 것입니다- 형광, 결과 이​​미지가 사용할 수 없게 만드는. 한 번에, 프로세스 슬라이드 죽어 방지하기 위해.
  2. (즉, 왁스) 펜을 차단 액체로 슬라이드에 서클 각 섹션을 참조하십시오. 1X PBS의 용기에 다시 슬라이드를 놓습니다.
  3. 서부 유럽 표준시 종이 타올을 배치하여 습기가 배양 챔버를 확인하는 것은 밀폐 플라스틱 용기의 바닥에 평평하게 하였다.
  4. 1X PBS에 희석 10 % 당나귀 혈청 차단 솔루션을 확인하십시오. 완전히 솔루션의 각 부분을 커버하는 것이 중요합니다. 1 X 1.5 cm 아르 조직 섹션, 섹션마다 솔루션의 50 마이크로 리터 부피 충분합니다.
  5. 슬라이드에 차단 솔루션을 추가합니다. 1X PBS에서 슬라이드를 제거하고 부드럽게 마른 종이 수건의 스택에있는 슬라이드 가장자리를 도청하여 여분 액체를 제거합니다. 플레이스 배양 챔버에서 슬라이드 각 섹션을 10 % 차단 솔루션을 50 마이크로 리터를 추가합니다. 모든 슬라이드는 1 시간 동안 실온에서 가까운 컨테이너와 부화를 완료하는 경우.
  6. 이두를 감지 차 항체 희석을 준비합니다. 1X PBS에서 만든 5% 당나귀 혈청에서 1:250 농도에서 마우스 방지 BrdU를 희석. 슬라이드에서 차단 솔루션을 누르과 배양 챔버에 다시 넣으십시오. 각 섹션에 위의 기본 항체를 추가하고 4 박 품어 ° C.
  7. 높은 엄중 세척을 (CldU 마우스 방지 BrdU의 antisera하여 바인딩을 최소화)을 준비합니다. (; 산도 8.0 36mM 트리스, 50mM NaCl, 0.5 % 트윈 - 20) 신선한 낮은 소금 TBST 버퍼를 확인합니다. 당신은 슬라이드의 쌍 당 버퍼 40 ML이 필요합니다. 각 50 ML 원뿔 관에 버퍼 40 ML을 추가합니다. 슬라이드를 추가하기 전에, 37에 앞서 열을 가하다 솔루션 ° C.
  8. 한 번에 두, 배양 챔버에서 슬라이드를 제거 (조직 샘플은 서로 떨어져 얼굴 있도록) 다시 - 투 - 다시 그들을 장소와 여분의 기본 항체를 누릅니다. 낮은 소금 TBST와 커버로 가득한 튜브에 슬라이드를 삽입합니다. 20 분위한 튜브를 선동. 37 온도와 박테리아 문화 배양기를 흔들어 ° C 및 225 RPM으로 설정 속도 인치
  9. 슬라이드에게 신선한 1X PBS로 두 번 씻으십시오. 5 분. 세척 당.
  10. 원하는 경우 CldU 및 조직 항원의 검출을 위해 다음 주 항체 솔루션을 준비합니다. 1X PBS에서 만든 5% 당나귀 혈청에서 1:250 농도에 쥐를 방지 BrdU를 희석. 기본 항체 용액으로 농도를 작업에 조직 항원에 대한 기본 antisera를 희석.
  11. 슬라이드 초과 1X PBS를 탭 및 배양 챔버에서 그들을 놓으십시오. 각 섹션에 기본 항체를 추가하고 4 박 품어 ° C.
  12. 슬라이드에게 신선한 1X PBS로 두 번 씻으십시오. 5 분. 세척 당.
  13. 보조 항체 솔루션을 준비합니다. Cy2 당나귀 방지 밀고 1:250와 Cy5 당나귀 방지 마우스 5 % 당나귀 혈청을 포함하는 1X PBS 솔루션 1:500로 희석. 조직 항원 antisera의 기본 종을 감지하기 위해 Cy3 보조 추가합니다. 또한, 보조 항체 용액에 1:150에 DAPI의 ML / 0.4mg 재고 솔루션을 희석.
  14. 배양 챔버에서 초과 1X PBS의에서 슬라이드와 장소를 누릅니다. 각 섹션 차 항체 솔루션을 추가하고 실온에서 1 시간 품어.
  15. 슬라이드에게 신선한 1X PBS로 두 번 씻으십시오. 5 분. 세척 당.
  16. 슬라이드 초과 1X PBS에서 탭과 골드 방지 페이드 설치 미디어 (dyanine 염료와 Vectashield를 사용하지 마십시오!) 연장과 커버 유리를 준수합니다. 공기 방울을 제거하기 위해 커버 전표를 누르십시오. 4 스토어 ° C.

5. 이미징 및 분석

  1. 높은 에너지 광원, 계획 - apochromatic 목표, 그리고 고효율 현미경 카메라 (예 : 하마 마츠 오르카 ER)이 장착된 형광 현미경으로 이미지의 관심 조직을. AMCA (DAPI), Cy2 (CldU), Cy3 (조직 항원)와 Cy5 (이두) 채널의 이미지를 캡처합니다. 단일 멀티 레이어 이미지 파일을 만들 이미지를 병합합니다.
  2. 올바르게 수행할 경우, DAPI 스테인드 핵은 homogeneously 밝은 것입니다. 조직 항원 (예 : 인슐린)의 관심 세포를 공개해야합니다. DAPI이나 조직 항원과 얼룩 제거 커버 슬립과 보조 antisera의 응용 프로그램을 반복 숙박 1X PBS에 약하거나 일관성, 슬라이드 젖어있다면.
  3. Cy3의 조직 항원에 중점을두고 있습니다. CldU와 채널 사이의 토글 Cy2와 Cy5 채널 이두의 얼룩을 확인합니다. 로 과도한 이두와 CldU 공동 양성로 표시 마커 사이에 잠재적인 상호 반응을 찾습니다. 단 CldU이나 이두를 포함하는 조직을 찾아보십시오. CldU 또는 이두 긍정적인 핵 부족 상표 또는 얼룩이있는 기술적인 문제를 나타낼 수 있습니다. 이 경우에는 매우 replicative 조직 (예 : 림프 노드)를 찾습니다.
  4. 이미지를 분석. DAPI 및 조직 항원을 포함하는 레이어를 표시합니다. 지배적인 손에 화이트 보드 마커와 비 지배적인 손으로 셀 카운터를 사용하여 건조 삭제 표시 (일명 화이트 보드 마커)과 대조 마르크 각 핵을 표시합니다. 관심 조직 내에서 DAPI 긍정적인 세포를 계산합니다. 전체 셀 개수를 기록합니다. 흔적을 제거하는 건조 지우개를 사용합니다. 표시 계층S 포함 DAPI, 조직 항원 및 CldU. 관심 조직 내에서 CldU 긍정적인 세포를 계산합니다. 기록 CldU 셀 카운트하지만 마르크를 삭제하지 않습니다. 변경 조직 항원, CldU과 이두를 포함하는 레이어를 시각화하는 표시됩니다. 카운트 CldU 이두 두 긍정적인 세포. 기록의 가치, 모든 흔적을 삭제하고, DAPI, 조직 항원과 이두를 포함하는 레이어를 표시합니다. 관심의 조직 내에서 이두 긍정적인 세포의 총 수를 계산합니다. 기록 이두 셀 개수.

6. 대표 결과

우리는 순차적으로 즉각적인 희생 뒤에 2 주 1 주일 후 이두에 대한 CldU와 6주 오래된 여성 생쥐를 표시. Pancreata는 CldU, 이두, 그리고 인슐린 (조직 항원)뿐만 아니라 DAPI를 감지할 수 스테인드했다. 아일 레츠는 균일하게 인슐린 물들일되었습니다. CldU 스테인드 핵은 이두 스테인드 핵 (그림 2)에서 뚜렷한되었습니다. 아일릿 이외의 많은 핵이 CldU 이두 공동 긍정적인 (그림 2, 오른쪽 아래, 흰색 화살표)되었습니다. 하나의 인슐린 양성 세포는 CldU 및 이두 (그림 2, 오른쪽 아래, 마젠타 화살표) 모두에 대한 핵 얼룩했다.

쥐. 마우스로 모든 실험은 필라델피아의 어린이 병원의 IACUC위원회의 지침에 따라 수행되었다. 여성 B6.129 F1 야생 형 생쥐는 필라델피아의 어린이 병원에서 실험 동물 시설에서 지내게 타코닉 (제르 뉴욕), 그리고 PMI 영양 국제 (Richmond. 인디애나)에서 공급 마우스 국회 5,015에서 구입한했다.

전략을 레이블. 이두 (이 계획에 빨간색으로 표시)와 CldU와 함께 첫 번째 세포 분열 이벤트 (이 계획에 녹색 표시)와 두 번째 세포 분열을 라벨로, CldU 및 이두 (녹색 / 적색) 모두 공동으로 표시된 전지 순차 세포 분열 결과 .

마우스 내에서 췌장 세포 회전율의 thymidine 라벨링 대표 발생합니다. 중앙에 langerhans의 아일릿와 마우스의 췌장 Immunofluorescent 이미지. 마우스는 즉각적인 희생하기 전에 식수 2 주 동안 일주 그리고 이두에 대한 CldU로 주입했다. 프로토콜에서 설명한대로 췌장 샘플 처리되었습니다. 층이와 40x 객관적인 이미지, 계산에 적합한 표시됩니다. 병합된 이미지 DAPI (흰색) CldU (녹색), 이두 (적색), 인슐린 (노란색)이 포함되어 있습니다. (상단, 왼쪽)과 인슐린 DAPI. (상단, 오른쪽) CldU과 인슐린. (하단, 왼쪽) 이두와 인슐린. (하단, 오른쪽) CldU, 이두, 그리고 인슐린. 스케일 바 : 100μm.

그림 1
그림 1. 라벨링 전략. 이두 (이 계획에 빨간색으로 표시)와 CldU와 함께 첫 번째 세포 분열 이벤트 (이 계획에 녹색 표시)와 두 번째 세포 분열을 라벨로, CldU 및 이두 (녹색 / 적색) 모두 공동으로 표시된 전지 순차 세포 분열 결과 .

그림 2
그림 2. 마우스 이내 췌장 세포 회전율의 thymidine 라벨의 대표 발생합니다. 중앙에 langerhans의 아일릿와 마우스의 췌장 Immunofluorescent 이미지. 마우스는 즉각적인 희생하기 전에 식수 2 주 동안 일주 그리고 이두에 대한 CldU로 주입했다. 프로토콜에서 설명한대로 췌장 샘플 처리되었습니다. 층이와 40x 객관적인 이미지, 계산에 적합한 표시됩니다. 병합된 이미지 DAPI (흰색) CldU (녹색), 이두 (적색), 인슐린 (노란색)이 포함되어 있습니다. (상단, 왼쪽)과 인슐린 DAPI. (상단, 오른쪽) CldU과 인슐린. (하단, 왼쪽) 이두와 인슐린. (하단, 오른쪽) CldU, 이두, 그리고 인슐린. 스케일 바 : 100μm.

Discussion

세포 회전율을 라벨에 thymidine 기반의 접근 방식에 대한 우리의 접근 방식은 생명 의학 연구에 많은 잠재적인 응용 프로그램을하고 있습니다. 지금까지 우리는 췌장에 집중해야하지만, 우리는 세포 피부의 매출, 뱃속, 간, 부신, 신장, testis, 난소, 갑상선, 림프절, 조혈 및 뇌 1 조사이 전략을 적용했습니다. 세포 회전율은 조직에서 조직 다양하기 때문에, 상표 전략은 이익의 기관에서 가장 뛰어난 정보를 얻을 정의해야합니다. 모리슨과 동료 일일 각각 조혈 2 라벨 위해 CldU과 이두를 사용합니다. 쿤과 동료 재생 myocardium 3 세포 분열을 감지하는 사일 각 CldU과 이두를 사용합니다. 반대로, 우리가 동물의 세 1,4-6과 같은 최소한의 세포 회전율과 췌장 아일 레츠 이내에 기저 세포 회전율, 조직을 라벨 총 9개월하는 CldU과 이두를 사용했습니다. 연구 조직의 항상성 내에서 세포 회전율을 정의하기위한 상표 전략의 가장 확실한 잠재적인 응용 프로그램입니다. 하지만 우리의 기술은 여러 가지 다른 가능성이 응용 프로그램을하고 있습니다. 예를 들어, 우리는 최근 증가 복제 초점 영역이 쉽게 CldU 또는 이두 5 증가 결합하여 식별할 수 조직 내에 종양 발생 변환을 식별하기 위해이 기술을 적용. 모리슨과 동료 일일 각각의 조혈 줄기 세포의 라벨 유지 행동 2 테스트하기위한 CldU과 이두를 사용합니다. 우리는 또한 대중 교통 - 확장의 세포가 조직 하나의 성장 또는 갱신에 기여하는지 확인하기 위해 순차 thymidine의 아날로그 라벨을 적용합니다. thymidine의 analogues이 응용 프로그램을 연속적인 행정 조직 항상성에 관련된 세포의 기원과 생존을 공부에 대한 새로운 접근 방식을 나타냅니다.

Thymidine의 analogues은주의없이 사용할 수 없습니다. 합성 thymidine의 analogues은 나누어 세포 잠재 toxicities을 가지고, 그들의 사용은 이론적으로 성장하는 동물 세포 회전율을 손상 수 있습니다. Thymidine의 analogues는 암 환자를위한 에이전트를 radiosensitizing로 사용되고 있고, 세포 회전율을 느리게 수 있습니다. 따라서 우리는 조심스럽게 관심을 자신의 조직에 잠재 toxicities에 대한 조사를 위해 조사를 촉구합니다. 예를 들어, Trumpp와 동료들은 체계적 BrdU는 조혈 줄기 세포는 세포주기 7 입력할 수 있으리란 걸 발견. 예를 들어, 러터와 동료 높은 선량의 thymidine analogues은 췌장 8 개발에 독성이있는 것으로 보여집니다. 최근 KineMed에서 Hellerstein와 동료, 병원은 BrdU 행정부가 독점적인 중수 라벨 기술 9를 사용 16~25%하여 내부 아일릿 확산을 느리게 것으로 나타났습니다. Hellerstein 및 동료에 의해 사용되는 전체 아일릿 준비 총 아일릿 준비 정도로 50 %를 구성하는 수 많은 다른 내분비 및 비 내분비 세포 유형을 포함. 그러나, 우리는 BrdU의 장기간 주입은 ki67 표현을 의한 측정으로, 젊은 성인 마우스의 베타 세포 증식에 영향을 미치지 않습니다 찾습니다. 마찬가지로, CldU 및 이두의 장기적인 관리는 베타 세포 대량 확장 1 손상하지 않는 것. 또한, 베타 세포 증식 속도는 시간과 단 몇 시간 (속도가 상당 기간에 정규화)을 표시 아르 생쥐의 오랜 기간 동안 BrdU으로 표시 생쥐 사이에 같습니다. 함께, 이러한 결과는 생쥐 안전하게 thymidine의 analogues의 장기 낮은 선량 관리를 용인할 수있는 것이 좋습니다. 아직도, 우리는 췌장 베타 세포의 성장에 thymidine analogues하여 잠재적인 독성을 배제할 수 없습니다. 결과적으로, 우리는 thymidine의 analogues와 마우스를 라벨링 때 컨트롤을 수행하고, 그러니 잘 다른 수사를 촉구하기 위해 계속합니다.

순차 thymidine의 아날로그 라벨 우리의 기술은 함정과 기술 도전없이는되지 않습니다. 결과적으로, 컨트롤 슬라이드 특히 중요합니다. 우리는 1 다양한 조직으로 이루어져 제어 슬라이드를 생성) 만 CldU와 라벨이 붙지만 마우스,.. 2)에만 이두와 라벨이 붙지만 마우스,. 3) 순차적으로 CldU 그리고 이두와 라벨이 붙지만 마우스,. 4) 순차적으로 이두 그리고 CldU 처음에 역순으로 표시되었습니다 쥐,. 물만으로 표시 모의 아르 5) 쥐. CldU과 이두와 라벨 학습 때, 조사는 항상 관심의 조직에서 슬라이드의 모든 5 위의 세트와 함께 전체 프로토콜을 수행한다.

CldU과 이두 사이에 약간의 교차 반응 모두의 thymidine analogues와 라벨에 불행하지만, 부득 이한 단점입니다. CldU과 이두 기술은 원래 종 (마우스 및 쥐)에 BrdU에 대한 파생되었다 antisera 사이에 동질성의 차이에 따라 달라집니다. 우리 프로토콜은 복잡하면서, 이러한 교차 반응을 최소화하도록 설계되었습니다. 따라서, 우리는 프로토콜의 단계 (들)을 빼먹는 고려 조사 중에주의를 촉구합니다. 특히, 우리는있다마우스 및 쥐 사이에 교차 반응 아르 보조 antisera 문제가 발생했습니다. 이것은 완전히 마우스와 쥐 사이에 상호 adsorbed 아르 잭슨 antisera의 사용으로 최소화하실 수 있습니다.

우리는 때때로 적절하게 thymidine 결합을 감지하기 위해 실패합니다. 이러한 경우에 그것은 시약 또는 단계가 작동되지 않은 결정하기 위해 긍정적인 제어 슬라이드를 사용하는 매우 중요합니다. 문제는 일반적으로 antisera, 드라이 슬라이드, 또는 불충 분한 핵 permeabilization의 나쁜 aliquots 예정이다. 우리는 성공적으로 이두와 태아를 개발 라벨에 실패했습니다. 따라서, 모든 조직은 이두로 투과 수 있습니다.

이중 thymidine의 아날로그 라벨에 대한 CldU와 이두에 대한 대안이 수평선에있다. 이두 (5 - ethinyl - 2 deoxyuridine) 구리 촉매를 클릭 화학 감지 10,11위한 기판 수 있습니다. 에듀 검출 방법의 DNA 가닥이 분리를 요구하고, 유동세포계측법의 12 분석하므로 매우 의무가 없습니다 않습니다. 이두는 BrdU 10과 반응을 교차 호환되지만되지 않습니다. 이두는 췌장 베타 세포 13 장 L 세포 14 표피 15 등 다양한 마우스 조직의 세포 회전율을 계량하는 데 사용되었습니다. 에듀 순간 (500mg 당 천달러 미국)에 매우 비싼입니다. 하지만, 에듀 감지 훨씬 더 민감한 BrdU 검출 10 개 것 같습니다. 그러므로, 그것은 대신 CldU 및 이두의 이두와 BrdU을 결합하기 위해 경제적으로 가능 수 있습니다. 이 방법은 또한 triply 에듀, CldU, 그리고 이두에 대한 표시 마우스에서 세포 분열의 세 가지 다른 라운드의 감지를 허용 있습니다.

요약, 순차 thymidine의 아날로그 라벨 우리의 기술은 세포 회전율을 검출하는 새로운 접근 방식입니다. 우리는 우리의 접근 방식이 더 정확하게 세포 분열을 계량 다른 과학자들을 수 있도록 희망하고 조직 항상성의 새로운 패러다임을 열 것으로 기대합니다.

Disclosures

마우스로 모든 실험은 기관 애니멀 케어 및 사용위원회 (IACUC)의 지침에 따라 필라델피아의 어린이 병원에서 동물 시설에서 수행되었다.

Acknowledgments

JDRF, NIH (R01 - DK081469), 펜실베니아의 연방 (재생 의료 부여 4100043362에있는 우수를위한 센터), 천의 월 (바실 오코너 초보 학술 연구 수상), 그리고 펜실베니아 DERC 조종사의 대학 지원 및 타당성 부여 (DK19525).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
5-chloro-2-deoxyuridine (CldU) MP Biomedicals 0210547891
5-Iodo-2-deoxyuridine (IdU) MP Biomedicals 0210035701
4% Paraformaldehyde USB Corp., Affymetrix 19943
10% Buffered Formalin Fisher Scientific 23-427-098
XYLENES VWR international EM-XX0060-4
Ethanol, Anhydrous (Histological) Fisher Scientific A405P-4
PBS, 10X Powder Concentrate Fisher Scientific BP665-1
Triton –X-100 Fisher Scientific BP151-500
Hydrochloric Acid VWR international BDH3028-2.5LG
Normal Donkey Serum Jackson ImmunoResearch 017-000-121
Mouse Anti BrdU BD Biosciences 347580
Rat mab anti BrdU Accurate Chemical & Scientific Corporation OBT0030
Cy2 donkey anti-rat Jackson ImmunoResearch 712-225-153 Fully adsorbed secondaries from Jackson (minimal cross reactivity).
Cy5 donkey anti-mouse Jackson ImmunoResearch 715-175-151 See above
Glass Cover Slips Sigma-Aldrich C9056-1CS
YFP Filter Chroma Technology Corp. 49003 ET EYFP Reduces auto-fluorescence in Cy2 channel
Cy3 Filter Chroma Technology Corp. 49004 ET Cy3
Cy5 Filter Chroma Technology Corp. 49006 ET Cy5
ORCA ER Microscope Camera Hamamatsu Corp. C4742-95-12ER Excellent detection of fluorophores
ProLong Gold antifade reagent Invitrogen P36930 Do not use Vectashield (toxic to cyanine dyes).

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References

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Comments

1 Comment

  1. Very detailed and well explained. Found it very useful to plan my experiments.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    July 25, 2011 - 10:48 AM

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