מיקרו-Iontophoresis מהיר של גלוטמט וגאבא: כלי שימושי לחקירת האינטגרציה סינפטית

Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

במאמר זה אנו מציגים מייקר Iontophoresis המהיר של נוירוטרנסמיטורים כטכניקה לחקור אינטגרציה של אותות postsynaptic עם דיוק מרחב ובזמן.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Müller, C., Remy, S. Fast Micro-iontophoresis of Glutamate and GABA: A Useful Tool to Investigate Synaptic Integration. J. Vis. Exp. (77), e50701, doi:10.3791/50701 (2013).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

אחד מהאינטרסים הבסיסיים במדעי המוח הוא להבין את האינטגרציה של תשומות מעוררות ומעכבות לאורך המבנה המורכב מאוד של העץ הדנדריטי, שסופו של דבר מוביל לפלט עצבי של פוטנציאל פעולה באקסון. ההשפעה של פרמטרים מרחב ובזמן שונים של קלט סינפטי ספציפי על פלט עצבי היא כעת תחת חקירה, למשל הנחתה מרחק תלויה בתשומות דנדריטים, האינטראקציה מיקום תלויה של מרחבית כניסות נפרדות, את ההשפעה של עיכוב GABAergig על שילוב מעורר, ליניארי ומצבים שאינם ליניארי אינטגרציה, ועוד רבים.

עם מיקרו Iontophoresis המהיר של גלוטמט וגאבא ניתן לחקור את האינטגרציה מרחב ובזמן של עירור ועיכוב glutamatergic GABAergic בדיוק. דרישות טכניות קריטיות הם או מנורת ניאון triggered, דיודה פולטת אור (LED), או SCA שני פוטוניםnning מיקרוסקופ כדי להמחיש סניפים דנדריטים ללא החדרת צילום נזק משמעותי של הרקמה. יתר על כן, זה מאוד חשוב שיהיה מגבר המייקר Iontophoresis המאפשר לפיצוי קיבול מהיר של pipettes עמידות גבוהה. הדבר חשוב נוסף הוא שלא משדר הוא שוחרר אופן לא רצוני על ידי טפטפת במהלך הניסוי.

ברגע שהוקם, טכניקה זו תיתן איתות אמינה לשחזור עם הנוירוטרנסמיטר גבוה וסגוליות מיקום. בהשוואה לגלוטמט ומשחררות רפרוף גאבא, Iontophoresis המהיר מאפשר שימוש בשתי המשדרים באותו הזמן, אבל במקומות רחוקים מאוד וללא הגבלה לשדה הראייה. יש גם יתרונות בהשוואה לגירוי חשמלי מוקדי של אקסונים: עם מיקרו Iontophoresis מיקומו של אתר הקלט בהחלט ידוע וזה בטוח שרק מוליך עצבי של עניין הוא שוחרר. עם זאת יש בו כדי להיחשב שעם מיקרו Iontophoresis בלבדpostsynapse מופעל והיבטי presynaptic של שחרור הנוירוטרנסמיטר לא נפתרו. במאמר זה אנו מדגימים כיצד להגדיר את מיקרו Iontophoresis בניסויי פרוסת מוח.

Introduction

תאי עצב במערכת העצבים המרכזית מקבלים מגוון של תשומות הסינפטי על התהליכים דנדריטים 1 הדקים ומסועפים שלהם. שם, מרבית התשומות דנדריטים המעוררות מתווכים על ידי סינפסות glutamatergic. יכולות להיות מופעלות סינפסות אלה בדרך מופצת מרחבית, וכתוצאה משילוב של פוטנציאל לינארי postsynaptic postsynaptic מעוררים (EPSPs). אם הסינפסות מופעלות בו זמנית ובקרבת מרחבי בדנדריט, ניתן לשלב תשומות מעוררות אלה הנ"ל ליניארי ולייצר 2-5 קוצים הדנדריטים.

יתר על כן, האינטגרציה של תשומות מעוררות תלויה במיקום של הקלט על העץ הדנדריטי. אותות המגיעים לאזור ציצה הדיסטלי הם הרבה יותר מוחלש מתשומות הפרוקסימלי בשל כבל סינון 6. בהיפוקמפוס, תשומות רחוקות לדנדריטים ציצת ​​שיער apical נוצרות על ידי אזור במוח שונה מאלה על dendri הפרוקסימליTES 7. שאלה מרגשת היא אפוא, כיצד קלט הסינפטי מעובד על ידי תאי דנדריטים שונים ואם שילוב הדנדריטים מסדיר את ההשפעה של תשומות שכבות אלה על ירי עצבי בדרכים שונות.

לא רק את המאפיינים התפקודיים, תכונות מורפולוגיות של דנדריט, המיקום והקיבוץ באשכול של התשומות המשפיעים על האינטגרציה הדנדריטים של תשומות מעוררות, גם את התשומות המעכבות נוספות ממסופי GABAergic מכריע לקבוע את היעילות של סינפסות glutamatergic 8,9. היבטים שונים של אינטגרציה הסינפטי יכולים להיחקר באופן אידיאלי באמצעות מוליך עצבי המייקר Iontophoresis, המאפשר יישום מוגדר מרחבית של נוירוטרנסמיטורים שונים לתחומים דנדריטים. כאן אנו מדגימים כיצד להקים מייקר Iontophoresis של גלוטמט וגאבא הצלחה לחקור אינטגרציה אות בתאי עצב.

ליישום זה, קנס שקצהוpipettes עמידות גבוהה מלאים בפתרונות הנוירוטרנסמיטר מרוכזים משמשים. pipettes אלה ממוקמים קרוב לקרום החיצוני של התא, שבו לקולטנים העצביים נמצאים. הדמיה טובה של הענפים הדנדריטים נדרש. זו מושגת הטובה ביותר באמצעות צבעי ניאון, אשר הציגו באמצעות פיפטה את התיקון. לאחר מכן דופק קצר מאוד (<1 אלפיות השנייה) נוכחי (בטווח של 10-100 Na) משמש כדי להוציא את מולקולות מוליך העצבי הטעונות. עם פולסים קצרים אלה ופיצויים קיבול אפקטיביים, יכולים להיות התעוררות פוטנציאלים או זרמי postsynaptic עם דיוק זמן ומרחב גבוה, מה שאומר שהמיקום של הקלט מעורר ידוע במדויק. גלוטמט מייקר Iontophoresis יכול להפעיל סינפסות ברדיוס מוגדר, שהוא קטן מ 6 מיקרומטר כפי שמוצג כאן (איור 1 9), אבל זה אפשרי גם להגיע לרזולוצית סינפסה אחת 10-12.

היינה, מ ', ואח' 13. עם מיקרו Iontophoresis מהר זה בקלות ניתן להשתמש בשתיים או יותר pipettes iontophoretic ולמקם אותם במקומות שונים, אפילו מרוחקים על העץ הדנדריטי. בדרך זו, יכולה להיחקר אינטגרציה של אירועים מעוררים, כוללים אלה ממסלולים שונים,. כמו כן ניתן להשתמש גלוטמט ופיפטה iontophoretic מלא GABA באותו הזמן. בדרך זו ניתן ללמוד את ההשפעה של עיכוב GABAergic במקומות שונים ביחס לקלט מעורר (בנתיב, עיכוב מחוץ לנתיב). כמו כן, ההשפעה של עיכוב על ידי interneurons מיקוד תחומים עצביים ספציפיים, כמו דנדריטים דיסטלי, סומה או אקסונים 14, ניתן לחקור באמצעות Iontophoresis GABA. בנוירונים בתרבית, מיקרו Iontophoresis המהיר מציע את ההזדמנות כדי investigate הפצת סינפסה אחת ואת ההיבטים הבסיסיים של תקשורת הסינפטית בתאי עצב בפירוט רב יותר 10,11.

במאמר זה אנו מדגימים בפירוט כיצד להקים Iontophoresis גלוטמט וגאבא לשימוש בפרוסות המוח חריף, המאפשר חקירת אינטגרציה הסינפטי של תשומות מעוררות ומעכבות בתלות במיקום קלט, את נקודות החוזק של קלט, ועיתוי, לבד או ביחסי גומלין. אנו להצביע על יתרונות ומגבלות של טכניקה זו וכיצד לפתור בעיות בהצלחה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. דרישות מערכת

  1. מערכת מיקרוסקופ: ראיה טובה של דנדריט היא קריטית. אם זמין, להשתמש במערכת מיקרוסקופ שני פוטונים סריקת לייזר. בניסויים שלנו השתמשנו בהיקף TRIM השני, LaVision BIOTEC, בילפלד, גרמניה או רביעי מערכת אולטימה, ערבה טכנולוגיות, מידלטון, ויסקונסין מצויד טי: ספיר ultrafast פעם לייזר (זיקית Ultra II, קוהרנטית) ואובייקטיבי NA גבוה (60x, 0.9 NA, אולימפוס) כדי להמחיש את דנדריטים שהיינו מלאים בצבע פלואורסצנטי באמצעות פיפטה את התיקון. למרות שהוא חשב שצילום נזק כפחות חמור באמצעות סריקת 2 פוטונים, להפחית את כוח לייזר (להלן 8 מגה ואט ברקמות) וישב פעמים (להלן 1 μsec) או עד כמה שניתן.
  2. אפשרות שנייה היא להפעלת מקור אור פלואורסצנטי שדה רחב (LED או מנורת ניאון) סינכרוני עם רכישה כדי לצמצם את זמן חשיפה עד כמה שניתן. יש לנו להשתמש monochromator עם מקור אור משולב (TILLPhoטוניק, Gräfelfing, גרמניה) על מיקרוסקופ Zeiss Axioskop 2 FS זקוף שהיה מצויד בתאורת אינפרא אדום Dodt ניגודיות (TILLPhotonics, Grafelfing, גרמניה). בניסויים שלנו זמני חשיפה בדרך כלל נע בין 10 אלפיות השני למקסימום. 30 אלפיות השניים.
  3. השתמש במגבר המייקר Iontophoresis מהיר, למשל מערכת מיקרו Iontophoresis שני ערוצי MVCS-C-02 (NPI אלקטרוני, תם, גרמניה) עם פיצוי קיבול מהר. יש את microelectrodes Iontophoresis קנס שקצהו התנגדויות של 25-100 MΩ (מכריע בהתאם לגודל וצורת טיפ פיפטה), וניתן להשיג זמני עלייה מהירים רק אם פיצוי הקיבול של מגבר iontophoretic הוא מכוון בצורה אופטימלית. פיצוי מהיר זה יש צורך ליישם פולסים הנוכחי עם הופעה קצרה ומהירה במגוון תת אלפית השנייה לפיפטה iontophoretic ובכך להוציא את המשדר עם רזולוציה מרחבית גבוהה בגדלים ספוט מתחת 1 מיקרומטר 13. מגברי Iontophoresis הם אלכל כך זמין ממספר חברות אחרות, דבר שלא נבדקו במעבדה שלנו. מכשירים אלו הם לידיעתנו אינה מצוידת במעגלי פיצוי קיבול.

2. הכן את פתרונות

  1. הכן מלאכותי נוזל השדרתי (ACSF) ופתרון פנימי כפי שהוא נדרש לתכנון הניסוי. התוספת היחידה לפתרון הפנימי, אשר נדרש, היא צבע פלואורסצנטי אדום או ירוק (לדוגמא מיקרומטר 50 ל 200 אלקסה פלואוריד 488 או 594 hydrazide, Invitrogen), תלוי בציוד האופטי. הנה דוגמה לסוכרוז ACSF אשר יכול לשמש לנתיחה, במ"מ: 60 NaCl, 100 סוכרוז, 2.5 KCl, 1.25 אא 2 PO 4, 26 NaHCO 3, 1 CaCl 2, 5 MgCl 2, 20 גלוקוז; ולACSF הנורמלי פתרון לניסויי תיקון-מהדק במ"מ: 125 NaCl, KCl 3, 1.25 אא 2 PO 4, 26 NaHCO 3, 2.6 CaCl 2, 1.3 MgCl 2, 15 גלוקוז.
  2. Carbogenize (95% 2 O, 5% CO 2) כל הזמן את כל פתרונות תאיים.
  3. הכן את הפתרון פנימי, למשל, במ"מ: 140 K-גלוקונאט, 7 KCl, 5 HEPES החומצה, 0.5 MgCl 2, 5 Phosphocreatine, 0.16 EGTA; עם 50-200 מיקרומטר אלקסה 488.
  4. לגלוטמט מייקר Iontophoresis להכין פתרון עם 150 חומצה גלוטמית מ"מ ולהתאים את ה-pH 7.0 עם NaOH. הוסף מיקרומטר 50 -200 אלקסה פלואוריד 488 או 594 hydrazide (Invitrogen) להדמיה.
  5. לIontophoresis של GABA להכין פתרון 1 M GABA ולהתאים את ה-pH ל 5 עם HCl 15. ב-pH GABA זו נזקפת, ורק אז הוא יכול להיות מיושם באמצעות Iontophoresis. יש לציין כי ה-pH הנמוך בפתרון נפלט למרחב תאי עשוי להשפיע על השידור עצמו 16,17 GABA.
    הגן על פתרון GABA מאור ולעתים קרובות להכין פתרון מניות GABA טרי, שכן פתרון מבוגר יכול לאבד את האפקטיביות שלה.
  6. אם קשה לראות את אירועי GABAergic, hiGH Cl - הפתרון פנימי הנהיגה כוח, למשל על ידי משמיט KCl, עשוי לעזור כדי להמחיש את אירועי GABAergic כדי לראות אם הוא עובד Iontophoresis GABA, אך כדי לחקור אינטגרציה הסינפטי כוח מניע פיסיולוגי עשוי להיות מומלץ. לגילוי כללי של אירועי GABAergic קטנים, פרוטוקול שמוצג באיור 8C יכול לעזור.

3. משוך ולבדוק את Pipettes Iontophoresis

  1. באופן כללי, מושך את pipettes הנכון הוא אולי השלב הקריטי ביותר כדי להשיג Iontophoresis הנוירוטרנסמיטר המבוקר. בעת השימוש בIontophoresis בתרבית תאים, ניתן למשוך דומות לחד microelectrodes 10 אלקטרודות עדינות מאוד. בניסויי תיקון-מהדק בפרוסות חריפות, לעומת זאת, pipettes דק מאוד אלה לכופף על פני השטח פרוס כאשר הם הורידו לתוך הרקמה עם זווית, מה שהופך את זה בלתי אפשרי להגיע לדנדריטים עמוקים יותר.
  2. לכן, למשוך את פיפטה עם טיפ קטן מאוד, כך שאף neurotransmitter יכול לדלוף החוצה, אבל הטיפ צריך להיות עדיין נוקשה מספיק כדי לחדור לתוך הרקמה (איור 2). לדוגמה, השתמש 150 GB F 8P pipettes ייצוגית (מדע מוצרים, Hofheim, גרמניה) וחולץ אופקי (לדוגמא DMZ-יוניברסל פולר, Zeitz-מכשירי GmbH, Martinsried, גרמניה; או פולר P-97, Instrument חברת סאטר , Novato, קליפורניה) עם כמה מדרגות, מושכים כדי להשיג פתח קטן, אלא גם טאפר קצר עם זווית חדה (איור 2 וטבלה 2).
  3. כמו כן ניתן להשתמש pipettes זכוכית קוורץ למשוך pipettes iontophoretic 10. אלה אמורים להיות תכונות מכאניות טובים יותר ולהיות אמינים יותר, אך מושכי לייזר מיוחדים נדרשים. אבל אפשר גם להגיע לתוצאות טובות עם pipettes הזכוכית רגיל, המשמשים בדרך כלל למשייכת pipettes תיקון.
  4. לבדוק את ביצועי פיפטה והתנגדות בתא ללא רקמות, לפני השימוש בהם בפעם הראשונהזמן, שכן דליפה של גלוטמט עלול לפגוע ברקמות.
  5. הגדר את מגבר Iontophoresis בצורה נכונה. ואז למלא את פיפטה עם תמיסה המכילה צבע מוליך עצבי ולמקם אותו לתוך האמבטיה (ACSF).
  6. לפצות את הקיבול (איור 3). בדרך כלל pipettes החדים מאוד יהיה לי קיבול גבוה יותר מאשר בוטים אלה.
  7. בדקו את ההתנגדות של פיפטה: יש מגבר המייקר Iontophoresis משמש כאן לבנות בתכונה למדידת התנגדות פיפטה. זה מעורר פולסים מלבניים בדיקה קצרה, שיכול להיות במעקב עם אוסצילוסקופ רגיל או חיבור למחשב עם תוכנת רכישת לוח / D. בהתאם לצורה ואת גודל הקצה, הקצה צריך להיות התנגדות בין 25-90 MΩ.
  8. פוקוס על הקצה עם מטרת טבילה במים 60x או 40X ולעבור להדמית ניאון ואם אפשר, להתקרב אליו אם דליפות צבע ניאון מקצה פיפטה, להחיל חיובי קטן (במקרה של Glutamate) או שלילי (במקרה של GABA, איור 4) לשמר נוכחי (<0.02 μA). אם זה לא עוזר לבטל את הדליפה, לשנות את פיפטה.
  9. החל נוכחי צעד חזק או שימוש על ההדק הידני ולנטר את הקצה בתמונה הניאון כדי לראות אם יכול להיפלט אל מחוץ לפיפטה הפתרון. כאמור לעיל, את הקוטביות של הדופק הנוכחי בהתאם לתשלום של המולקולה שאמורה להיפלט. כדי להוציא אותו גלוטמט הוא זרם שלילי ולגאבא נוכחי חיובי (איור 4).
  10. בועות אוויר בפיפטה שפליטת הבלוק של צבע ומשדר, יכולה להיות מסומנת על ידי החלת פליטה גבוהה מספר פעמים הנוכחיות.
  11. יחדיו, אם אין דליפה גלויה ופליטת מבחן הייתה מוצלחת, לפצות את הקיבול ולהתחיל את הניסוי.
  12. זהירות: מאחר שפיצוי הקיבול מושגת על ידי מעגל משוב, מעגל זה יכול להחטיא את המטרה או להתנדנד אם הוא overcompensated. בעדינות להשתמש בהגדרת החיוג לפיצוי קיבול.
  13. בהתאם ליציבות חולץ לפעמים יש צורך להתאים את ההגדרות חולץ מהעת לעת, שכן נימה אולי השתנתה מאפיינים. עם זאת, אם פעם אחת פיפטה טובה מיועדת, ניתן להשתמש בו במשך כמה ימים. לפיכך, לאחר שסיים את הניסוי לאחסן פיפטה iontophoretic במכל סגור ללא פגיעה בקצה.
  14. לניסוי הבא למלא את פיפטה עם פתרון הנוירוטרנסמיטר, להחיל כמה פולסים הוציאו חזקים כדי לנקות את הקצה ולאחר מכן לבדוק אם המאפיינים (לדוגמא התנגדות) שינוי באופן משמעותי. לאחר מכן לפצות את הקיבול ולהשתמש בפיפטה שוב. אין להשתמש בפיפטה יחידה עם פתרונות הנוירוטרנסמיטר שונים.

4. הכן את פרוסות המוח

  1. אם מיקרו Iontophoresis משמש בפעם הראשונה בהחלט להכין את הפרוסות לאחר הקמת תכנית חולץ מהימן עובדת.
  2. <נהלי p> לבצע הרדמה ועריפת ראש בהתאם להנחיות הטיפול בבעלי החיים של המוסד שלך או הרשות המקומית.
  3. לאחר סילוקו של המוח, להעביר אותו לקרח סוכרוז ACSF הקר (ראה פרוטוקול 2.1).
  4. לחתוך את האזור של עניין לפרוסות בעובי המתאים (לדוגמה 300 מיקרומטר).
  5. דגירה את הפרוסות בסוכרוז ACSF על 35 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. כתוצאה מכך, להעביר אותם לתא המכיל החזקה שקועה ACSF הרגיל בטמפרטורת חדר.
  6. לאורך כל ההכנה וניסוי carbogenize ACSF מקיף את הפרוסות עם 95% 2 O, 5% CO 2.

5. להקים הקלטה כל תא

  1. מקם את פיפטה Iontophoresis (ים) כבר קרוב לפני השטח פרוס לפני תיקון תא, כדי להימנע ממיצוב לטווח ארוך, לאחר קביעת המצב כל התא.
  2. משוך התנגדות נמוכה תיקון פיפטה (3 - mΩ 5), למלא אותו עם דאתם מכילים פתרון פנימי ולהפעיל לחץ חיובי לפיפטה (30 - 60 mbar).
  3. הזן את האמבטיה וגישה לתא תחת הדרכה חזותית (ניגוד dodt אינפרא אדום או שתיים תמונת ניגוד שיפוע פוטון).
  4. לפקח על התנגדות פיפטה עם דופק בדיקה (למשל -10 mV, 20 אלפיות שני) במצב מהדק מתח. כשנוגע ברקמה לתקן את הפוטנציאל לקזז.
  5. מתקרב לתא ודחף בעדינות את קצה פיפטה לתוכו עד "גומה" ניתן לראות בבירור. מייד לשחרר את הלחץ של פיפטה, להחיל 40 - לחץ שלילי mbar 60 ולעבור את פוטנציאל הממברנה ל-65 mV.
  6. כשמגיע הנוכחיים מחזיק ערכים מתחת 100 הרשות הפלסטינית, תשחרר את הלחץ השלילי.
  7. לאחר הקמת חותם גיגה (התנגדות> 1 GΩ), קרע הקרום עם שאיבה קצרה, חזקה לפיפטה או פיצוי יתר קצר של מעגל פיצוי הקיבול.
  8. תלוי באיזה מצב (מהדק מתח או נוכחי) נדרשלתכנון הניסוי, לפצות כראוי.
  9. התחל להביא פיפטה iontophoretic לעמדתו הסופית. אם יש צורך בתיאור מפורט יותר של כיצד לבצע בהצלחה הקלטות מהדק תיקון, ישנם מספר קווים מנחים מצוינים זמין 18,19.

6. הנח את פיפטה iontophoretic וליצור פוטנציאל iontophoretic postsynaptic

  1. באופן כללי, ניתן עוררו אירועי iontophoretic במקומות מוגדרים, בהתאם לניסוי הרצוי, למשל, בדנדריט קוצני למייקרו Iontophoresis גלוטמט, בפיר הדנדריטים, סומה, או קטע ראשוני האקסון לגאבא מייקר Iontophoresis.
  2. מתקרב עד התא למרחק כ 1 מיקרומטר מבלי לגעת בו. לאחר שהגיע לעמדתו של עניין זה קריטי, כי אין הנוירוטרנסמיטר דולף החוצה, וכי קיבול פיפטה הוא פיצוי בצורה נכונה.
  3. אם מתקרב לתא עם גלוטמט מלא pipett iontophoreticהדואר גורם לשלילת קוטביות זיהוי של פוטנציאל הממברנה, להתאים לשמר נוכחי אם אפשר, או לשנות את פיפטה.
  4. החל פולסים הנוכחי שלילי קצר, מתחיל מאפס ולהגביר את הזרם באופן שיטתי (למשל 0.1-0.4 אלפיות שני, 0.01-1 μA פולסים). זה עוזר כדי לגלות שבטווח הנוכחי iontophoretic מעורר את התגובות הרצויות בניסוי ספציפי ההגדרה.
  5. במידה ואין תגובה לגילוי, להרים את כמה מאה מיקרומטרים טפטפו ולהחיל נוכחי השליפה חזקה (> 0.1 μA) כדי לנקות את הקצה. התאם את פיצוי הקיבול, מתקרב לתא, ונסה שוב.
  6. אם עדיין אין תשובה, להפחית לשמר נוכחי. להיות מאוד זהיר עם הגדרות החיוג מאז הליך זה יכול לגרום לשחרור הנוירוטרנסמיטר בלתי מבוקר. לכן, כל הזמן לפקח על הקלטת כדי לזהות שינויים המתאימים בפוטנציאל הממברנה.
  7. אם קשה לזהות אירועי GABAergic, זה יכול להיות מועיל כדי להשתמשn הרכב פתרון פנימי מניב בCl גבוה - כוח מניע. כדי להשיג זאת, להפחית את Cl - ריכוז בפתרון פיפטה (ראה סעיף 2.6 פרוטוקול.). זה יגרום אירועי GABAergic גדולים יותר בפוטנציאל הממברנה מנוחה בשל כוח מניע גבוה יותר.
  8. לחלופין, להזריק שלבים הנוכחיים ארוכים וכתוצאה מכך סיכויי פוטנציאל הממברנה מ-100 mV ל -48 mV (8C איור). עם פרוטוקול זה Cl - כוח מניע הוא גדל בפוטנציאלי hyperpolarized גורמים לתגובת GABA depolarizing.
  9. כמו כן ניתן להשתמש בפרוטוקול ההזרקה הנוכחי הצעד כדי לקבוע את פוטנציאל ההיפוך של האירועים עוררו, אשר מסייע לקבוע את אופי GABAergic של האירועים. הזליגה של GABA היא קשה יותר לזיהוי מאשר דליפה של גלוטמט. במקרה זה, ניטור מתמיד של התנגדות הקלט יכול לעזור, כאשר טפטפת מלא GABA הוא התקרב. אם התנגדות הכניסה יורדת, לשמור נוכחית יכול bהדואר מוגבר או יש להשתמש פיפטה שונה.
  10. כניסויי בקרה לIontophoresis גלוטמט, אנו מציעים Ca 2 + ניסוי הדמיה, באמצעות 200 מיקרומטר OGB-1 ולא EGTA בפתרון פיפטה לדמיין זרימת סידן מקומית שעלול להיגרם כתוצאה מדליפת גלוטמט.
  11. באופן כללי, כדי להשיג תגובה יציבה שזה מאוד חשוב שתהיה יציב מכאני פיפטה כדי למנוע סחיפה לאורך זמן. הסחף יכול להיגרם על ידי שינויי טמפרטורה, ולכן מומלץ לעבור על הציוד לפחות חצי שעה לפני המדידות כדי למנוע סחיפה תרמית. הקפד להשתמש בחותמות דיו טובות בבעל פיפטה והקצה הוא באמת קבוע. בעל עצמו יכול להיות קבוע בנוסף עם סרט טפלון, יתר על כן, כדי להיות בטוח שאין מתח על הכבלים מheadstage או מניפולטור, שגם הוא מקור פוטנציאלי של סחיפה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

גישה פשוטה כדי לקבוע את ההתפשטות המרחבית של Iontophoresis היא לחזור בי פיפטה iontophoretic השלבים מדנדריט, תוך שמירה על גלוטמט נפלט מתמיד. מצאנו כי ההיקף המרחבי של גירוי מייקר iontophoretic היה בקוטר של כ 12 מיקרומטר (איור 1 מראה רדיוס). כמה עמוק ברקמות יכול לשמש Iontophoresis תלוי בקשיחות של פיפטה. עם זאת, את pipettes iontophoretic הדרוש לניסויים בפרוסות (איור 2), המשמשים כאן, לא מגביל את עומק החדירה. במקום זאת המערכת האופטית והרזולוציה יורדת בעומק של פרוסת המוח היא הגורם המגביל. להקלטה באיכות טובה זה קריטי שאין המשדר דולף החוצה של פיפטה. במקרה של גלוטמט, ניתן לזהות דליפה אם יש depolarisation פתאומי כאשר דנדריט הוא התקרב עם קצה פיפטה או אם הבסיס הופך פתאוםלא יציב (איור 5). לאחר הקמת הקלטה יציבה, ניתן לעורר EPSPs של אמפליטודות מוגדרת, דוקרנים דנדריטים או פוטנציאלי פעולה עם טכניקה זו בכל מקום ברחבי עץ הדנדריטים (איור 6). על ידי יישום גלוטמט עם מיקרו Iontophoresis מהיר, את המאפיינים של EPSPs, ההתפשטות והסיכום שלהם, בו זמנית במקומות שונים אפילו רחוקים, יכולים להיחקר (איור 7). ניתן עוררו אירועי GABAergic לבד או בנוסף לגלוטמט עם טפטפת שני על ידי מילוי פיפטה iontophoretic עם פתרון GABA מרוכז מאוד (ראה: פרוטוקול סעיף 2) והוצאה נוכחית חיובית. יש פרוטוקול פשוט כדי לאשר את טבע GABAergic של האירועים ולהפוך את אירועי GABAergic קלים יותר לזהות, אם לא באמצעות פתרון בכוח פנימי נהיגה גבוהה: הזרק זרמים שליליים (כ 1 שניות; המשרעת תלויה בהתנגדות הקלט של תא) וכתוצאה מכך הקיטוב VO צעדי ltage, החל בסביבות -100 mV ולאחר מכן להגדיל ב 5 שלבי mV (איור 8). בפוטנציאל שלילי מאוד את אירועי GABAergic קלים יותר לזהות, בשל כוח המניע גבוה יותר. ואם את האותות להפוך סביב Cl מחושב - היפוך הפוטנציאל לפתרונים, זה מאוד סביר להניח שהם GABAergic בטבע (איור 8). עם פיפטה מייקר iontophoretic GABA נוספת, אפשר לחקור, למשל, את ההשפעה של עיכוב על אירועי GABAergic glutamatergic, כמו קוצים נתרן / סיד הדנדריטים, על ידי שינוי התזמון היחסי של ספייק הדנדריטים וIPSP (איור 9), מיקום יחסי של שני האירועים, או משרעות. (כל הניסויים בבעלי החיים נערכו בהתאם להנחיות של הטיפול בבעלי חי הוועדה השתמשו באוניברסיטת בון, המרכז הגרמני למחלות ניווניות והמדינה Northrhine-Westfalia.)

דק דף = "תמיד"> איור 1
איור 1. מידה המרחבי של גלוטמט נפלט iontophoretically נקבעה על ידי ההכחשה פיפטה. הקרנת העצמה מקסימלי) של תמונת שני פוטונים של דנדריט תא פירמידה CA1 מלא Alexa 594 ופיפטה iontophoretic בעמדתו הראשונית (סרגל קנה מידה 8 מיקרומטר) 100 מיקרומטר. ריבועי מראים נסיגה של פיפטה iontophoretic וEPSP iontophoretic המקביל נרשם בסומה. חץ מציין את המיקום של קצה פיפטה iontophoretic. ב ') את תלות מרחק של אמפליטודות EPSP ביחס לעמדתו הראשונית של קצה פיפטה iontophoretic (≤ 1 מיקרומטר מדנדריט, n = 6 סניפים). עם זה אנחנו יכולים להעריך את הרדיוס של גלוטמט שהפיץ חוזר בה באופן שיטתי פיפטה. מופעי הבלעה עקבות דוגמה מייצגות. ברים שגיאה מייצגיםממוצע ± SEM. (מעובד מתוך Müller et al. 2012 9, הודפס מחדש באישור Elsevier).

איור 2
איור 2. איך פיפטה iontophoretic אמורה להיראות. תמונת CCD אינפרא אדום) של פיפטה iontophoretic לעומת 5.5 MΩ תיקון קטן פיפטה באמצעות מטרת 60x. ב ') פיפטה iontophoretic עם קנה מידה באמצעות מטרת 60x. כיול: הקטן = 10 מיקרומטר.

איור 3
איור 3. פיצוי קיבוליות של פיפטה iontophoretic באמצעות לבנות בבדיקת דופק (10 Na, 10 אלפיות שני, NPI אלקטרוני, תם,גרמניה). חשוב כדי לפצות את הקיבול בצורה נכונה כדי לפקח על התנגדות פיפטה הנכונה ועל מנת להבטיח יישום מוליך עצבי מהיר ומדויק.

איור 4
איור 4. עקרונות של מיקרו-Iontophoresis. א) ציור סכמטי של נוירון פירמידלי CA1 בכל תצורת תיקון מהדק תא ופיפטה iontophoretic מלאה בגלוטמט. גלוטמט הוא מטען שלילי, ולכן נוכחי חיובי פנה לפיפטה תהיה למנוע ממנו דלף החוצה של פיפטה: לשמר הנוכחי הוא חיובי (פנל משמאל). כדי להוציא גלוטמט מפיפטה, להחיל נוכחי שלילי (פנל מימין). בדרך זו גלוטמט הוא נאלץ לצאת מפיפטה ויכול לעורר אירועים מעוררים בתא postsynaptic. ב ') ציור סכמטי של Cנוירון פירמידלי A1 בכל תצורת תיקון מהדק תא ופיפטה iontophoretic מלאה GABA. GABA הוא טעון חיובי ב-pH נמוך. לכן, זרם שלילי יהיה למנוע ממנו דלף החוצה של פיפטה (פנל משמאל). כדי להוציא GABA להחיל נוכחי חיובי (פנל מימין). בדרך זו יוצא GABA של פיפטה ויכול לעורר אירועים מעכבים בתא postsynaptic.

איור 5
איור 5. pipettes iontophoretic טוב ורע. דוגמה מייצגת) של EPSP glutamatergic iontophoretic נוצר על ענף הדנדריטים של נוירון פירמידלי CA1. ב ') דוגמה מייצגת של הדנדריטים ספייק iontophoretic נוצרה סניף הדנדריטים באזור CA1 של ההיפוקמפוס עם זליגת גלוטמט מתונה מתמשכת מקצה פיפטה.

איור 6
איור 6. תוצאות עבור נציג גלוטמט היחיד מייקר Iontophoresis. ציור) סכמטי של CA1 נוירון פירמידלי טלאים ופיפטה iontophoretic מלא בגלוטמט. ב ') EPSP עורר בנוירון פירמידלי CA1 עם Iontophoresis גלוטמט. C) דנדריטים Na + / Ca 2 + ספייק עורר בדנדריט הפרוקסימלי של פירמידה CA1 נוירון, סימן תחתון מציג את השיפוע של עקבות המתח, שיא מציין את שיפוע השיא של ספייק הדנדריטים. ד ') כאשר מגדילים את הזרם להחיל iontophoretic המשרעת של EPSP יגדל עד שהוא עובר את סף פוטנציאל פעולה.

"עבור: src =" / files/ftp_upload/50701/50701fig7highres.jpg "src =" / files/ftp_upload/50701/50701fig7.jpg "/>
איור 7. תוצאות עבור נציג גלוטמט הכפול מייקר Iontophoresis במקומות שונים על העץ הדנדריטי. ציור) סכמטי של CA1 נוירון טלאים פירמידה ושתי pipettes iontophoretic מלא גלוטמט, הממוקמים על הפרוקסימלי, ודנדריט דיסטלי, בהתאמה. ב ') EPSP iontophoretic עורר בדנדריט הפרוקסימלי של CA1 נוירון פירמידלי (1). ג) עורר EPSP iontophoretic בדנדריט דיסטלי (2).

איור 8
איור 8. תוצאות עבור נציג GABA מייקר Iontophoresis. ציור סכמטי) של CA1 נוירון פירמידלי טלאים ופיפטה iontophoretic מלא GABA.B) IPSP iontophoretic עורר בדנדריט הפרוקסימלי של פירמידה CA1 נוירון. C) הזרקת זרם ארוכה של שינוי שיטתי אמפליטודות לנוירון פירמידלי CA1 באמצעות פיפטה את התיקון, כדי לקבוע את פוטנציאל ההיפוך של האירוע עורר (זריקות שוטפות מ-400 PA ל0 הרשות הפלסטינית). חפץ מצביע על נקודת הזמן של Iontophoresis GABA. האירוע עורר מצביע על פוטנציאל היפוך של כ -70 mV (חץ).

איור 9
איור 9. נציג תוצאות של גלוטמט ובו זמנית Iontophoresis GABA לחקור אינטגרציה של עיכוב ועירור. א) ציור סכמטי של נוירון פירמידלי טלאים ופיפטה אחד מלא גלוטמט (ירוק) ועל עם גאבא (כתום). ב ') עורר Iontophoreticallyקוצים הדנדריטים לבד, בסריקות שלאחר מכן, עקבות נמוכות להראות DV / DT, פסגות מצביעות על קוצים הדנדריטים. C) Iontophoretically עוררו IPSP לבד. D) אירועים שניהם, וglutamatergic GABAergic יחד.

הספציפיות מיקום הספציפיות משדר השפעות רעילות / צד גירוי presynaptic ניסוי ארוך טווח עלויות / מורכבות
מיקרו-Iontophoresis + + + + + + + - + + + +
משחררות רפרוף 2 פוטונים + + + + + + + - + +
גירוי הסינפטי - - + + + + + + + + + + ++

טבלת מס '1. . השוואה של טכניקות שונות יתרונות וחסרונות של טכניקות כדי לעורר נוירונים על פי קריטריונים שונים (- = רע, + = לא אופטימלי, + + = טוב, + + + = הטוב ביותר).

pipettes תיקון pipettes iontophoretic
טרום מושך משיכה רווק () P האחרון Pull P (B) טרום מושך Pull רווק () P האחרון Pull P (B)
חום H 700 480 510 600
כוח המשיכה טרום F (TH) 018 035 018 008
מרחק של סף (TH) 017 012 025 015
עיכוב Heatstop t (H) 050 030 050 030
מרחק Heatstop ים (H) 030 000 030 000
עיכוב F (F1) 000 136 000 050
כוח משיכה F1 1 000 065 200 400
מרחק של 2 Pull (F2) 000 005 000 001
כוח משיכה 2 F2 000 080 000 095
התאם (AD) 121 000 121 000

טבלת 2. מופתי חולץ פרוטוקול. לחולץ אופקי (DMZ-יוניברסל פולר, Zeitz-מכשירי GmbH, Martinsried, גרמניה), באמצעות סיבי GB150F-8P (מוצרי מדע, Hofheim, גרמניה) עבור תיקון וpipettes iontophoretic.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

כאן נסביר איך ליישם מייקר Iontophoresis המהיר של נוירוטרנסמיטורים לחקור אינטגרציה הסינפטי בדנדריטים. טכניקה זו שימש בהצלחה לחקור שידור סינפטי glutamatergic וGABAergic באזורים שונים במוח במבחנת in vivo 9,20-22. מיקרו-Iontophoresis שימש במשך יותר מ -60 שנים, אבל בשנים הראשונות זה היה בשימוש בעיקר לאופן מקומי להחיל נוירוטרנסמיטרים ותרופות על לוחות זמנים איטיים או בינוניים 23 או לmicroinjection של חומרים לתוך תאים 24.

מיקרו-Iontophoresis הפך לכלי מעניין במיוחד ללימוד אינטגרציה דנדריטים מאז כניסתה של מגברים, המצוידים בפיצוי קיבול מהיר לאלקטרודות גבוהה התנגדות 10,11. עם שיפור זה ניתן היה להחיל זרמים קצרים מלבניים iontophoretic וכתוצאה מכך תגובות postsynaptic, אשר resembled יותר ריאליסטי את מהלך הזמן של אירועים סינפטיים 10,25.

מה הם הדרישות והקשיים להתמודד עם טכניות, כאשר הקמת מייקר Iontophoresis? יש צורך במגבר iontophoretic המאפשר פיצוי של הקיבול הגבוה של pipettes iontophoretic המשובחים. הכוונון הנכון של פיצוי היכולת חשוב מאוד אם נדרשת פעולה במהירות גבוהה בשילוב עם microelectrodes עמידות גבוהה. קיבולים משוטטים ללא פיצוי חיוב מהנוכחי iontophoretic המסופק על ידי המכשיר, ולכן מאט את היישום. פיצוי הקיבול כראוי הוא קריטי והסביר בפירוט בווידאו. בנוסף לכך, זה קריטי, כי המערכת האופטית נותנת תמונה טובה של ניאון דנדריט ופיפטה iontophoretic ללא גרימת נזק צילום של הרקמה. בצורה אופטימלית, יש להשתמש במערכת שני פוטונים ולצמצם את צריכת החשמל בליזר ולהתעכב פעמים ככל תואםאיכות תמונה סבירה. אם נעשה שימוש במקור אור קונבנציונלי יותר, לוודא כדי לצמצם את זמן החשיפה עד כמה שניתן, לדוגמה, על ידי שימוש בתריסים חשמלי מכאניים או מפעילה. כנראה הנקודה הקריטית ביותר היא עיצוב פיפטה, אשר יאפשר ליישום מוגדר ומסוים של מוליך עצבי בשימוש. צעד זה דורש קצת מאמץ וזמן כדי למצוא את ההגדרות האופטימליות. כאן, אנו מציגים פרוטוקולים לIontophoresis גלוטמט וגאבא, אם משמשים נוירוטרנסמיטרים אחרים, חוסמי או מאפננים, יש צורך שהחומר מרוכז מאוד ואף יותר מכך שהיא מחויב. לדוגמה, מאז GABA יש מטען נטו אפס ב-pH של 0, יש את ה-pH להיות מותאם (ראה פרוטוקול סעיף 2), וכתוצאה ממטען חיובי נטו.

כאשר מיקרו Iontophoresis היא הוקמה, היא תספק כלים מורחב ללימודי אינטגרציה סינפטי בתאי עצב. זה מאפשר גירוי הסינפסות של עניין באופן סלקטיבי עםמוליך עצבי מסוים. באמצעות מוליך עצבי שנבחר במקומות מוגדרים, זרמי postsynaptic פוטנציאלים ויכול להיחקר ההתפשטות שלהם. יתר על כן, ניתן להשתמש באלקטרודות iontophoretic מרובות בו זמנית כדי לחקור את השילוב של מספר כניסות glutamatergic או שיטתי לשנות את עיתוי קרוב המשפחה או את עוצמת אירועים.

כמה נקודות קריטיות בכלל צריכה להיחשב בעת השימוש במייקרו Iontophoresis. הפרופיל של ריכוז הנוירוטרנסמיטר לאחר מייקר Iontophoresis שונה משחרור אנדוגני. Murnick ו -10 אחרים דיווחו כי המהירות של שחרורו מקצה Iontophoresis (כ 1 אלפיות השני) עשויה להיות איטי יותר באופן משמעותי משחרור הסינפטי משלפוחית, אשר מתרחשת בשברים של אלפית שנייה (0.2 אלפיות השנייה) 26. כמו כן, דיפוזיה ומהמרווח הסינפטי היא צפויה האטת עליית ריכוז וריקבון של נוירוטרנסמיטורים המיושמים iontophoretically.יתר על כן, את עוצמת הקול של הנוירוטרנסמיטר נפלט צפוי להיות גבוה יותר מכרכים שפורסמו מבחינה פיזיולוגית, לעומת זאת, עם אלקטרודות גבוהה התנגדות, glutamatergic אחת וpostsynapses GABAergic יכול להיות מופעל באמצעות מיקרו-Iontophoresis 10-12. הסלקטיביות המרחבית בטווח של כמה מיקרומטרים גם לאחרונה הושגו על ידי משחררות רפרוף שני פוטונים של נוירוטרנסמיטורים 3,4,27.

אמנם הרבה יותר עלות אינטנסיבית, יש משחררות רפרוף שני פוטונים מספר יתרונות על פני מייקר Iontophoresis. בפרט ניתן להשתמש בו כדי לשחרר את הנוירוטרנסמיטר בו זמנית במספר רב של אתרים סינפטיים ואינה דורש מיקום המדויק של קצה האלקטרודה בסדר. עם זאת, יש לה גם כמה חסרונות חשובים שיש לשקול בעת בחירת שיטה לניסוי מסוים. תרכובות כלוב רבות יש תופעות לוואי לא רצויות כגון המצור על קולטנים עצביים 28. לדוגמה, רבים גלוטמט וכלובי GABAכבר דיווח להתערב בעיכוב GABAergic. כמו כן, כוח לייזר הגבוה יחסית הנדרש למשחררות רפרוף שני פוטונים עלול לגרום לניזק צילום של נוירון postsynaptic, במיוחד כאשר הגירוי מיושם שוב ושוב במשך כמה דקות. יתר על כן, בעוד שמייקרו Iontophoresis מוגבל במספר אתרי מגורה, ניתן לבחור באתרים אלה באופן חופשי בכל עץ הדנדריטים של תא עצב, למשל בדנדריטים דיסטלי ובסיס, כדי לדמות קלט הסינפטי שכבתי מאזורי מוח שונים. משחררות רפרוף שני פוטונים, כפי שהוא משמש כיום על ידי רוב הקבוצות, יהיו מוגבלות לאתרים סינפטיים במישור מוקד בפרט ובשדה הראייה, אשר תלוי במטרה בשימוש (בדרך כלל 40X או טבילה במי 60x). יש לו כדי להיחשב כי שתי הטכניקות תמיד מובילות להפעלה של רצפטורים extrasynaptic, אשר עשוי להפוך את הפרשנות של התוצאות קשה יותר.

חסרון נוסף של מיקרו-Iontophoresis הוא כי only יכול להיות מופעל postsynapse. אם פונקצית presynaptic ותפקידיו של מוליך עצבי שפורסם שלפוחית ​​צריכה להיות מוגדרות למיקוד הניסיוני, גירוי הסינפטי חשמל מקומי עשוי להיות שיטה של ​​בחירה. עם זאת, החסרונות של גירוי הסינפטי חשמל בהשוואה למייקרו Iontophoresis הם מיקום לא ידוע של הסינפסות המופעלות ושיתוף הפעלה של אקסונים מאוכלוסיות עצביות שונות, שעלול להיות שייך למערכות עצביות אחרות (טבלת 1).

לסיכום היתרון החשוב ביותר של מיקרו-Iontophoresis הוא, לדעתנו, שאפשר להשתמש בכמה נוירוטרנסמיטרים שונים וללמוד על האינטראקציה שלהם תאים עצביים כגון דנדריטים 9.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

Acknowledgments

אנו מודים לאנס ריינר פולדר, מרטין פורמן ווקר ג'קסון לזהירות לקרוא את כתב היד. החוקרים קיבל מימון שהועמד על ידי משרד המחקר MIWF של מדינת Northrhine-Westfalia (SR), שיתוף הפעולה BMBF-Projekträger DLR ארה"ב לגרמניה במדעי המוח חישובית (CRCNS; SR), מרכזי התמחות במחלות ניווניות (כהן; SR), ואת האוניברסיטה של ​​תכנית מימון בין חומות בון (BONFOR; SR).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
  Material
Two-photon laser scanning microscope (TRIM Scope II), and Ultima IV, Prairie Technologies, Middleton, Wisconsin) LaVision Biotec, Bielefeld, Germany  
Two-photon laser scanning microscope Ultima IV Prairie Technologies, Middleton, Wisconsin, USA  
Ti:Sapphire ultrafast-pulsed laser Chameleon Ultra II, Coherent  
60X Objective, NA 0.9 Olympus  
Zeiss Axioskop 2 FS upright microscope TILLPhotonics, Gräfelfing, Germany  
Monochromator TILLPhotonics, Gräfelfing, Germany  
Micro-iontophoresis system MVCS-02 NPI Electronics, Tamm, Germany  
Sutter puller P-97 Sutter Instrument Company, Novato, CA  
Glass filaments (150 GB F 8P) Science Products, Hofheim, Germany  
  Reagent
Alexa Fluor 488 hydrazide Molecular Probes life technologies A-10436  
Alexa Fluor 594 Molecular Probes life technologies A-10438  
NaCl Sigma Aldrich S7653  
KCl Sigma Aldrich P9333  
NaH2PO4 Sigma Aldrich S8282  
NaHCO3 Sigma Aldrich S6297  
Sucrose Sigma Aldrich S7903  
CaCl2 Sigma Aldrich C5080  
MgCl2 Sigma Aldrich M2670  
Glucose Sigma Aldrich G7528  
K-Gluconate Sigma Aldrich G4500  
HEPES-acid Sigma Aldrich H4034  
Phosphocreatin Sigma Aldrich P7936  
EGTA Sigma Aldrich E3889  
Glutamic acid Sigma Aldrich G8415  
GABA Sigma Aldrich A5835  
NaOH Merck 1.09137.1000  
HCl Merck 1.09108.1000  

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Megias, M., Emri, Z., Freund, T. F., Gulyas, A. I. Total number and distribution of inhibitory and excitatory synapses on hippocampal CA1 pyramidal cells. Neuroscience. 102, 527-540 (2001).
  2. Gasparini, S., Migliore, M., Magee, J. C. On the initiation and propagation of dendritic spikes in CA1 pyramidal neurons. J. Neurosci. 24, 11046-11056 (2004).
  3. Losonczy, A., Magee, J. C. Integrative properties of radial oblique dendrites in hippocampal CA1 pyramidal neurons. Neuron. 50, 291-307 (2006).
  4. Remy, S., Csicsvari, J., Beck, H. Activity-dependent control of neuronal output by local and global dendritic spike attenuation. Neuron. 61, 906-916 (2009).
  5. Stuart, G., Schiller, J., Sakmann, B. Action potential initiation and propagation in rat neocortical pyramidal neurons. J. Physiol. 505, (Pt. 3), 617-632 (1997).
  6. Magee, J. C. Dendritic integration of excitatory synaptic input. Nat. Rev. Neurosci. 1, 181-190 (2000).
  7. Amaral, D. G., Witter, M. P. The three-dimensional organization of the hippocampal formation: a review of anatomical data. Neuroscience. 31, 571-591 (1989).
  8. Miles, R., Toth, K., Gulyas, A. I., Hajos, N., Freund, T. F. Differences between somatic and dendritic inhibition in the hippocampus. Neuron. 16, 815-823 (1996).
  9. Muller, C., Beck, H., Coulter, D., Remy, S. Inhibitory control of linear and supralinear dendritic excitation in CA1 pyramidal neurons. Neuron. 75, 851-864 (2012).
  10. Murnick, J. G., Dube, G., Krupa, B., Liu, G. High-resolution iontophoresis for single-synapse stimulation. J. Neurosci. Methods. 116, 65-75 (2002).
  11. Liu, G., Choi, S., Tsien, R. W. Variability of neurotransmitter concentration and nonsaturation of postsynaptic AMPA receptors at synapses in hippocampal cultures and slices. Neuron. 22, 395-409 (1999).
  12. Renger, J. J., Egles, C., Liu, G. A developmental switch in neurotransmitter flux enhances synaptic efficacy by affecting AMPA receptor activation. Neuron. 29, (2001).
  13. Heine, M., et al. Surface mobility of postsynaptic AMPARs tunes synaptic transmission. Science. 320, 201-205 (2008).
  14. Somogyi, P., Klausberger, T. Defined types of cortical interneurone structure space and spike timing in the hippocampus. J. Physiol. 562, 9-26 (2005).
  15. Pugh, J. R., Jahr, C. E. Axonal GABAA receptors increase cerebellar granule cell excitability and synaptic activity. J. Neurosci. 31, 565-574 (2011).
  16. Mozrzymas, J. W., Zarnowska, E. D., Pytel, M., Mercik, K. Modulation of GABA(A) receptors by hydrogen ions reveals synaptic GABA transient and a crucial role of the desensitization process. J. Neurosci. 23, 7981-7992 (2003).
  17. Pasternack, M., Smirnov, S., Kaila, K. Proton modulation of functionally distinct GABAA receptors in acutely isolated pyramidal neurons of rat hippocampus. Neuropharmacology. 35, 1279-1288 (1996).
  18. Single-Channel Recording. Springer. (2009).
  19. Davie, J. T., et al. Dendritic patch-clamp recording. Nat. Protoc. 1, 1235-1247 (2006).
  20. Major, G., Polsky, A., Denk, W., Schiller, J., Tank, D. W. Spatiotemporally graded NMDA spike/plateau potentials in basal dendrites of neocortical pyramidal neurons. J. Neurophysiol. 99, 2584-2601 (2008).
  21. Rose, G. J. Combining pharmacology and whole-cell patch recording from CNS neurons, in vivo. J. Neurosci Methods. (2012).
  22. Behrends, J. C., Lambert, J. C., Jensen, K. Repetitive activation of postsynaptic GABA(A )receptors by rapid, focal agonist application onto intact rat striatal neurones in vitro. Pflugers Arch. 443, 707-712 (2002).
  23. Hahnel, C. Practical Electrophysiological methods. Kettenmann, H., Grantyn, R. Wiley-Liss. (1992).
  24. Wetzel, C. H., et al. Specificity and sensitivity of a human olfactory receptor functionally expressed in human embryonic kidney 293 cells and Xenopus Laevis oocytes. J. Neurosci. 19, 7426-7433 (1999).
  25. Cash, S., Yuste, R. Linear summation of excitatory inputs by CA1 pyramidal neurons. Neuron. 22, 383-394 (1999).
  26. Eccles, J. C., Jaeger, J. C. The relationship between the mode of operation and the dimensions of the junctional regions at synapses and motor end-organs. Proc. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 148, 38-56 (1958).
  27. Kwon, H. B., Sabatini, B. L. Glutamate induces de novo growth of functional spines in developing cortex. Nature. 474, 100-104 (2011).
  28. Fino, E., et al. RuBi-Glutamate: Two-Photon and Visible-Light Photoactivation of Neurons and Dendritic spines. Front Neural Circuits. 3, 2 (2009).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics