2014年3月25日
組換えヒトMHC II分子と生化学的アッセイは、免疫原性エピトープ同定、削除、または設計に迅速かつ定量的な洞察を提供することができます。ここで、384ウェルプレートにスケーリングペプチド-MHC II結合アッセイが記載されている。この費用対効果の高い形式は、タンパク質の脱免疫やワクチンの設計と開発の分野で有用であることを証明する必要があります。
本手順の全体的な目的は、ハイスループットな384ウェルプレートアッセイを用いて、短鎖ペプチドとヒトMHC II免疫タンパク質の結合を定量化することです。まず、目的のペプチドを用いて液相競合結合アッセイを行います。次に、平衡状態にあるペプチドMHC II複合体を、高結合ELISAプレート上に固定化した抗MHC II抗体で捕捉します。
次に、捕捉された複合体をオプシウム標識ストレプトアビジンとともにインキュベートし、その後、未結合のストレプトアビジンを洗浄して除去し、捕捉されたオプシウムを活性化させます。最終的に、時間分解蛍光光度法を用いて、捕捉されたMHC II-コントロールペプチドのレベルを定量化できます。この手法により、標的タンパク質の免疫原性の可能性に関する予備的な知見を得ることが可能です。
これは特にin silico予測因子の出力を検証する際に有用です。まず、新鮮に希釈したL 2 43抗体溶液 25 µLを、ハイバインド白色ELISA 384ウェルプレートの各ウェルに添加します。プレートをポリエステルフィルムで密封し、4 °Cで一晩インキュベートしてください。その後、各テスト化合物の10 mMストック溶液を用いて開始します。
ペプチドとDMSOを用いて、3枚の84ウェルポリプロピレンプレートで以下の希釈系列およびクエン酸リン酸緩衝液を作製します。なお、84ウェルのポリプロピレンプレート1枚分には、図に示すように3枚の別々のEIAプレートが必要であることに注意してください。次に、15 mLコニカルチューブを用いて、選択したMHC IIストック溶液を反応緩衝液で101 nM濃度に希釈します。
次に、コントロールペプチドを20 µMから、調製したばかりのMHC IIマスターミックスで1:100の比率に希釈し、コントロールペプチドを含むMHC IIマスターミックス21.5 µLを陽性コントロールウェルに添加します。384ウェルポリプロピレンプレートの各テストペプチド希釈液に、コントロールペプチドを含むMHC IIマスターミックスを1:1の比率で添加し、同時に結合反応を作成します。最後に、結合反応をポリエステルフィルムで密閉し、プレートを非CO₂制御インキュベーターにて37 °Cで、振盪せずに12〜24時間インキュベートします。
翌日、3枚の84ウェルプレート内の結合反応ウェルを、中和バッファーを用いて1:1の比率で希釈します。その後、ELISAプレートを、1ウェルあたり60 µLのPBS 0.05%で3回洗浄します。次に、3枚の84ウェルプレートから、中和された各結合反応溶液25 µLを、抗体コート済みの3枚の84ウェルプレートへ3連(triplicate)で移注します。
ELISAプレートの各ウェルを封止し、ポリエステルフィルムで覆って4 °Cで一晩インキュベートします。インキュベーション後、先ほど示した方法でELISAプレートを3回洗浄し、次いで、新たに希釈したstreptavidinを各ウェルに25 µLずつ加えます。プレートをポリエステルフィルムで覆い、室温・暗所で1時間インキュベートします。
インキュベーションの間、プレート1枚あたり10 millilitersの増強溶液を同様に暗所で室温に戻します。1時間後、デモンストレーション通りにELISAプレートを洗浄し、各ウェルに25 microlitersの増強溶液を加え、ポリエステルフィルムでカバーして暗所で10から15分間インキュベートします。最後に、最適な設定にした時間分解蛍光プレートリーダーを用いて蛍光を測定します。この代表的な実験では、MHC 2アレルに対する推定ペプチド結合因子を解析するため、enterobacter Cloe P nine nine beta-lactamaseの成熟ペプチド配列を分析しました。
DRB1*15:01に結合するために必須となる、1番目のポジションにP1アンカー残基を持つペプチドが、5%の閾値のみで117個同定されました。スコアが2.6以上のペプチドは結合する可能性が高いと考えられます。したがって、5%の閾値のみにおいて、上位11個のペプチドがMHC II DRB1*15:01に結合すると予測されます。
本MHCクラスII結合アッセイでは、予測されたエピトープから代表的なパネルを選定して解析を行いました。これらの15残基からなるβ-ラクタマーゼペプチド断片は、想定される9量体MHCクラスIIエピトープが合成タンパク質断片内に組み込まれるように化学合成されました。その後、実演した通り、これらの合成ペプチドがビオチン化マイエリン塩基性タンパク質Bコントロールペプチドと競合してMHCクラスII DRB 1 15 0 1に結合する能力を解析しました。
合成ペプチドの競合結合曲線がここに示されています。IC 50値は、Prismの1サイト競合結合非線形回帰関数を用いて、対数変換データをフィッティングさせることで算出しました。グラフおよび表に示されている通り、開発後のペプチドは自然に3つのグループに分かれました。すなわち、IC 50が1 µM未満の強結合剤、IC 50が1 µM以上100 µM未満の中程度の結合剤、およびIC 50が100 µM以上の弱結合剤です。
この手法により、分子免疫学およびバイオ治療設計の分野の研究者が、ヒト患者における抗タンパク質免疫応答の基盤となる重要な分子認識イベントをより詳細に探索することが可能になりました。
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本記事では、384ウェルプレートを用いて、短鎖ペプチドのヒトMHC IIタンパク質への結合量を定量するハイスループットなペプチド-MHC II結合アッセイについて解説します。本手法は、免疫原性エピトープの同定に関する迅速な知見を提供することを目的としており、特にタンパク質の脱免疫化やワクチン開発において有用です。
ハイスループットMHC II結合アッセイにより、ペプチドの免疫原性を迅速かつ定量的に評価することが可能となり、初期段階の脱免疫化およびワクチン設計のワークフローを直接的に支援します。384ウェルフォーマットへのスケールアップと液体ハンドリングの自動化により、本手法は試薬コストを削減しつつ、スループットと再現性を向上させ、堅牢なターゲットバリデーションおよびポートフォリオの優先順位付けを促進します。このアプローチにより、研究開発チームはエピトープ候補を効率的に解析し、より高い予測信頼性を持ってリード候補を優先的に選択することが可能になります。
本アッセイは、in silico 予測、実験的検証、および免疫原性のトランスレーショナルなリスク評価を橋渡しすることで、創薬から前臨床までのコンティニュアムに統合されます。