Mikroenjeksiyonu Bir Yöntem

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Morphant embriyolar üretme yöntemleri gelişim düzenleyici mekanizmalarının ve gen ağları incelemek için gereklidir. Deniz yıldızı Patiria miniata bu çalışmalar için gelişmekte olan bir model sistem. Burada bir embriyo kültürleri, gamet elde üretmek için protokol ve bu türlerden zigot hızlı mikroenjeksiyon sunuyoruz.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Cheatle Jarvela, A. M., Hinman, V. A Method for Microinjection of Patiria minata Zygotes. J. Vis. Exp. (91), e51913, doi:10.3791/51913 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Echinoderms uzun gen düzenlemesi ve gelişimsel süreçlerinin evrim çalışma için daha yakın üreme ve gelişme çalışmaları için bir favori model sistem olmuştur ve. Deniz yıldızı Patiria miniata önce deniz kestanesi, Strongylocentrotus purpuratus ve Lytechinus variegatus hemen hemen sadece çalışmalar yapılmıştır Bu tip bir model sistem olarak yaygınlık kazanmaktadır. Bu model sistemler bir avantajı da, belirli bir genin veya aşağı regüle kadar olan bir grup hücre etiketleme ya da bir raportör genin modifiye edilmiş embriyoların üretilmesi kolaylığıdır. Tek bir yöntem, modifiye edilmiş mikro-enjeksiyon embriyo çeşitli oluşturma yeteneğine sahiptir. Burada, P. gamet elde edilmesi için bir yöntem sunulmaktadır miniata, zigot üreten ve mikroenjeksiyon yoluyla perturbe maddeleri eklemek. Sağlıklı morphant embriyolar bundan sonra ge nicel ve nitel çalışmalar için izole edilmiştirne fonksiyonu. Bu organizma için genomu ve transkriptom verilerin mevcudiyeti uygulandı ve gerçekleştirilmesinden kolaylığı olan çalışmalar türlerini artmıştır.

Introduction

(Yaygın yarasa yıldızı olarak da bilinir), deniz yıldızı, Patiria miniata, bir 6 8 evrimsel 4,5 gelişim hücresel 1- 3 çeşitli, ve ekolojik çalışmalar 9 11 için ilginç ve çok yönlü bir model sistem olarak ortaya çıkmaktadır. Yetişkin P. miniata Baja California 12 Sitka, Alaska pasifik kıyılarında dağıtılır ve kolayca deniz akvaryumunda tutulur. Oositler elde yıl boyunca ve her kadın onlarca yumurta binlerce tutabilir. Oositler kolayca olgunlaştı ve dıştan 13 döllenir. Oluşan embriyolar kolay gözlem için izin şeffaf; onlar eşzamanlı geliştirmek ve geliştirme için sadece deniz suyu gerektirir. Tüm genom düzeneği ve çok sayıda transcriptomes, P. mevcuttur miniata ( Echinobase.org ). Bu avantajlar araştırma aralığı için ideal hale getirmektedirve öğretim amaçları.

Son yıllarda, S. miniata gelişim düzenleyici gen şebekesi için bir model sistem 14-16 analiz haline gelmiştir. Bu tür çalışmaların amacı, düzenleyici genlerin tüm iltifat belirlemek ve bunların etkileşimlerinin ağı belirlemektir. Bu çalışmaların çoğu antisens oligonükleotidlerinin ya da in vitro sentezlenen mRNA ile tanıtım yoluyla perturbe gen ifadesini gerektirir. Buna ek olarak, sis düzenleyici analizler düzenleyici DNA 15 işlevini karakterize etmek için kullanılır. Bu analizler karışıklık reaktifler ve / veya DNA muhabiri embriyolara inşa tanıtılması gerektirir. Ayrıca, bu düzensizliklerin bir aşağı akış etkisine karakterize etmek için, bir potansiyel hedefler, gen ekspresyonunda değişmeler için çok sayıda embriyolar tahlil gerekir. Zigot yüzlerce mikroenjeksiyon teknikleri bu işin merkezindedir.

P. dahil derisidikenliler miniata de novo gerçekleşmesi gerekir. Mikroenjeksiyon hücre geçirgen olmayan reaktif ile embriyolar değiştirmek için bir fırsat sunuyor. Aşağıdaki protokol, bir 2-3 saat mikroenjeksiyon yoluyla oturma döllenmiş yumurta yüzlerce DNA, mRNA, hücre izleyiciler ve morfolino antisens oligonükleotitlerin bir yöntemi tarif etmektedir. Bu gibi akış aşağı deneyler çeşitli için yeterli malzeme oluşturur, ancak in situ hibridizasyon, RNA sekansına ve Western blot ile, QPCR ancak bunlarla sınırlı değildir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Pratik olduğu kadar 15 ° C'de tüm deniz suyu veya yapay deniz suyu (GB), yetişkin hayvanların ve kültürleri tutun. Emin olun yumurta ve zigot SW dalmış tutulur.

Damıtılmış veya ters ozmoz su ile yeniden sahip ticari olarak hazırlanmış deniz tuzu SW kaynağı olarak da hizmet eder. Hidrometre kullanarak tuzluluk kontrol ve optimum düzeyde sağlamak için tuzlar veya su ayarlayın. 1,020-1,025 arasında özgül ağırlık düzeyleri tutun. Tüm cam tutun ve plasticware kimyasallar ile herhangi bir kirlenmeyi önlemek için diğer tüm laboratuvar donatımı ayrı. Deiyonize su ya da su içinde birkaç kez çalkalayın seyreltik sodyum hipoklorür ve zaman zaman ıslatma ile durulanarak temiz embriyo laboratuvar dereceli.

Patiria miniata Yetişkinler 1. alınması ve olgunlaştırılması Gametler

  1. Gonadları çıkarılması için bir hayvan seçin. Yumurtalıkların veya testislerin varlığı bakarak çıkarıldıktan sonra seks belirleyin P. çünkü miniata se değildirxually dimorfik.
  2. Bir bisturi (Şekil 1A) ile deniz yıldız kolun tarafındaki 1 cm'den daha büyük, küçük bir açıklık, kesin. Küçük künt uçlu forseps geri kesi kenarları çekin kullanma gonad dokusu erişmek ve kesiden yumurtalık dokusu çekin.
    NOT: gevşek gri veya kahverengi doku (Şekil 1B) olduğu gut doku, çekerek kaçının. Testisler beyaz veya bej iken ve görünüm (Şekil 1D) sütlü veya puslanacak deniz suyu neden olacaktır bozulduğunda yumurtalıklar, tipik, turuncu, sarı veya açık kahverengi (Şekil 1C) vardır.
  3. Akvaryuma kadın dönün. Yumurtlama neden olabilir işlenmesinin stres yana SW bir kap içinde bir veya iki saat için erkek izole. Hayvanlar kesi boyunca iyileşmek ve birkaç ay için gametler sağlamaya devam.
  4. Mümkün olduğu kadar az SW, 1.5 ml'lik Eppendorf tüpü içine testisler toplayın ve kullanılana kadar buz üzerinde muhafaza edin. Bize herhangi testisler değil Mağazabir haftaya kadar 4 ° C 'de toplama gününde ed.
  5. SW birkaç mililitre küçük bir cam kültürü çanak yumurtalıklar toplayın. Hiçbir büyük parça kalmayıncaya kadar forseps iki çift dokuyu ayrı kızdırmak, yumurtalık dokusundan oosit bırakın.
    Not: En uygun olarak, oosit kısmı tam olarak geliştirilmiştir. Böyle oosit (Şekil 2B), kahverengi, küçük grenli ve opak olan gelişmemiş oosit alt kümesi karşılaştırıldığında, büyük yuvarlak ve oosit (Şekil 2A) belirgin bir torbacığı sarı veya açık kahverengi açıktır. Oositlerin daha yaklaşık 25% 'den fazla gelişmemiş çeşitten ise, oositlerin elde edilmesi için farklı bir kadın seçin.
  6. 200 um bir gözenek boyutuna sahip olan bir gözenekli filtre kap aracılığıyla oosit ve kalan doku dökün ve akışı toplamak. Bu oosit tüm çeşitleri içeren ancak yumurtalık dokusu kaldıracaktır. W püskürtme ile filtre tarafından yakalanan dokudan kalan oosit bağdakibücür şişe ith GB. Filtre bardak 50 ml konik tüp (Şekil 3A-A ") kullanılarak yapılır.
  7. 100 mikron gözenekli filtre kap aracılığıyla adım 1.6 den yoluyla akışını dökün. Akmakta olan küçük oosit atın. Filtre üzerinde kalacak olgunlaşması için hazır büyük tam gelişmiş oosit. Temiz bir 200 ml'lik bir cam kaba oosit durulayın.
  8. Oosit 200 ml'lik bir cam kabın SW 95 ml ilave edilir. 10 uM'lik bir son konsantrasyon 200 uM 1-metiladenin 5 ml.
  9. 15 ° C'de büyük bir sığ kültür çanak ve yere oosit aktarın. Hacim kültür tabağına bir yüksek yüzey alanlı oksijen alışverişine izin verir. Oosit olgun değil ya da bu olgunlaşma aşamasında kalabalık ise iyi gelişmemiş olabilir. Kültür az 200 oosit / ml kadar birkaç GB yemekler artı 10 uM 1-methlyadenine ayrıldı.
  10. F oosit bu olamayacağım oosit kılacak gibi artık 45-90 dakika boyunca olgun, ama izin verertilized. Olgunlaşma tam olup olmadığını belirlemek için, bir diseksiyon kapsamında oosit bakmak. Olgunlaşma sırasında hücre zarı ile Germinal vezikül doğru hareket eder ve sigortalar. Daha sonra bozulur ve bu nedenle artık olgun oosit (Şekil 2C) görülebilir.

Olgun OOSİT 2. Döllenme

  1. GB yaklaşık olarak 1 ml kültür, küçük bir cam tabak içinde testis dokusunda, yaklaşık bezelye boy, kıyma küçük bir küme seçti.
  2. Olgun oositlerin yaklaşık 100 ml elde edilen süt, deniz suyunun 2-3 damla transferi ve karıştırmak için kültür kaplarına girdap Pasteur pipet kullanın. Testis doku parçalarını transfer kaçının. Polyspermy ve sonraki zayıf gelişmesine neden olabileceğinden spermlerin daha büyük miktarlarda ekleyerek kaçının.
  3. Birkaç dakika sonra, bir diseksiyon kapsamında oosit gözlemlemek. Döllenmiş yumurta veya zigot, cel kapalı yükselir net bir kabarcık bir gübreleme zarf varl membran (Şekil 2B).
    NOT: kötü fertilizasyon oranları da iyi gelişmemiş olabilir sağlıksız bir kültürün bir göstergesi olduğundan yumurta az 90 civarında daha% döller eğer kültürü ile devam etmeyin.
  4. Döllenme işlemi tamamlandıktan sonra, 100 mikron gözenekli filtre içinden dökülmesi ve taze yazılımı ile bir kültür kabı içine durulanarak zigot üzerinde verilmeksizin değiştirilebilir. Bu oksijen açlığı önlemek için fazla sperm kaldırmak için önemlidir. 15-30 dakika boyunca 15 ° C 'de kültür tabağına yerleştirin.

3. De-jelleştirici ve Kürek döllenmiş yumurta

  1. 60 x 15 mm polistiren Petri kabı kapağı alarak enjeksiyon yemekleri hazırlayın.
    1. Mikroenjeksiyon mikroskop görüş alanını eşleşen alanı çevresinde yemeğin arkasında, üzerinde kalıcı bir işaretleyici kalem çizgi çizin. Bu, tüm embriyolar sıralı görüş alanı içinde mikroskop olmasını sağlar.
    2. Daire, p bir çizgi puanı bir cam Pasteur pipet kullanınreferably daire (Şekil 3B) bir tarafında kapalı. Enjeksiyon iğneleri (4.5 Adım) kırmak için daha sonra bu hattı kullanın.
      Not: Reaktifler genellikle deniz kestanesi embriyolar, örneğin, protamin sülfat ya da poli-L Lisin, gereksiz yapıştırmak için kullanılan. P. De-jöleli miniata zigot kaplanmamış plastiğe çok iyi sopa. Onlar cam yemekler iyi sopa unutmayın.
  2. Kaplanacak yüzey olması ve böylece her bir çanak yaklaşık 10 mi GB ekleyin, ancak bu embriyolar bozmakta sıralı olabilir su çanak aşırı sıçrama olmaz.
  3. P. çıkarın önce kürek çekme asit SW ile miniata zigot jöle ceket. Bu jöle ceket modeli deniz kestanesi türleri için gözlenen daha kapsamlıdır.
    1. PH 4,0-4,2 aralığında asit SW hazırlayın. PH değeri, normal gelişim izin verecek şekilde jel kaplamanın etkin şekilde çıkarılmasını sağlamak için çok önemlidir.
    2. GB 1 L'lik bir stok SW içinde 1 N (1 M) tek HCI damla ekleyin. Her damla tamamen karıştırmak için izin verve daha HCI ilave edilmeden önce pH izlemek.
      NOT: Uygun pH HCl sonuçlarının birçok ml biri, ancak bir kerede tüm hacmi eklemeyin.
      NOT: SW ile davlumbaz 1 N HCI hazırlayın ve 12 N (12 M) HCI.
    3. 100 mikron gözenekli filtre üzerine onları dökerek zigot üzerinde SW çıkarın. (Yaklaşık 10 mi) mümkün olan en küçük SW miktarda bir 200 ml'lik bir cam kaba durulayın. Asit SW (pH 4,0) ile 150 ml beher kadar doldurun ve zigot 3 dakika boyunca asit SW oturmak için izin.
  4. Iki adet 200 ml'lik çanaklar arasında ileri ve geri onları dökerek zigotlardan jöle ceket şerit, 200 mikron mesh filtre üzerinden zigotların geçen her zaman. Bir 2 dakikalık bir zaman penceresi üzerinde 5-10x çevresinde filtre içinden zigotların dökün.
  5. 100 mikron gözenekli filtre üzerine zigotların dökerek asit SW çıkarın. SW ile küçük bir cam kültürü çanak içine zigotların durulayın. De-jöleli zigot plastik tabaklar yapışabilir. Satır embriyolar derhal; daha j üretmeye başlarzamanla plastik tabaklar zayıf yapışmasına yol açar kedward ceket.
  6. Cam kültürü çanak zigotların pick up ve enjeksiyon yemekleri düz çizgiler içine yerleştirmek için bir ağız pipet (Şekil 3C-C ') kullanın. Cam, yumuşak kadar bir alev üzerinde bir Pasteur pipeti ince yan merkezini eritin. Hızlı bir cam çok ince esneme elde etmek için ayrı cam uçlarını çekin. Cam soğuduktan sonra, (bir ağız pipet Wessel ve arkadaşları görmek hazırlama hakkında ek bilgi için., 2004 17 Sweet ark. 2004 18) Pasteur pipet küçük ucunu kesiyorum.
    1. Sadece tek bir zigot girerek bir seferde pipet çıkış böylece çapı, embriyoların çapından biraz daha büyük olan bir kürek pipet hale getirmektedir. Bu, tek bir sıra oluşturacak şekilde izin verir. Küçük çaplı pipetler döllenme zarfı şerit ve P. gibi zigotların bozabilir miniata zigot hiyalin membran a yoknd oldukça yumuşak.
    2. Zigot plastik tabak sopa yoksa, ek süre asit SW (birkaç dakika daha kadar) için saklayın. Alternatif olarak, daha küçük çaplı bir pipet zigotlar daha etkili bir şekilde yapışmasına izin vermek için jöle katı çıkartılmadan yardımcı olabilir.
    3. Zigot biraz olumlu batmaz ve yüzer ya da sadece yemeğin alt yukarıda hover eğiliminde. Zigotlar nazik bir pipet (Şekil 3D) çıkar çıkmaz, çanak yüzeyine bastırılır, böylece bu durumda kürek pipet yerleştirin.
      NOT:. Bu yemekler birçok satır sığdırmak için izin olan P. miniata embriyonik membranlar zamanla nüfuz daha zor hale gelmez ve bu nedenle tek bir tek tabak üzerinde zigot yüzlerce enjekte edebilir.

Zigotlar 4. Enjeksiyon

  1. Final konsantrasyona uygun morfolino antisens oligonükleotitlerin konsantrasyonları (MASO), mRNA ya da enjeksiyon çözeltileri DNA'lar ile hazırlayın200 mM KCl entration. 400-800 uM MASO ve DNA, 2.5 ng / ml toksisiteyi en aza indirirken, morphant fenotipleri üretme eğilimindedir. Yumurta nihai konsantrasyonu, bir başlangıç ​​konsantrasyon 14. 1/125 olur. 5 dakika boyunca 65 ° C'ye kadar Masos ısı ihtiva eden enjeksiyon çözeltileri için kullanımı ve daha sonra oda sıcaklığında saklamak için hemen önce.
    1. Enjekte edilen embriyolar sıralama kolaylığı için,% 0.1 lik bir konsantrasyon elde etmek için enjeksiyon solüsyonu için rodamin dekstran izleyici ekleyin.
  2. Üreticinin talimatlarına göre çekme aracı, bir iğne cam kılcal boru (1,0 mm dış çaplı x 0.75 mm İÇ, 100 mm uzunluk) çekerek enjektör hazırlayın. Deniz kestanesi enjeksiyon için uygun iğneler de deniz yıldızları için iyi çalışabilir, böylece benzer parametreleri 19 kullanın.
  3. Bir Microloader pipet kullanarak bir enjeksiyon iğnesi içine enjeksiyon solüsyonu yaklaşık 2 ul yükleyin.
  4. M içine iğnenin künt ucunuanipulator. Set 100 milisaniye darbesine Picospritzer ve 40 psi hava basıncı.
  5. Mikroskop sahneye sıralı embriyoların bir tabak koyun ve görüş alanındaki tüm embriyolar var. Atılan hattı iğneye yakın tarafında olacak şekilde çanak yönlendirilir. Uç hattının ortasına yakın ve sadece su yüzeyinin üstünde olacak şekilde yaklaşık 60 ° 'lik açı iğne yerleştirin.
  6. Atılan hat odaklanın ve ucu odak noktası haline gelene kadar iğne düşük. Biraz daha ipucu indirin ve attı hattının sırtlar içine hafifçe çalıştırarak açık ara. Çanak yüzeyinden ucu kaldırın ve zigot ilk satırının üstünde konumlandırmak ve zigot odaklanmak.
  7. Bir 60 ° bir açıda gelen zigotun merkezi impale sağlayacak şekilde ucu aşağı indirin. İğne kolayca P. nüfuz miniata zigot. Enjeksiyonundan bir bolus tanıtmak için ayak pedalı (veya enjeksiyon iğnesi malzeme zorlayarak diğer araçlarla) adımembriyo ölü m çözeltisi.
  8. % 20-30 embriyo çapı ya da 25 ile 80 pl bir bolus nişan. Bolus bundan daha büyük veya daha küçük ise, Picospritzer üzerinde enjeksiyon süresini ayarlamak ve sonraki embriyo enjekte edilir. İstenen bolus boyutu elde etmek süresini ayarlamak için devam edin. 100 msn süresince başlayın. Yaklaşık 200 milisaniye daha büyük uygun hapını tanıtmak gerekirse iğne Yeniden bölünürler. İğneyi atın ve en az 15-20 msn iğne boyutu çok büyük olduğu gibi bu hap boyutu elde etmek için gerekli ve normal gelişimini bozabilir, yeni bir tane hazırlayabilirsiniz.
  9. Enjeksiyon yemeğin kalan zigotların enjekte edin. Embriyolar kolayca bölünme başlayana kadar ve ilk bölünmesinden sonra tek blastomer içine enjekte edilebilir. Periyodik olarak, iğne yapışmazlar, zigotların kaldırmak için su yüzeyinin üzerinde iğne kaldırın. Gerekli iğne ucu yeniden kırmak ya da bir tıkanma meydana gelirse yeni bir iğne yüklerseniz.

  1. Embriyolar SW 15 ° C'de geliştirmeye olanak sağlar. Oksijen alış verişine olanak sağlamak için, kültürler içinde hacme büyük bir yüzey alanına koruyun. Embriyolar kalabalık değil emin olun; veya 200 embriyolar / ml altında kültürleri tutun. Embriyonun istenilen aşamaya bağlı olarak, yaklaşık 20-24 saat sonrası döllenme enjekte embriyolar toplamak planlıyoruz.
    NOT: Bu genellikle sıralamak ve normal gelişen embriyo kolayca morfolojik ayırt edilir, ancak henüz yüzme olmadığından toplamak ve ideal bir zamandır.
  2. Embriyolar yumurtadan varsa, yavaşça yüzme önlemek için şok tuz. SW yavaşça girdap şeklinde sallandı enjeksiyon çanak GB 10 ml 5 M NaCI 200 ul ilave edin. Bir kaç dakika sonra, embriyolar yemeğin altına düşecek. Bu toplayın ve normal tuzluluk SW taşıyabilirsiniz.
  3. Injecti kullanılan izleyici ile uyumlu uygun bir floresan ışık kaynağının altında enjekte embriyolar toplayınçözüm üzerinde. Hiçbir izleyici kullanılmışsa, sıralama embriyolar normal morfolojiye seçmek için.
  4. Ağız pipet kullanarak, SW asgari bir miktarı ile embriyolar floresanlama çekmek ve SW ile dolu küçük bir kültür çanak içine üfle. İdeal ağız pipetler embriyolar onlara zarar vermeden ve dışarı çıkardı, ama istenmeyen embriyolar ve yabancı GB da yukarı çekti, böylece büyük olmamak için yeterince büyük bir açılış var.
  5. Bir kez istenen tüm embriyoların yeni bir çanak içine toplanmıştır, floresan ışığı altında embriyoların gözlemlemek ve herhangi bir un-enjekte edilen embriyolar veya az gelişmiş embriyolar kaldırmak.
  6. Kültür bir kuluçka istenen aşamalarında embriyolar sıralanır ve görüntüleme veya diğer istenen protokolleri ile devam edin.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Bu protokolün amacı, embriyo içine reaktifler tanıtmaktır. Bu, yeşil floresan proteini (GFP) ekspresyonunu tahrik eden bir raportör konstruktunu bir DNA enjekte edilerek protokol etkinliğini göstermektedir. DNA bölünmesi sırasında ilk olarak birleştiren Enjekte embriyolar klonal yamalar (Şekil 4A-B) GFP ifade eder. Embriyoların içine uygulanması tercih edilmekte olan birçok reaktif maddeler, yüksek miktarlarda ve embriyo optimal gruplar için toksiktir. , Gelişimini geciktirmek döllenmiş yumurta döneminde erken bölünme ya da gelişiminin durdurulması ile toksisite manifestolar, veya anormal gelişim (Şekil 5A-C) koyarak.

Şekil 1
P. Şekil 1. Elde gametler miniata yetişkinler. A) tüketim için gonadlar bir kol proksimal tarafında bir kesi yapmakBu kesi çekilmiş malzeme koyu kahverengi) hayvan. B'nin orta bağırsak dokusudur. Burada gösterildiği gibi Yumurtalık dokusu rengi genellikle turuncu) bir hayvan. C yaralama, aynı zamanda sarı veya açık kahverengi olabilir gibi bağırsak doku çekerek kaçının. Gösterildiği gibi D) Testis, beyaz renkte ya da bej bulunmaktadır. Tüm ölçek çubukları 1 cm göstermektedir.

Şekil 2
Şekil 2. Olgunlaşma ve oosit fertilizasyon. Olgunlaşması için hazır A) Sağlıklı oosit görünür bir torbacığı. B) olgunlaşması için hazır değildir görünümü. C) 1-metiladenin ile olgunlaştırılmış görmüş bir Oosit içinde, küçük, kahverengi ve grenli olan Oositler büyük ve net . Germinal vezikül) bir Fert ile çevrili bir zigot. Bozuldu D ettiyonu zarf. D), bu oositler, süzülerek çıkarıldı olmaz çünkü olgunlaşması olmayan büyük oositlerde kültürleri kaçının. Bu oositler A'da biraz daha küçük ve daha koyu kahverengi ve taneli kaplandı. A ölçek çubuğu 50 mikron gösterir ve görüntüler AE için ölçeğini temsil eder.

Şekil 3,
Montaj için 3. Aparatları Şekil. AA '), bir 50 mL konik tüp tutturulmuş bir gözenekli filtre. Tüp ve kapağın orta konik uç kültürleri tüp ve filtre edin. B), bir 60 x 15 mm polistiren kültür kabı kapağı yapılmış bir enjeksiyon çanağı içinden boşaltılacak izin vermek üzere kesilir. Merkezi etrafında çizilmiş bir çember enjeksiyon mikroskop görüş alanını özetliyor ve kürek embriyo için bir kılavuz olarak hizmet vermektedir. Bir çizgi int attıo çanak enjektör bozduğu için yararlıdır. CC) Ağız pipet kurulumu. Bir kaç ayak uzun lastik tüpün bir ucuna bir ağızlık takın. Kısaca eritme tarafından şekillendirilmiş olan bir Pasteur pipeti, diğer ucunu takınız ve Şematik embriyolar zarar vermeden yapışmasını teşvik için ideal bir kürek Pastör pipet şekli ve genişliği gösteren) cam. D dar ucunu çekerek. Çekti pipet kapalı ucunu kırıldığında sonu uzağa çanak yüzen çıkan zigot önlemek için konik ise, yararlıdır. Tüm ölçek çubukları 3 cm göstermektedir.

Şekil 4
Şekil 4. Reaktifler başarıyla Mikroenjeksiyon tanıttı. A), bir GFP raportör plasmidi ile enjekte edilen bir Blastula evresindeki embriyonun DIC. Embriyo normal morfoloji vardır. B) GFP ExpreC. C 'de gösterilen embriyo) iki morfolojik olarak normal Blastula aşamasında embriyoların. D) C ila embriyonun DIC görüntü içinde salgılanması Teksas Kırmızısı dekstran getirilmesi kırmızı fluoresans neşreden. Diğer embriyo un enjekte ve hiçbir floresan sergiler. Ölçek çubukları 50 um göstermektedir. A Ölçek çubuğu C, A ve B Ölçeği bar ölçeği temsil C ve D için ölçeğini temsil

Şekil 5,
Bir embriyo tutuklandı tutuklanan veya anormal gelişim. Tüm görüntüler embriyoların aynı enjeksiyon partiden 24 saat sonrası enjeksiyon vardır. AA'da Şekil 5. aşırı enjeksiyonu ve reaktif toksisite sonucu ') tek hücreli aşamada tutuklanan bir overinjected zigot. BB') Erken bölünme. Bu embriyo tutuklanan ederken sağlıklı bir embriyo, simetrik bölecekanormal hücre bölünmeleri nedeniyle. CC ') nedeniyle toksisite çılgınca anormal gelişimi ile bir embriyoda. Bu embriyo kabaca Blastula embriyo (D) şeklinde olsa da, uygun şekilde enjekte Blastula evresindeki embriyonun gelişmekte asimetrik ve anormal bir kalınlaşmış. GG ') A'dır. A Ölçek çubuğu 50 mikron gösterir ve tüm panelleri için ölçeğini temsil eder.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Bu tekniğin acemi kullanıcılar için zor ama başarıyla morphant embriyolar oluşturmak için gerekli olan iki kritik adımlar vardır. İlk olgun ve düzgün döller sağlıklı oosit seçmektir. Bir kültürde normal gelişim yüzdesi mevsime göre, hayvanın sağlığını ve oositler tek bir bireysel, hasat edilen sayısıdır. Oositler Ekim ile Nisan arasında daha kaliteli olma eğilimindedir. Bu çoğunluk Şekil 2A yerine Şekil 2B gibi bakmak emin geçmeden önce oosit dikkatle bakmak önemlidir. Onlar bu oositler olarak işlendiği için filtrelemek için yeterince küçük, özellikle olgun oosit olmaz az sayıda olmasına izin verilir. Bazen, gelişmemiş oosit olgunlaşması için hazır tam gelişmiş oosit olarak neredeyse büyük. Onlar grenli, kahverengi colorin tarafından ayırt edilebilirgr (Şekil 2E). Filtrasyon gelişmemiş oosit tam olarak gelişmiş oosit izole olmaz ve genellikle Şekil 5'te görülen kusurları sergilemek için daha olasıdır anormal embriyo kültürlerinde neden olduğundan bu tip oosit toplu kullanmayın.

Diğer önemli bir adımdır Enjeksiyon iri hap şeklinde boyutudur. Spesifik olmayan etkilere neden olma gibi bir etki uygulamak için yeterince büyük, fakat o kadar büyük değildir perturbe reaktif bir miktar tanıtılması. Bir perturbe reaktif kullanılan ilk kez, reaktif birkaç konsantrasyonları denenmiş olan bir titrasyonu yapmak yararlı olur. Beklenen fenotip veya gecikme geliştirme (Şekil 5A) ilgisiz gelişimsel anormallikleri neden olmaz en yüksek konsantrasyon ile takip eden microinjections gerçekleştirin. Bu, normal gelişim bozabilir olarak% 30'dan daha fazla embriyonun çapı olan bir bolus enjekte kaçının. Co tarafından aşırı küçük bolus boyutları,ntrast görsel çoğaltır arasında pertürbasyon fenotipleri aşırı dizi yol ve tutarlı bir şekilde, boyutlandırma için, kontrol etmek zordur.

Bozucu reaktif etkili konsantrasyon aralıkları gelişimsel gecikme ve spesifik olmayan fenotipleri neden olabilir. Bu nedenle, böyle bir standart kontrol MASO, standart DNA konstruktları, izleyici ya da rodamin gibi selim bir reaktif ile kardeş kontrol enjekte etmek için çok önemlidir. Bu kontroller normal gelişimini göstermek sadece tahlil morphant embriyolar. Kontrolleri de dahil olmak üzere enjekte edilen embriyolar, bazen buruşuk Blastula fenotip gösterirler ama sık sık normal gelişim kalanı ile devam edecek. Belirli bir reaktif sürekli çıkan morphant embriyolar gelişimsel gecikmelere neden olur, ayrıca, yaşadıkları kaç gecikme saat belirlemek için embriyolar kontrol etmek için bu embriyolar karşılaştırın.

S yararlılığını sınırlayabilir, bu yöntemin nitelik vardırpecific deneysel senaryoları. Böyle bir konunun bir tek döllenmiş yumurta veya erken bölünme aşamalarında reaktifleri tanıtmak olabilir gerçektir. Ilgi konusu geni ya da yol inviable ilk aşamalarında ve elde edilen embriyolar morphant özellikle önemli olan ya da anlamlı bir çalışma için çok anormal gelişim ise, bu özellikle sorunludur. Bazen bu sorunu daha nazik, eksik demonte sonuçlanan perturbe reaktif az kopya enjekte edilerek giderilmiştir. Hedef gen ya da bir yol için uygun bir hücre-geçirgen bir ilaç mevcutsa, bu daha sonra daha uygun bir aşamada ilaçla tedavi edilen embriyolar ile döllenmiş yumurta aşamasında tepkin maddeler ile enjekte edilen embriyoların fenotipinin karşılaştırmak için yararlıdır. Masos veya mRNA'lanmn enjeksiyonu daha spesifik sunuyor, çünkü ilaç tedavisi lehine mikroenjeksiyon terk aksine bir uyuşturucu muamelesi çalışma ile birlikte bu yöntemi kullanmak daha güçlüdür.

Son olarak, bu her ne kadar mikroenjeksiyon yöntemi en iyi birden 100-1000 sağlıklı, başarılı bir şekilde enjekte edilen embriyolar üretecek, alt-geniş bir uygulama yelpazesi için embriyo yeterli miktarda üretir. Bazı istenilen deneyler, bu çok daha fazla malzeme gerekebilir. Bu yöntem yeni ve henüz yaygın kullanım bulmuşlardır olmamakla birlikte başarıyla deniz kestanesi sisteminde kullanılan diğer yöntemler, örneğin 20 gibi retrovirüsler pantropik morphant deniz yıldız embriyolar ve hatta daha fazla sayıda oluşturmak için modifiye edilebilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Çıkar çatışması yazarlar tarafından ilan edilmiştir.

Acknowledgements

Bu çalışma Ulusal Bilim Vakfı IOS 0844948 ve 1024811 IOS tarafından desteklenen

Materials

Name Company Catalog Number Comments
1-Methyladenine Acros Organics (Fisher Scientific) AC20131-1000
190 micron nitex nylon filter Small Parts (originally Sefar) CMN-0185-C/5PK-05
100 micron nitex nylon filter Small Parts (originally Sefar) CMN-0105-C/5PK-05
Polystyrene Petri dishes, 60 mm x 15 mm Fisher Scientific FB0875713A
Capillary tubing FHC, Inc 30-30-0 For pulling microinjection needles
Model P-97 Needle Puller Sutter Instruments P-97
Dextran, Rhodamine Green Life Technologies D7163 If injecting a GFP expression reporter, it is helpful to substitute Texas Red dextran as an injection tracer
Instant Ocean Sea Salt Doctors Foster and Smith CD-116528 Also available in many pet stores
Microloader tips Eppendorf 5242 956.003

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Terasaki, M. Quantification of fluorescence in thick specimens, with an application to cyclin B-GFP expression in starfish oocytes. Biol. Cell Auspices Eur. Cell Biol. Organ. 98, 245-252 (2006).
  2. Terasaki, M., Runft, L. Two-stage dependence for 1-methyladenine induced reinitiation of meiotic maturation in starfish oocytes. Exp. Cell Res. 316, 2654-2663 (2010).
  3. O'Neill, F. J., Gillett, J., Foltz, K. R. Distinct roles for multiple Src family kinases at fertilization. J. Cell Sci. 117, 6227-6238 (2004).
  4. McCauley, B. S., Akyar, E., Filliger, L., Hinman, V. F. Expression of wnt and frizzled genes during early sea star development. Gene Expr. Patterns GEP. 13, 437-444 (2013).
  5. Yankura, K. A., Koechlein, C. S., Cryan, A. F., Cheatle, A., Hinman, V. F. Gene regulatory network for neurogenesis in a sea star embryo connects broad neural specification and localized patterning. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 110, 8591-8596 (2013).
  6. McCauley, B. S., Wright, E. P., Exner, C., Kitazawa, C., Hinman, V. F. Development of an embryonic skeletogenic mesenchyme lineage in a sea cucumber reveals the trajectory of change for the evolution of novel structures in echinoderms. EvoDevo. 3, 17 (2012).
  7. Annunziata, R., Martinez, P., Arnone, M. I. Intact cluster and chordate-like expression of ParaHox genes in a sea star. BMC Biol. 11, 68 (2013).
  8. Morino, Y., et al. Heterochronic activation of VEGF signaling and the evolution of the skeleton in echinoderm pluteus larvae. Evol. Dev. 14, 428-436 (2012).
  9. Hart, M. W. Structure and evolution of the sea star egg receptor for sperm bindin. Mol. Ecol. 22, 2143-2156 (2013).
  10. McGovern, T. M., Keever, C. C., Saski, C. A., Hart, M. W., Marko, P. B. Divergence genetics analysis reveals historical population genetic processes leading to contrasting phylogeographic patterns in co-distributed species. Mol. Ecol. 19, 5043-5060 (2010).
  11. Keever, C. C., et al. Discordant distribution of populations and genetic variation in a sea star with high dispersal potential. Evol. Int. J. Org. Evol. 63, 3214-3227 (2009).
  12. Lambert, P. Sea Stars of British Columbia, Southeast Alaska, and Puget Sound. UBC Press. (2000).
  13. Dorée, M., Guerrier, P., Leonard, N. J. Hormonal control of meiosis: specificity of the 1-methyladenine receptors in starfish oocytes. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 73, 1669-1673 (1976).
  14. Hinman, V. F., Nguyen, A. T., Cameron, R. A., Davidson, E. H. Developmental gene regulatory network architecture across 500 million years of echinoderm evolution. Proc. Natl. Acad. Sci. 100, 13356-13361 (2003).
  15. Hinman, V. F., Nguyen, A., Davidson, E. H. Caught in the evolutionary act: precise cis-regulatory basis of difference in the organization of gene networks of sea stars and sea urchins. Dev. Biol. 312, 584-595 (2007).
  16. McCauley, B. S., Weideman, E. P., Hinman, V. F. A conserved gene regulatory network subcircuit drives different developmental fates in the vegetal pole of highly divergent echinoderm embryos. Dev. Biol. 340, 200-208 (2010).
  17. Wessel, G. M., Voronina, E., Brooks, J. M. Obtaining and handling echinoderm oocytes. Methods Cell Biol. 74, 87-114 (2004).
  18. Sweet, H., et al. Blastomere isolation and transplantation. Methods Cell Biol. 74, 243-271 (2004).
  19. Cheers, M. S., Ettensohn, C. A. Rapid microinjection of fertilized eggs. Methods Cell Biol. 74, 287-310 (2004).
  20. Core, A. B., Reyna, A. E., Conaway, E. A., Bradham, C. A. Pantropic retroviruses as a transduction tool for sea urchin embryos. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 109, 5334-5339 (2012).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics