A Çok Reproducible ve Kolay Yöntem gerçekleştir
1Department of Biology, KU Leuven - University of Leuven
* These authors contributed equally

Biology
 

Summary

Ayrıca enüklüeasyon denilen gözlerin kaldırılması, geri dönüşümsüz kısmi (monoküler) veya tam (binoküler) görme kaybına neden olduğundan memeli görme sistemi boyunca görsel, çapraz modal ve gelişimsel plastisite yönlerini incelemek için yararlı bir strateji sağlar. Burada vivo enükleasyonuna gerçekleştirmek için son derece tekrarlanabilir ve basit bir yaklaşım açıklar.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Aerts, J., Nys, J., Arckens, L. A Highly Reproducible and Straightforward Method to Perform In Vivo Ocular Enucleation in the Mouse after Eye Opening. J. Vis. Exp. (92), e51936, doi:10.3791/51936 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Enükleasyon ya da bir göz cerrahi olarak çıkarılması genel olarak sinir deafferentasyonu için bir model olarak kabul edilebilir. Bu memeli görsel sistemin 1-4 boyunca görsel, çapraz modal ve gelişimsel plastisite farklı yönlerini incelemek için değerli bir araç sağlar.

Burada, biz yetişkinler kadar 20 gün eski farelerde doğrulandığında fare birinin kaldırılması veya her iki gözünde, bir zarif ve basit tekniği göstermektedir. Kısaca, bir dezenfekte eğri forseps göz arkasında optik sinir kilitlemek için kullanılır. Daha sonra, dairesel hareketler optik sinir daraltıyor ve göz küresinin kaldırmak için yapılır. Bu tekniğin avantajları hiçbir kanama minimal yüksek tekrarlanabilirlik, hızlı ameliyat sonrası iyileşme ve deneyci için çok düşük bir öğrenme eşiği vardır. Bu nedenle, hayvan büyük miktarda manipüle ve çaba en az bir miktarı ile işlenebilir. Tekniğinin doğası hafif hasarı uyarabilirİşlem sırasında retina. Mahajan diğ ile karşılaştırıldığında, bu yan etki bu yöntem daha az uygun hale getirir. (2011) 5, amaç toplamak ve retina dokusu analiz ise. Göz küresi göz kapaklarını çıkarmadan prizden yerinden edilmesi gerekiyor çünkü: - Ayrıca, bizim yöntem sonrası göz açma yaş (13 ve sonrası P10 fare) ile sınırlıdır. Bu yazıda anlatılan in vivo enükleasyon tekniği geçtiğimiz günlerde başarıyla sıçanlarda küçük değişikliklerle uygulanan ve genel kemirgen afferent görsel yolu incelemek için yararlı görünür olmuştur.

Introduction

Bir göz çıkarma ve böylece geri dönüşümsüz duyusal reseptör yüzeyini (retina) tahrip, görsel yol boyunca duyusal girdi önemli bir kayıp getirir. Çocuk ve yetişkin görsel sistemdeki enüklüeasyon modeli farklı görme merkezlerinde 1-4 geliştirilmesi, plastisite ve fonksiyonlarının anlaşılmasına değerli olduğu kanıtlanmıştır. Bu duyusal yoksunluk, moleküler, hücresel ve fizyolojik sonuçları kortikal devreler baş ve deneyim böyle kapsamlı bir değişikliğe tepki olarak kendi yapısını ve işlevini değiştirmek nasıl normal gelişim düzenlenir ve nasıl kurulur içgörü sağlayabilir.

Görsel yoksunluğa Farklı yöntemleri var ve bunlar bütün vizyonu ile ilgili araştırma kendi özel avantajlara sahip. Örnek koyu yetiştirme özellikle görsel olarak aktivitesi tahrik ortadan kaldırmak için, yine de, spontan retina aktivitesini etkilemez. Benzer şekilde, ameliyat dikiş iplikleri ya da göz kapağı yamalar desenli kaldır visual giriş spontan aktivitesini bozmadan ama onlar kapalı gözüyle dağılan ışık penetrasyonunu sağlar. Bu yöntemler, geri çevrilebilir ve gelişim 6-8 sırasındaki kortikal devrelerin heykel binoküler girdi desenli vizyon ve düşük seviyeli korelasyon rolünün anlaşılmasında değerli olduğu gösterilmiştir. Bu optik siniri 9,10 teşkil retina ganglion hücrelerinin girdi ilerici kaybı oluşturması nedeniyle glokom araştırmada, yetişkin hayvanlarda optik sinir ezilme modeli yaygın olarak kullanılmaktadır. Amaç geri dönüşümsüz bir kez spontan ve desenli hem vizyon kaldırmak için zaman göz ve böylece retina tamamen ve anında kaldırılır Öte yandan, enükleasyonu günü, yoksunluk uygun bir seçimdir. Ayrıca, aktivitesi haritalama çalışmaları 11,12 gürültü oranı sinyal geliştirmek için güçlü bir göz içi aktivitesi dengesizliği neden olur. Th enükleasyonuna yanıt olarak yapısal ve işlevsel değişiklikler Karşılaştırılmasıose örneğin kapak sütür olarak daha az şiddetli yöntemlerle yoksunluğu sonra da plastisite hem homeostatik ve sinaptik türleri spontan retina aktivite rolüne yeni anlayışlar ortaya olabilir.

Enükleasyon doğrudan retina hedefleri trofik etkileri kaybı tetikler. Örneğin, BDNF düzeyleri anlamlı lateral genikulat nükleus (LGN'nin) ve yetişkin enüklee sıçanların 13 üstün colliculus downregülasyona edilir. Yapısal biçimlenme aracılık haberci moleküller olarak işlev Reaktif oksijen türleri, aynı zamanda yetişkin farenin görme sistemi 14 subkortikal yapılarda tespit edilmiştir. Buna ek olarak, fare çalışmalarındaki farklı subkortikal görsel hedef yapılar arasında ve mikroglial Astroglial etkinleştirme bir hafta 15 sonrası belirli bir zaman dilimi içinde enükleasyonu meydana gelir. Birlikte, glial, yapı ve moleküler düzeyde farklı subkortikal yanıtlarında optik deaferentasyon sonuçlanır. Bu subkortikal rağmenetkiler, mutlaka kortikal seviyesi 16 at etkilerini ima etmez. Sonraki yoksun görsel kortekse olmayan görsel girdilerin güçlendirilmesine, diğer duyusal alanlardaki değişiklikler de dahil olmak üzere kayda değer, çapraz-modal kortikal plastisite, hem monoküler sonra ortaya (ME) 3,4,17,18 ve binoküler 1,17 (BE) enüklüeasyon.

Yanı sıra görsel Nörobilimdeki katkıda gelen deafferentasyonu bir türü enükleasyonu merkezi sinir sistemi nöro-koruyucu ve 19 nörodejeneratif 20-22 özellikleri arasında bir denge incelemek için kullanılabilir.

Enükleasyonu gerçekleştirmek için farklı prosedürler literatürde daha önce tarif edilmiştir. Sıçan ve farelerde in vivo ME için belirli yöntemler nedeniyle yörünge kas ve doku 23-25 ​​gereksiz kısımlara daha az açıktır. Böyle Mahajan vd gibi diğer yayınlar. (2011) 5 kullanılarak ayrıntılı bir protokol sağlar genotip-fenotip ilişkisi, büyük olasılıkla otopsi incelemek için gözleri bir yüksek verimli koleksiyonu için künt diseksiyon. Amaçları için, yöntem uygun ve hızlı. Bir çok göz kendisinden daha (canlı hayvan) enükleasyonu aşağıdaki afferent görsel yolu seçmesi çalışma Ancak, bu yöntem, in vivo enükleasyonu için daha az uygundur. Böyle bir ortamda, post-enükleasyon sağkalım yüksek önem taşımaktadır. Aynı zamanda, in vivo hasar ve optik sinirin korunması ve yörünge dokusu içinde çok az uygundur. Burada, FAGUET et al birine, daha çok benzer alternatif bir yöntem mevcut enükleasyonu (2008) 26, belirli avantajlı özellikler sunmaktadır:. Hızlı bir ameliyat sonrası iyileşme ile ilişkili olduğunu ve çok düşük bir öğrenme eşiği ile karakterize edilir araştırmacılar için. Göz morfolojisi veya görsel yolu araştırmada: Genel olarak, farklı yöntemler izleyen araştırma odak bağlı olarak tamamlayıcıdır.

Özetle ve_content ">, enükleasyon homeostatik ve çapraz-modal beyin plastisite, glial yanıt özellikleri ve akson istikrar araştırılması yönünde görüş araştırma uygulanabilir. Bu görsel yazıda, in vivo göz enükleasyon için uygulanabilir ve güvenilir bir yöntem olarak göstermek fare.

Protocol

Tüm deneyler KU Leuven etik araştırma komitesi tarafından onaylanmış ve Avrupa Toplulukları Konseyi Direktifi ile tam uyum içinde olduğunu gören 22 Eylül 2010 (2010/63 / AB) ve Belçikalı mevzuat (KB 29 Mayıs 2013). Her olası çaba hayvana acı en aza indirmek için ve hayvanların sayısını azaltmak için yapılmıştır.

1. Hayvan Tedavi ve anestezikler

  1. Ketamin hidroklorür (75 mg / ml) ve tuzlu su içinde medetomidin hidroklorür (1 mg / kg) karışımı ile karından bir enjeksiyonla fare anestezisi.
  2. Fare tamamen sedasyon sağlamak için bir forseps ile ayak kısma refleksleri kontrol edin.
  3. Göz kapaklarını ve bir pamuk ucu kullanarak göz çevresini dezenfekte% 70 etanol uygulayın. Ayrıca sedasyon derecesini değerlendirmek için göz kapağı refleksi kontrol edin.

2. Göz Çıkarma

  1. Emin olun hayvan bulunduğu bir düz ve kurupürüzsüz bir yüzey.
  2. Kavisli, tırtıklı ucu (: 0.5 x 0.4 mm tercih ucu boyutu) ile bir forseps sterilize.
  3. Yavaşça göz küresi prizden yerinden ve optik sinir ulaşılabilir kadar forseps ile canthus (gözün köşe) üzerine basın.
  4. Gözün arkasında forseps yönlendirin. Basın ve tercihen eğrinin başında ve forseps değil çok ucuyla sıkıca optik sinir tutun. Bu prizden dünyayı kaldırmaya ve tam optik siniri kelepçe yardımcı olacaktır.
  5. Fare düz yüzey üzerinde kalır el en az direnç ile yönünde forseps tutan dairesel hareketleri yapma. Fare, el hareketinin yönüne göre, yüzey boyunca katlanırlar.
  6. Optik sinir iki daraltılmış kadar giderek artan bir hızla bu eylemi gerçekleştirmek (genellikle 7 ila 15 dairesel hareketler arasında, yaklaşık bir buçuk saniyede bir tam tur). Bu nedenle, müstakil küresi olduğukaldırıldı.

3. Post-operatif Bakım

  1. (Nadir) kanama durumunda, yapışkan bir kolojen ve hemostatik bir madde ile yörünge doldurun.
  2. Intraperitoneal tuzlu su içinde atipamezol hidroklorür, 1 mg / kg enjekte edilerek anestezi Ters.
  3. Ağrıyı gidermek için intraperitonal, her 24 saat Meloksikamın, 1 mg / kg uygulayın.
  4. Korneanın su kaybını önlemek için kalan göze göz merhemi sürün.
  5. Hayvan bir ısıtma plakası üzerinde geri ve vücut sıcaklığının kontrol edilmesi için ayrı bir kafes içinde yalıtım malzemesi hayvanı kaydırma sağlar.
  6. En az 2 gün boyunca her gün fare ağırlığını ölçün. Kilo kaybı acı işaret eder ve Hayvan tamamıyla iyileşti kadar, bu durumda, meloksikam tedaviye devam edebilir.

Representative Results

Şekil 1, tarif edilen protokol kullanılarak, gözün başarılı bir şekilde uzaklaştırıldığını göstermektedir ve kanama yokluğu veya yörünge dokusu veya göz soket (Şekil 1A, 1B) herhangi bir fiziksel hasar ile karakterize edilir. Bundan başka, göz çıkarıldı bütünüyle dokunulmamış dünya (Şekil 1C) göstergesi olan bir düz kornea, koroid ve optik diski vardır. Protokolümüz göz ve mekanik çevirme arkasında optik sinirin sıkılmasına içine aldığı, kaldırılan gözün optik sinir retina (Şekil 1D) tabanında kısıtlıdır. Çevredeki beyin alanına (Şekil 1E) herhangi bir zarar vermeden temiz bir kesim optik sinir açıklanan prosedür sonuçlarını Sahne.

Tek gözlü enüklüeasyon, eşleme aktivitesi (Şekil 2) ile kombinasyon halinde, bir keskin karşı Visua işlevsel ya da göz spesifik bir giriş bölgeleri ifade sağlarmaymunlar 28 gibi yüksek mertebeden memelilerde fare 12,27 hatta göz baskınlığı sütunların l korteks.

Fareler deney, biri kaldırılması (ME) ya da her iki gözün hedef görsel uyarı ve zif268 mRNA veya c-fos protein ekspresyon düzeylerinin saptanması ile birlikte (BE), görsel kortekse 12,27 bölgesel nöronal aktivasyonunu ortaya çıkarmak için uygulanan . Görsel olarak uyarılmış kontrollere (Şekil 2A) aksine, BE farenin görsel giriş (Şekil 2B) eksikliği tamamlamak için bağlı görsel korteksteki temel aktivite gösterdi. Gibi, olmayan görsel korteksin (yani. Daha ön bölüm ve daha posterior bölümlerinde işitsel kortekste somatosensori korteks) ile görsel arasındaki sınırları ortaya çıkarılmıştır. Bir haftalık sağkalım süresi ile ME farelerin Sonuçları kontralateral görme korteksi göz spesifik giriş bölgeleri görüntülendi. İki tahrik monocularly bölge hipoaktif ve medi bulunduğuEl ve merkezi binoküler bölgesinde (Şekil 2C) lateral.

Şekil 1
Göz soket, kaldırılır ve gözün optik sinirin sonrası enüklüeasyon devletin Şekil 1. Kalitatif değerlendirme. Kavisli bir forseps (A) herhangi bir kanama veya hasar göz soket (B) gözlenen ile gözün çıkarılmasından sonra. , Kornea ve koroid (C, D) normal bir görünüm ile yansıtılan çıkarılan göz tamamı ile faal olduğu. Optik sinir o göz (D) bırakır optik diskte daraltılır. Beynin ventral kısmının incelenmesi temiz bir kesim ve optik sinirin (yıldız) ve diğer yapıların (E) belirgin bir hasar ortaya koymaktadır. C, D Ölçek çubukları: 1 mm. E'deki ölçek çizgisi: 5 mm. A: ön; L: sol; P: Posterior; R: sağ.


Şekil enükleasyonla ortaya olarak fare görme korteksi 2. Fonksiyonel göz giriş özgü alt bölümleri. Gözleri ve korteks bağlamak siyah ve gri çizgiler retina afferentlerinden ve göz spesifik giriş bölgelerin üzerinde geçişini temsil eder. Sinirsel aktivite kontrolü (A) koronal bölümleri ¨orsellestirilen, (B) BE, ve zif268 (gri skala) in situ hibridizasyon (ISH) radyoaktif ME (C) farenin Bregma seviyesi etrafında -3.40 mm. Kontrol hayvanlarında (A), her iki yarıküre içindeki görsel korteks görsel uyarı aşağıdaki yüksek aktivitesini ekspres eder. Bir veya her iki göz (ler) kesilip zaman, sinyal aktivitesi belirgin bir azalmaya yol yoksun kortikal mukabil bölümlerine görülebilir. Monocularly (C) farenin yüksek AÇTI bir bölgeyi gösteriyor enükleekaldırılan göze karşı monoküler bölgelerinde bir azalma sinyali ile çevrili görsel korteksin binoküler bölgesinde vity. Ölçek çizgisi: 2 mm olmuştur. Van Brussel ark 12 izni ile yayımlanmaktadır.

Discussion

Bizim yöntemine göre başarılı bir enüklasyonu gerçekleştirmek için, dikkat edilmesi gereken en önemli adımlar şunlardır: 1) uygun büyüklükte bir kavisli ve tırtıklı ucu ile bir forseps kullanarak; 2) düzgün ve kuru bir yüzey üzerinde enükleasyonunu yapmak; ve 3) kademeli olarak en az sürtünme ile bir yönde dairesel hareketler hızlandırılması.

Etkili bir sonuç için bir eğri ve tırtıklı ucu ile karakterize uygun bir forseps kullanmak esastır (: fare: Tercih uç boyutu 0.5 x 0.4 mm; sıçan: 2.15 x 1.3 mm). Eğrilik küresi değiştirme sonrası optik sinir için kolay bir erişim sağlar ve dairesel hareketler gerçekleştirirken doğru el yerleştirilmesi için gereklidir. Optik sinir tutarken onlar gerekli tutuş olmadıklarıdan Pürüzsüz ipuçları tavsiye edilmez. Dairesel hareketleri sırasında düzgün optik siniri tutmak için başarısızlık oftalmik arter, gözün yoksul dekolmanı ve dolayısıyla kötü tekrarlanabilirlik yırtılması ile sonuçlanır.Bu nedenle, in vivo olarak bir kez uygulanması yöntemi maksimal hayvan bakımını temin etmek için işleme forseps optimizasyonu için ötenazi hayvanlar üzerinde ilk uygulama için bu tekniği tavsiye edilir. Başarılı göz enükleasyon yakın zamanda elle hayvan vücudu torna ve forseps sabit tutmak dışında aynı tekniği kullanarak bizim laboratuvar sıçan yapılmıştır.

Tekniğinin bir sınırlama muhtemelen retinaya zarar verebilecek olmasıdır. Bu yüzden, bu yöntem, histoloji 5 gerçekleştirmek retina toplanması için daha az uygundur. Ayrıca, bizim yöntem küresi kaldırma veya göz kapaklarının kesmeden prizden yerinden edilmesi gerekiyor çünkü göz açma yaş sonrası sınırlıdır.

Kemirgenler dahil olmak üzere farklı türlerde, Göz enükleasyon, rutin genellikle göz kapaklarının kaldırılmasını gerektirecektir alternatif yöntemleri kullanarak ve optik siniri 18,23-25 ​​kesim yapılır. Bu yöntemiids daha invaziv olma eğilimindedir ve burada açıklanan tekniğe göre daha yüksek bir öğrenme eğrisi vardır. Kaldırma veya göz kapaklarının dikilmesi için gerek kalmadan, cerrahi sonrası iyileşme süresi daha yüksek hayvan refahı ve daha tekrarlanabilir sonuçlar elde simge edilir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ketamine hydrochloride (Anesketin) Dechra Veterinary Products (Eurovet) BE-V136516
Medetomidine hydrochloride (Domitor) Orion Corporation (Janssen Animal Health) BE-V151742
Atipamezol hydrochloride (Antisedan) Orion Corporation (Elanco Animal Health) BE-V153352
Antibiotics (cefazolin, Kefzol) Eurocept Pharmaceuticals BE 106267
Eye ointment (Fucithalmic) Leo Pharma nv-sa BE 144654
Moria MC31 Forceps - Serrated Curved Fine Science Tools 11370-31 For application in the mouse. Any forceps with similar dimensions can be used as long as the tip is curved and serrated.
Narrow Pattern Forceps - curved Fine Science Tools 11003-13 For application in the rat. Any forceps with similar dimensions can be used as long as the tip is curved and serrated.
Hemostatic cotton wool Qualiphar N/A Other hemostatic agents are equally suitable (e.g., Viscostat, #649, Ultradent Products)

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Toldi, J., Fehér, O., Wolff, J. R. Neuronal plasticity induced by neonatal monocular (and binocular) enucleation. Progress in Neurobiology. 48, (3), 191-218 (1996).
  2. Steeves, J. K. E., González, E. G., Steinbach, M. J. Vision with one eye: a review of visual function following unilateral enucleation. Spatial vision. 21, (6), 509-529 (2008).
  3. Van Brussel, L., Gerits, A., Arckens, L. Evidence for cross-modal plasticity in adult mouse visual cortex following monocular enucleation. Cerebral Cortex. 21, (9), 2133-2146 (2011).
  4. Nys, J., Aerts, J., Ytebrouck, E., Vreysen, S., Laeremans, A., Arckens, L. The cross-modal aspect of mouse visual cortex plasticity induced by monocular enucleation is age-dependent. Journal of Comparative Neurology. 522, (4), 950-970 (2014).
  5. Mahajan, V. B., Skeie, J. M., Assefnia, A. H., Mahajan, M., Tsang, S. H. Mouse eye enucleation for remote high-throughput phenotyping. Journal of Visualized Experiments. (57), e57 (2011).
  6. Morales, B., Choi, S. -Y., Kirkwood, A. Dark rearing alters the development of GABAergic transmission in visual cortex. Journal of Neuroscience. 22, (18), 8084-8090 (2002).
  7. Chen, X. J., Rasch, M. J., Chen, G., Ye, C. Q., Wu, S., Zhang, X. H. Binocular input coincidence mediates critical period plasticity in the mouse primary visual cortex. Journal of Neuroscience. 34, (8), 2940-2955 (2014).
  8. Konur, S., Yuste, R. Developmental regulation of spine and filopodial motility in primary visual cortex: Reduced effects of activity and sensory deprivation. Journal of Neurobiology. 59, (2), 236-246 (2004).
  9. Parrilla-Reverter, G., et al. Time-course of the retinal nerve fibre layer degeneration after complete intra-orbital optic nerve transection or crush: A comparative study. Vision Research. 49, (23), 2808-2825 (2009).
  10. Galindo-Romero, C., et al. Axotomy-induced retinal ganglion cell death in adult mice: Quantitative and topographic time course analyses. Experimental Eye Research. 92, (5), 377-387 (2011).
  11. Kanold, P. O., Kim, Y. A., GrandPre, T., Shatz, C. J. Co-regulation of ocular dominance plasticity and NMDA receptor subunit expression in glutamic acid decarboxylase-65 knock-out mice. The Journal of Physiology. 587, (12), 2857-2867 (2009).
  12. Van Brussel, L., Gerits, A., Arckens, L. Identification and localization of functional subdivisions in the visual cortex of the adult mouse. Journal of Comparative Neurology. 514, (1), 107-116 (2009).
  13. Avwenagha, O., Bird, M. M., Lieberman, A. R., Yan, Q., Campbell, G. Patterns of expression of brain-derived neurotrophic factor and tyrosine kinase B mRNAs and distribution and ultrastructural localization of their proteins in the visual pathway of the adult rat. Neuroscience. 140, (3), 913-928 (2006).
  14. Hernandes, M. S., Britto, L. R. G., Real, C. C., Martins, D. O., Lopes, L. R. Reactive oxygen species and the structural remodeling of the visual system after ocular enucleation. Neuroscience. 170, (4), 1249-1260 (2010).
  15. Cuyvers, A., Paulussen, M., Smolders, K., Hu, T. -T., Arckens, L. Local cell proliferation upon enucleation in direct retinal brain targets in the visual system of the adult mouse. Journal of Experimental Neuroscience. 4, 1-15 (2010).
  16. Smith, S. L., Trachtenberg, J. T. Experience-dependent binocular competition in the visual cortex begins at eye opening. Nature Neuroscience. 10, (3), 370-375 (2007).
  17. Toldi, J., Farkas, T., Völgyi, B. Neonatal enucleation induces cross-modal changes in the barrel cortex of rat. A behavioural and electrophysiological study. Neuroscience Letters. 167, (1-2), 1-4 (1994).
  18. Newton, J. R., Sikes, R. W., Skavenski, A. A. Cross-modal plasticity after monocular enucleation of the adult rabbit. Experimental Brain Research. 144, (4), 423-429 (2002).
  19. Lalonde, J., Chaudhuri, A. Dynamic changes in CREB phosphorylation and neuroadaptive gene expression in area V1 of adult monkeys after monocular enucleation. Molecular and Cellular Neuroscience. 35, (1), 24-37 (2007).
  20. You, Y., Gupta, V. K., Graham, S. L., Klistorner, A. Anterograde degeneration along the visual pathway after optic nerve injury. PLoS ONE. 7, (12), e52061 (2012).
  21. Kelly, K. R., McKetton, L., Schneider, K. A., Gallie, B. L., Steeves, J. K. E. Altered anterior visual system development following early monocular enucleation. NeuroImage: Clinical. 4, 72-81 (2014).
  22. Chow, A. M., Zhou, I. Y., Fan, S. J., Chan, K. W. Y., Chan, K. C., Wu, E. X. Metabolic changes in visual cortex of neonatal monocular enucleated rat: a proton magnetic resonance spectroscopy study. International Journal of Developmental Neuroscience. 29, (1), 25-30 (2011).
  23. Dyer, R. S., Hammond, M. Effects of enucleation in retinal degenerate mice. Physiology & behavior. 14, (2), 207-210 (1975).
  24. Smith, S. A., Bedi, K. S. Unilateral eye enucleation in adult rats causes neuronal loss in the contralateral superior colliculus. Journal of Anatomy. 190, (4), 481-490 (1997).
  25. Gonzalez, D., et al. Effects of monocular enucleation on calbindin-D 28k and c-Fos expression in the lateral geniculate nucleus in rats. Okajimas folia anatomica Japonica. 82, (1), 9-18 (2005).
  26. Faguet, J., Maranhao, B., Smith, S. L., Trachtenberg, J. T. Ipsilateral eye cortical maps are uniquely sensitive to binocular plasticity. Journal of Neurophysiology. 101, (2), 855-861 (2008).
  27. Van der Gucht, E., Hof, P. R., Van Brussel, L., Burnat, K., Arckens, L. Neurofilament protein and neuronal activity markers define regional architectonic parcellation in the mouse visual cortex. Cerebral Cortex. 17, (12), 2805-2819 (2007).
  28. Chaudhuri, A., Matsubara, J. A., Cynader, M. S. Neuronal activity in primate visual cortex assessed by immunostaining for the transcription factor Zif268. Visual Neuroscience. 12, (1), 35-50 (1995).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics