Методы классификации цитоплазматических фокусов в качестве гранул стресса млекопитающих

* These authors contributed equally
Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Гранулы напряжения (SG) представляют собой неембранные цитоплазматические структуры, которые образуются в клетках, подверженных различным стрессам. SGs содержат мРНК, РНК-связывающие белки, небольшие рибосомальные субъединицы, факторы, связанные с трансляцией, и различные клеточные сигнальные белки. Этот протокол описывает рабочий процесс, который использует несколько экспериментальных подходов для обнаружения, характеристики и количественной оценки добросовестных SG.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Aulas, A., Fay, M. M., Szaflarski, W., Kedersha, N., Anderson, P., Ivanov, P. Methods to Classify Cytoplasmic Foci as Mammalian Stress Granules. J. Vis. Exp. (123), e55656, doi:10.3791/55656 (2017).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Внезапные изменения окружающей среды часто вызываются клетками. Гранулы напряжения (SG), цитоплазматические рибонуклеопротеидные комплексы, которые образуются в клетках, подвергающихся стрессовым условиям, вовлечены в различные аспекты клеточного метаболизма и выживания. SGs модулируют клеточные сигнальные пути, посттранскрипционную экспрессию генов и программы ответа на стресс. Образование этих гранул, содержащих мРНК, непосредственно связано с клеточным переносом. Собрание СГ запускается с помощью запрещенной инициации трансляции, и разборке СГ способствует активация трансляции или ингибированное удлинение трансляции. Эта взаимосвязь дополнительно подчеркивается составом ГС. Основными компонентами SG являются заторможенные трансляционные комплексы трансляции, мРНК и выбранные РНК-связывающие белки (RBPs). Цель сборки SG - сохранить клеточную энергию путем секвестрации трансляционно застопоренной домашней мРНК, позволяющей усиленный перенос стрессоустойчивых белков. В добавленииПо отношению к основным компонентам, таким как блокировки предизайсирования прерванного перевода, SG содержат множество других белков и сигнальных молекул. Дефекты в образовании СГ могут нарушить клеточную адаптацию к стрессу и, таким образом, способствовать клеточной гибели. SG и подобные РНК-содержащие гранулы были связаны с рядом заболеваний человека, включая нейродегенеративные расстройства и рак, что привело к недавнему интересу к классификации и определению подтипов РНК-гранул. Этот протокол описывает анализы для характеристики и количественной оценки SG млекопитающих.

Introduction

Клетки используют множество механизмов для ответа на стресс. Некоторые ответы происходят на посттранскрипционном уровне и включают регуляцию трансляции мРНК и / или стабильности 1 , 2 . Блокирование и деградация трансляционного движения мРНК, вызванные стрессом, связаны с образованием специфических неэмбринозных клеточных фокусов, наиболее хорошо охарактеризованными как гранулы напряжения (SGs) 3 . SG являются цитоплазматическими очагами, которые концентрируют нетранслирующие mRNPs в трансляционно-арестованных клетках, реагирующих на стресс ( например, окисление, тепловой шок, голодание от питательных веществ и вирусная инфекция) 4 . Помимо нетранслирующих мРНК, SG содержат факторы инициации трансляции, РНК-связывающие белки и различные сигнальные белки 5 . SG являются биомаркерами ингибированного трансляции белка и измененным метаболизмом РНК и связаны с выживанием и апоптозом клеток, сигнальным путемS, и ядерные процессы 5 .

SG - динамические сущности, и их формирование тесно связано со статусом клеточного перевода 6 . Несмотря на кажущийся солидный внешний вид, большинство белковых компонентов SG быстро перемещаются внутрь и наружу с временем пребывания в секундах. Хотя SGs сохраняются от нескольких минут до нескольких часов, большинство их компонентов находятся в быстром темпе. Торможение инициации трансляции и последующая разборка трансляционных полисом способствуют формированию SG; Таким образом, SGs находятся в равновесии с трансляционными полисомами. Это равновесие полисом / СГ является ключевым для отличия добросовестных СГ от других стрессовых очагов 6 , 7 .

Арест инициации трансляции влечет за собой преобразование трансляционно-компетентных пред-инициационных комплексов, которые содержат мРНК, факторы инициации трансляции (eIF) и 40S рибосомные субъединицы (s О-названные комплексы 48S) в трансляционно-заторможенные комплексы (так называемые комплексы 48S *), которые могут слипаться в SG 4 , 6 . SG стимулируются трансляционным арест на двух разных стадиях перед комплексом комплексов 48S: интерференция с функциями cap-binding eIF4F комплекса ( например, нацеливание на его субъединицу eIF4A) или фосфорилирование α-субъединицы фактора инициации трансляции eIF2, опосредованного одним Или более из четырех киназ eIF2. Наличие остановленных комплексов 48S ( то есть 40S рибосомных субъединиц и выбранных факторов инициации трансляции) является отличительным признаком 8 , 9 ПГ.

SGs были связаны с различными патологическими состояниями, такими как вирусные инфекции, нейродегенерация, аутоиммунитет и рак 3 , 10 , 11 ,Ss = "xref"> 12 , 13 . Мутированные формы нескольких компонентов СГ связаны с нейродегенеративными заболеваниями ( например, амиотрофическим латеральным склерозом), в которых нейроны обнаруживают внутриклеточные патологические включения, которые могут играть активную роль в гибели нейронов 13 . Некоторые вирусы захватывают SG-компоненты для ингибирования образования SG и усиления репликации вируса 14 . Недавние исследования также связывают СГ с раком 15 и выживаемостью раковых клеток при химио- и лучевой терапии 10 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 . Хотя такие данные вызвали большой интерес в биологии СГ, во многих опубликованных докладах отсутствуют важные средства контроля, позволяющие отличить образование добросовестных СГ от других очагов, вызванных стрессом,

Первоначально SG были описаны как неембранные цитоплазматические фокусы, состоящие из выбранных белков связывания мРНК (RBPs), включая Т-клеточный ntracellular antigen 1 (TIA-1) и Poly-A-связывающий белок (PABP); Факторы инициации трансляции; Полиаденилированная мРНК; И небольшие рибосомные субъединицы 4 , 6 , 21 , 22 . Традиционно их состав определяли с помощью таких методов, как иммунное окрашивание и эктопическая экспрессия флуоресцентно меченных белков 23 , 24 . Из-за их очень динамичной природы иммунолокализация белков SG и / или мРНК остается определяющей методологией для обнаружения ПГ 23 , 24 . На сегодняшний день многие RBPs и другие белки (более 120 различных белков) описаны как компоненты SG 11 . Так как многие SG-локализованные белки изменяют свою локализацию как в зависимости от стресса, так и независимым образом и могут накапливаться в других внутриклеточных компартментах и ​​фокусах, важно выбирать правильные маркеры SG и использовать функциональные критерии, чтобы отличать SG от других типов индуцированных стрессом фокусы. Добросовестные СГ содержат мРНК, факторы инициации трансляции и небольшие рибосомальные субъединицы и находятся в динамическом равновесии с трансляцией.

Этот простой рабочий процесс предназначен для определения того, являются ли стрессовые очаги добросовестными SGs. Этот рабочий процесс включает в себя несколько экспериментальных подходов с использованием клеток U2OS, клеток, обычно используемых для изучения ПГ. Эти клетки идеальны, так как они имеют большую цитоплазму, относительно плоские и сильно прикрепляются к покровным стеклам. Другие типы клеток могут быть использованы для изучения ПГ, но важно знать, что различия в сроках, концентрации лекарств и распространении белков с SG-нуклеацией могут изменить кинетику и составsition. Кроме того, некоторые клетки реагируют на фиксацию параформальдегида путем образования пузырьков на поверхности клеток, что приводит к появлению раздражения, которое вызывает точечную локализацию некоторых маркеров SG; Без тщательного анализа они могут быть классифицированы как SG. Это подчеркивает необходимость оценки всех критериев, необходимых для выявления очагов, вызванных стрессом, как добросовестных ПГ. В качестве стресса для экспериментов в этом протоколе используются Vinorelbine (VRB), терапевтический рак, который стимулирует SG 20 , а также арсенит натрия (SA), надежный и хорошо охарактеризованный индуктор SG.

Канонические SG содержат несколько маркеров SG (как белков, так и мРНК), которые колокализуются в цитоплазматических очагах. Этот протокол использует как иммунофлюоресценцию, так и флуоресцентную гибридизацию in situ (FISH) для обнаружения локализации белковых маркеров и полиаденилированной мРНК 22 соответственно. Короче говоря, косвенная иммунофлуоресценция использует антитела ( т.е.е. Первичные антитела), специфичные для данного белка, чтобы обнаружить его в клетке. Затем вторичные антитела (обычно видоспецифичные), прикрепленные к флуорохромам, распознают первичное антитело и обнаруживают локализацию целевого белка. Флуоресцентная микроскопия используется для обнаружения локализованного сигнала внутри клетки. Использование антител, продуцированных у разных видов и выявление их с помощью окрашенных вторичных антител, позволяет выявлять колокализацию множественных антител, указывая на то, что их белковые мишени находятся в одном и том же месте 23 . Важно выбрать маркеры, которые были проверены, чтобы сокоализировать на добросовестных SGs.

FISH использует меченый зонд, который основал пары с определенной РНК или последовательностью ДНК 25 . Для детектирования мРНК в этом протоколе используется биотинилированный олиго (dT) 40 зонд, который гибридизует (или пары оснований) с полиА-хвостом мРНК ( то есть polyA FISH). Затем биотинилированный зонд детектируют с использованием флуоресцентно конъюгированного стрептавидина, поскольку стрептавидин имеет высокое сродство к биотину. При оценке СГ важно соединить полиА FISH с иммунофлюоресценцией, обнаруживающей маркер СГ, как в добросовестных ИК, два сигнала должны быть колокализованными.

Используя этот протокол, колокализация оценивается несколькими способами. В многоканальном ( например, RGB: красном, зеленом и синем) изображении колокализация изменит цвет перекрывающегося сигнала ( например, красные и зеленые цвета будут казаться желтыми) 23 . Кроме того, коликализация количественно определяется графически с использованием анализа линейного сканирования, где интенсивность каждого из цветов измеряется по заданной строке 8 , 20 . Этот протокол описывает две процедуры анализа линейного сканирования, используя ImageJ 26 . Одна процедура является ручной и проходит весь процесс,Le other использует макрос, или простую программу, которая автоматизирует шаги вручную. Для понимания макропрограммы важно пройти через ручную программу.

SGs формируются в клетках, где трансляция репрессирована; Поэтому клетки с SG должны отображать пониженные уровни глобального перевода по сравнению с необработанными клетками. Экспериментально используют рибопуромицилирование. Пуромицин и эметин добавляют к клеткам в течение короткой продолжительности до фиксации, позволяя пуромицину встраиваться в активно формирующие полипептиды, вызывая окончание 27 , 28 . Лечение эметином необходимо для предотвращения повторного начала 29 . Пуромицин затем может быть обнаружен с использованием антител против пуромицина, что дает моментальный снимок активного перевода. Этот метод используется потому, что он быстрый, не требует предварительного голодания со средой, лишенной определенной аминокислоты (и потенциально преднапрягающей клетки), и раскрываетСубклеточная локализация трансляции белка. Другие методы, в частности с использованием модифицированных аналогов аминокислот, таких как L-азидохомоалин (AHA) метионина, в сочетании с химией 30 «click it it», используются для того, чтобы показать, что клетки, содержащие SGs, демонстрируют значительно более низкую трансляцию, чем соседние клетки 31 . Однако этот метод требует метионинового голодания с последующим импульсным мечением в течение 15-30 мин. Голодание метионином представляет собой дополнительный стресс, в то время как длительное время маркирования ( то есть 15-30 мин) приводит к измерению кумулятивного, а не продолжающегося трансляции, а также позволяет вновь синтезированным белкам перемещаться со своего сайта синтеза в конечный пункт назначения в пределах клетка. Напротив, рибопуромицилирование происходит гораздо быстрее и совместимо с любой средой, такой как безглюкозная среда, используемая для индуцирования SGs посредством голодания в глюкозе.

Канонические СГ находятся в динамическом равновесииС активным переводом полисом. Это можно оценить экспериментально, обработав образцы лекарственными препаратами, которые стабилизируют или дестабилизируют полисомы, тем самым опрокидывая баланс между SG и полисомами 23 . Циклогексимид (или эметин, который ведет себя аналогичным образом) блокирует удлинение, «замораживая» рибосомы на мРНК, таким образом уменьшая пул доступных неполисомных mRNP, способных образовывать SG. Экспериментально это можно использовать двумя способами: добавлением циклогексимида (или эметина) до стресса для предотвращения образования SG или добавлением циклогексимида (или эметина) после образования SG, даже не снимая нагружающего агента, вызывая разборку SG, так как она заторможена Преинитирующие комплексы медленно вводятся в полисомную фракцию. Наоборот, пуромицин вызывает преждевременное прекращение действия и способствует разборке полисом, увеличивая пул инициирующих мРНК, способных к сборке в SG. Экспериментально лечение пуромицином увеличивает количество ПГ или снижает тресколD, при котором они образуются в ответ на градуированный стресс или дозировку лекарственного средства. При оценке влияния пуромицина важно использовать субмаксимальный уровень представляющего интерес лекарственного средства, поскольку пуромицин, как ожидается, будет увеличивать действие препарата и увеличивать процент клеток, отображающих SG, - это не может произойти, если препарат / Стресс вызывает SGs в 100% клеток изначально. Это контрастирует с обработкой циклогексимидом, которая разбирает SGs и работает лучше всего, когда ~ 95% клеток первоначально показывают SGs, так что можно наблюдать и точно количественно измерять максимальное возможное снижение.

Этот протокол обеспечивает основу для изучения SGs в клетках млекопитающих. Методы включают: (1) иммунофлуоресцентное окрашивание и анализ ImageJ для оценки колокализации классических связанных с SG маркеров eIF4G, eIF3b и Ras GTPase-активирующий белок-связывающий белок 1 (G3BP1) в предполагаемых SG; (2) олиго (dT) флуоресценции in situ гибридизации (polyA FISH) для обнаружения полиаденилированной мРНК; (3) обработку циклогексимидом и пуромицином для определения, находятся ли индуцированные стрессом очаги в динамическом равновесии с полисомами; И (4) рибопуромицилирование для оценки трансляционного статуса клеток, содержащих предполагаемые SG. Вместе эти тесты могут определить, могут ли стрессовые очаги классифицироваться как добросовестные ПГ.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Подготовка клеток

  1. Добавить покровные покровные стекла в 12 лунок 24-луночного планшета, как показано на рисунке 1A ; Это можно сделать, используя стерильную пипетку Пастера, прикрепленную к вакууму, чтобы подобрать каждое покровное. Аккуратно нажмите покровное на стороне колодца, чтобы освободить всасывания, позволяя покровное попасть в колодец.
  2. Планшет 1 × 10 5 клеток U-2 OS (U2OS) остеосаркомы на лунку в конечном объеме 500 мкл среды. Переместите плиту стороной в сторону и вверх и вниз несколько раз, чтобы обеспечить равномерное распределение ячеек.
  3. Аккуратно нажмите покровные вниз с чистым кончиком P1000, чтобы гарантировать, что покровное стекло находится на дне колодца и что под покровным стеклом нет пузырьков.

2. Подчеркивание ячеек

  1. На следующий день визуально проверьте пластину, чтобы убедиться, что клетки равномерно распределены и равномерно сливаются через покровное стекло, так как вариации между saМогут отрицательно влиять на воспроизводимость результатов. Используйте объектив 10X на инвертированном микроскопе тканевой культуры.
  2. Предварительно подогрейте среду до 37 ° C. Избегайте нанесения на ячейки холодных или горячих сред, так как они вызывают холодный шок или тепловой шок, соответственно.
  3. Развести препараты в предварительно нагретых средах. Для каждой концентрации различных лекарств подготовьте 2 лунки, содержащие 500 мкл среды. Подготовьте дополнительные 500 мкл, чтобы учесть потери при пипетировании. Аликвоту 4 пробирки, каждая из которых содержит 1,5 мл.
    1. Для арсенита натрия: в каждую лунку, содержащую 500 мкл, добавьте 1,5 мкл 100 мМ арсенита натрия (конечная концентрация: 100 мкМ) или добавьте 0,75 мкл 100 мМ арсенита натрия (конечная концентрация: 50 мкМ).
    2. Для винорельбина: в каждую лунку, содержащую 500 мкл, добавьте 22,5 мкл 10 мМ винорелбина (конечная концентрация: 150 мкМ) или добавьте 18,75 мкл 10 мМ винорелбина (конечная концентрация: 100 мкМ).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Арсенит натрия Является хорошо охарактеризованным и обычно используемым индуктором напряжения гранул и поэтому классически используется в качестве положительного контроля.
  4. Извлеките и выбросьте носитель из лунок В1 - 4 и С1 - 4. Добавьте носитель с лекарствами и подождите 60 мин (рис. 1А).
    1. Добавить 500 мкл среды со 100 мкМ арсенита натрия в лунки В1 и В2. Добавить 500 мкл среды с 50 мкМ арсенита натрия в лунки В3 и В4.
    2. Добавить 500 мкл среды с 150 мкМ винорелбина в лунки С1 и С2. Добавить 500 мкл среды с 125 мкМ винорелбина в лунки С3 и С4.
  5. За 30 мин до фиксации лунки в колонке 2 обрабатывают 5 мкл циклогексимида (1 мг / мл массы), а лунки в колонке 4 с 2 мкл пуромицина (1,25 мг / мл массы). Аккуратно встряхните пластину, чтобы она перемешалась, и положите пластину обратно в инкубатор с температурой 37 ° C.

3. Фиксация клеток и иммунофлюоресценция

Nt "> ПРИМЕЧАНИЕ: Перед экспериментом убедитесь, что метанол охлажден до -20 ° C. Сделайте буферы, включая фосфатно-буферный солевой раствор (PBS), 5% нормальной сыворотки лошадей (NHS) в PBS и 4% параформальдегида (PFA ) В PBS.

  1. Выбросьте носитель и промойте лунки, содержащие покровные стекла, PBS. В зависимости от используемых лекарств может быть важно надлежащим образом отказаться от медикаментов, содержащих наркотики; Обратитесь за инструкциями в местное отделение экологической безопасности. Чтобы мыть эффективно, заполните бутылку с отжимом PBS, отрежьте кончик, чтобы обеспечить мягкий поток, а не жесткий поток, и используйте это, чтобы добавить PBS в каждую лунку после аспирации оригинального PBS.
  2. Зафиксируйте клетки, используя ~ 250 мкл 4% PFA в течение 15 мин при комнатной температуре при осторожном перемешивании. Полностью накройте верхнюю часть покровного стекла PFA; 250 мкл должно быть достаточно, но если нет, добавьте еще. Всегда избегайте пипетирования непосредственно на покровные стекла, так как некоторые клетки (или стрессовые обработки клеток) могут изменить прикрепление, а tОн заставляет пипетку вытеснять клетки.
  3. Удалите PFA и утилизируйте правильно. Обратитесь в местное отделение экологической безопасности за информацией о том, как правильно выбрасывать параформальдегид.
  4. Добавить ~ 250 мкл метанола (-20 ° С) и инкубировать в течение 5 мин при комнатной температуре при осторожном качании; Это и проницает, и выравнивает клетки.
  5. Удалить и выбросить метанол и заблокировать клетки, применяя ~ 250 мкл 5% NHS в течение 1 часа при RT O / N при 4 ° C. Обратитесь в местное отделение экологической безопасности за информацией о том, как правильно выбрасывать метанол.
  6. Для первичных антител развести антитела в 5% NHS.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Использование нескольких маркеров SG является ключевым для подтверждения того, являются ли наблюдаемые гранулы добросовестными SGs. Количество маркеров SG, которые могут использоваться, зависит от фильтров, доступных в микроскопе. Если доступны стандартные фильтры зеленого, красного и дальнего красного, используйте G3BP1, eIF4G и eIF3b при разведении 1/250.
  7. Промывают лунки 3 раза PBS и инкубируют каждую промывку в течение 5 мин.
  8. Для вторичных антител разбавьте все вторичные антитела (разведение 1/250) и краситель Хехст (разведение 1/1000) в 5% NHS.
    1. Для этого эксперимента (12 покровных на 250 мкл каждого - всего: 3 мл 5% NHS) добавьте по 12 мкл каждого из следующего: Cy2-Mouse, Cy3-Rabbit и Cy5-Goat (разведение 1/250 каждого ) И добавляют 3 мкл красителя Хехста.
    2. Инкубируйте покровные стекла с вторичными антителами в течение 1 часа при комнатной температуре. Во время этого и следующих шагов защитите образцы от света, закрыв пластину коробочкой или положив фольгу поверх верхней части чашки для культуры ткани.
  9. Вымойте мыТри раза с PBS в течение 5 мин каждый.
  10. Установите покровные стекла на маркированные стеклянные слайды с помощью монтажной среды. Нагревают среду для монтажа в термостате с температурой 37 ° C в течение 10 мин; Это уменьшает вязкость и облегчает пипетирование. С отрезанным наконечником P200 пипеткой поместите 25 мкл монтажной среды на покровное стекло на предметное стекло; 4-8 покровные стекла могут поместиться на одном стеклянном слайде, предполагая, что микроскопа этап позволяет это. Используя тонкие щипцы, перенесите покровное стекло из лунки на предметное стекло, следя за тем, чтобы ячейка была направлена ​​вниз на монтажный материал. Используя чистый наконечник P200, нажмите покровное стекло вниз.
  11. После того, как все покровные были установлены, используйте сложенную лабораторную ткань для очистки излишней монтажной среды, очень сильно надавливая на ткань лабиринта. Используйте выжимную бутылку, содержащую H 2 O, чтобы смыть избыточную среду для установки, а затем повторите процедуру блоттинга со сложенной лабораторной тканью для удаления воды.

4. Флуоресценция In Situ </ Em> Гибридизация (FISH)

  1. Пластину и лечить клетки, используя шаги 1 и 2.1-4 в качестве ориентира; Необходимо только покрыть ячейки в столбце 1, поскольку в следующем эксперименте необходимы только 3 покровных стекла.
  2. Убедитесь, что все буферы подготовлены ( т.е. 4% PFA в PBS, 70% этанола в воде, 2x Saline-Sodium-Citrate (SSC) и 5% NHS), что метанол охлаждается до -20 ° C, и что Печь для гибридизации нагревается до соответствующей температуры.
  3. Выполните шаги 3.1-3.3 для мытья и фиксации клеток.
  4. Пермебилизировать клетки, добавляя метанол -20 ° С в течение 10 мин.
  5. Удалить метанол и инкубировать покровные в 70% этанола. Поместите пластину при 4 ° C на ночь. Запечатайте пластину с помощью парафильма, чтобы предотвратить испарение.
  6. На следующий день удаляют этанол и регидратируют клетки, добавляя 500 мкл 2x SSC. Инкубируйте покровные стекла в течение 5 мин при осторожном перемешивании при комнатной температуре.
  7. Удалите 2x SSC и добавьте 500Мкл 2X SSC. Инкубируйте в течение 5 мин при осторожном перемешивании.
  8. Поместите часть парафильма на дно гибридизационной печи. Внесите 25 мкл буфера для гибридизации на парафильм для каждого покровного. Удалите покровное стекло из 24-луночного планшета (в этот момент покровные со стороны клетки) и поместите покровное стекло в буфер для гибридизации. Делайте это при температуре 42 ° C или при температуре 65 ° C в течение 15 минут.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Завершение этой стадии при 65 ° С приведет к денатурации клеточных РНК; Это может улучшить сигнал, если полиА замаскирован взаимодействием с белками.
  9. Развести биотин-олиго (dT) зонд (100 нг / мкл) в гибридизационном буфере до концентрации 2 нг / мкл; Достаточно 25 мкл на покровное стекло.
  10. Для каждого покровного раствора, пипеткой 25 мкл гибридизационного буфера, содержащего Биотин-Олиго (dT), на парафильм. Возьмите покровное с пинцетом и мягко коснитесь края покровного на ткани лаборатории, чтобы удалить избытокГибридизационный буфер. Перенесите покровное стекло в буфер для гибридизации с Биотин-Олиго (dT); Не забудьте сохранить ячейку стороной вниз.
  11. Поместите покровные стекла в коробке для гибридизации, чтобы ограничить испарение. Инкубируйте покровные стекла с Биотин-Олиго (dT) в гибридизационном буфере в течение 60 мин при 42 ° С.
  12. Поместите 2x SSC в печь для гибридизации, чтобы она смогла уравновеситься до 42 ° C.
  13. Добавить ~ 500 мкл нагретого 2x SSC в лунки в 24-луночном планшете и использовать щипцы для переноса покровных яиц в колодец. Инкубируйте в течение 10 мин.
  14. Повторите вышеуказанную стадию промывки дважды при 42 ° С, а затем дважды при комнатной температуре.
  15. Выполните шаги 3.5-3.10, убедившись, что для определения биотина-олиго (dT) вместо одного обычного антитела используют стрептавидиновый флуорохром.

5. Анализ рибопуромицилирования для оценки трансляционного статуса

  1. Пластинчатые клетки U2OS на покровных стеклах, как указано на этапе 1, но только покровное покровное пластиночное для каждого условия (в этом3 покровные стекла: не обработанные, 100 мкМ арсенит натрия и 150 мкМ винорелбин) ( фиг. 1А).
  2. Стресс-клетки, используя протокол на шаге 2, выполнив шаги 2.1-2.4.
  3. За 5 мин до фиксации добавьте 2 мкл пуромицина (запас: 1,25 мг / мл, разведите 2 мкл в 500 мкл, чтобы получить конечную концентрацию пуромицина 5 мкг / мл) и 2,9 мкл эметина (запас: 20 мкг / мл, добавьте 2,9 мкл к тому же раствору, уже содержащему пуромицин) в каждую лунку, содержащую 0,5 мл.
  4. Выполните шаги 3.1-3.10, как указано выше, с использованием антитела против пуромицина (разведение 1/1000) для обнаружения пуромицина. В идеале, используйте два других маркера SG в остальных каналах.
  5. При количественном определении сигнала пуромицина берут все изображения, используя одну и ту же экспозицию. Выберите эту экспозицию, используя самый яркий (безударный) образец и сделав изображение настолько ярким, насколько это возможно, без насыщения.
    ПРИМЕЧАНИЕ. Интенсивность флюоресцентного сигнала против пуромицинаПродолжающийся перевод, как заменители пуромицина для аминокислоты, включает в зарождающийся белок и обеспечивает преждевременное прекращение протеина.

6. Приобретение и анализ изображений

  1. Количественное определение гранул напряжений
    1. Для количественной оценки SG, приобретите 3 - 5 изображений общим количеством> 100 ячеек на образец, используя цель 40X. В качестве альтернативы, приобретайте изображения с использованием других целей, но убедитесь, что на покровное стекло учтено> 100 клеток и что увеличение достаточно велико, чтобы четко визуализировать гранулы. Сделайте это, разделив покровное стекло на пять примерно одинаковых областей и произвольно выбирая поле из каждого региона ( рис. 1В ); Изображения одного и того же поля должны включать все каналы для оценки колокализации маркеров.
    2. После того, как все изображения были получены, объедините каналы. Некоторое программное обеспечение камеры автоматически сделает это, в то время как другие требуют ручного слияния; Это можно сделать с помощьюImageJ, открыв все изображения и выбрав [Image | Цвет | Объединить каналы].
    3. Вручную подсчитайте общее количество клеток, подсчитав количество ядер, используя Hoechst в качестве маркера ядер. Вручную подсчитайте количество ячеек, содержащих более двух единиц на ячейку.
      ПРИМЕЧАНИЕ. Например, используя объединенное трехканальное изображение, отображающее G3BP1 (зеленый), eIF4G (красный) и Hoechst (синий), подсчитайте ядра (или количество ячеек), используя синий канал. Затем подсчитайте SG-положительные клетки, как те, у которых два или более желтых фокуса на клетку. Гранулы будут желтыми, зелеными от G3BP1, а красные от eIF4G будут желтыми, если они будут колокализованными.
    4. Определите процент ячеек, которые являются положительными SG, объединив данные из 3-5 независимых регионов, а затем вычислите:
      Количество SG положительных / количество ядер) * 100 = процент SG-положительных клеток
  2. Оценка колокализации методом линейного сканирования - ручной метод
    1. открытоImageJ. Скачайте его бесплатно ()
    2. Откройте менеджер ROI: [Analyze | Инструменты | Менеджер ROI ...].
    3. Откройте объединенное изображение в ImageJ: [File | Открыто].
    4. Используя инструмент линии, расположенный на панели инструментов ImageJ, добавьте строку, проходящую через SG, обязательно включив в нее до и после SG. Добавьте эту строку в менеджер ROI, нажав [Добавить] в окне менеджера ROI.
    5. Разделите объединенное изображение на отдельные каналы, чтобы оценить локализацию каждого маркера в грануле: [Image | Цвет | Сплит-канал]; Это разделит объединенное изображение на три черно-белых изображения.
    6. На черно-белом изображении убедитесь, что линия выбрана; Строка будет выбрана, если она отображается на изображении. Если нет, в окне менеджера ROI щелкните по строке на панели; Это выделит синюю линию в окне менеджера ROI и сделает линию видимой на черно-белом изображении. Если линия по-прежнему не отображается, убедитесь, что «показать все» указано chВыбирая в менеджере ROI, а затем нажимайте на линию в изображении.
    7. Проанализируйте интенсивность линии: [Анализ | Профиль участка]; Это вызовет окно «Профильный профиль», который отображает интенсивность сигнала по всей линии.
    8. В окне «Профиль графика» нажмите [Список], чтобы открыть окно, содержащее необработанные данные из графика. Скопируйте все данные в этом окне и вставьте его в файл электронной таблицы. Для этого выберите все данные в окне: [Изменить | Выбрать все]. Скопируйте дату: [Изменить | Копировать]. Откройте файл электронных таблиц и вставьте данные: [Edit | Вставить].
    9. Выполните шаги 6.2.6 - 6.2.8 для каждого канала отдельно. Обязательно следите за оцениваемым каналом.
    10. В электронной таблице создайте линейный график результатов. Выберите столбцы, содержащие данные, нажав [control] и нажав на букву в верхней части каждого столбца. Затем выберите линейный график: [Insert | Линейный график].
    11. Повторите этот анализ для multГранулы напряжения в различных независимых экспериментах.
  3. Оценка колокализации методом линейного сканирования - ImageJ Plugin
    1. Загрузите и установите инструмент профиля RGB с веб-сайта ImageJ (https://imagej.nih.gov/ij/macros/tools/RGBProfilesTool.txt); При правильной установке на панели инструментов должен появиться красный, зеленый и синий (RGB) значок.
    2. Откройте изображение ( например, Tiff, JPG) в ImageJ: [File | Открыто].
    3. Нажмите на значок RGB, расположенный на панели инструментов ImageJ.
    4. Нажмите и перетащите, чтобы добавить линию, проходящую через SG, включая соседние области; Во всплывающем окне появится изображение гистограммы.
    5. Сохраните данные в виде изображения: [File | Сохранить как | Tiff]. В качестве альтернативы, экспортируйте и затем график данных в другой графической программе, используя шаг 6.2.8 сверху.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Очаги, вызванные стрессом, необязательно являются SG. SGs классифицируются как цитоплазматические фокусы, которые содержат мРНК, факторы инициации трансляции и РНК-связывающие белки и находятся в равновесии с активным переносом. Вышеприведенный протокол может использоваться в качестве шаблона для характеристики того, вызывает ли данный стресс добросовестных SGs.

SGs colocalize с другими известными маркерами SG, включая как белки, так и мРНК. SA и VRB индуцируют цитоплазматические очаги, которые содержат G3BP1, eIF4G и eIF3b ( фиг. 2A ). Колокализация этих маркеров подтверждается анализом линейного сканирования и одноканальными изображениями с увеличенным увеличением ( рис. 2А ). Кроме того, эти фокусы содержат Mrna, как указано polyA FISH, и сигнал олиго (dT) колокализуется с сигналом иммунофлюоресценции G3BP1 ( рисунок 2B ). Крайне важно показать, что polyA-FISHСигнал перекрывается с известным маркером SG, так как напряжение может способствовать развитию нескольких типов фокусов.

SG возникают во время трансляционно запрещенного состояния. Оба VRB и SA способствуют трансляционно репрессированному состоянию, что экспериментально оценивается с помощью рибопуромицилирования ( рис. 3 ). Добросовестные СГ находятся в динамическом равновесии, активно переводя полисомы. SA- и VRB-индуцированные SGs растворяются с CHX, который захватывает полисомы на мРНК, таким образом останавливая разборку полисом и предотвращая SG ( рис. 4A, 4B ). Напротив, после обработки puro индуцируется большее количество SA и VRB SGs, поскольку puro способствует разборке полисом, что благоприятствует образованию SG ( фиг.4A, 4C ).

В целом, как и в случае SA с позитивным контролем, VRB индуцирует добросовестные SGs, которые: (1) колокализуются с известными маркерами SG, (2) включают как белок, так и мРНК ( Figu Re 2), (3) находятся в клетках, где трансляция подавлена ​​( рисунок 3 ) и (4) находятся в динамическом равновесии с активным трансляцией ( рисунок 4A-4C ).

Рисунок 1
Рисунок 1: Экспериментальные диаграммы. ( A ) Семенные клетки на покровные стекла, предварительно помещенные в 24-луночный планшет, как указано. Обработайте ряды A и B в течение 60 минут с SA или VRB, используя концентрацию в мкМ, как указано. Через 60 мин добавляют CHX (конечная концентрация: 20 мкг / мл для колонки 2) или puro (20 мкг / мл пуромицина для колонки 4) в среду, содержащую лекарственное средство. Продолжайте инкубацию еще 30 минут до фиксации и окрашивания. ( B ) Схема покровного стекла, указывающая поля, которые должны быть отображены для подсчета. Покровное делится на пять примерно равных регионов; Одно изображение берется в каждом регионе."Http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55656/55656fig1large.jpg" target = "_ blank"> Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

фигура 2
Рисунок 2: SA и VRB индуцируют цитоплазматические фокусы, которые содержат маркеры SG anPoly (A) мРНК. ( A ) клетки U2OS, иммуноокрашенные для G3BP1 (зеленый), eIF3b (красный) и eIF4G (синий). Клетки обрабатывали 100 мкМ SA или 150 мкМ VRB в течение 60 мин или не обрабатывали (контроль). Увеличенные области увеличены (2X) и показаны как отдельные каналы в черно-белом (внизу). График показывает анализ линейной развертки гранулы области (белой линии) и показывает степень перекрытия или колокализации. Шкала шкалы представляет собой 10 мкм. ( B ) ПолиА-ФИШ в сочетании с иммуноокрашиванием обнаруживает полиА-мРНК с зондом олиго (dT) 40 (красный), G3BP1 (зеленый) детектируют с использованием анти-G3BP антитела, а ядерная ДНК детектируется с использованием красителя Хехст (синий). Увеличенные области (2X), одноканальные изображения и анализ линейного сканирования показывают колокализацию. Шкала шкалы = 10 мкм. Нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.

Рисунок 3
Рисунок 3: Причины репликации SA и VRB. Иммунофлуоресценция клеток U2OS с импульсным мечением пуромицином в течение 5 мин после указанных обработок. Puromycin (зеленый), eIF3b (красный) и ядерная ДНК, окрашенная Hoechst (синий). Клетки обрабатывали 100 мкМ SA или 150 мкМ VRB в течение 60 мин или не обрабатывали (контроль). Шкала шкалы = 10 мкм. Нажмите здесь, чтобы посмотреть большеИона этой фигуры.

Рисунок 4
Рисунок 4: SA и VRB индуцируют цитоплазматические фокусы, которые находятся в динамическом равновесии с полисомами. ( A ) Общая схема, описывающая соотношение полисом / SG. ( ВС ) U2OS, окрашенных для G3BP1 (зеленый), eIF3b (красный) и ядерной ДНК с использованием Hoechst (синий). Клетки обрабатывали 100 мкМ SA или 150 мкМ VRB в течение 60 мин или не обрабатывали (контроль) перед добавлением ( B ) CHX (циклогексимид, 20 мкг / мл), ( C ) puro (пуромицин, 10 мкг / мл ) Или без добавки в течение дополнительных 30 мин инкубации. Числа соответствуют проценту ячеек с SG в представительном эксперименте. Шкала шкалы = 25 мкм, в (ВС). Нажмите здесь, чтобы посмотреть большеВерсии этого рисунка.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Как свидетельствуют иммуногистологические исследования при множественных заболеваниях, хронический стресс приводит к образованию различных внутриклеточных очагов. Например, большинство нейродегенеративных заболеваний характеризуются внутриклеточными агрегатами нерастворимых белков. Наличие SG-ассоциированных белков в таких агрегатах часто является основанием для заключения, что такие фокусы являются SG. Аналогичный вывод также сделан, когда SG-позитивные цитоплазматические очаги наблюдаются в клетках, обработанных новыми стрессовыми стимулами. Этот протокол обеспечивает простой рабочий процесс для идентификации добросовестных SG.

Должно быть выполнено несколько критериев для предполагаемых SGs, которые должны быть подтверждены как таковые, включая характеристику состава и динамики. Во-первых, SGs являются цитоплазматическими очагами, которые содержат трансляционно остановленные mRNP. Таким образом, первый подход состоит в том, чтобы охарактеризовать их состав, используя две методики на основе микроскопии, а именно polyA-FISH и IF. FISH - надежный метод визуальногоIze мРНК, которые colocalize с SGs. Для обнаружения polyadenylated мРНК, которые упаковываются в SGs в стрессовых условиях, используется зонд oligo (dT) 40 . Так как олиго (dT) не будет обнаруживать deadenylated мРНК, которые являются основными компонентами обрабатывающих органов (PB), присутствие сильного олиго (dT) сигнала в цитоплазматических очагах является первым показанием (хотя этого недостаточно для определения), что эти фокусы SGs. Второй тест заключается в демонстрации колокализации сигнала poly (A) с другими маркерами SG ( например, G3BP1) ( рисунок 2A ). Это осуществляют, выполняя IF против протеинов SG. Маркеры SG eIF3b, eIF4G и G3BP1 обычно используются, потому что eIF3b и eIF4G являются факторами начала трансляции, которые, как известно, являются компонентами комплексов 48S *, а G3BP1 необходим для формирования SG ( рисунок 2B ). Важно подчеркнуть, что требуется более одного маркера СГ, так как различные нагрузки привлекают различные SG-ассоциированные факторы к SG, и некоторые стрессовые ситуации могут cAuse белковая агрегация, которая может быть ошибочно принята за образование SG.

Во-вторых, SG образуются из-за запрета на перевод. Хотя ингибирование трансляции может быть обнаружено с помощью различных подходов ( например, с помощью традиционной маркировки [ 35 S] Met chase), рибопуромицилирование является предпочтительным, поскольку он обнаруживает постоянный перенос белка в обработанных клетках. Этот метод также совместим со стандартной иммунофлюоресценцией против маркеров SG, что позволяет одновременно контролировать SG и степень ингибирования трансляции в отдельных клетках. Как видно на рисунке 3 , SA и VRB в разной степени способствуют образованию SG. В то время как SA вызывает SGs почти в 100% клеток, VRB способствует образованию SG примерно в 75% клеток. Способность стимулировать SGs коррелирует со степенью ингибирования трансляции: в то время как необработанные клетки имеют высокий базальный уровень трансляции, SA ингибирует трансляцию полностью, но VRB только paВ основном препятствует трансляции ( рис. 3 ).

В-третьих, ИК являются динамическими и находятся в равновесии с трансляционными полисомами. Обработка клеток циклогексимидом до стресса или одновременно со стрессом предотвращает разборку полисом и образование SG. Равновесие полистирола SG является двунаправленным, так как клетки с повышенным содержанием SG могут быть обработаны циклогексимидом для обеспечения разборки SG путем улавливания мРНК в полисомах или моносомах, когда они продуктивно инициируются. Важным контролем является использование пуромицина, который ингибирует удлинение, способствуя преждевременному прекращению, тем самым увеличивая количество не полисомных мРНП, доступных для образования ПГ. Резкие изменения в SG наблюдаются, когда лечение SA или VRB сочетается с CHX или обработкой puro ( рисунок 4 ). Таким образом, оценка того, будут ли предполагаемые SGs растворены при обработке циклогексимидом, но дополнены или не затронуты пуромицином, является ключевым экспериментальным параметром для использования в идентификаторах SGкатион. Эксплозивная SG-разборка с применением эметина в очень маленьких неприкрепленных первичных CD34 + клетках костного мозга человека была успешно продемонстрирована обработкой клеток в суспензии до цитоспиннинга 32 .

Арсенит натрия широко используется для запуска SGs, вызывая фосфорилирование eIF2-α 33 , но его следует тщательно титровать, поскольку он нацелен на многие белки и активирует ряд сигнальных путей 34 , 35 . Различные клеточные линии проявляют различную степень чувствительности к арсениту натрия. U2OS являются относительно чувствительными (100 мкМ), тогда как COS7, MEFs и HeLa требуют 200 мкМ. DU-145 6 , первичные нормальные клетки CD34 + костного мозга человека 32 , лимфобласты человека 36 , мышиные кортикальные нейроны 37 и клетки Huh7 31 требуют 500-1000 мкМ.

Описанный здесь экспериментальный рабочий процесс позволяет обнаружить СГ в разных ячейках и при разных напряжениях. Главным преимуществом этого рабочего процесса является то, что он прост и допускает однозначное обнаружение добросовестных SGs, а также одновременное зондирование клеточного трансляции в клетках, обработанных стрессом. Этот протокол использует ячейки U2OS, но он может быть изменен для разных клеточных линий или даже для первичных ячеек. Недавний и исчерпывающий список клеток, используемых для изучения гранулярных стрессов, - это обзор 11 . Количество клеток должно быть скорректировано для достижения 80% слияния в день лечения наркотиками. Концентрация и продолжительность медикаментозного лечения также должны корректироваться, так как клетки реагируют по-разному. Кроме того, несмотря на то, что этот протокол настроен на 24-луночный формат, его можно настроить на тарелку любого размера или тарелку, где покровные (любого размера) могут лежать ровно во время обшивки и лекарственного лечениянт. Клеточные линии, стабильно экспрессирующие маркеры SG / PB, использовались в высокопроизводительных экранах 33 на основе siRNA и в живом образе 38 . Для скрининга на основе изображений использовали клетки HeLa, окрашенные для эндогенного PABP маркера SG для обнаружения химических соединений, блокирующих сборку SG 39 . Предполагается, что этот рабочий процесс будет полезен в будущих исследованиях и приложениях.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторам нечего раскрывать.

Acknowledgments

Мы благодарим членов лабораторий Иванова и Андерсона за их полезные обсуждения и отзывы по этой рукописи. Эта работа была поддержана Национальными институтами здравоохранения [GM111700 и CA168872 PA, NS094918 - PI], Национальным научным центром в Польше [предоставить UMO-2012/06 / M / NZ3 / 00054 на WS]. WS также признает Министерство науки и высшего образования в Польше (Mobility Plus Program) и Польско-Американскую комиссию Фулбрайта за финансовую поддержку своих исследований в США.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
U-2 OS ATCC ATCC®HTB-96™ Commonly written "U2OS"
Culture at 37 °C under 5% CO2 in 10% FBS/DMEM
Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) Corning 10-013-CV Contains 4.5 g/L glucose, pyruvate, and phenol red
Supplemented with 10% FBS, 10 mM HEPES, and penicillin/steptomycin
Prewarm prior drug(s) dilution
Fetal Bovine Serum (FBS) Sigma F2442-500ml Used to supplement media
HEPES (1 M) Thermo Fisher Scientific 15630-080 Used to supplement media
penicilline streptomycine Sigma P0781-100ml Used to supplement media
24-well plate Costar 3524
lab tissues (kimwipes) KIMTECH SCIENCE 34120
Coverglass for Growth Cover Glasses Fisher Scientific 12-545-82 Autoclaved before use
Keep sterile in the tissue culture hood
Sodium (meta)arsenite ≥90% (SA) Sigma S7400-100G Dissolve in water to 1 M concentration, then dilute to 100 µM as a working stock
Vinorelbine (VRB) TSZ CHEM RS055 Dissolve in water to 10 mM
Puromycin Sigma P9620 Used to assess translation level (ribopuromycylation)
-Used to assess SG connection with active translation
Dilute in water to 10 mg/mL
Emetine dihydrochloride hydrate Sigma E2375 Used in combination with puromycin to assess general translation level
Used to assess SG connection with active translation
-Dilute in water to 10 mg/mL
Cycloheximide (CHX) Sigma C4859 Used to assess SG connection with active translation
Dilute in water to 10 mg/mL
Phosphate Buffered Saline (PBS) Lonza / VWR 95042-486 Wash buffer for immunofluorescence
Paraformaldehyde reagent grade, crystalline (PFA) Sigma P6148-500G Make a 4% solution in hot PBS in fume hood, stir until dissolved
Aliquots can be stored at -20 °C for several months
Hazardous, use ventilation
Discard in special waste
Methanol, ACS BDH / VWR BDH1135-4LP Prechill to -20 °C before use
Discard in special waste
Normal Horse Serum (NHS) Thermo Fisher Scientific 31874 Dilute to 5% in PBS
Add sodium azide for storage at 4 °C
Blocking solution for immunofluorescence
Ethanol, Pure, 200 Proof (100%),USP, KOPTEC Decon Labs / VWR 89125-188 Dilute to 70% with water
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope Slides Fisherbrand 12-550-15
mouse anti G3BP1 antibody (TT-Y) Santa Cruz sc-81940 Store at 4 °C
1/100 dilution
rabbit anti eIF4G antibody (H-300) Santa Cruz sc-11373 Store at 4 °C
1/250 dilution
goat anti eIF3η (N-20) antibody Santa Cruz sc-16377 eIF3η is also known as eIF3b
Store at 4 °C
1/250 dilution
mouse anti puromycin 12D10 antibody Millipore MABE343 Store at 4 °C
1/1,000 dilution
Cy2 AffiniPure Donkey Anti-Mouse IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 715-225-150 Reconstitute in water per manufacturer’s instructions then store at 4 °C
1/250 dilution
Cy3 AffiniPure Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 711-165-152 Reconstitute in water as per manufacturer’s instructions then store at 4°C
1/2,500 dilution
Cy5 AffiniPure Donkey Anti-Goat IgG (H+L) Jackson Immunoresearch 705-175-147 Reconstitute in water as per manufacturer’s instructions then store at 4°C
1/250 dilution
Hoechst 33258 solution Sigma 94403-1ML Incubate with secondary antibodies
Stock solution 0.5 mg/mL in dH20, protect from light
-Store at 4 °C
Cy3 Streptavidin Jackson Immunoresearch 016-160-084 Reconstitute in water per manufacturer’s instructions, then store at 4 °C
1/250 dilution
oligo-(dT)40x probe biotinilated Integrated DNA Technologies (IDT) / Reconstitute in water to 100 ng/mL, aliquot and store at -20 °C
Dilute in hybridation buffer 1/50 prior to use
Custom order
hybridation box / / Make a moisture chamber with any storing slide box by adding humidified paper on the bottom
- prewarm the box prior use
20x SSC buffer Thermo fisher Ambion AM9763 Dilute to 2x SSC using RNase Free water (DEPC treated)
Store at RT
Wash buffer for FISH
PerfectHybPlus Hybridization Buffer Sigma H7033-50ml Block and probe incubation buffer for FISH
slide mounting media home made / Mix 5 g of “cold-soluble” poly(vinyl alcohol) in 20 mL of PBS
Mix by sonication, followed by stirring O/N at RT
Add 5 mL of glycerol and 0.2 mL of 20 % sodium azide, and stir for 16 h at RT
Centrifugation at 20,000 g for 20 min, discard large pellet
Aliquot viscous liquid, long-term storage at -20 °C, 1 week at 4 °C
Parafilm "M" Sigma P7793-1EA
Poly(vinyl alcohol) Sigma P-8136-250G Reagent to make vinol
Glycerol Sigma G5516-100ML Reagent to make vinol
sodium azide Fisher Scientific S2002-5G Preservative agent for blocking solution and vinol
Make a 20% dilution in water

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Holcik, M., Sonenberg, N. Translational control in stress and apoptosis. Nat Rev Mol Cell Biol. 6, (4), 318-327 (2005).
  2. Yamasaki, S., Anderson, P. Reprogramming mRNA translation during stress. Curr Opin Cell Biol. 20, (2), 222-226 (2008).
  3. Buchan, J. R. mRNP granules: Assembly, function, and connections with disease. RNA Biol. 11, (8), (2014).
  4. Kedersha, N., et al. Evidence that ternary complex (eIF2-GTP-tRNA(i)(Met))-deficient preinitiation complexes are core constituents of mammalian stress granules. Mol Biol Cell. 13, (1), 195-210 (2002).
  5. Kedersha, N., Ivanov, P., Anderson, P. Stress granules and cell signaling: more than just a passing phase? Trends Biochem Sci. 38, (10), 494-506 (2013).
  6. Kedersha, N., et al. Dynamic shuttling of TIA-1 accompanies the recruitment of mRNA to mammalian stress granules. J Cell Biol. 151, (6), 1257-1268 (2000).
  7. Bley, N., et al. Stress granules are dispensable for mRNA stabilization during cellular stress. Nucleic Acids Res. 43, (4), e26 (2015).
  8. Kedersha, N., et al. G3BP-Caprin1-USP10 complexes mediate stress granule condensation and associate with 40S subunits. J Cell Biol. 212, (7), 845-860 (2016).
  9. Panas, M. D., Ivanov, P., Anderson, P. Mechanistic insights into mammalian stress granule dynamics. J Cell Biol. 215, (3), 313-323 (2016).
  10. Anderson, P., Kedersha, N., Ivanov, P. Stress granules, P-bodies and cancer. Biochim Biophys Acta. 1849, (7), 861-870 (2015).
  11. Aulas, A., Van de Velde,, C, Alterations in stress granule dynamics driven by TDP-43 and FUS: a link to pathological inclusions in ALS? Front Cell Neurosci. 9, 423 (2015).
  12. Ivanov, P., Anderson, P. Post-transcriptional regulatory networks in immunity. Immunol Rev. 253, (1), 253-272 (2013).
  13. Wolozin, B. Physiological protein aggregation run amuck: stress granules and the genesis of neurodegenerative disease. Discov Med. 17, (91), 47-52 (2014).
  14. Lloyd, R. E. Regulation of stress granules and P-bodies during RNA virus infection. Wiley Interdiscip Rev RNA. 4, (3), 317-331 (2013).
  15. Somasekharan, S. P., et al. YB-1 regulates stress granule formation and tumor progression by translationally activating G3BP1. J Cell Biol. 208, (7), 913-929 (2015).
  16. Adjibade, P., et al. Sorafenib, a multikinase inhibitor, induces formation of stress granules in hepatocarcinoma cells. Oncotarget. (2015).
  17. Fournier, M. J., Gareau, C., Mazroui, R. The chemotherapeutic agent bortezomib induces the formation of stress granules. Cancer Cell Int. 10, 12 (2010).
  18. Mazroui, R., Di Marco, S., Kaufman, R. J., Gallouzi, I. E. Inhibition of the ubiquitin-proteasome system induces stress granule formation. Mol Biol Cell. 18, (7), 2603-2618 (2007).
  19. Moeller, B. J., Cao, Y., Li, C. Y., Dewhirst, M. W. Radiation activates HIF-1 to regulate vascular radiosensitivity in tumors: role of reoxygenation, free radicals, and stress granules. Cancer Cell. 5, (5), 429-441 (2004).
  20. Szaflarski, W., et al. Vinca alkaloid drugs promote stress-induced translational repression and stress granule formation. Oncotarget. 7, (21), 30307-30322 (2016).
  21. Gilks, N., et al. Stress granule assembly is mediated by prion-like aggregation of TIA-1. Mol Biol Cell. 15, (12), 5383-5398 (2004).
  22. Kedersha, N. L., Gupta, M., Li, W., Miller, I., Anderson, P. RNA-binding proteins TIA-1 and TIAR link the phosphorylation of eIF-2 alpha to the assembly of mammalian stress granules. J Cell Biol. 147, (7), 1431-1442 (1999).
  23. Kedersha, N., Anderson, P. Mammalian stress granules and processing bodies. Methods Enzymol. 431, 61-81 (2007).
  24. Kedersha, N., Tisdale, S., Hickman, T., Anderson, P. Real-time and quantitative imaging of mammalian stress granules and processing bodies. Methods Enzymol. 448, 521-552 (2008).
  25. Langer-Safer, P. R., Levine, M., Ward, D. C. Immunological method for mapping genes on Drosophila polytene chromosomes. Proc Natl Acad Sci U S A. 79, (14), 4381-4385 (1982).
  26. Schneider, C. A., Rasband, W. S., Eliceiri, K. W. NIH Image to ImageJ: 25 years of image analysis. Nat Methods. 9, (7), 671-675 (2012).
  27. David, A., et al. Nuclear translation visualized by ribosome-bound nascent chain puromycylation. J Cell Biol. 197, (1), 45-57 (2012).
  28. Panas, M. D., Kedersha, N., McInerney, G. M. Methods for the characterization of stress granules in virus infected cells. Methods. 90, 57-64 (2015).
  29. David, A., Bennink, J. R., Yewdell, J. W. Emetine optimally facilitates nascent chain puromycylation and potentiates the ribopuromycylation method (RPM) applied to inert cells. Histochem Cell Biol. 139, (3), 501-504 (2013).
  30. Dieterich, D. C., et al. In situ visualization and dynamics of newly synthesized proteins in rat hippocampal neurons. Nat Neurosci. 13, (7), 897-905 (2010).
  31. Ruggieri, A., et al. Dynamic oscillation of translation and stress granule formation mark the cellular response to virus infection. Cell Host Microbe. 12, (1), 71-85 (2012).
  32. Ghisolfi, L., Dutt, S., McConkey, M. E., Ebert, B. L., Anderson, P. Stress granules contribute to alpha-globin homeostasis in differentiating erythroid cells. Biochem Biophys Res Commun. 420, (4), 768-774 (2012).
  33. Ohn, T., Kedersha, N., Hickman, T., Tisdale, S., Anderson, P. A functional RNAi screen links O-GlcNAc modification of ribosomal proteins to stress granule and processing body assembly. Nat Cell Biol. 10, (10), 1224-1231 (2008).
  34. Porter, A. C., Fanger, G. R., Vaillancourt, R. R. Signal transduction pathways regulated by arsenate and arsenite. Oncogene. 18, (54), 7794-7802 (1999).
  35. Shen, S., Li, X. F., Cullen, W. R., Weinfeld, M., Le, X. C. Arsenic binding to proteins. Chem Rev. 113, (10), 7769-7792 (2013).
  36. McDonald, K. K., et al. TAR DNA-binding protein 43 (TDP-43) regulates stress granule dynamics via differential regulation of G3BP and TIA-1. Hum Mol Genet. 20, (7), 1400-1410 (2011).
  37. Aulas, A., et al. G3BP1 promotes stress-induced RNA granule interactions to preserve polyadenylated mRNA. J Cell Biol. 209, (1), 73-84 (2015).
  38. Martin, S., Tazi, J. Visualization of G3BP stress granules dynamics in live primary cells. J Vis Exp. (87), (2014).
  39. Wippich, F., et al. Dual specificity kinase DYRK3 couples stress granule condensation/dissolution to mTORC1 signaling. Cell. 152, (4), 791-805 (2013).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics