Cystometric и внешние уретры сфинктера измерения проснулся крыс с имплантированным катетера и электродов, позволяя для повторных измерений

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

Этот протокол описывает первый хирургическая процедура имплантации постоянного катетера мочевого пузыря, в сочетании с наружного сфинктера уретры электродов и во-вторых, измерение функции мочевого пузыря и уретры сфинктер в имплантированных спать животных.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Foditsch, E. E., Roider, K., Sartori, A. M., Kessler, T. M., Kayastha, S. R., Aigner, L., et al. Cystometric and External Urethral Sphincter Measurements in Awake Rats with Implanted Catheter and Electrodes Allowing for Repeated Measurements. J. Vis. Exp. (131), e56506, doi:10.3791/56506 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Главным образом функция нижних мочевыводящих путей оценивается посредством анализа функции мочевого пузыря cystometric грызунов. Обычные cystometries обычно выполняются как терминал анализ под наркозом уретана. Хорошо известно, что анестетики могут влиять на функцию мочевого пузыря. Таким образом цель этой техники является для выполнения cystometric измерений наружного сфинктера уретры и мочевого пузыря в слегка сдержанной проснулся крыс. Для этой цели катетером мочевого пузыря имплантируется в купол мочевого пузыря. Впоследствии два электрода вживляются двусторонних для наружного сфинктера уретры и местах электрод зашивается к неотвечающим скелетных мышц. Катетер мочевого пузыря и три электроды наконец туннель подкожно в область шеи и прикреплены к обвязке. С этой техникой нижних мочевыводящих путей может быть измерена в нескольких точках времени же животное, чтобы оценить функцию нижних мочевыводящих путей. Основное применение этой техники является продолжением одновременных мочевого пузыря и внешние уретры сфинктера функции проснулся здоровых крыс и после индукции болезни или травмы. Кроме того последующие нижних мочевыводящих путей мониторинга может выполняться во время оценки болезни/травмы и контролировать эффективность лечения.

Introduction

Для анализа мочи хранения и Отмена функции и дисфункции, большинство исследований использовали грызунов модели. Благодаря последовательной активации рефлексов производится мочеиспускания. Координация этих рефлексов имеет важное значение для эффективного мочеиспускания1. Cystometric запись методы предоставляют ценные инструменты для анализа функции мочевого пузыря под его нейронных управления1.

Большинство обычных cystometries крыс сделали как единый, окончательный анализ в анестезии, главным образом уретана2и сосредоточиться исключительно на мочевого пузыря. Однако в некоторых патологий как нейрогенной дисфункции нижних мочевыводящих путей (NLUTD), не только мочевого пузыря, но и выходе мочевого пузыря, наружного сфинктера уретры, является неблагополучной3,4. Это затрудняет NLUTD последующей деятельности, если только в одном cystometric измерение рассматривается мочевого пузыря. Чтобы получить достоверные результаты, которые сопоставимы с людей, важно точно измерить мочевого пузыря и внешние уретры сфинктера функции и его взаимодействий2. Кроме того важно выполнять функциональные анализы проснулся крыс, как анестезии весьма вероятно, изменить мочевого пузыря функция2,5,6. Хороший cystometric, запись в спать животных является основой для идентификации мочевого пузыря функции и неисправности7.

Мелких животных цистометрия станции используется (например, Catamount цистометрия станции (CCS)) — это единица для выполнения анализов cystometric в небольших просыпаются животные8. С помощью катетером мочевого пузыря постоянным и электродов имплантированных наружного сфинктера уретры повторяющихся измерений могут быть выполнены над больше времени периоды2. Таким образом, CCS предоставляет ценный инструмент для не нейрогенный и NLUTD оценок в грызунов модели, в которой Патомеханизмы можно изменить во время краткосрочных или среднесрочных решений. Кроме того этот метод включает в себя анализ артефакта снижение cystometric с помощью фиксатор для проведения измерения мочевого пузыря в бодрствовать крыс.

В настоящем документе мы описываем хирургический подход к постоянно имплантата катетером мочевого пузыря и наружного сфинктера уретры электродов, наряду с cystometric измерения проснулся крыс.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Все описанные здесь процедуры были утверждены Комитетом австрийской государственной этики для исследований на животных (Bundesministerium für Виссеншафт унд Wirtschaft, Тюрингия WF / V /3b) и соответствовали ассоциации для оценки лабораторных Животных уход руководящие принципы для использования животных. Крысы, используемые для этого подхода были женщины, 12-недельных Льюис крыс. Используйте стерильные инструменты по всему протоколу.

1. Подготовка

  1. Изготовление катетер
    1. Вырежьте катетера (полиэтиленовые трубы PE-50) в соответствующей длины (20-25 см) в соответствии с размером животного.
      Примечание: Оставьте некоторые дополнительные длины для туннелирования и удобной работы.
    2. Вспыхивают один конец с легче получить закругленными подсказка. Проверка окончательного соответствующие открытия и тупой конец катетера.
    3. Место 2-мм длиной силиконовые трубки через катетер, до тех пор, пока он находится чуть ниже вспыхнул конце.
  2. Производство электродов
    1. Подготовка стальной проволоки с покрытием из политетрафторэтилена 20-25 см (соответствующей длины в зависимости от размера животного).
    2. Подготовить серебряной проволоки 2 см в длину и переплетите концы до тех пор, пока остается небольшая петля. Сдирать 2 мм тефлоновыми изоляции на одном конце. Припой витой серебряной проволоки, окончание раздели стальной проволоки.
    3. Применение обычных Лак в зоне покрытия. Подготовка 4-мм длиной полиэтиленовые трубки над районом с покрытием и печать конце путем применения тепла сжатия щипцами.

2. животных подготовка

  1. Анестезия
    1. Использование соответствующей анестезии коктейль одобрено учреждения для общей анестезии.
    2. Подготовить анестезии коктейль с medetomidine (0,15 мг/кг), мидазоламом (0,08 мг/кг) и фентанилом (0,01 мг/кг) и вводить внутримышечно по 1 мл шприц с 27 иглы.
  2. Хирургическое подготовка
    1. Брить живот с электрической бритвой, включая половых и обратно региона на уровне лопатку.
    2. Лечить брюшной и шеи регионов с 70% этанол первый и затем 3 чередуя скрабы с повидон йод раствор.

3. мочевого пузыря катетер имплантации

  1. Выполните низкой середине линии лапаротомия на уровне третьего и четвертого соска (примерно 2-2,5 см в длину) с помощью скальпеля для кожи и хирургические ножницы для мышц живота.
  2. Подвергать мочевого пузыря, направляя брюшной стенки в кранио хвостового направлении и исправить ее в этом положении, поместив в задней части щипцов позади мочевого пузыря, чтобы избежать повторного позиционирования.
  3. Место кошелька строка швом вокруг куполом мочевого пузыря с помощью 6-0 леска не рассасывающиеся шовные иглой конический наконечник.
  4. Надрезать мочевого пузыря купола внутри кошелька строки, либо скальпелем подсказка или 18G иглы, чтобы вставить Катетер мочевого пузыря (см. шаг 1 протокол).
  5. Вставить катетер, заполнено автоматически с стерильного физиологического 0,9% раствором хлорида натрия и тщательно убрать Катетер мочевого пузыря, пока не вспыхнул открытие катетера расположен чуть ниже мочевого пузыря купол.
  6. Безопасный кошелек строка швом вокруг катетера и сделать стоп швом вокруг тела катетер для дальнейшей фиксации.
  7. Проверить наличие утечки через купол мочевого пузыря, медленно наполнения мочевого пузыря через катетер с стерильного физиологического раствора натрия хлорида 0,9%.

4. уретрального сфинктера электрода имплантации

  1. Подготовить три электроды для имплантации (см. шаг 1 протокол).
  2. Марк один электрод с цветными постоянного фломастер для дальнейшей идентификации будущих null электрода. Продезинфицируйте электродов с 70% этиловом спирте.
    Примечание: Катетеры подходят не для тепла и химических стерилизацию. Вместо этого холодной стерилизации электроды для 24 h.
  3. Расширить брюшной разрез, Ножницы хирургические до лобковой кости, но не режьте лобковой симфиза.
  4. Идентифицировать уретры и создать тупым карман с помощью тонкой щипцы на обе стороны уретры, но избежать травмы кровеносных сосудов или нервов.
  5. Определите соответствующие жира Чехлы недалеко от уретры в этом окне.
  6. Исправьте электродов на двусторонней основе с соответствующим жира мешочек с помощью леска не рассасывающиеся шовные 6-0.
    Примечание: Окончательное положение электродов должны быть двусторонние в середине региона мочеиспускательного канала.
  7. Свяжите два электрода вместе с 6-0 леска не рассасывающиеся шовные.
  8. Шовные заметное значение null электрода для мышц брюшной стенки мочеиспускательного канала на расстоянии. Свяжите все три электроды вместе с единого шва.

5. туннелирование

  1. Сделайте небольшой разрез между лопатку для туннелирования.
  2. Туннель электродами провода к шее и сделать окончательную проверку для правильного размещения и проверить положение электродов после туннелирования.
  3. Катетер мочевого пузыря в туннель на лопатку уровень - Обратите внимание на мочевого пузыря во время туннелирование катетер, чтобы избежать скручивания мочевого пузыря. Для этого удерживайте катетер прямо перед входом мочевого пузыря купол во избежание скручивания мочевого пузыря.
  4. Закройте мышцы живота, непрерывный или Прерванный швы с 4-0 многофиламентные рассасывающиеся шовные. Закройте разрез кожи, прерванный матрас швы.
  5. Растяните животное для его полной длины с максимальной вздутия электродные провода и катетер.
  6. Фиксация катетера и электродами провода затонул в шов мышцы плеча.
  7. Закройте кожи, один стежок с 4-0 швом.

6. ремень фитинга

  1. Соответствовать упряжи для животного, потянув ремни на голову животного и потяните Передние конечности конечное положение между двумя силиконовые полоски. Проверьте размер ремня, вес животного до операции с распространителем.
  2. Туннель Катетер мочевого пузыря в центральное отверстие упряжи и электродов через отверстие на заказ, дрель, размером электродных проволок.
  3. Отрегулируйте ремни, потянув силиконовые полоски. Отрегулируйте ремни, так что это не слишком свободно, но обеспечить некоторое пространство для поддержания движущихся способность крысы.
  4. Используйте ремень кабель чтобы исправить кремниевых полос.
  5. Сократить длину Катетер мочевого пузыря до 3 см выше упряжи, подключитесь к 23-G пробку и наконец исправить его в упряжи.

7. Изготовление электродов разъема

  1. Подготовьте три небольших трубки термоусадочные (различный цвет для null электрода). Подготовка двух дальнейших трубки термоусадочные в соответствующей большего размера.
  2. Укоротите длину провода электрода к оптимальной длины, чтобы иметь возможность подключить позднее к разъем не будучи слишком свободно или слишком коротким. Сдирать тефлоновыми изоляции трех проводов (примерно 2 мм) и поверните стальной проволоки в строку.
  3. Поместите большие трубки термоусадочные все провода, поместить небольшие трубы индивидуально для всех трех проводов и использовать цветные трубки для null электрода.
  4. Припой электродов 3-соединение штекер. Поместить значение null электрода в середине и уменьшить области три небольших отдельных труб выше припаяны.
  5. Сжать первый окончательный большую трубку и больше труб в конце отдельных труб окончаний на границе штекер.
  6. Подключите штекер к разъем крепится к упряжи и исправить с кусок ленты для дальнейшего обеспечения безопасности.

8. послеоперационный уход

  1. Хирургических областях очистить и продезинфицировать с повидон йод.
  2. Поместите животное на грелку пока спит и дать 0,9% натрия хлорида раствор для подмены воды, основанные на руководящих принципах местного ухода за животными, во время и после операции.
  3. Администрировать анальгетиков (Мелоксикам 1 мг/кг) и антибиотиков (sulfadoxinum 200 мг, trimethoprimum 40 мг, 15 мг/кг) как комбинированного инъекционного раствора подкожно. Два раза в день дают анальгетиков (утром и вечером) и один раз в день давать антибиотики, для пяти последующих дней.
  4. Продолжите с антибиотиками в той же дозировке в течение всей последующей деятельности на два-три инъекции в неделю.
  5. Проверить ежедневно для соответствующей установки ремня и выполнить проверку операционного поля, особенно в области шеи. Отрегулируйте ремни, если он становится слишком туго, осторожно потянув силиконовые полоски.
  6. Промойте катетер регулярно один раз в неделю, чтобы избежать блокады.

9. подготовка для измерения Cystometric

  1. После шести дней послеоперационного выполните первые измерения cystometric.
    Примечание: Ранее измерений может быть под влиянием болеутоляющие лекарства и/или urothelial раздражение из-за катетер имплантации.
  2. Включите главный выключатель, компьютер и Усилитель ЭМГ.
  3. Заполните шприцевый насос с комнатной температуре нагревают 0,9% натрия хлорида. Откройте трехходовой разъемы один после другого в нисходящем манере, начиная от насоса и промойте трубы.
    Примечание: Внимательно проверьте остальные пузырьки воздуха, как пузыри изменит cystometric измерений.

10. Калибровка

  1. Запустите программу uroflowmeter и перейти к калибровке.
  2. Закройте 3 контактный разъем насоса и животных.
  3. Открыть клапан для подключенного манометр и нажмите ноль в программе.
  4. Отрегулируйте давление на манометр 100 мм рт. и нажмите кнопку 100 мм рт.ст в программе. Пресс убедитесь в том, чтобы сохранить калибровки регулировка. Окно закроется автоматически.
  5. Закройте клапан Манометр и откройте три пути разъемы от насоса для животных, чтобы быть готовым для измерения.

11. животных баз данных (DB животных)

  1. Для регистрации животных, дают животное краткий идентификатор.
  2. Введите дополнительные данные, такие как дата SCI, начало лечения, Дата катетер имплантации, экспериментальной группы и Дата рождения животного.
  3. Наконец данные журнала, нажмите кнопку «Сохранить запись» и сохранить файл.

12. Измерение параметров до записи

  1. Запустите программу, нажав кнопку Пуск.
  2. Выберите животное и нажмите масштаб тары и нулевого давления.
    Примечание: Обратите внимание уделяя животное в фиксатор, таким образом, чтобы кабель не застрял, как это может привести к удалению провод кабеля ГРП.

13. животных подготовка

  1. Выньте вилку катетера и отключайте ГРП от ремня.
  2. Положите крысу в фиксатор. Закройте фиксатор и замок ремня с струбциной.
  3. Получите катетера и ГРП штекер из фиксатор.
  4. Установите фиксатор в блоке catamount. Положите хвост через трубку и исправить трубки с лентой, чтобы избежать движения.
  5. Подключите штекер ГРП к разъему запись женского ГРП.
  6. Еще раз нажмите нулевого давления и затем подключите катетер к трубка наполнения/записи. Проверка давления в программном обеспечении.
    Примечание: Давление должно быть положительным, около 5-10 см H2O в базовых. Если давление является отрицательным, Отсоедините катетер от канюли, нажмите нулевого давления и затем подключите катетера.

14. запись

  1. Если катетер и ГРП кабель подключен, нажмите кнопку запуска насоса и записи.
  2. Отрегулируйте скорость наполнения на экспериментальной потребности в мкл/мин.
  3. Обратите внимание на время начала записи и комнатной температуры в журнале.
  4. Чтобы остановить запись cystometric, остановите насос, насос, нажав запустить и нажмите кнопку записи еще раз.
    Примечание: Насос будет выключен и зеленый свет на насос выключен.
  5. Отсоедините катетер и использовать 23G пробка вилки для закрытия катетера конца. Отсоедините кабель ГРП.
  6. Откройте переднюю фиксатор и руководство крысы из фиксатор.
    Примечание: Осторожно крыса и следить за провода, чтобы избежать каких-либо блокировки кабелей.
  7. Подключите катетер обратно в упряжи. Повторно подключите вилку ГРП к обвязке и положил кусок ленты вокруг вилки.
    Примечание: Если животное имеет патологическое состояние нижних мочевыводящих путей, выразите мочевого пузыря в конце вручную, чтобы избежать overdistention мочевого пузыря.
  8. Положите животное обратно в свои дома клетке.
  9. Закройте программу, нажав exit.
  10. Протрите фиксатор и стакан.
  11. Закройте трехходовой коннекторы насоса и выходу животных.
  12. Выключите компьютер, ГРП подразделения и системы через главный выключатель.
    Примечание: Данные хранятся в отдельной папке «Зарегистрированных данных» с подпапке файл идентификатор измеренной крыса Одной записи сортируются по дате в одного крыса идентификатор папки.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

На рисунке 1 представлена схема, показывающая процесс спит cystometric измерений и Внутренняя анатомия для имплантации Катетер мочевого пузыря это показано на рисунке 2. Операция занимает около 2-х. послеоперационное обезболивание и антибиотиков, как описано в протоколе, охватывает боль и инфекции более пяти дней после операции. После этого были замечены никаких признаков какой-либо боли. Дважды в день тщательного обследования брюшной полости, брюшной шов и шеи шовный материал необходим для поддержания здоровья животных. Проводка управления (позиции и герметичности) должны проводиться один раз в день в первые пять дней и позже на регулярной основе. Животе швы могут быть удалены на 10й послеоперационный день.

Мы используем мягкие, недревесных подстилка для первых 10 дней после операции, чтобы избежать воспаления. Постельное белье меняется по крайней мере два раза в неделю к дальнейшему снижению риска воспаления. Животные находятся в одном корпусе, как группа жилье увеличивает риск упряжи, катетер или электрода кабеля, кусаться, Кейдж товарищей.

Катетер должен быть очищены по крайней мере один раз в неделю, либо в ходе измерения cystometric или промывкой катетер вручную с 1-3 мл стерильного 0,9% натрия хлорида со скоростью низкой инфузии (рис. 3). Регулярное освещение антибиотик животных далее уменьшает риск инфекции и мочевыводящих камнеобразования. Мониторинга поглощения жидкости является далее главное чтобы предотвратить образование мочевых камней. Лимонная кислота в низких концентрациях (2-3%) осуществляется либо внутрипузырно через катетер или в питьевую воду, чтобы предотвратить образование камней.

Успех хирургической процедуры, а также поддержание Катетер мочевого пузыря и электроды нетронутыми, составляет около 80%. В оставшиеся 20% случаев главной проблемой был отряд электродами провода от вилки. Таким образом тщательного привязанность электродных проволок к обвязке важно избежать потери электрода.

Cystometric измерения обычно делается, пока три последовательных циклов мочеиспускания записываются в измерение, которое занимает от 20 до 40 минут, в зависимости от тревоги и обработки статус крысы. Первое измерение cystometric обычно делается через одну неделю после операции имплантации катетера.

Основные параметры чтения, записи cystometric являются базовые давление, порог давления, давления максимальная детрузора, пропущенная объем, средний поток, мочеиспускания время, среднего давления, соответствия мочевого пузыря, и одновременное чтение из Внешние уретры сфинктера ГРП активности (рис. 4).

Cystometric последовательных измерения в последующий период может выполняться по крайней мере 4 недель после операции. Если линия катетер регулярно очищается, блокирование катетера не является проблемой. Обычная обработка и оптический контроль крыс следует проводить в течение всего последующего периода.

Если катетер изломами или заблокирован, внутрипузырной давление будет увеличиваться линейно до очень высоких давлений (выше 100 см H2O). В этом случае наполнения должна быть остановлена и видимые катетер конца должны быть проверены на излом. Если не излом, катетер должен проверяться для блокировки розетки. Для этой цели, катетер может быть сброшены вручную через катетер. Если жидкость не течет легко в мочевом пузыре, потянув вперед и назад слегка может быть судим. Одной последней попытки чтобы попытаться очистить регионе препятствовали в катетер может использоваться кислотный промывочный раствор (лимонная кислота 2-3%). Это решение может иметь более высокий шанс распустить блокады, тем не менее, будет раздражение мочевого пузыря после успешного промывки и последовательных измерений должно выполняться только через два дня после промывки кислотным раствором. Если не жидкости могут быть сброшены в мочевой пузырь, катетер постоянно блокируется и никакие дальнейшие измерения возможны, и животное теряется для последующей деятельности.

Figure 1
Рисунок 1: схема, чертеж cystometric измерений в бодрствовать крыс. Эта цифра была адаптирована из2. () Иллюстрация уродинамические установки. (b) Лаборатория станции для уродинамические исследования. (c) имплантации наружного сфинктера уретры электромиографии электроды боковой уретрой, интраоперационная вид. (d) вид на купол мочевого пузыря на данный момент имплантации Катетер мочевого пузыря, интраоперационная вид. (e) после вживления электродов и катетер, крыса будет оснащен ремень безопасно хранить вилки и разъемы. (f) человека уродинамики. Номера в b е связаны легенды в . Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 2
Рисунок 2: Внутренняя анатомия крысы для имплантации Катетер мочевого пузыря. Этот рисунок был изменен с8.

Figure 3
Рисунок 3: промывка линии катетер крыса. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Figure 4
Рисунок 4: уродинамические Прориси в животное 12 день после имплантации катетера. () представитель уродинамические трассировки от наивного крыс. На вершине показана трассировка давление мочевого пузыря, в середине вес трассировки выделяется моча и на дне наружного сфинктера уретры ГРП трассировки. (b) окно масштабирования от наивного животных 60 s, взятые из (). Важное замечание является менее Внешние уретры сфинктера ГРП активности во время мочеиспускания чем до и после мочеиспускания. На вершине показана трассировка давление мочевого пузыря, в середине вес трассировки выделяется моча и на дне наружного сфинктера уретры ГРП трассировки. Внизу участок жары показана с соответствует времени частоты спектрограмм (соответствует частоте в текущий момент времени). Красный представляет высокую мощность и синий цвет представляет низкой мощности. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Этот протокол описывает хирургической процедуры постоянного катетера и имплантация электродов уретрального сфинктера и cystometric, запись технику в awake, слегка сдержанной крыс, включая как одновременный анализ мочевого пузыря и Внешние уретры сфинктера.

Важнейшие шаги во время операции являются тщательный имплантации Катетер мочевого пузыря, во избежание утечки и обширные манипуляции. Кроме того точное имплантации электродов двусторонних для наружного сфинктера уретры имеет решающее значение для измерения звука внешнего сфинктера уретры. Тесного инспекции хирургического поля после имплантации также важно для поддержания здоровья животных. Антибиотик освещение во время последующего помогает в предотвращении инфекций вдоль линии катетера, а также возникновение инфекций мочевыводящих путей.

Во время измерения cystometric обрабатываются крыса будет спокойнее и более расслабленным, чем крысы, которых ранее не было обработано. Таким образом cystometric записи могут отличаться в его итоговом документе. Кроме того фиксатор предлагает крыса ограничивая пространство с темной области передней чувствовать себя более комфортно и таким образом, уменьшает уровень стресса. В других опубликованных проснулся cystometric измерений крысы могут свободно перемещаться в клетке, измерения. Однако это несет высокий риск артефакт во время измерения и может увеличить время записи, а также уровень стресса в животное. В здоровых крыс оптимальная cystometric измерения могут быть воспроизведены в нескольких точках измерения время во время последующего. Во время cystometric измерения обычно возникающие проблемы являются изломами катетеров или ошибку в поэтапный ведения протокола. Если возникает ошибка технического или программного обеспечения, повторной инициализации cystometric измерения и поэтапно повторять протокола настоятельно рекомендуется для устранения неполадок.

Ограничения этой техники являются между животных изменчивости cystometric записей, структурные изменения в ткани мочевого пузыря благодаря имплантирован катетер, который может препятствовать гистологические или молекулярных биологических экзаменов этой ткани, и один корпус животных в последующий период. Кроме того этот метод был проверен только в самок крыс, применимость и исходы для самцов крыс еще не рассматривался.

Основным преимуществом этого метода является одновременное измерение мочевого пузыря и наружного сфинктера уретры, а также параметр проснулся измерения. Таким образом более поступательного изучения нижних мочевыводящих путей в спать животных доступны, по сравнению с одной, терминал cystometric анализа в анестезии5,6,9,10. Кроме того с этим подходом, прогрессирование нижних мочевыводящих путей дисфункции или патологии можно проследить в то же самое животное над время, а также успехи лечения. Особенно NLUTD может быть рассмотрен в времени курс, который не удалось в полной мере с общей техники cystometric2.

В заключение представленных хирургии и cystometric измерения используются для нескольких, артефакт снижение анализ нижних мочевыводящих путей, включая взаимодействие наружного сфинктера уретры и мочевого пузыря в бодрствовать крыс.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы не имеют ничего сообщать.

Acknowledgements

Авторы не имеют каких-либо подтверждений.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Polyethylene tubing PE 50 Becton Dickinson 427411 Catheter
Prolene 6-0 (BV-1, 9.3 mm, 3/8c) Ethicon EH7403H Suture
Teflon coated steel wire Cooner wire AS631 Electrode material
Silver wire 0.250 mm World Precision Instruments AGW1030 Electrode material
Rotilabo - PVC tube Carl Roth 97241 Harness
Vicryl rapide 4-0 (P-3, 13 mm, 3/8c) Ethicon V4940H Suture
Quick Connect Single Harness SAI Infusion Technologies QCH-23CW Harness
Shrinking tubes ChiliTec 17894 Electrode soldering
Soldering wire Pb60 Sn40 Stannol LD0029 Electrode soldering
Fluxing agent 157 Castolin Eutectin 157 0150 Electrode soldering
Conn Unshrouded Header HDR 3 POS, 2.54mm Solder ST Thru-Hole Box Preci-dip 801-87-050-10-001101 Electrode soldering
Conn Socket Strip SKT 50 POS 2.54mm, Solder ST Thru-Hole Box Preci-dip 890-18-003-10-001101 Electrode soldering
Rat Cystometry Package (contains pump, scale, pressure transducer, hardware for cystometric analysis) Catamount Research and Development Inc. CAT-CYT-R
Differential amplifier with active headstage AD instruments DP-311 EMG amplifier
Restrainer Medium size for rats 200-300 g emka Technologies HLD-RM
Uro Dyn Software Zürich of University MTA-based
Female rats (Strain Lewis) 12 weeks of age Charles River, Sulzfeld, Germany animals

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Andersson, K. E., Soler, R., Fullhase, C. Rodent models for urodynamic investigation. Neurourol Urodyn. 30, 636-646 (2011).
  2. Schneider, M. P., et al. A novel urodynamic model for lower urinary tract assessment in awake rats. BJU Int. 115, Suppl 6. 8-15 (2015).
  3. Cruz, C. D., Cruz, F. Spinal cord injury and bladder dysfunction: new ideas about an old problem. Scientific World Journal. 11, 214-234 (2011).
  4. de Groat, W. C., Yoshimura, N. Plasticity in reflex pathways to the lower urinary tract following spinal cord injury. Exp Neurol. 235, 123-132 (2012).
  5. Matsuura, S., Downie, J. W. Effect of anesthetics on reflex micturition in the chronic cannula-implanted rat. Neurourol Urodyn. 19, 87-99 (2000).
  6. Cannon, T. W., Damaser, M. S. Effects of anesthesia on cystometry and leak point pressure of the female rat. Life Sci. 69, 1193-1202 (2001).
  7. Patra, P. B., Thorneloe, K. S. Enhanced sensitivity to afferent stimulation and impact of overactive bladder therapies in the conscious, spontaneously hypertensive rat. J Pharmacol Exp Ther. 338, 392-399 (2011).
  8. Herrera, G. M., Meredith, A. L. Diurnal variation in urodynamics of rat. PloS One. 5, e12298 (2010).
  9. Chang, H. Y., Havton, L. A. Differential effects of urethane and isoflurane on external urethral sphincter electromyography and cystometry in rats. Am J Physiol Renal Physiol. 295, F1248-F1253 (2008).
  10. Yaksh, T. L., Durant, P. A., Brent, C. R. Micturition in rats: a chronic model for study of bladder function and effect of anesthetics. Am J Physiol. 251, R1177-R1185 (1986).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics