تحليل موائع جزيئية خلية واحدة نجحت عصية

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

نحن نقدم طريقة لتحليل موائع جزيئية الأنساب الخلية البكتيرية الفردية باستخدام نجحت عصية على سبيل مثال. الأسلوب ويتغلب على أوجه قصور أساليب التحليلية التقليدية في علم الأحياء الدقيقة بالسماح بمراقبة مئات الأجيال الخلية تحت ظروف النمو يمكن السيطرة عليها بشكل محكم وموحدة.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Cabeen, M. T., Losick, R. Single-cell Microfluidic Analysis of Bacillus subtilis. J. Vis. Exp. (131), e56901, doi:10.3791/56901 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

التكنولوجيا موائع جزيئية ويتغلب على العديد من القيود المفروضة على الطرق التحليلية التقليدية في علم الأحياء المجهرية. خلافا لأساليب الثقافة السائبة، ويوفر القرار خلية واحدة والمراقبة طويلة الأوقات التي تمتد مئات من الأجيال؛ بخلاف [اغروس] المستندة إلى منصة الفحص المجهري، أنها ظروف النمو موحد يمكن التحكم بشكل محكم. لأن يعزل التدفق المستمر لمتوسط نمو الخلايا في جهاز موائع جزيئية من اختلافات لا يمكن التنبؤ بها في البيئة الكيميائية المحلية الناجمة عن نمو الخلايا والايض، وتغييرات حقيقية في التعبير الجيني ونمو الخلايا في الاستجابة إلى ويمكن ملاحظة منبهات محددة أكثر ثقة. نجحت عصيات يستخدم هنا كأنواع بكتيرية نموذجية لإثبات "آلة أم"-اكتب أسلوب للتحليل الخلوي. علينا إظهار كيفية بناء ورأسيا جهاز موائع جزيئية وتحميله مع الخلايا وبدء التصوير المجهري وتعريض الخلايا لحافز عن طريق التحول من متوسط النمو واحد إلى آخر. مراسل تستجيب لإجهاد كمثال للكشف عن نوع البيانات التي يمكن الحصول عليها بهذه الطريقة. أيضا بإيجاز نناقش كذلك تطبيقات هذا الأسلوب لأنواع أخرى من التجارب، مثل تحليل تبوغ الجرثومي.

Introduction

واحدة من أبرز سمات الحياة على الأرض هو مرونة كبيرة ومتنوعة. هدفا مركزياً للبيولوجيا الجزيئية هو فهم المنطق الذي استخدم الخلايا الجينات والبروتينات لتحقيق أقصى قدر من النمو واللياقة البدنية تحت مجموعة متنوعة من الظروف البيئية. العلماء لتحقيق هذا الهدف، يجب أن تكون قادرة على مراقبة ثقة كيف تنمو خلايا فردية، تقسيم، والتعبير عن الجينات تحت مجموعة معينة من الظروف، مشيراً إلى كيفية استجابة الخلايا للتغييرات اللاحقة في البيئة الخاصة بهم. ومع ذلك، الأساليب التحليلية التقليدية في علم الأحياء المجهرية قد القيود التقنية التي تؤثر على أنواع الأسئلة التي يمكن معالجتها. على سبيل المثال، معظم التحليلات المستندة إلى الثقافة كانت مفيدة للغاية على مر السنوات، إلا أنها توفر بيانات مستوى السكان الذي يمكن أن تخفي الاختلافات خلية إلى خلية ذات مغزى أو في سلوك السكان الفرعية أصغر من الخلايا في مجموع السكان فقط. تحليلات خلية واحدة من البكتيريا الحية استناداً إلى الفحص المجهري الخفيفة تكشف عن سلوك خلية واحدة ولكن هي أيضا محدودة من الناحية الفنية. البكتيريا هي عادة معطلة على منصات [اغروس] يتضمن المتوسطة النمو، لكن الخليوي حشود شعبة ونمو رأي مجهرية ويستنزف المغذيات المتاحة بعد دورة الخلية عدد قليل، إلى حد كبير الحد من وقت الملاحظة1، 2. وعلاوة على ذلك، المحلية استنفاد المغذيات وتراكم ما يصاحب ذلك من تركات الأيضي نتيجة لنمو الخلايا تتغير باستمرار البيئة نمو الخلايا المحلية بطرق يصعب قياس أو التنبؤ بها. هذه التغييرات البيئية باستخدام منصات [اغروس] تشكل تحديا للدراسات من السلوكيات حالة ثابتة أو الاستجابات الخلوية لتغييرات معينة في ظروف النمو3.

التكنولوجيا موائع جزيئية، التي يتم تدفق وسيلة سائل بشكل مستمر من خلال أجهزة ميكروفابريكاتيد، ويقدم حلاً لقيود التجريبي الكلاسيكي. جهاز موائع جزيئية يمكن أن تبقى خلايا فردية في موقف للفحص المجهري خلية يعيش بينما تدفق متوسط النمو باستمرار توفر الخلايا مع المواد الغذائية الطازجة ويجرف تركات الأيضي والخلايا الزائدة، مما خلق نمو عالية موحدة البيئة. ظروف النمو المستمر، ويمكن ملاحظة السلوكيات الخلية بمعزل عن التأثير العوامل البيئية، والسماح بطريقة عرض دون عائق من المنطق الداخلي للخلايا. كما يمنع تدفق السائل أصبحت مزدحمة بخلايا الجهاز موائع جزيئية، المراقبة الأنساب خلية واحدة لعشرات أو مئات من الأجيال يصبح ممكناً4،5. مثل هذه الأوقات المراقبة طويلة تسمح بالكشف عن السلوكيات خلية طويل الأجل أو نادرة وإلا لا يمكن الكشف عنها. أخيرا، سيتم تكوين المتوسطة التي يمكن تغيير التدفقات من خلال الجهاز في السماح للخلايا التي سيحتفل بها كما أنها تستجيب لبداية الإجهاد أو مقدمة أو إزالة مجمع خاص.

وقد يتمتع ميكروفلويديكس بالفعل عدد من التطبيقات الهامة. على سبيل المثال، قد استخدمت في الأنسجة أو الجهاز، أو أجهزة الجسم على رقاقة، التي أنواع متعددة من الخلايا البشرية شارك مثقف لمحاكاة في فيفو شرط6؛ لدراسة حركة السلكية في بيئات ميكروستروكتوريد7؛ لدراسة التفاعلات بين الأغشية الحيوية البكتيرية (مثلاً، 8)؛ و للتغليف والتلاعب بكميات صغيرة من المواد الكيميائية (مثل، 9) أو الخلايا. أجهزة موائع جزيئية أصبحت شعبية متزايدة في مجال علم الأحياء الدقيقة (لملاحظات ممتازة، انظر 10 و 11)، لا سيما وأن سلامتهم البدنية وخصائص تدفق جيدا المتطابقة إلى منافذ الميكروبية الطبيعية12. على سبيل المثال، ميكروفلويديكس قد تم مؤخرا يستخدمها الأطباء لمثل هذه الأغراض كقياس دقة الخلية النمو وشعبة13،،من1415، تحليل حركة الممرض16، رصد الاستشعار عن النصاب القانوني17 و18من التحولات الفيزيولوجية، والعد للبروتين،19من بين العديد من الأمثلة الأخرى. الطريقة المعروضة هنا مصممة خصيصا لتحليل الأنساب الخلية البكتيرية الواحدة بدلاً من مجموعات من السلالات أو الأنواع. يستخدم الجهاز موائع جزيئية أثبت هنا تباين واحد "آلة الأم" تصميم4، التي تزرع الخلايا أحادية الملف داخل خندق موائع جزيئية مع نهاية مغلقة واحدة وواحدة من نهاية مفتوحة؛ نمو الخلايا وشعبة يدفع الخلايا ذرية من النهاية المفتوحة ويصل إلى تدفق السائل. تحليلاتنا عادة التركيز فقط على الخلية "الأم" التي تقتصر في نهاية مغلقة الخندق. أننا نعتبر هذا الأسلوب النهوض على السابقة الخفيفة على أساس الفحص المجهري خلية واحدة التقنيات التحليلية، مثل تجميد خلية على منصات [اغروس]. بينما نجحت (ب) يستخدم كنموذج هنا، الأسلوب الذي ينطبق أيضا على سائر الأنواع البكتيرية (الإشريكيّة القولونية نموذج مشترك آخر؛ وقد تتطلب بعض الأنواع ذات أحجام مختلفة من الخلية أو مورفولوجيس تصنيع الأجهزة الجديدة مع أبعاد مختلفة). يتطلب استخدام الصحفيين الفلورسنت لتمييز الخلايا وتصور التغييرات في التعبير الجيني استخدام الأنواع وراثيا أصعب؛ تحليلات لنمو الخلايا ومورفولوجيا غير ممكنة حتى بدون علامات مضيئة.

ويستبعد هذا البروتوكول عملية اختﻻق سيد السليكون التصويرية، التي كانت توصف على نطاق واسع في أماكن أخرى باستخدام5؛ يمكن أيضا أن تكون درجة الماجستير بسهولة الاستعانة بمصادر خارجية من مرافق ميكروفابريكيشن. ويشمل صب جهاز PDMS من سليكون المقوى ماجستير؛ ارتباط الجهاز بقطعة من الزجاج غطاء؛ تجميع موائع جزيئية مدخل ومخرج السباكة والصمامات قرصه بما في ذلك السماح بتبديل المتوسطة؛ تخميل الجهاز وإعداد الخلايا البكتيرية، وتحميل الجهاز مع الخلايا البكتيرية؛ إرفاق السباكة للجهاز واكويليبراتينج الخلايا؛ وتحميل الجهاز على مجهر الأسفار للتصوير. نظراً لأن العديد من الصور المختلفة اكتساب ومعالجة البرمجيات أدوات يمكن استخدامها لوضع تصور وتحليل البيانات المختلفة لمصلحة4،5، يتم عرض الصور مثلاً، ولكن لا يتم تضمين أساليب التقاط الصور في هذا البروتوكول.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1-PDMS جهاز الصب

  1. في بيئة خالية من الغبار، مزيج البوليمر PDMS وعامل التجفيف بنسبة 10:1 وديغا تحت الفراغ لمدة 10 دقيقة على الأقل.
  2. ضع سيد سليكون (أو نسخة متماثلة الإيبوكسي أو البولي يوريثان منه) على قطعة من رقائق الألومنيوم دون انقطاع في طبق بتري البوليستيرين. صب خليط PDMS ديجاسيد على سيد بعمق من حوالي 5 مم. ديغا لوحة بيتري لمالا يقل عن 10 دقيقة استخدام دفق الهواء لكسر الفقاعات السطحية لطيف.
    ملاحظة: أبعاد الجهاز مستويين تستخدم ترد في المرفق به ملف CAD5 (انظر 1 ملف تكميلي). سيد النسخة متماثلة بلاستيك قد تعدت جزئيا خلال ولﻵﻻت؛ في حالة حدوث ذلك، دفع أسفل النسخة المتماثلة مع قضيب بلاستيك نظيفة.
  3. علاج PDMS على الأقل 1 ح في فرن عند 60 درجة مئوية وباردة بدرجة حرارة الغرفة. إزالة رقائق الألومنيوم التي تحتوي على PDMS الرئيسي وشفي من لوحة بيتري. تقشر بعناية رقائق الألومنيوم من الجزء الخلفي من الشريحة الرئيسية، ثم بعناية قشر PDMS من الشريحة الرئيسية.
    ملاحظة: بدلاً من ذلك، PDMS قد يمكن علاجه بين عشية وضحاها في درجة حرارة الغرفة. الهشاشة النسبية للماجستير رقاقة السيليكون قد يمكن التغلب عليها باستخدام لاصق الإيبوكسي للسندات بشكل دائم يفر إلى 1/16 بوصة-القرص الألومنيوم سميكة من نفس الحجم ويفر.
  4. كما رقاقة تتضمن عادة عدة أجهزة موائع جزيئية مع أبعاد مختلفة بعض الشيء (انظر 1 ملف التكميلية)، قطع جهاز واحد حجم استخدام مشرط نظيفة وحادة.
    ملاحظة: لروتين العمل نجحت باء ، استخدام الأجهزة مع الخنادق 1.0 ميكرومتر-على مستوى الخلية، التي تم وضع علامة مع C أو F في ملف CAD المصاحبة.

2-الجهاز اللكم والترابط

  1. الشريط مكان قطعة من مكتب شفافة (انظر الجدول للمواد) على جانب الجهاز لتسليط الضوء على ميزات منقوشة منقوشة. يتم تحديد مداخل ومخارج المنافذ كمناطق دائرية على طرفي نقيض من القنوات فلويديك مرئية (الشكل 1). لتحسين ظهورها عند اللكم الثقوب في الجهاز لدبابيس مدخل ومخرج، علامة على مداخل ومنافذ مع النقاط باستخدام علامة غرامة ذات الرؤوس.
    ملاحظة: لضمان أن دبابيس مدخل ومخرج ليست مزدحمة، كل قناة أخرى هي لكمات، بدءاً بالقناة تحت الرمز الدلالي الأبجدي للجهاز فقط.
  2. قلب الجهاز PDMS حيث أن الجانب منقوشة باستمرار، ولكمه من خلال الجهاز للنقاط ملحوظة استخدام لكمه خزعة 0.75 مم؛ تجاهل اللكم.
    ملاحظة: يتم لكمات الأجهزة مع الجانب منقوشة إلى أسفل لأن الحفرة التي تم إنشاؤها بواسطة لكمه خزعة يتم عادة حرقه قليلاً حيث يدخل لكمه البوليمر. اللكم الجهاز في اتجاه معكوس يضمن أن حفرة على الجانب منقوشة لها حدود حادة.
  3. استخدام ستيريوميكروسكوبي، ضمان أن الثقوب لكمات تتداخل مع مجالات مدخل ومخرج للجهاز. استخدام الملقط غرامة ذات الرؤوس لإزالة أي أجزاء غريبة من PDMS من الثقوب لكمه.
  4. استخدم شريط لاصق لإزالة الغبار من كلا الجانبين بالجهاز ومكان في طبق بتري البوليستيرين نظيفة. إعداد زجاج غطاء 22 ملم × 40 ملم بالتبول مع 100 ٪ كحول الأيزوبروبيل وفرك مع مسح تنظيم؛ الجافة مع تيار الهواء خالية من الغبار أو النيتروجين.
  5. ضع الجانب ميزة الجهاز PDMS لكمات حتى جنبا إلى جنب مع الزجاج غطاء تنظيفها في بلازما أكسجين أنظف.
    1. بلازما-علاج الجهاز بالإعدادات التالية: الفراغ، متور 70؛ O ضغط2 ، متور 200؛ مدة 15 ثانية؛ الطاقة، 30 جورج فورا بعد انتهاء فترة العلاج البلازما، إزالة الجهاز والزجاج غطاء من البلازما أنظف.
    2. عكس PDMS ووضعه في وسط الزجاج غطاء حيث أن اتصالات الجانب منقوشة على الزجاج؛ تأكد من محاذاة قنوات التغذية (تشغيل بين مجالات مدخل ومخرج) مع المحور طويلة من الزجاج غطاء. اضغط لأسفل بلطف جداً التأكد من أن الأختام PDMS ضد الزجاج.
  6. خبز الجهاز المجتمعون في فرن على الأقل 1 ح عند 60 درجة مئوية. بعد الخبز، التحقق يدوياً من أن PDMS هو الرهينة للزجاج بواسطة تضغط بلطف على زاوية واحدة من الجهاز.
    ملاحظة: حالما المستعبدين من الجهاز، أنه ينبغي استخدام خلال 24 ساعة، كما ستصبح البوليمر مسعور يتزايد مع تزايد الوقت بعد المعالجة بالبلازما.

3-إعداد السباكة موائع جزيئية

  1. قطع أطوال من البوليمر الأنابيب (القطر الداخلي (ID) 0.02 بوصة، القطر الخارجي (OD) 0.06 بوصة) لأطوال مناسبة للوصول إلى من مضخة الحقن إلى جهاز التبديل (إذا استخدمت) والجهاز عندما شنت على المجهر. قطع العديد من أطوال كما توجد ممرات موائع جزيئية.
  2. تجميع الوصلات Y للصمامات قرصه (في حالة استخدام) بقطع وربط أطوال 2-سم سيليكون مرنة أنابيب (معرف 0.03 بوصة بوصة 0.065 OD) إلى انتقادات لاذعة العلوي "y" وأطوال 1 سم من أنابيب سيليكون بشوكة أسفل "y".
  3. قطع أطوال 10 سم (أو مناسباً) من أنابيب البوليمر؛ قم بتوصيلها في نهاية واحدة لتقاطع التبديل عن طريق إدراج لهم في قطاعات أنابيب سيليكون 1 سم على شوكة أسفل "y". قم بتوصيلها في النهاية الأخرى للابر ز 21 التي تم إزالتها من محولات المحاقن البلاستيكية وبنت حوالي 90 ° حوالي 9 مم من نهاية الإبرة.
  4. قم بتوصيل الإبر فجة ز 21 نهاية أحد أجزاء الأنابيب التي سيتم تشغيلها من المحاقن إلى جهاز تبديل بإدخال الإبر في الأنبوب. إدراج الغايات الأخرى لكل طول الأنابيب في قطاعات أنابيب سيليكون على انتقادات لاذعة مدخل من الوصلات Y.
    ملاحظة: استخدم نوعا من جهاز لعقد الصمامات قرصه وتقاطعات في المكان؛ ويمكن إجراء ذلك بسهولة من مربع تلميح ميكروبيبيتي (الشكل 2D).
  5. قطع أطوال أنابيب البوليمر حمل النفايات من منفذ الجهاز إلى كوب نفايات. قم بتوصيلها في نهاية واحدة لبنت إبر ز 21 إعداد كما هو موضح أعلاه. الشريط على الطرف الآخر من الأنابيب داخل دورق نفايات.
  6. إعداد وحدات التخزين المناسبة للوسائط التي تحتوي على 0.1 مغ/مل ألبومين المصل البقري (BSA) وشغل بالحجم المطلوب وعدد الحقن. الاتصال المحاقن محملة بجيش صرب البوسنة بالإبر ز 21 استعداد تعلق للمحاقن الأنابيب وتحميل مدخل إلى مضخات الحقن.
    ملاحظة: لنموذجي التجارب تستخدم 5 قنوات للجهاز، كل مع حقنه 20 مل. تجربة التي حولت المتوسطة سيتطلب المصارف 2 من كل 5 المحاقن. هنا، المضخة التي تحتوي على أول بنك يشار مضخة المرحلة 1، ومضخة تحتوي على المصرف الثاني، مع المتوسط بعد رمز التبديل، يشار إلى ضخ المرحلة 2.
  7. إزالة الهواء من مدخل السباكة عن طريق تشغيل المضخات حقنه بمعدل تدفق عالية (> 500 ميليلتر/دقيقة)، بدءاً بتوجيه مضخات الحقن عمودياً والتنصت على الحقن إحضار فقاعات الهواء إلى الأعلى. مرة واحدة وقد تم إزالة الهواء من الحقن، ضع المضخة حقنه أفقياً وتدريجيا اضغط أو نفض الغبار خطوط البوليمر من المحاقن تصل عن طريق جهاز التبديل إزاحة وإزالة فقاعات الهواء. كرر هذه العملية للمصرف الثاني من المحاقن (في حالة تبديل وسائط الإعلام).
  8. بعد أن تم إزالة فقاعات الهواء، تعيين مضخة الحقن المرحلة 2 (أي، مع المتوسط التي سيتم استخدامها الثانية، بعد رمز التبديل) إلى 1.5 ميليلتر/دقيقة، ثم توقف التدفق. ضع مقاطع صغيرة الموثق على شرائح أنابيب مرنة في فرع الوصلات Y المناظرة للمرحلة المتوسطة الثانية. الاستمرار في تشغيل المضخة المرحلة-1 حقنه بمعدل تدفق متواضعة (مثلاً، 10 ميليلتر/دقيقة) عن 30 دقيقة على الأقل لتطهير المتوسطة الثانية من أنابيب مدخل المصب من تقاطع Y.

4-خلية ثقافة إعداد

  1. ينمو بريكولتوري من سلالة الفائدة في الأجل المتوسط المطلوب بين عشية وضحاها، إلى مرحلة ثابتة. يجب أن يحتوي على السلالة البكتيرية طفرة يجعل الخلايا غير متحركة، حيث أن الخلايا لا تسبح خارج قنوات الجهاز.
    ملاحظة: في هذا البروتوكول، السلالة البكتيرية هي نجحت 3610 المحتوية على الحاجA233V استبدال (أسباب هذه الطفرة السوط لتكون مباشرة بدلاً من حركية الخلية حلزونية، ومنع)، فرسبف-منيونجرين مراسل للإجهاد في الخلية، وتأسيسي فهايبرسبانك-منيبتوني (أحمر) مراسل تمييز الخلايا. ويستخدم رطل لينوكس المتوسطة في البروتوكول المثال. سلالات نموذجية للتجارب ميكروفلويديكس تحتوي على الصحفيين النسخي فلوري واحد أو أكثر وبروتين فلوري المنتجة مؤثرا، هيولى لتسهيل الكشف الآلي للخلايا. عيوب النمو لم تراع عندما تستخدم لينوكس رطل المتوسطة الغنية، ولكن قد تحول دون النمو ب-نجحت في الحد الأدنى من وسائل الإعلام في ظروف موائع جزيئية لأن يفرز siderophores جرفت بالتدفق في المتوسط. وفي ظل هذه الظروف، قد تكون استعادة النمو بإضافة سترات الصوديوم وكلوريد الحديد إلى المتوسط، كما ذكرت S750 متوسطة11.
  2. صباح اليوم للتجربة، تمييع الخلايا نجحت 01:50 في قارورة 250 مل حيرة التي تحتوي على 25 مل متوسط النمو. تنمو الخلايا ح 5-6 في تهز الثقافة في 37 درجة مئوية كثافة بصرية من أكبر من 1.
    ملاحظة: ثقافة خلية كثيفة الأفضل لأن الخلايا الثابتة-المرحلة باء-نجحت هي أصغر حجماً وأقل الخلايا غالباً ما توجد في سلاسل، وتيسير تحميل الجهاز. الأنواع البكتيرية المختلفة قد تتطلب الشروط المتوسطة أو النمو الأخرى للتحميل الأمثل.
  3. استخدام المحاقن مزودة بمرشح حجم مسام 5-ميكرومتر، تصفية حوالي 15 مل ثقافة الخلية في أنبوب مخروطي 15 مل لإزالة سلاسل خلية نجحت (أنه من غير الضروري كولاي وقد لا يكون ضروريا مع الأنواع الأخرى).
    ملاحظة: يجب إزالة الخلايا قليلة نسبيا؛ ينبغي أن يكون فيلتراتي عكر.
  4. الطرد المركزي ثقافة المصفاة لمدة 10 دقيقة في 4,000 س ز في درجة حرارة الغرفة. من أجل إيقاف المادة طافية وريسوسبيند بيليه الخلية في السائل طاف المتبقية المتبقية في الأنبوب، مضيفاً ما يقارب 500 ميليلتر من متوسطة جديدة إذا لزم الأمر لتسهيل بيبيتينج تعليق خلية.

5-جهاز التحميل

  1. بلطف ضع فارغة ميكروبيبيتي هلام-تحميل رقيقة ونصائح (انظر الجدول للمواد) في الثقوب منفذ الجهاز موائع جزيئية.
  2. استخدام رقيقة هلام-تحميل نصائح مع ميكروبيبيتي P200، تخميل الجهاز عن طريق حقن المتوسطة التي تحتوي على 1 ملغ/مل جيش صرب البوسنة في الثقوب مدخل، التقيد بالنصائح في الثقوب منفذاً لرصد ملء القنوات موائع جزيئية (الشكل 2A). احتضان الجهاز في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق تقريبا.
    ملاحظة: يستخدم جيش صرب البوسنة عادة كحجب أو التخميل عامل التي سوف تربط إلى السطح مسعور من البوليمر PDMS، زيادة في هيدروفيليسيتي والحد من الربط من البروتينات الأخرى أو خلايا (عن طريق خلية الجزيئات السطحية).
  3. استخدام رقيقة هلام-تحميل نصائح، تحميل كل قناة مع الخلايا ريسوسبينديد (من القسم 4)، استخدام التلميحات في القناة منفذاً لرصد التقدم المحرز في الخلايا عن طريق الجهاز (الشكل 2).
    ملاحظة: تحميل تيسر إعداد ميكروبيبيتي P200 إلى حجمه الأقصى 200-ميليلتر وثم يسفط وسادة هواء قبل يسفط كمية صغيرة (حوالي نصف حجم المقطع رقيقة من طرف ماصة) من الخلايا. لا يلزم حجم الخلايا حراكه دقيقة، حسب حجم الجهاز PDMS صغيرة بالنسبة إلى ميكروبيبيتي. نحن نعرف من لا الحد الأعلى لكثافة الخلايا ريسوسبينديد، ما دام يمكن بيبيتيد تعليق خلية في الجهاز. كتل الخلايا يمكن أن تسد الجهاز وينبغي تجنب بيبيتينج شامل و/أو خلط دوامة.
  4. إزالة بلطف نصائح تحميل لجل من ثقوب المآخذ، عمل واحدة في كل مرة لمنع الأضرار بالجهاز.
  5. الطرد المركزي الجهاز في ميكروسينتريفوجي أعلى هيئة في محول دوار مناسبة على 6,000 تقريبا x ز لمدة 10 دقائق (الشكل 2).
    ملاحظة: تم استخدام محول دوار ألومنيوم آلة مخصصة تم تصميمها لتناسب في دوار ميكروسينتريفوجي (الشكل 2)؛ ويمكن استخدام نماذج مختلفة للطرد المركزي مع محولات الدوار المناسبة. ميزة هامة من المحول أنه يوفر القوة الجانبية في اتجاه نهايات مغلقة الخنادق الخلية، مما اضطر الخلايا في القنوات الجانبية.
  6. تحقق من تحميل ناجحة تحت المجهر (الشكل 3) ولكن دون تحديد الجهاز إلى الشريحة حامل/المرحلة إدراج.
    ملاحظة: في هذا البروتوكول، 60 س، يستخدم الهدف النفط-الغمر Ph3 نا 1.4 للتحقق في هذه المرحلة وتصوير اللاحقة.

6-جهاز الجمعية، والموازنة، وتصاعد

  1. جبل الجهاز المحمل على إدراج مرحلة بعناية قبل تسجيل زجاج الغطاء على جانبي PDMS إلى الجزء السفلي من إدراج مرحلة (أيعكس إدراج مرحلة قبل إرفاق الجهاز). عكس الجمعية إدراج جهاز المرحلة ذلك PDMS هو مواجهة ومكان على سطح لينة، مثل مسح خالية من الغبار (الشكل 2D).
  2. ضبط معدل تدفق المضخة حقنه المرحلة 1 إلى 35 ميليلتر/دقيقة تعمل مع حارة واحدة في وقت واحد، إدراج مدخل الإبرة ثم الإبرة منفذاً (أيتشغيل للكأس النفايات؛ الشكل 2E).
  3. مسح بعيداً من أي وسيط الزائدة مع مسح نظيفة خالية من الغبار وبصريا فحص الجهاز بحثاً عن الثقوب. فحص الأنابيب منفذ لمظهر الخلايا الزائدة (عادة ما تظهر كمجموعة شريطية عكر) وغضروف المتوسطة، التي سوف تتحرك ببطء نحو الكأس النفايات.
  4. السماح للجهاز بتشغيل في الدقيقة 35 ميليلتر لحوالي 15-30 دقيقة، حتى أن جميع الممرات المتصلة هي تصب في الكأس النفايات.
  5. تعيين مضخة الحقن المرحلة 1 إلى 1.5 ميليلتر/دقيقة وتوقف التدفق. إحضار جهاز المضخة وجهاز كامل بالمجهر (هو مساعدة هذه العملية بوضعه على عربة متداول)، وإعادة تشغيل المرحلة-1 جبل تدفق المتوسط في 1.5 ميليلتر/دقيقة بعناية إدراج مرحلة مع الجهاز إلى مجهر مقلوب الأسفار، باستخدام الشريط عند الضرورة لتوجيه مدخل ومخرج الأنابيب.
  6. تحديد المواقف المطلوبة على الجهاز للتصوير والبدء في التصوير كما هو مطلوب. ملاحظة أن الخلايا عادة ما تتطلب بضع ساعات (ما يقارب 10 الأجيال) للوصول إلى حالة مستقرة الأسى مرحلة النمو، وقد يتأخر بدء الحصول على الصور كالمطلوب حيث أن التصوير يبدأ بعد فترة الموازنة.
    ملاحظة: نمو الخلايا في المرحلة الأسية حالة ثابتة ينبغي التحقق من خلال تحليل الصور اللاحقة بتعقب مرات انقسام الخلية وضمان أنهم توصلوا إلى قيمة الحد أدنى ثابتة.

7-التبديل بين متوسطة

  1. بين جولات متعاقبة من التصوير، توقف تدفق مضخة الحقن المرحلة 1. Unclip بعناية مقاطع الموثق من السيليكون المرحلة 2 الأنابيب، ونقل بعضها إلى أنابيب سيليكون في فرع المرحلة 1 من تقاطع Y. الأمم المتحدة--توقف تدفق المرحلة الثانية المحاقن مضخة (الذي تم تعيينه إلى 1.5 ميليلتر/دقيقة في الخطوة 3، 8) ومواصلة التصوير.
    ملاحظة: عند 1.5 ميكرومتر/دقيقة بطول 10 سم من أنابيب البوليمر المصب من الوصلات Y، يصل المتوسط المرحلة الثانية إلى الجهاز في حوالي 50 دقيقة. يمكن اختبار الوقت للجهاز تجريبيا باستخدام الوسائط التي تحتوي على جزيئات الراسم الفلورسنت.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

تعتبر الخلية الأولى الناجحة تحميل، حسب تقييم التباين مرحلة الفحص المجهري قبل إرفاق السباكة موائع جزيئية للجهاز، ككل أو ما يقرب من جميع القنوات الجانبية موائع جزيئية تحتوي على واحد أو أكثر من الخلايا البكتيرية ( الشكل 3A). تحميل الأمثل سوف تظهر عدة خلايا في كل قناة، ولكن مع ذلك سوف تملأ القنوات مع الخلايا بسبب نمو الخلية خلال فترة الموازنة (الشكل 3B). الممرات مع الفقراء تحميل، فيها نسبيا قليلة (< 50 ٪) الجانب قنوات يتم تحميلها مع الخلايا، ويمكن أن تستخدم، ولكن كثافة البيانات الناتجة ستكون أقل بسبب أقل الأنساب الخلية التي يجري تصويرها في كل موقف التصوير.

حالما يتم تحميل الجهاز في البداية، هو اكويليبراتيد بإرفاق السباكة موائع جزيئية وتتدفق المتوسطة عن طريق الجهاز بمعدل تدفق عالية نسبيا من 35 ميليلتر/دقيقة. بمثابة خطوة الموازنة لإزالة فقاعات الهواء والخلايا الزائدة في قناة التغذية من الجهاز، وتشجيع الخلايا الموجودة في قنوات جانبية للبدء في زراعة. الخلايا التي يتم إزالتها من الجهاز عند تدفق المتوسط يمكن ملاحظتها بالعين المجردة غالباً كعصابة ذات الألوان الفاتحة تتحرك من خلال الأنبوب منفذاً نحو حاوية النفايات؛ حركة هذه العصابات بمثابة مؤشر مرئي الذي يتدفق السائل عادة من خلال السباكة والجهاز. وينبغي أن تكشف التفتيش المجهري لجهاز متوازن الخلايا قليلة محصورة في ملف واحد في معظم القنوات الجانبية (الشكل 3B, 0 دقيقة).

حالما يتم وضع جهاز متوازن في المجهر تحت التدفق في 1.5 ميليلتر/دقيقة عند 37 درجة مئوية، سوف تستأنف الخلايا النمو الأسى المرحلة موحد وثابت على مدى ما يقرب من 2 ح (الشكل 3B). يجب أن يمكن التحقق من النمو الهائل المستمر مباشرة بعد تحليل الصور بمظهر هضبة في وقت جيل من الخلايا. عند هذه النقطة، الخلايا على استعداد للأسفار و/أو برايتفيلد التصوير كما هو مطلوب. يمكن عادة جهاز تم تحميلها بنجاح ومتوازن تصويرها موثوق بها لفترات على الأقل 24 ساعة (الشكل 4 أ، ج). إدخال رمز تبديل متوسطة (4A الرقمج) يوسع نطاق التجارب التي يمكن إجراؤها ولكن يؤدي أيضا إلى زيادة تواتر الأحداث الكارثية في موت الخلية (الشكل 4)، يفترض من خلال إدخال الهواء الفقاعات التي كانت لا إزالة بنجاح من الأنبوب. حدث آخر قد يسبب موت الخلية الكارثية هو أن مجموعات من الخلايا الموجودة في المدخل قد تصبح فكها، وتمر عبر قناة التغذية، كما هو مبين في الشكل 4. لا في الوقت الحاضر نفهم لماذا هذا يسبب موت الخلية كارثية في الجهاز، ونحن لم تضع حتى الآن وسيلة لمنع حدوث مثل هذه الأحداث.

Figure 1
رقم 1: التخطيطي للجهاز موائع جزيئية. جهاز تخطيطي يظهر تقريبا إلى مقياس. مصمم أبجدية يسمى جنبا إلى جنب مع مداخل ومخارج المناطق التي هي لكمات لتوصيل الإبر المنتهية في بلانت. عادة، يتم استخدام نصف القنوات منقوشة (الرمادي مظللة). الخنادق الخلية تتجه نحو التسمية. ملف CAD المصاحبة لها (انظر التكميلية ملف 1) يبين كافة الميزات على الجهاز. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 2
رقم 2: موائع جزيئية التخميل الجهاز وتحميل خلية، والموازنة- (أ) بالجهاز المرتهن بعد التخميل مع المتوسطة المحتوية على جيش صرب البوسنة. هلام-تحميل نصائح تحفظ في الثقوب منفذاً لمراقبة مرور المتوسطة والخلايا عن طريق الجهاز. غضروف متوسطة مرئياً في الجزء رقيقة من نصائح جل في التحميل (السهم). (ب) الجهاز بعد تحميل الخلية. الخلايا مرئية كطبقة بيضاء شفافة في نصائح جل في التحميل (السهم). يتم إزالة (ج) الهلام-التحميل نصائح قبل الطرد المركزي في محول مخصص ملفقة للطرد مركزي. الشريط الطبية (أزرق) يوضع على أجزاء الألومنيوم للتخفيف من الجهاز. (د) في أعقاب الطرد المركزي والتحقق من التحميل، مسجلة لإدراج مرحلة مجهر الجهاز ويعلق على دبابيس مدخل ومخرج. في الصورة التي تظهر، تبديل المتوسطة بالصمامات قرصه و Y-الموصلات التي يتم ترتيبها في جهاز من مربع تلميح ميكروبيبيتي. (ه) عرض التخطيطي جهاز مجمع كامل، من مضخات الحقن إلى حاوية النفايات. الأنابيب منفذ يعمل لكوب نفايات صغيرة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 3
الشكل 3: خلية التحميل والنمو في الجهاز موائع جزيئية. (أ) من اليسار إلى الحق، ميكروجرافس المرحلة-على النقيض من جهاز يحتوي على المتوسطة فقط قبل تحميل الخلية والجهاز نفسه بعد أن تم إضافة الخلايا عن طريق بيبيتينج ولكن قبل الطرد المركزي، ونفس الجهاز بعد تحميل الطرد المركزي. (ب) دورة الوقت خلية التكيف والنمو في الجهاز (رطل، 37 درجة مئوية، تدفق 1.5 ميليلتر/دقيقة). في بداية التكيف، الخلايا ثابتة-مرحلة قصيرة وضيقة نسبيا. التكيف مع الخلايا والعودة إلى النمو الأسى المرحلة (60-120 دقيقة)، أنها تعتمد مورفولوجيا أطول وأوسع. بعد 120 دقيقة، كافة الخلايا الموجودة في الجهاز هي استئناف النمو الأسى المرحلة الموحدة، ويكون الجهاز جاهزاً للتصوير. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 4
الشكل 4: الخلية النمو والتحول في الجهاز موائع جزيئية المتوسطة- (أ) كيموجرافس عرض 550 دقيقة للنمو قبل ودقيقة 1,000 للنمو بعد تبديل متوسطة (خط رمادي متقطع) إلى إيثانول 2% كالضغوطات. تم القبض على الصور في فواصل زمنية 10-دقيقة. يظهر أعلى اللوحة مراسل منيونجرين النسخي (قناة الأخضر) لجينات الناجمة عن الإجهاد. وتبين اللوحة السفلية مراسل منيبتوني تأسيسي (القناة الحمراء) التي يتم استخدامها في هذه الحالة لتقسيم الخلية الآلي. (ب) عن قرب عرض أجزاء من كيموجرافس في مربع متقطع في الفريق A، تظهر استجابة عابرة في قناة الأخضر يلي رمز التبديل في المتوسط. ملاحظة أن النمو لا يزال من خلال التحول، على الرغم من وجود الإيثانول يتسبب في الخلايا تصبح أقصر وتنمو بوتيرة أبطأ قليلاً. يظهر مقياس الوقت بشريط أفقي، ويظهر المسافة بواسطة شريط عمودي. (ج) مثال يتتبع fluorescence تحليل البيانات من النسب خلية واحدة من هذه التجربة تظهر في لوحة أ الخطوط العمودية المتقطعة تشير إلى رمز التبديل المتوسطة إلى إيثانول 2% كالضغوطات. (د) مثال على فشل التبديل المتوسطة. عندما يصل المتوسطة الثانية إلى الخلايا، يتم تفكيك الخلايا في القنوات. رمز التبديل يرافقه عدد كبير من الخلايا التي تمر في القناة الرئيسية، مما تسبب في إشارة فلورسنت مشرق (إعادة تحجيم صورة المقابلة لمنطقة ناصل مبين أعلاه فقط). بعد رمز التبديل، لوحظت أية خلايا أخرى، رغم أنه لا يزال الحطام خلية الفلورسنت الخافتة في القنوات. يظهر مقياس الوقت بشريط أفقي، ويظهر المسافة بواسطة شريط عمودي. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

هذا البروتوكول ميكروفلويديكس يتسم بالمرونة في ذلك العديد من الخطوات التي يمكن تعديلها لتحسين استخدامها مع نوع معين أو سلالة أو لغرض محدد. وفي الواقع، في هذا البروتوكول قمنا بتعديلات على مفهوم "آلة الأم" الأصلي4 لتحسين استخدامها مع باء-نجحت. وغالباً ما تشكل الخنادق التي تقتصر الخلايا ميزة طبقة واحدة، بينما في هذا البروتوكول نستخدم الخنادق خلية طبقتين، مع قناة ضحلة المحيطة بالخلايا. عرض تصميم طبقتين كوسيلة لتحقيق أقصى قدر من تدفق المواد المغذية إلى ونواتج الأيض من الخلايا باء-نجحت ، لا سيما في فترة طويلة (> 75 ميكرون) الخنادق5؛ ومع ذلك، ميزات طبقة واحدة غالباً ما يكفي لنمو الخلايا الأمثل وتستخدم عادة كولاي، لا سيما عندما تكون أقصر (~ 25 ميكرومتر)4. ونحن عادة استخدام الخنادق أطول، كما أنها تقلل من التردد التي نجحت خلية سلاسل، التي تنشأ من ستوتشاستيكالي، هي انسحبت من خنادقهم بالتدفق المتوسط في قناة التغذية الرئيسي5.

كذلك قد تكون بديلاً التعديلات، مثل استخدام الأجهزة مع ميزة مختلفة الأبعاد (مثلاً، عرض القناة) أو الخصائص (مثل، الشكل، عدد من نهايات مفتوحة) حسب الاقتضاء. على سبيل المثال، استخدام الخلية الخنادق التي يتم فتح على طرفي (بدلاً من نهاية واحدة فقط، كما هو الحال في هذا البروتوكول) قد استخدمت في سائر الدراسات1،،من2021. تجنب الخنادق المفتوحة على طرفي الخلية الشيخوخة نظراً لأنهم يجري شغل باستمرار مع الخلايا الوليدة (بدلاً من الأم آلات، حيث يتم تعقب خلية أقدم وأحدث الخلايا يتم الضغط خارج القناة)، على الرغم من حقيقة أن الخلايا القديمة يتم الضغط على طرفي حدود عادة على إطار المراقبة إلى أقل من1،الأجيال 1021. نسعى عادة ما تعد الرصدية النوافذ (مئات الأجيال) يقدمها جهاز أم، مما يجعل من الممكن لقياس العمليات حتى ميمريلس التي هي أوقات الانتظار عشرات أو مئات أجيال طويلة5. كما أننا استخدمنا تصميم آلة الأم لمراقبة الخلايا التي لا تنمو باطراد، كما هو الحال في تحليلاتنا من تبوغ22. وفي مثل هذه الحالات، تحليل خلايا إضافية في جميع أنحاء نمو الخنادق يمكن أن تكون مجدية22.

العديد من الخطوات في البروتوكول هي مسامحة نسبيا في ذلك أنها يمكن تعديلها دون أن يؤثر إلى حد كبير نتائج البروتوكول. على سبيل المثال، إصدار سابق من البروتوكول ودعا لتنظيف زجاج الغطاء بخطوات متسلسلة 10-مين حمام سونيكاتيون في 10 م كوه ومياه نقية ثم، لكننا وجدنا أن يتحقق الترابط الجهاز جيدة وعملية استخدام أبسط المستندة إلى الايزوبروبانول تنظيف الخطوة الموضحة هنا. إذا نشأت قضية الترابط أن يلقي الشك على نظافة الزجاج غطاء، يوصي بالرجوع إلى بروتوكول تنظيف أكثر صرامة. وبالمثل، في حين نستخدم خطوة الطرد المركزي إلى أقصى حد الخلية تحميل في الخنادق الخلية، يمكن تحقيق تحميل كامل معقول حتى بدون هذه الخطوة، شريطة أن يتم استخدام الخلايا مركزة جداً لخطوة التحميل. هذه استراتيجية بديلة يمكن أن تكون مفيدة بشكل خاص للباحثين الذين ليس لديهم محول متوفرة بسهولة للطرد مركزي لزيادة ونقصان الجهاز. مرة أخرى، يمكن استخدام تركيزات مختلفة من عامل تخميل التشحيم (جيش صرب البوسنة في هذا البروتوكول)؛ ونحن نستخدم بشكل روتيني تركيزات تصل إلى 1 مغ/مل. وفي الحالات التي قد يكون فيها سلالة حساسة لجيش صرب البوسنة، يمكن تحقيق نتائج مقبولة حتى في حالة عدم وجود عامل باسيفاتينج. وفي الواقع، عندما كنا باستخدام جهاز موائع جزيئية لدراسة تبوغ، الأمر الذي يتطلب خلية الموت جوعاً، شعرنا بالقلق أن جيش صرب البوسنة قد تعمل كمصدر محتمل مغذيات للخلايا، وحتى نحن حذف ذلك من تدفق المتوسط دون التقيد بأي كبيرة 22من الآثار الضارة.

جدير بالذكر أن يمكن الحصول على التدفق المستمر للمتوسطة عن طريق الجهاز تعمل مختلف قليلاً بالمقارنة مع نمو الخلايا في نظام مغلق، مثل قارورة. على سبيل المثال، استنفاد المغذيات أو مركب يمكن أن يكون تحديا، كما يمكن مسح الخلايا غالباً ما تتبع المركبات من تدفق المتوسط. في الواقع، لاحظنا أن يحفز تبوغ الخلايا عن طريق التجويع يتطلب وقتاً أطول في جهاز موائع جزيئية مما في قارورة. وبالمثل، وقد لاحظنا أن الاستقراء إجهاد الطاقة استخدام الفسفرة ديكوبلير الكربونيل السيانيد كلوروفينيل م هيدرازوني (CCCP) يتطلب لكن تركيزات أعلى في الجهاز موائع جزيئية من الإبلاغ عنها في الثقافة قارورة 23-ولذلك، قد يلزم بعض الأمثل لتحقيق نتائج مرضية مع إضافات متوسطة مختلفة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgements

تم تمويل هذا المشروع من "المعاهد الوطنية للصحة" تحت GM018568. تم تنفيذ هذا البروتوكول في جزء في المركز لأنظمة النانو (CNS)، عضوا للوطنية تكنولوجيا النانو منسقة البنية التحتية الشبكة (ننسى)، الذي تدعمه "المؤسسة الوطنية للعلوم" NSF جائزة 1541959 رقم. الجهاز العصبي المركزي جزء من جامعة هارفارد. شكرا جزيلا تعود نورمان توماس والرب ناثان لعملهم في تصور واختلاق القالب الرئيسي المستخدم للأجهزة الموضحة هنا، وفي بناء على النسخة الأصلية للجهاز. كما نشكر يوهان بولسون لنصيحته التعاونية القيمة وأشكر أعضاء مختبرة للمشورة والتحسينات المستمرة للمستحضرات البكتيرية موائع جزيئية.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Sylgard 184 Silicone Elastomer Kit Dow Corning (240)4019862 This is referred to as PDMS in the protocol. There are 2 components that are mixed at a 10:1 ratio
0.75-mm biopsy punch World Precision Instruments 504529
22 x 40 mm No. 1.5 cover glass VWR 48393 172
Plasma Etch PE-50 Plasma Etch Inc. PE-50 Instrument used to bond PDMS to glass using oxygen plasma treatment
Tygon flexible tubing ID 0.02", OD 0.06" Saint-Gobain PPL Corp. AAD04103 For the main part of the tubing, e.g. attached to the needles
Silicone Tubing, 0.04" ID, 0.085" OD HelixMark Standard Silicone Tubing 60-795-05 For pinch valves and Y-junction connection
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A7906-100G Used as passivation agent
ART Gel Pipet Tips (P200) Molecular BioProducts 2155 For loading the device with medium and cells
Acrodisc 32-mm syringe filter with 5-μm Supor membrane Pall Life Sciences 4560 For filtering cultures before device loading
21-ga blunt needles, 1" McMaster-Carr 75165A681
Y connector with 200-series barbs, 1/16" ID tubing, polypropylene Nordson Medical Y210-6005 The company is AKA Value Plastics
Eclipse Ti-E inverted microscope Nikon This unit has been discontinued by the manufacturer and is replaced by the Ti 2 E.
LB Lennox Sigma-Aldrich L3022
Microfuge 18 Beckman Coulter 367160
Bacillus subtilis strain NCIB3610 Bacillus Genetic Stock Center 3A1 wild-type parental strain modified for use in the experiments shown in this protocol
Gravity convection oven VWR 414005-106 for curing PDMS and baking assembled devices
Scotch-Weld Epoxy Kit 3M 2216 B/A may be used to bond a silicon wafer to an aluminum backing plate
Scotch Magic tape, 3/4" width 3M to clean dust from PDMS devices and to place over features to increase visibility (denoted "office tape" or "adhesive tape" in protocol)
Stereomicroscope Nikon SMZ800N listed here as an example; nearly any stereomicroscope will do
Isopropyl alcohol Sigma-Aldrich W292907 To clean cover glass
Syring pump, 6 channel New Era Pump Systems Inc. NE-1600
Kimwipes Kimberly-Clark 34120 a brand of dust-free wipes

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Moffitt, J. R., Lee, J. B., Cluzel, P. The single-cell chemostat: an agarose-based, microfluidic device for high-throughput, single-cell studies of bacteria and bacterial communities. Lab Chip. 12, (8), 1487-1494 (2012).
  2. Young, J. W., et al. Measuring single-cell gene expression dynamics in bacteria using fluorescence time-lapse microscopy. Nat Protoc. 7, (1), 80-88 (2011).
  3. Dusny, C., et al. Technical bias of microcultivation environments on single-cell physiology. Lab Chip. 15, (8), 1822-1834 (2015).
  4. Wang, P., et al. Robust growth of Escherichia coli. Curr Biol. 20, (12), 1099-1103 (2010).
  5. Norman, T. M., Lord, N. D., Paulsson, J., Losick, R. Memory and modularity in cell-fate decision making. Nature. 503, (7477), 481-486 (2013).
  6. Perestrelo, A. R., Aguas, A. C., Rainer, A., Forte, G. Microfluidic Organ/Body-on-a-Chip Devices at the Convergence of Biology and Microengineering. Sensors. 15, (12), Basel. 31142-31170 (2015).
  7. Johari, S., Nock, V., Alkaisi, M. M., Wang, W. On-chip analysis of C. elegans muscular forces and locomotion patterns in microstructured environments. Lab Chip. 13, (9), 1699-1707 (2013).
  8. Liu, J., et al. Coupling between distant biofilms and emergence of nutrient time-sharing. Science. 356, (6338), 638-642 (2017).
  9. Choi, C. H., et al. One-step generation of cell-laden microgels using double emulsion drops with a sacrificial ultra-thin oil shell. Lab Chip. 16, (9), 1549-1555 (2016).
  10. Weibel, D. B., Diluzio, W. R., Whitesides, G. M. Microfabrication meets microbiology. Nat Rev Microbiol. 5, (3), 209-218 (2007).
  11. Taheri-Araghi, S., Brown, S. D., Sauls, J. T., McIntosh, D. B., Jun, S. Single-Cell Physiology. Annu Rev Biophys. 44, 123-142 (2015).
  12. Karimi, A., Karig, D., Kumar, A., Ardekani, A. M. Interplay of physical mechanisms and biofilm processes: review of microfluidic methods. Lab Chip. 15, (1), 23-42 (2015).
  13. Yu, F. B., et al. Long-term microfluidic tracking of coccoid cyanobacterial cells reveals robust control of division timing. BMC Biol. 15, (1), 11 (2017).
  14. Campos, M., et al. A constant size extension drives bacterial cell size homeostasis. Cell. 159, (6), 1433-1446 (2014).
  15. Taheri-Araghi, S., et al. Cell-size control and homeostasis in bacteria. Curr Biol. 25, (3), 385-391 (2015).
  16. Siryaporn, A., Kim, M. K., Shen, Y., Stone, H. A., Gitai, Z. Colonization, competition, and dispersal of pathogens in fluid flow networks. Curr Biol. 25, (9), 1201-1207 (2015).
  17. Connell, J. L., et al. Probing prokaryotic social behaviors with bacterial "lobster traps". MBio. 1, (4), (2010).
  18. Long, Z., et al. Measuring bacterial adaptation dynamics at the single-cell level using a microfluidic chemostat and time-lapse fluorescence microscopy. Analyst. 139, (20), 5254-5262 (2014).
  19. Okumus, B., et al. Mechanical slowing-down of cytoplasmic diffusion allows in vivo counting of proteins in individual cells. Nat Commun. 7, 11641 (2016).
  20. Teng, S. W., Mukherji, S., Moffitt, J. R., de Buyl, S., O'Shea, E. K. Robust circadian oscillations in growing cyanobacteria require transcriptional feedback. Science. 340, (6133), 737-740 (2013).
  21. Baker, J. D., et al. Programmable, Pneumatically Actuated Microfluidic Device with an Integrated Nanochannel Array To Track Development of Individual Bacteria. Anal Chem. 88, (17), 8476-8483 (2016).
  22. Russell, J. R., Cabeen, M. T., Wiggins, P. A., Paulsson, J., Losick, R. Noise in a phosphorelay drives stochastic entry into sporulation in Bacillus subtilis. EMBO J. 36, (19), 2856-2869 (2017).
  23. Cabeen, M. T., Russell, J. R., Paulsson, J., Losick, R. Use of a microfluidic platform to uncover basic features of energy and environmental stress responses in individual cells of Bacillus subtilis. PLoS Genet. 13, (7), e1006901 (2017).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics