新型光声显微镜与光学相干层析成像在活兔眼中的双模脉络成像

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Summary

这份手稿描述了新的设置和操作程序的光声显微镜和光学相干断层扫描双模系统的无创, 无标签的脉络成像大动物, 如兔。

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Tian, C., Zhang, W., Nguyen, V. P., Wang, X., Paulus, Y. M. Novel Photoacoustic Microscopy and Optical Coherence Tomography Dual-modality Chorioretinal Imaging in Living Rabbit Eyes. J. Vis. Exp. (132), e57135, doi:10.3791/57135 (2018).

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Abstract

光声眼部成像是一种新兴的眼科成像技术, 它可以通过将光能转换成声波来非可视化的眼部组织, 目前正在进行密集的调查。然而, 迄今为止报告的大部分工作都是针对小动物 (如大鼠和小鼠) 眼后段的成像, 这对由于眼球尺寸小而对临床人的翻译造成了挑战。这篇手稿描述了一个新的光声显微镜 (PAM) 和光学相干断层扫描 (OCT) 双模系统的后段成像的大动物的眼睛, 如兔。该系统配置, 系统对准, 动物准备, 和双模态实验协议为在体内, 无创, 无标签的脉络成像在兔子是详细的。该方法的有效性通过代表性的实验结果证明, 包括由 PAM 和 OCT 获得的视网膜和脉络膜血管。这篇手稿提供了一个实用的指南, 以再现兔的成像结果和推进大动物的光声眼部成像。

Introduction

近几十年来见证了生物医学光声成像领域的爆炸性发展1,2,3,4,5,6,7 ,8。根据光的能量转换成声音, 新出现的微声成像可以可视化的生物样品从细胞器, 单元, 组织, 器官的小动物整个身体, 可以揭示其解剖, 功能, 分子, 遗传,和代谢信息1,2,9,10,11,12。光声成像在一系列生物医学领域中找到了独特的应用, 如细胞生物学13,14, 血管生物学15,16, 神经病学17,18, 肿瘤科19,20,21,22, 皮肤科23, 药理学24, 和血液病25,26。它在眼科的应用, 即光声眼部成像, 已经引起了科学家和临床医生的极大兴趣, 目前正在积极调查中。

与常规使用的眼部成像技术27不同, 如荧光血管造影 (FA) 和哚绿血管造影 (ICGA) (基于荧光对比), 光学相干层析 (OCT) (基于光学散射对比), 其衍生物 OCT 血管造影 (基于红细胞的运动对比), 光声眼成像以光学吸收为对比机制。这是不同于传统的眼科成像技术, 并提供了一个独特的工具, 研究光学吸收特性的眼睛, 这通常是与病理生理状态的眼部组织28。到目前为止, 在光声视觉成像中已经做了大量的出色工作29,30,31,323334 36,37, 但这些研究集中在小动物的眼球后段, 如老鼠和老鼠。开创性的研究充分证明了眼科光声成像的可行性, 但是, 由于大鼠和小鼠眼球尺寸小 (小于 1/3), 临床翻译技术还有很长的路要走。人类。由于超声波在较长距离上传播, 当使用这种技术来成像大眼睛后段时, 信号强度和图像质量会受到很大的影响。

为了达到这个目标, 我们最近报道了使用集成光声显微镜 (PAM) 和光谱域 oct (SD oct)38的活兔无创无标签脉络成像。该系统具有优异的性能, 可根据眼组织的内源吸收和散射对比, 对大动物眼的视网膜和脉络膜进行可视化。家兔的初步结果表明, PAM 可以非区分个别视网膜和脉络膜血管使用激光照射剂量 (〜80新泽西州) 显著低于美国国家标准学会 (ANSI) 安全限制 (160 新泽西州) 在570nm39;OCT 可以清楚地分辨出不同的视网膜层、脉络膜和巩膜。这是第一次演示的大动物后段成像, 使用 PAM, 可能是一个重要的步骤, 以临床翻译的技术考虑到兔眼球大小 (18.1 mm)40是几乎80% 的轴向长度人 (23.9 毫米)。

在这项工作中, 我们提供了一个详细的描述的双模态成像系统和实验协议, 用于无创, 无标签的脉络成像在活兔和演示系统性能通过代表性的视网膜和脉络膜成像结果。

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Protocol

兔子是美国农业部 (USDA) 覆盖的物种。它在生物医学研究中的应用需要遵循严格的规定。所有的兔实验都是按照帕特 (视觉和眼科研究协会) 在眼科和视力研究中使用动物的声明进行的, 这是在大学批准了实验动物协议后进行的。密歇根大学动物使用与护理委员会 (UCUCA) (协议 PRO00006486, PI Yannis)。

1. 系统配置

  1. 光声显微镜 (PAM)
    1. 使用由二极管泵浦的固态激光器泵浦的光学参量振荡器 (参量) 作为 PAM 的光源. 选择合适的技术指标, 如脉冲重复率1赫、脉冲持续时间 3-6 ns 和可调谐波长范围 405-2600 nm。
    2. 用两个镜 (M1 和 M2) 反射激光在 570 nm 的发射光束, 然后通过一个半波板衰减器安装在一个机动的旋转阶段, 最后聚焦, 过滤, 并准它由光束准直 (图 1)。优化光束准直器的设计。光束准直器的一个示例配置包括聚焦透镜 L1 (焦距 250 mm)、针孔 (直径50µm) 和准直透镜 L2 (焦距 30 mm)。
    3. 将准直光束除以分光比为 90/10 (反射/透射) 的光束分配器 (BS1)。用光电二极管记录传输部分的脉冲-脉冲激光能量监测。连续偏转反射的部分由镜子 (M3) 和分色镜 (DM) 和光栅扫描它使用二维电流计。振镜是一个共享的组件与频谱域 (SD)-OCT 系统 (描述如下)。
    4. 通过由扫描透镜 (焦距36毫米) 和眼科透镜 (OL, 焦距10毫米) 组成的望远镜传送扫描光束, 最后将其聚焦在兔眼光学的眼底。
    5. 选择一个有适当技术规格的针形超声波换能器, 例如, 中心频率27兆赫, 双向 6 dB 带宽60%。将其与中央视轴上的结膜接触, 捕捉兴奋的光声信号。
    6. 使用超声波放大器 (例如, 增益 57 dB) 放大信号, 通过低通滤波器 (例如, 截止频率 32 MHz) 对其进行过滤, 并以200毫秒/秒的采样速率将高速数字化器数字化。
    7. 在兔眼上方放置一个电能表, 并测量在兔角膜上的激光脉冲能量, 使其低于 ANSI 安全限制160新泽西在 570 nm38。通过同步电子学, 用 Matlab 控制的激光快门来阻挡光束, 避免激光曝光。
    8. 通过数据采集 (数据采集) 板同步激光器、振镜和数字化仪。编程软件进行系统控制和数据采集。
  2. 光谱域光学相干层析成像 (SD OCT)
    1. 在参考臂 (图 1) 中, 通过在扫描透镜 (SL) 和一块色散补偿玻璃 (DCG) 之后添加眼科透镜 (OL) 来适应基于商用系统的 SD OCT 系统。通过修改, OCT 系统可以实现对兔眼后段的图像处理。
    2. 使用变焦外壳管调整参考臂的长度, 以确保它与样品臂的光学路径长度匹配。使用虹膜来控制反射光的亮度, 以确保其与背散射光强度的匹配, 从而达到最大的图像对比度。
    3. 采用在扫描头上封装的电荷耦合器件 (CCD) 摄像机, 以照明发光二极管 (LED) 作为外部光源, 对兔眼底进行实时可视化。

2. 系统对准

  1. 初始化电流计的位置, 并通过调整光纤准直器安装和分立方体的螺钉来对准 OCT 系统。
    注: 分步程序可在商业获取的 OCT 系统手册中获得, 此处不包括。这一步骤主要是为了确保光纤准直器、参考臂和扫描透镜的正确对准, 以最大限度地提高 OCT 系统的性能。
  2. 调整聚焦透镜焦点周围的针孔的xyz位置, 以便在空间上滤除激光束, 并最大限度地传输激光能量。使用高度测量工具检查针孔前后的激光高度, 以确保它们是相同的。
  3. 调整准直透镜 L2 的倾斜、偏心和z位置以准过滤光束。确保在近场和远场观测时, 光束的大小和高度大致相同。
  4. 通过调整镜面和 DM 的倾斜, 将 PAM 激光光束和 OCT 光束进行共轴结合。在这一步之后, PAM 激光器和 OCT 光应该完全重合, 扫描区在兔眼底是相同的。
  5. 调整 OL 透镜的倾斜和偏心, 使其在光学路径中正确对准。一旦完成, 双模态系统就可以成像了。
    注: 你可以使用自动准直法来实现这一点, 即, 检查光线背面反射的 OL 透镜表面, 以确保它回去沿着同样的方式与入射光。

3. 兔制剂

  1. 从动物设施中取一只新西兰白兔, 记录个人信息, 如体重和动物数量。
  2. 山兔平台, 包括身体支持和头部支持的光学表下的成像系统。将水循环加热毯放在车身支撑上, 将循环水的温度设置为38° c, 以帮助保持家兔体温在实验和恢复期间的体温。
  3. 记录手术前的生命体征, 包括总体动物状态、粘膜颜色、心率、呼吸速率和直肠体温。麻醉用氯胺酮 (40 毫克/千克) 和嗪 (5 毫克/千克) 的混合物通过肌肉注射和记录氯胺酮 (附表三控制物质) 的使用情况。通过检查心率、呼吸速率和整体状态来确认麻醉水平。
  4. 放大兔学生使用一滴卡1% 眼科和肾上腺素盐酸2.5% 眼科。
  5. 使用窥镜, 以保持眼睑的方式和应用一滴眼润滑剂滋润角膜。在成像程序之前, 在眼睛中灌输一滴局部丁卡因0.5%。
    注: 对于动物可能不适的较长的程序或程序, 在实验前给兔子皮下注射昔以确保动物的舒适性。

4. SD-OCT 成像

  1. 将兔子转移到临床眼底相机的成像平台上, 在 OCT 成像前进行50度眼底、无红色和自发荧光图像。这有助于检查眼睛的光学透明度和识别眼底血管的形态和标志, 如视神经和髓质视网膜血管。
  2. 把兔子转移到 OCT 系统的平台上, 调整它的姿势, 大致定位在 OL 下的一只眼睛。用 LED 灯照亮眼睛。
    注: 为方便临床翻译的技术, 兔眼不稳定使用任何其他方法和兔头是刚刚投入头部支持没有任何固定。
  3. 打开 OCT 软件, 首先检查眼底的 CCD 摄像头图像。精细调整头部支持的高度和角度, 如果有必要, 以确保利益区 (roi), 如脉络膜血管和视网膜血管, 是在视野 (视) 的相机。
    注意: 如果兔子处于良好的麻醉水平下, 一个连续的成像会话可以持续长达10分钟, 而无需重新调整兔头。
  4. 画一条直线代表 OCT B 扫描兴趣并开始扫描。调整参考臂长度, 以可视化 oct 图像并优化 oct 软件中的色散补偿因子, 以获得最清晰的图像。
    注意: 当调整参考臂长度时, 两个镜像的 OCT 图像将一个接一个地出现。正确的图像可以区分的基础上先验知识的眼底解剖。
  5. 设置数据获取参数, 如像素数和平均值, 以及保存图像。
  6. 观察家兔的呼吸速率和心率, 估计麻醉水平和动物舒适度。对于更长的疗程, 第三剂量的补充氯胺酮或吸入异氟醚可以考虑与气管插管, V 凝胶, 或口罩, 以维持在必要的麻醉平面。
  7. 在实验中每2分钟用眼冲洗兔角膜, 以防止角膜表面脱水和角膜浅点上皮角膜。每15分钟监测和记录动物的生命体征。

5. PAM 成像

  1. 戴上合适的激光安全护目镜, 打开参量激光器。
  2. 启动 PAM 控制软件, 将激光波长调到目标团的一个吸收峰值 (例如, 570 nm 用于血红蛋白), 初始化电流计的位置, 并在兔角膜前监测激光能量, 以确保它低于 ANSI 安全限制。
  3. 在三维 (3D) 平移阶段安装超声波换能器, 并将传感器尖端与指向眼底的兔结膜接触。使用一滴眼润滑剂更好地耦合传感器提示和兔结膜。
  4. 打开 LED 照明灯, 通过 Matlab 软件对兔眼底进行可视化。
  5. 设置扫描 ROI (即视网膜血管或脉络膜血管), 包括中心和物理尺寸。打开激光快门, 开始 B 扫描光束。通过大致校准传感器, 你应该能够看到在示波器上检测到的光声信号。如果没有, 稍微调整眼睛的位置, 以扫描不同区域的角膜或切换到另一只眼睛, 并重复上述过程。
  6. 观察示波器上检测到的光声信号, 并微调传感器位置, 使整个 B 扫描信号强度最大化。
    注: 由于光束宽度有限, 超声换能器通常有一个小视41。这一步决定了最终 PAM 图像的背景调制。不对称会导致 PAM 图像具有异构背景, 大大降低了图像质量。
  7. 设置数据获取参数。这包括像素数 (e. g、256×256像素)、采样率 (e. g、200毫秒/秒) 和延迟时间。开始数据采集。当完成时, Matlab 软件将自动打开快门以通过激光束, 并关闭快门以阻止激光曝光。
    注: 受激光脉冲重复率 (1 kHz) 的限制, 用 256 x 256 像素完成图像的数据采集需要大约1分钟。
  8. 通过最大强度投影 (MIP)13或通过体积渲染38在3D 中处理原始数据并将 PAM 图像可视化为二维 (2D)。
  9. 卸下超声波传感器, 用去离子水冲洗笔尖, 并将其放回存储箱。
  10. 将兔子转移到眼底摄像机, 重新检查眼底。这一步有助于检查是否有任何形态学变化的眼底后, 成像会议。
  11. 在实验中每两分钟用眼冲洗兔角膜, 以防止角膜表面脱水和角膜。每15分钟监测和记录动物的生命体征。
    注: PAM、OCT 和眼底成像会议大约需要1小时。

6. 后成像

  1. 眼底再检查后, 如果连接, 请断开 V 型凝胶。用眼冲洗眼睛, 应用芬眼和霉素, 素 B 硫酸盐和地塞米松眼膏, 闭上眼睛。
  2. 将带水循环毯的兔子转移到回收室。把盒子从灯上屏蔽下来, 等到兔子自然苏醒。在此期间, 监测动物的生命体征每15分钟, 并保持记录, 并返回一份副本的动物设施, 保存。
  3. 一旦兔子醒来, 是活跃的, 警觉和正常行走, 把它运回动物设施。如果一个急性实验计划, 安乐的动物使用安乐死解决方案 (e. g., Beuthanasia, 0.22 毫升/千克, 静脉注射在边缘耳静脉) 和处置的胴体。
  4. 关闭软件和激光。清洁光学工作台。

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Representative Results

双模态成像系统和实验协议已成功地在作者的实验室使用四新西兰白兔进行了测试。下面展示了一些代表性的结果。

图 1显示了 PAM 和 SD OCT 双模态成像系统的示意图。它由以下几个模块组成: 光声光源、可变激光衰减器、光束准直仪、能量计、扫描头、光电探测和采集模块、OCT 单元和同步电子学。详细的系统配置详见1.1 节。

图 2演示了使用双模成像系统获取的兔脉络膜血管的典型成像结果。图 2(a)是一张眼底照片, 显示脉络膜血管分布在家兔眼底的大部分部分, 而视网膜血管则局限在髓质光线中。图 2(b)是一个典型的 PAM 图像, 显示眼底照片中的脉络膜血管。脉络膜血管在高侧向分辨率下被划定。图 2(c)是一种 OCT B 扫描图像, 用于查看眼底解剖并确认脉络膜血管的存在。视网膜、脉络膜和巩膜可以用高轴向分辨率与视网膜色素上皮 (RPE) 层下的脉络丛血管进行可视化。

图 3演示了使用双模成像系统获取的兔视网膜血管的典型成像结果。图 3 (a)3 (b)分别是由 PAM 获得的视网膜血管的 2D MIP 和3D 容积呈现。图 3(c)显示3D 图像的正交切片。结果表明, PAM 还可以可视化视网膜血管, 即视网膜色素上皮层以上的个体, 并证实其血管和脉络膜血管处于不同的深度。图 3(d)演示相应的 OCT B 扫描图像, 显示单个视网膜血管和神经纤维层 (NFL) 的剖面。

Figure 1
图 1综合光声显微镜和光学相干层析成像系统的示意图.参量: 光学参量振荡器;BS: 分束器;PD: 光电二极管;M: 镜子;DM: 分色镜;SL: 扫描透镜;OL: 眼科镜片;SMF: 单模光纤;DCG: 色散补偿玻璃;CCD: 电荷耦合器件。请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2PAM 和 OCT 双形态影像学对兔脉络膜血管的影响.(a) 眼底照片显示脉络膜血管 (CVs) 遍布整个眼底, 而视网膜血管 (RVs) 则局限在髓质射线中, 因为家兔是 merangiotic 动物。(b) pam C 扫描 cvs 图像, 显示 pam 可以在高横向分辨率下描绘 cvs。(c) OCT B 扫描图像显示兔脉络膜血管的基底和轴位的解剖结构。协鑫: 神经节细胞层;INL: 内核层;彩光: 内状层;唯一: 外层核层;组织: 外状层;OLM: 外限膜;EZ: 椭球区;样区;操作系统: 外部部分;BM, 赫的膜;伊兹: 交错区域38请单击此处查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3PAM 和 OCT 对兔视网膜血管的双形态成像.(a) pam C 扫描 RVs 和 CVs 的图像. (b) pam 图像的3D 体积渲染。(c) 2D 的 PAM 图像的正交切片显示 RVs 和 CVs 在不同的深度。(d) OCT B 扫描图像, 说明 RVs、NFL 和巩膜38请单击此处查看此图的较大版本.

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Discussion

一个完整的和常规的泪膜是必不可少的高质量眼底图像。不规则和恶化的撕裂膜可以显著降低图像质量42。为了保持泪膜的完整性, 防止角膜表面有斑点的角膜, 重要的是用眼非常频繁地润滑角膜, 大约每两分钟。如果对眼睛的不透明度有任何顾虑, 请使用狭缝灯和荧光素条来检查角膜的状况。

较大的动物眼后段成像可能存在一些困难, 包括高频率分量、角膜脱水和光学像差等距离的光声信号衰减。光声信号振幅通常在被针状超声换能器检测之前会有明显的衰减。眼球尺寸越大, 衰减越大。家兔眼球大小 (~ 18.1mm) 是大鼠的三倍, 比小鼠大六倍, 这使得兔眼成像尤其具有挑战性。为了达到合理的成像质量, 一个小直径的激光束 (在本研究的光束准直器后2毫米) 和准直波前 (理想的平面波面) 是首选的, 因为它将受到最小的固有光学像差的影响角膜, 可以很好地聚焦在视网膜上。这一点在减少激光照射剂量和改善图像分辨率方面至关重要。此外, 一个超声换能器的中心频率为27兆赫, 而不是一个更高的中心频率, 由于实验结果表明, 这是最大的超声信号在这个距离。

OCT 和八是在临床上用于眼部解剖和功能成像的良好技术, 但由于对比机制43, 它们的分子成像能力有限。PAM 是一种基于眼组织的光学吸收对比而形成的眼球成像模式。它是敏感的内生和外源性团, 如血红蛋白, 黑色素, 和外部的对比剂。可视化血管结构是 PAM 的众多应用之一。其他重要的应用包括功能和分子成像, 如血流速度检测, 血红蛋白浓度量化, 氧饱和映射, 和生物标志物的可视化, 这是重要的研究病理生理学许多视网膜血管疾病, 包括糖尿病视网膜病变, 黄斑变性, 视网膜静脉闭塞, 视网膜动脉闭塞, 镰状细胞视网膜病变, 和推定眼菌, 命名为少数。此外, PAM 比 OCT 有更大的穿透深度, 这使得它适合于一些脉络膜疾病的研究, 如息肉脉络膜血管, 中央浆液性脉络, pachychoroid 疾病, 脉络膜新生血管。从这些角度来看, PAM 可以为 OCT 和八提供有用的补充信息, 以便对眼科疾病的未来进行更全面的评估。

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Disclosures

作者没有什么可透露的。

Acknowledgments

这项工作得到了国家眼科研究所 4K12EY022299 (YMP) 的慷慨支持, 为视力而战-国际视网膜研究基金会 FFS GIA16002 (YMP), 不受限制的部门支持从研究, 以防止失明, 和密歇根大学眼科和视觉科学系。这项工作利用了国家眼科研究所 P30 EY007003 资助的核心视觉研究中心。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Dual-modality imaging system
OPO laser Ekspla (Vilnius, Lithuania) NT-242
Beam attenuator Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) AHWP10M-600
Motorized rotation stage Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) PRM1/MZ8
Motorized rotation stage controller Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) TDC001
Focusing lens Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) AC254-250-B
Pinhole Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) P50S
Collimating lens Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) AC127-030-B
Photodiode Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) PDA36A 
Laser shutter Vincent Associates Inc. (Toronto, Canada) LS6S2T0
Laser shutter driver Vincent Associates Inc. (Toronto, Canada) VCM-D1
Dichroic mirror Semrock, Inc. (Rochester, NY, USA) Di03-R785-t3-25×36
Scan lens Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) OCT-LK3-BB
Ophthalmic lens Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) AC080-010-B-ML
Ultrasonic transducer Optosonic Inc. (Arcadia, CA, USA) Custom
Amplifier L3 Narda-MITEQ (Hauppauge, NY, USA) AU-1647
Band-pass filter Mini-Circuits (Brooklyn, NY, USA) BLP-30+
Digitizer DynamicSignals LLC (Lockport, IL, USA) PX1500-4 
Synchronization electronics National Instruments Corporation (Austin, TX, USA) USB-6353
OCT module Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) Ganymede-II-HR
Dispersion compensation glass Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) LSM03DC
Illumination LED light Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) MCWHF2 
Power meter Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) S121C 
Power meter interface Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) PM100USB 
Height measurement tool  Thorlabs, Inc. (Newton, NJ, USA) BHM1
Fundus camera Topcon Corporation (Tokyo, Japan)  TRC 50EX
Matlab MathWorks (Natick, MA, USA) 2017a
Oscilloscope Teledyne LeCroy (Chestnut Ridge, NY, USA) WaveJet 354T
Animal experiment
Water-circulating blanket Stryker Corporation (Kalamazoo, MI, USA) TP-700
Ketamine hydrochloride injection Par pharmaceutical, Inc. (Woodcliff Lake, NJ, USA) NDC code 42023-115-10
Xylazine hydrochloride VetOne (Boise, ID, USA) NDC code 13985-704-10
Tropicamide ophthalmic Akorn Pharmaceuticals Inc. (Lake Forest, IL, USA) NDC code 17478-102-12
Phenylephrine hydrochloride ophthalmic Paragon BioTeck, Inc. (Portland, OR, USA) NDC code 42702-102-15
Eye lubricant Hub Pharmaceuticals LLC (Rancho Cucamonga, CA, USA) NDC code 17238-610-15
Eyewash Altaire Pharmaceuticals, Inc. (Aquebogue, NY, USA) NDC code 59390-175-18
Tetracaine hydrochloride ophthalmic solution Bausch & Lomb, Inc. (Rochester, NY, USA) NDC code 24208-920-64
Flurbiprofen sodium ophthalmic solution Bausch & Lomb, Inc. (Rochester, NY, USA) NDC code 24208-314-25
Neomycin and Polymyxin B Sulfates and Dexamethasone Ophthalmic Ointment Bausch & Lomb, Inc. (Rochester, NY, USA) NDC code 24208-795-35
Meloxicam injection Henry Schein Inc. (Queens, NY, USA) NDC code 11695-6925-1

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References

  1. Wang, L. V., Hu, S. Photoacoustic tomography: in vivo imaging from organelles to organs. Science. 335, (6075), 1458-1462 (2012).
  2. Beard, P. Biomedical photoacoustic imaging. Interface Focus. rsfs20110028 (2011).
  3. Taruttis, A., Ntziachristos, V. Advances in real-time multispectral optoacoustic imaging and its applications. Nat Photonics. 9, (4), 219-227 (2015).
  4. Tian, C., Xie, Z., Fabiilli, M. L., Wang, X. Imaging and sensing based on dual-pulse nonlinear photoacoustic contrast: a preliminary study on fatty liver. Opt Lett. 40, (10), 2253-2256 (2015).
  5. Tian, C., et al. Dual-pulse nonlinear photoacoustic technique: a practical investigation. Biomed Opt Express. 6, (8), 2923-2933 (2015).
  6. Tian, C., et al. Non-Contact Photoacoustic Imaging Using a Commercial Heterodyne Interferometer. IEEE Sens J. 16, (23), 8381-8388 (2016).
  7. Kim, K. H., et al. Air-coupled ultrasound detection using capillary-based optical ring resonators. Sci Rep. 7, 1 (2017).
  8. Feng, T., et al. Bone assessment via thermal photo-acoustic measurements. Opt Lett. 40, (8), 1721-1724 (2015).
  9. Chen, S. -L., Xie, Z., Carson, P. L., Wang, X., Guo, L. J. In vivo flow speed measurement of capillaries by photoacoustic correlation spectroscopy. Opt Lett. 36, (20), 4017-4019 (2011).
  10. Dean-Ben, X., Fehm, T. F., Razansky, D. Universal Hand-held Three-dimensional Optoacoustic Imaging Probe for Deep Tissue Human Angiography and Functional Preclinical Studies in Real Time. J Vis Exp. (93), e51864 (2014).
  11. Galanzha, E. I., et al. In vivo magnetic enrichment and multiplex photoacoustic detection of circulating tumour cells. Nat Nanotechnol. 4, (12), 855-860 (2009).
  12. Xiang, L., Wang, B., Ji, L., Jiang, H. 4-D photoacoustic tomography. Sci Rep. 3, (2013).
  13. Tian, C., et al. Plasmonic nanoparticles with quantitatively controlled bioconjugation for photoacoustic imaging of live cancer cells. Adv Sci. 3, (12), (2016).
  14. Zhou, F., Wu, S., Yuan, Y., Chen, W. R., Xing, D. Mitochondria-Targeting Photoacoustic Therapy Using Single-Walled Carbon Nanotubes. Small. 8, (10), 1543-1550 (2012).
  15. Maslov, K., Zhang, H. F., Hu, S., Wang, L. V. Optical-resolution photoacoustic microscopy for in vivo imaging of single capillaries. Opt Lett. 33, (9), 929-931 (2008).
  16. Hu, S., Maslov, K., Wang, L. V. Three-dimensional Optical-resolution Photoacoustic Microscopy. J Vis Exp. (51), e2729 (2011).
  17. Yao, J., et al. High-speed label-free functional photoacoustic microscopy of mouse brain in action. Nat Methods. 12, (5), 407-410 (2015).
  18. Yang, X., Skrabalak, S. E., Li, Z. -Y., Xia, Y., Wang, L. V. Photoacoustic tomography of a rat cerebral cortex in vivo with au nanocages as an optical contrast agent. Nano Lett. 7, (12), 3798-3802 (2007).
  19. Agarwal, A., et al. Targeted gold nanorod contrast agent for prostate cancer detection by photoacoustic imaging. J Appl Phys. 102, (6), 064701 (2007).
  20. Zackrisson, S., van de Ven, S., Gambhir, S. Light in and sound out: emerging translational strategies for photoacoustic imaging. Cancer Res. 74, (4), 979-1004 (2014).
  21. Ermilov, S. A., et al. Laser optoacoustic imaging system for detection of breast cancer. J Biomed Opt. 14, (2), 024007 (2009).
  22. Mallidi, S., Luke, G. P., Emelianov, S. Photoacoustic imaging in cancer detection, diagnosis, and treatment guidance. Trends Biotechnol. 29, (5), 213-221 (2011).
  23. Zhang, H. F., Maslov, K., Stoica, G., Wang, L. V. Functional photoacoustic microscopy for high-resolution and noninvasive in vivo imaging. Nat Biotechnol. 24, (7), 848 (2006).
  24. Keswani, R. K., et al. Repositioning Clofazimine as a Macrophage-Targeting Photoacoustic Contrast Agent. Sci Rep. 6, 23528 (2016).
  25. Strohm, E. M., Berndl, E. S., Kolios, M. C. Probing red blood cell morphology using high-frequency photoacoustics. Biophys J. 105, (1), 59-67 (2013).
  26. Nguyen, V. P., Kim, J., Ha, K. -l, Oh, J., Kang, H. W. Feasibility study on photoacoustic guidance for high-intensity focused ultrasound-induced hemostasis. J Biomed Opt. 19, (10), 105010 (2014).
  27. Keane, P. A., Sadda, S. R. Retinal imaging in the twenty-first century: state of the art and future directions. Ophthalmology. 121, (12), 2489-2500 (2014).
  28. Keane, P., Sadda, S. Imaging chorioretinal vascular disease. Eye. 24, (3), 422-427 (2010).
  29. Jiao, S., et al. Photoacoustic ophthalmoscopy for in vivo retinal imaging. Opt Express. 18, (4), 3967-3972 (2010).
  30. Liu, T., et al. Near-infrared light photoacoustic ophthalmoscopy. Biomed Opt Express. 3, (4), 792-799 (2012).
  31. Song, W., et al. A combined method to quantify the retinal metabolic rate of oxygen using photoacoustic ophthalmoscopy and optical coherence tomography. Sci Rep. 4, 6525 (2014).
  32. Liu, W., Zhang, H. F. Photoacoustic imaging of the eye: a mini review. Photoacoustics. 4, (3), 112-123 (2016).
  33. de La Zerda, A., et al. Photoacoustic ocular imaging. Opt Lett. 35, (3), 270-272 (2010).
  34. Hu, S., Rao, B., Maslov, K., Wang, L. V. Label-free photoacoustic ophthalmic angiography. Opt Lett. 35, (1), 1-3 (2010).
  35. Silverman, R. H., et al. High-resolution photoacoustic imaging of ocular tissues. Ultrasound Med Biol. 36, (5), 733-742 (2010).
  36. Wu, N., Ye, S., Ren, Q., Li, C. High-resolution dual-modality photoacoustic ocular imaging. Opt Lett. 39, (8), 2451-2454 (2014).
  37. Hennen, S. N., et al. Photoacoustic tomography imaging and estimation of oxygen saturation of hemoglobin in ocular tissue of rabbits. Exp Eye Res. 138, 153-158 (2015).
  38. Tian, C., Zhang, W., Mordovanakis, A., Wang, X., Paulus, Y. M. Noninvasive chorioretinal imaging in living rabbits using integrated photoacoustic microscopy and optical coherence tomography. Opt Express. 25, (14), 15947-15955 (2017).
  39. Laser Institute of America. American National Standard for Safe Use of Lasers ANSI Z136.1 - 2007. American National Standards Institute, Inc. (2007).
  40. Hughes, A. A schematic eye for the rabbit. Vision Res. 12, (1), 123 (1972).
  41. Ma, T., et al. Systematic study of high-frequency ultrasonic transducer design for laser-scanning photoacoustic ophthalmoscopy. J Biomed Opt. 19, (1), 016015 (2014).
  42. Song, W., Wei, Q., Jiao, S., Zhang, H. F. Integrated photoacoustic ophthalmoscopy and spectral-domain optical coherence tomography. J Vis Exp. (71), (2013).
  43. Mattison, S., Kim, W., Park, J., Applegate, B. Molecular Imaging in Optical Coherence Tomography. Curr Mol Imaging. 3, (2), 88-105 (2014).

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