Summary
Васкуляризированных композитных аллотрансплантатов предлагает изменяющие жизнь выгоды для трансплантации реципиентов, но биологические причины отторжения трансплантата и васкулопатии остаются плохо понятыми. Хирургическая модель грызунов, представленная здесь, предлагает воспроизводимость, клинически релевантные модели трансплантации, позволяя исследователям оценить отклонения событий и потенциальные терапевтические стратегии, чтобы предотвратить их возникновение.
Abstract
Васкуляризированной композитной аллотрансплантации (VCA) является относительно новой области в реконструктивной хирургии. Клинические достижения в области человеческого VCA включают трансплантацию руки и лица и, в последнее время, брюшную стенку, матку и урогенитальную трансплантацию. Функциональные результаты превзошли первоначальные ожидания, и большинство получателей пользуются улучшенным качеством жизни. Однако по мере накопления клинического опыта необходимо решать проблему хронического отторжения и осложнений, связанных с иммуноподавлением. Во многих случаях, когда графтов не удалось, причинные патологии была ишемическая васкулопатия. Биологические механизмы острого и хронического отторжения, связанного с ВЦА, особенно ишемическая васкулопатия, являются важными областями исследований. Однако, из-за очень небольшого количества пациентов VCA, оценка предлагаемых механизмов лучше решается в экспериментальной модели. Несколько групп использовали животных моделей для решения некоторых из соответствующих нерешенных вопросов в VCA отказа и васкулопатии. В литературе описано несколько моделей с участием различных видов. Здесь мы представляем воспроизводимые модели VCA гетекотопическая задняя часть остеомйокутанеаус лоскут в крыс, которые могут быть использованы для поступательного исследования VCA. Эта модель позволяет серийной оценке трансплантата, в том числе биопсии и различных методов визуализации, сохраняя при этом низкий уровень заболеваемости.
Introduction
Восстановительная хирургия для катастрофических потерь тканей от ампутацией, травм взрыва, злокачественных новообразований и врожденных дефектов ограничена наличием ткани пациента и дополнительной заболеваемости, вызванной на донорских участке. В некоторых случаях, таких как жертвы ожога или четырехстороннее ампутантов, жизнеспособная ткань для реконструкции не доступна пациенту. В 1964 году в Эквадоре была проведена первая современная пересадка рук. Хотя это был технический успех, подавление иммунитета в то время было недостаточным, чтобы предотвратить отторжение, и трансплантат был потерян менее чем за 3 недели1. В 1998 и 1999, первые трансплантаты руки в самомоднейшей эре иммуноподавления были выполнены в Лионе, Франции2 и Луисвилле, кентукки, США3. В первый раз, Реконструктивная хирурги могут заменить, как с как. Трансплантация лица была впервые выполнена в 20054, и в настоящее время регулярно выполняется ряд других трансплантатов VCA, таких как брюшной стенки5, матки и урогенитальных трансплантаций6.
В отличие от твердых трансплантации органов, большинство методов VCA связаны с наличием весьма антигенной донорской кожи. Клинический опыт определил, что острый отказ кожи относительно прост в контроле, но может способствовать хроническому отторжению основных тканей и сосудов, которые не реагируют на лечение7. Сосудистая дисфункция, связанная с аллоиммунным ответом, является более зловещим препятствием для области VCA7. Макровакровопатии привести к перфузии дефицита, задержка заживления и воспалительных заболеваний. Оба свободно агрессивной васкулопатии большого сосуда и очаговых гиперплазии интимал происходят в руках трансплантации получателей7. Кроме того, микровакровопатии вероятно, способствовать VCA осложнений, а также и может даже привести к отказу событий. В то время как иммунные и Неиммунные факторы, вероятно, играют роль в васкулопатии реципиентов трансплантации рук, специфические механизмы, продвиганые дисфункцию дистальных сосудов в VCA, неизвестны, особенно в контексте низкосортных, хронических отвержения. Эти нерешенные вопросы требуют развития животных VCA модель, которая позволит для последовательной оценки трансплантата во время клинического хода отказа VCA/техническое обслуживание и васкулопатии. Такая модель будет предлагать информацию о отторжении и васкулопатии в условиях иммуноподавления, инфекционной проблемы, и/или других послеоперационных травматических травм8,9.
Здесь представлена аллогенной крысы VCA гетериопик остеомйокутанеаус задняя модель лоскут. На основе ранее опубликованных моделей VCA, эта процедура является технически легко выполнить, воспроизводимые в большом количестве, и экспонаты минимальной заболеваемости и дискомфорта для получателя животного. Эта модель была разработана, чтобы позволить клинических и гистопатологических оценок принятия VCA против отторжения, и дает возможность оценить основные иммунные и Неиммунные механизмы, участвующие в отторжении.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
Все операции на животных проводились в соответствии с протоколами, утвержденными в университете Луисвиллского институционального ухода за животными и Комитета по использованию (IAКУC утвержденных протокол 18198) и Национальный институт здравоохранения (НИЗ) руководство по уходу и использованию Лабораторные животные10. Четырехмесячный мужчина Браун-Норвегия (RT1. An) и 4-месячный мужчина Льюис (RT1. L) крысы были использованы в качестве VCA доноров и получателей, соответственно.
1. донор аллотрансплантат урожай
- Степенный донора животного с использованием испаряемого изофлуран применяется через камеру.
- Бритье трансплантата донорского района (задняя конечности), а также пах и живота областях. После этого, лечения с кремом для удаления волос, с тем чтобы уменьшить количество пуха оставленные ножницы.
- Глубоко анестезировать донорских животных с помощью интраперитонеальная (IP) кетамина (60 мг/кг)/ксилазин (15 мг/кг)/ацетпромазин (2 мг/кг). Администрирование начальной дозы 0,2 мл/100 г веса тела и дополнительных доз 0,2 mL каждый h. Для удобства не обязательно выполнять этот шаг перед шагом 2.
- Непрерывно контролировать животных в то время как под наркозом для дыхания, температуры тела, и глубина анестезии, используя палец щепотку снятия рефлекторных испытаний.
- Администрирование 30 U подкожно раствора гепарина (SC) в области сгривок до операции, чтобы предотвратить свертывание.
- Носите маску, головной покров, одноразовые платья изоляции и одноразовые перчатки.
- Поместите донора животного на спине на грелку. Производить стерильное хирургическое поле, готовя, очистка, и драпировка хирургической области, включая брюшной и спинной аспекты ноги. Дон стерильные перчатки.
- Сделать 3 см разреза кожи в паховой вогнутости с помощью лезвия скальпеля #15 и отражать паховой жировой площадке с боков с помощью Ирис ножницы.
- Разоблачить общие бедренные сосуды и поместить провод крюк с резинкой, чтобы убрать мышцы живота.
- С помощью рассечения микроскопа (40x), рассекать ножку пропромо от появления общих бедренных сосудов под паховой связки и дистически к слиянию подливного сосудов в трансплантат.
- Использование микроклипов и биполярных ювелиров щипцы, лигате и разделить большие артериальные и венозные ветви, такие как боковые околоflex бедренные сосуды, поверхностные хвостового эпигастральной сосудов, подкожной артерии, и проксимальных хвостового бедренных сосудов, мобилизовать основных бедренных сосудов. Прижигание небольших веток, используя тонкие Биполярные щипцы.
- Сделать разрез кожи от центра предыдущего разреза кожи вдоль брюшной стороне задней конечности, в области лодыжки, используя Ирис ножницы.
- Вырезать грациозно мышцы, а также другие приводящей мышцы под ним, в вертикальной моде подвергать и лигате медиального проксимальных геникулярных сосудов, глубоко разветвления малых сосудов, и седалищного нерва.
Примечание: В этот момент, на отдельном хирургическом столе, другой хирург должен интубировать и анестезировать (2,5%-3% изофлуран) получателя животного; Это позволяет хирурги подготовить получателя хирургического сайта во времени для размещения трансплантата и свести к минимуму ишемического времени трансплантата. - На донорских животных, сделать окружным разрезов кожи на уровне колена и лодыжки. Разчленяйте колено и лодыжку, удалите посторонние мышцы и ткани, и сделайте вертикальный разрез кожи на спинной стороне задней конечности, чтобы освободить трансплантат. В этот момент трансплантат (состоящий из малоберцовой кости и голени, покрытый родственными мышцами и кожей острова, питающихся его перфораторами) соединен только ножке.
- Поместите небольшие зажимы как можно более близко на бедренную артерию и Вену, и вырезать ножку как можно ближе, насколько это возможно, вблизи паховой связки.
- Чтобы избавиться от трансплантата крови, вводят хепаринизированный физиологический раствор (30 U/mL) в бедренную артерию с помощью 27 G промывка тупой канюля.
Примечание: Дилационировать артерию до заподлицо гепарин позволяет легкий доступ для вставки канюли. Во время флеша внимательно следите за оттоком из бедренной вены. Как только ясная жидкость выходит из бедренной вены, остановите флеш. - Оберните изолированных трансплантата в теплой соленой пропитанной Марли и транспортировать его сразу к столу животного получателя. В это время, получатель хирургического сайта уже должны быть подготовлены для сосудистой анастомоз.
- После сбора трансплантата, немедленно усыпить донорской крысы через пневмоторакс.
2. хирургия трансплантации реципиента
- После индукции седации с использованием испаряемого изофлуран применяется через камеру, глубоко обезболивания получателя животного через вентилятор контролируемые эндотрахеальной трубки и 2,5%-3% изофлуран.
Примечание: На этом этапе донорская крыса все еще под наркозом. - Непрерывно контролировать частоту сердечных сокращений, частота дыхания, температуру тела, и глубина анестезии животного получателя, используя палец щепотку снятия рефлекторного теста.
- Для предотвращения обезвоживания и гипогликемии, введите 2 мл раствора Рингер и 2,5% декстрозы подкожно в начале и еще 2 мл в конце операции.
- Бритье паховой области, а затем лечить с помощью крема для удаления волос, с тем чтобы уменьшить количество пуха оставленные ножницы.
- Носите маску, головной покров, одноразовые платья изоляции и стерильные перчатки.
- Поместите животное на спине на грелку. Применяют офтальмологическую мазь для предотвращения ссадин роговицы во время анестезии. Производить стерильное хирургическое поле, готовя, очистка, и драпировка хирургического области.
- Сделать 3 см разреза кожи в паховой вогнутости с помощью лезвия скальпеля #15 и отражать паховой жировой площадке с боков с помощью Ирис ножницы.
- Разоблачить общие бедренные сосуды и поместить провод крюк с резинкой, чтобы убрать мышцы живота.
- Лигейт и разделите ветви Мерфи.
- Использование 10-0 нейлона прервал швы, анастомоза донорские сосуды для получателей судов через венозной конца в сторону техники и артериальной конца в конец техники. Постепенно отпустите зажимы от артерии, а затем Вены. Контролируйте анастомотические участки для кровотечения и при необходимости добавляйте дополнительные швы.
- Визуально оценить сосудистый анастомоз, чтобы обеспечить эффективный репертуар трансплантата.
- Вставка трансплантата в паховый карман и ориентировать его с ног на голову, с лодыжки совместных начальника и коленного сустава уступает.
- Используя укладывание швов, закрепите трансплантат на соседние мышцы. Закройте кожу с помощью прерванного горизонтального матраса кожи, поглощаемой 4-0 швов.
- Удалите получателя животного от анестезии и отучить его от вентилятора. Поместите животное на грелку для термической поддержки.
Примечание: Общее время работы составляет от 3 до 4 ч, в зависимости от опыта хирурга и знакомства с хирургической процедурой. - Администрирование мелоксикама (1 мг/кг) подкожно для подавления боли и монитор, пока животное полностью восстановленные и мобильные.
3. Мониторинг получателя VCA
- Дом получателя крыс поодиночке и контролировать их ежедневно для клинических признаков боли, обезвоживания, потеря веса, и снижение активности в дополнение к хирургической недостаточности (для первых 48-72 ч) или отказ. Администрирование мелоксикама подкожно (1 мг/кг) ежедневно в течение первых 3 дней для подавления боли.
- Основываясь на конечной точке исследования, выберите препарат иммуноподавления для приема.
4. гистология
- При вдыхании изофлуранном анестезии (2,5%-3%), получить серийную кожу и основные мышечные биопсии от донорского трансплантата в нужные временные точки. Кожа должна быть вымыта и драпированные до получения биопсии, и стерильные поля и техника должна выполняться.
- Закройте рану одним-двумя стежками, используя рассасывающийся 4-0 швов. Верните животное в клетку и дайте ему восстановиться после анестезии.
- Закрепите биопсию тканей в отдельных трубках в 10% формалина.
- В терминальной точке времени и при вдыхании изофлуран анестезии (2,5%-3%), возьмите большую биопсию кожи, которая охватывает донора/получателя границы. Тщательно найдите пару поводка сосуда на месте анастомозов; надлежащее место будет очевидно из-за швов. Возьмите желаемые образцы сосуда из артерии и/или Вены. Исправить все образцы отдельно в 10% формалин. После сбора образцов тканей, и в то время как животное все еще находится под анестезией изофлуран, немедленно усыпить животное через пневмоторакс.
- Используя процессор ткани (или другую предпочтительную технику вложения), парафин-встраивайте каждую биопсию в свой собственный блок. Для образцов кожи, ориентировать ткани так, чтобы все эпидермального и дермальных слоев можно увидеть в один ломтик. Для образцов судов, ориентировать сосуды так, чтобы поперекие секции могут быть получены.
- С помощью микротома вырезать 6 мкм толщиной секций и применять их на слайды для гематоксина и ээин (H & E) окрашивание.
- Пятно для H & E с помощью стандартного протокола.
- Получить репрезентативные изображения всех желаемых образцов тканей с помощью методов микроскопии Брайта.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
Крыса VCA гетекотопическая задняя остеомйокутанеаус модель лоскут позволяет для долгосрочного аллотрансплантата выживание под иммуноподавления. Модель надежна, воспроизводимо и проста в выполнении. Лоскут хорошо скрыт в паховой области и представляет собой минимальную заболеваемость и дискомфорт для животного. Презентация кожи – это клиническое проявление выживания и отторжения аллотрансплантата (рис. 1). Конструкция лоска позволяет для грубого клинического мониторинга и создает возможность для различных методов визуализации, таких как лазерный доплеровский (Рисунок 2). Серийные биопсии кожи, мышц и артерий позволяют достичь гистопатологического прослежения и анализа на различных стадиях отторжения (рис. 3).
Рисунок 1 : Репрезентативные изображения от пересаженных животных. (A) Синогенное VCA долгосрочное выживание, без иммуноподавления лечения, на послеоперационный день 45 (Pod 45); Обратите внимание на разницу в направлении роста меха из-за перевернутой ориентации трансплантата. (B) аллогенной VCA, лечение в день с иммуноподавления наркотиков, на Pod 5. (C) аллогенной VCA долгосрочного выживания, лечение ежедневно с иммуносупрессанта наркотиков, на Pod 40; отмечают нормальный рост меха с указанием надлежащей перфузии трансплантата, без признаков отторжения. (D) аллогенной VCA в отказе на POD 33. Лечение иммуноподавления было остановлено полностью на POD 14; отмечают клинические признаки отторжения (атрофия кожи, десквамация, потеря шерсти). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенном варианте этой фигуры.
Рисунок 2 : Лазерная доплеровская система визуализации для мониторинга поверхностной ревизуализации кожи аллотрансплантата. Аллотрансплантат, представленный отслеживается в послеоперационные дни 4, 14 и 64. Панели слева показывают кровоснабжения, измеряемые доплеровской визуализацию, в то время как панели справа показывают область, отображаемой доплером. Обратите внимание на переход от минимального кровоснабжения сразу после VCA к полной репаскуляризации лоскут на день 64. Это аллотрансплантата держали под надлежащим иммуноподавление без признаков отторжения. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенном варианте этой фигуры.
Рисунок 3 : H &Amp; E гистопатология аллотрансплантата в синдромической против аллогенной трансплантации. (A) биопсия кожи на синогенное аллотрансплантат на Pod 45 (10x увеличение); Обратите внимание на нормальную морфологию компонентов кожи (эпидермис, adnexa, и никаких признаков инфильтрации мононуклеарно клеток). (B) биопсия кожи аллогенной аллотрансплантата при отторжении на 75 Pod, обрабатывают ежедневно с более низкой дозой иммуноподавления (10x увеличение); сведению эпидермальной атрофии, атрофия придатки, инфильтрации мононуклеарных клеток, проникновение перисосудов, и тромбоз капилляров. (C) Мышечная биопсия при синтегенной аллотрансплантате на 45 Pod (10x увеличение); Обратите внимание на нормальную морфологию поперечно-полосатой мышцы. (D) Мышечная биопсия аллогенной аллотрансплантата при отторжении на 98 Pod, обрабатывают ежедневно с более низкой дозой иммуноподавления (10x увеличение); Обратите внимание на мышечную атрофию и проникновение мононуклеарно клеток. E) биопсию бедренную артерию синогенной аллотрансплантата на Pod 45 (20x увеличение); Обратите внимание на нормальную морфологию артерии. (F) биопсии бедренная артерия аллогенной аллотрансплантата в отказе на Pod 98, обрабатывают ежедневно с более низкой дозой иммуноподавления (20x увеличение); Обратите внимание на гиперплазию интимал, узкий просвет, и перисосудистого проникновения. Шкала планка = 200 мкм (A-D); 100 мкм (E и F). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенном варианте этой фигуры.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
При разработке этой модели VCA были рассмотрены несколько ключевых вопросов. Во-первых, важно, чтобы включить нетронутыми кость (голени и малоберцовой кости), костный мозг, и кожи в трансплантата. В то время как клинические трансплантации рук от взрослых доноров не переносят значительное количество активно гемопоэтических мозга, исследования роль ниши костного мозга лучше зеркальным использованием нетронутыми, васкуляризированной кости, а не вырезать длинную кость, что приводит к фиброзом облученных костного мозга. Кроме того, закрытая конструкция лоска остеомйокутанеаус кости уменьшает риск заражения и кровотечения. Оба костного мозга и кожи являются высоко иммуногенными тканями, которые могут быть использованы для инициирования иммунного ответа при желании. Во-вторых, не было необходимости для трансплантата, чтобы быть функциональным, устраняя необходимость в ортогопическая модель, которая требует сложного остеосинтеза и повторное восстановление трансплантата. Это также предотвращает некоторые известные хлопотные последствия ортогопических моделей, таких как длительная хирургическая процедура и дискомфорт животных11,12. Тем не менее, важно отметить, что гетекотопическая конструкция не позволяет функциональные показатели исходов костей и хрящей, а также функции мышц, все из которых имеют значительный интерес в исследованиях VCA. В-третьих, трансплантат должен быть доступен для систем визуализации, клинического наблюдения и серийных биопсий. Наконец, для целей пропускной способности, прививки операции должны быть легко выполняются без осложнений. С учетом этих соображений в виду, модифицированной крысы остеомйокутанеаус модель VCA был разработан, в котором дистального заднего конечности, между коленом и лодыжкой донора (Браун-Норвегия), в том числе оверлежа кожи и связанных сосудов, был пересажен в паховой области на получателя (Льюис). В этом случае, сосудистая поставка трансплантата произошла через бедренную артерию и Вены анастомозов.
Потому что кожа является важным ключевым фактором для мониторинга отказа VCA, специального ухода было принято в подготовке трансплантата в целях сохранения малых перфораторы артерии поддержки перфузии кожи. При создании этой модели, мы провели предварительные эксперименты с использованием индоцианин зеленый (мкг) ангиографии (результаты не показали), чтобы подтвердить дизайн кожи перфузии модели.
Так как трансплантат ориентирован с ног на голову, таким образом, что Дистальная часть трансплантата превосходит и проксимальной части трансплантата уступает, долго ножками требуется для того, чтобы избежать kinking. Таким образом, следует подчеркнуть, что донорские бедренные сосуды должны быть разделены как можно более пропрочем, и чтобы реципиальная бедренная артерия была разделена как можно более дистальной.
Одновременное участие двух хирургов рекомендуется при окончательной подготовке/изолированности донорского трансплантата; один хирург должен закончить трансплантат изоляции, в то время как другой хирург анестезирует и интуитивно-получателя животное и начинает подготовку сосудов для анастомозов. Если имеется место и оборудование, третий хирург может подготовить второе животное получателя, и обе ноги донора могут быть использованы для VCA графтов. Хирурги должны координировать друг с другом для обеспечения минимального трансплантата ишемического времени до анастомозов. По нашему опыту, большинство послеоперационных смертности приписывается технике анестезии. По возможности, мы рекомендуем, чтобы другой член команды отвечал за мониторинг анестезии во время операции. Само собой разумеется, что для того, чтобы успешно выполнить эту модель, необходим обученный хирург с базовыми методами микрососудистой системы. В зависимости от опыта хирурга, модель может быть достигнута успешно после двух до шести попыток хирургии.
Synгенной крысы могут быть использованы в качестве контрольной группы для учета исцеления динамики, не связанной с отказом. Контралатеральная нога получателя крысы может также использоваться в качестве элемента управления, особенно при выполнении изображений и биопсии.
Шерсть отрастания над пересаженной кожи является одним из лучших признаков успешного аллотрансплантата перфузии. С другой стороны, потеря шерсти, эритема кожи, и de-еписелизатион могут показать случай сброса и уменьшило поставку крови к некоторым частям лоскут. В очень продвинутой стадии отторжения, кожа может показать некроз и пилинг. Уменьшение аллотрансплантата мышечной массы показано на продвинутой стадии из-за атрофии денервации. Животные обычно теряют массу тела (до 10%) в первые 7 – 10 дней, но потом выздоравливают и процветают. Мы рекомендуем добавлять питательно укрепленный гель для воды (например, восстановление Дитгеля) в течение первых нескольких послеоперационных дней для поддержки питания крыс-реципиентов. В очень небольшом количестве животных (два из более чем 50 экспериментальных животных), мы наблюдали инфекции кожи и аутофагии.
В заключение, модифицированная модель гетекотопик, аллогенной остеомйокутанеаус VCA трансплантата, представленные здесь предлагает воспроизводимые, универсальный парадигмы трансплантации. Серийные биопсии и изображения предоставляют информацию о времени отклонения событий. Разнообразие клинических симптомов, которые могут быть изучены с помощью этого метода делают его весьма гибкой трансляционной модели с потенциалом для многочисленных проницательных открытий в годы.
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
Авторам нечего раскрывать.
Acknowledgments
Эта работа была поддержана Управлением помощника министра обороны по делам здравоохранения в рамках программы по медицинским исследованиям, направленной Конгрессом, под премией No. W81XWH-13-2-0057. Мнения, интерпретации, выводы и рекомендации являются мнениями авторов и не обязательно одобрены министерством обороны.
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| Acepromazine | Henry Schein | 5700850 | |
| Adventitia Scissors | ASSI | SAS15R8 | |
| Approximator Clamp (Double) | ASSI | ABB2V, ABB22V | |
| Approximator Clamp (single) | FST | 00398-02 | |
| Clamp Applying Forceps | ASSI | CAF4 | |
| Dissecting Scissors | ASSI | SDS18R8 | |
| Flushing blunt needle 27 G | SAI | ||
| Heparin Sodium | Sagent | 25021-400-30 | |
| Isoflurane | Patterson Veterinary | 14043-704-06 | |
| Jewelers Bipolar | ASSI | 103000BPS03 | |
| Jewelers forceps #3 | FST | 11231-30 | |
| Ketamine HCl 100 mg/mL | Zoetis | 043-304 | DEA License required |
| Lactated Ringer Solution | Hospira | 0409-7953-03 | |
| Lactated Ringer Solution + 5% Dextrose | Hospira | 0409-7953-09 | |
| Meloxicam | Henry Schein | 11695-6925-2 | |
| Micro forceps | ASSI | JFAL3 | |
| Micro needle holder | ASSI | B138 | |
| Prograf (Tacrolimus) 5 mg/mL | Astellas | 0469-3016-01 | |
| Suture, 10-0 Prolene | Ethicon | W2790 | or 10-0 Ethilon (2830) |
| Suture, 4-0 Coated Vicryl | Ethicon | J714D | |
| Vessel Dilator Forceps | ASSI | D5AZ | |
| Xylazine | VetOne | 13985-612-50 |
References
- Gilbert Fernandez, J. J., Febres-Cordero, R. G., Simpson, R. L. The Untold Story of the First Hand Transplant: Dedicated to the Memory of one of the Great Minds of the Ecuadorian Medical Community and the World. Journal of Reconstructive Microsurgery. , (2018).
- Dubernard, J. M., et al. Human hand allograft: report on first 6 months. Lancet. 353 (9161), 1315-1320 (1999).
- Jones, J. W., Gruber, S. A., Barker, J. H., Breidenbach, W. C. Successful hand transplantation. One-year follow-up. Louisville Hand Transplant Team. The New England Journal of Medicine. 343 (7), 468-473 (2000).
- Devauchelle, B., et al. First human face allograft: early report. Lancet. 368 (9531), 203-209 (2006).
- Broyles, J. M., et al. Functional abdominal wall reconstruction using an innervated abdominal wall vascularized composite tissue allograft: a cadaveric study and review of the literature. Journal of Reconstructive Microsurgery. 31 (1), 39-44 (2015).
- Kollar, B., et al. Innovations in reconstructive microsurgery: Reconstructive transplantation. Journal of Surgical Oncology. 118 (5), 800-806 (2018).
- Kaufman, C. L., et al. Graft vasculopathy in clinical hand transplantation. American Journal of Transplantation. 12 (4), 1004-1016 (2012).
- Brandacher, G., Grahammer, J., Sucher, R., Lee, W. P. Animal models for basic and translational research in reconstructive transplantation. Birth Defects Research Part C: Embryo Today. 96 (1), 39-50 (2012).
- Kaufman, C. L., et al.
- Committee for the Update of the Guide for the Care and Use of Laboratory Animals, Institute for Laboratory Animal Research, Division on Earth and Life Studies, National Research Council of the National Academies. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals, 8th edition. , National Academies Press. Washington, DC. (2011).
- Nazzal, J. A., Johnson, T. S., Gordon, C. R., Randolph, M. A., Lee, W. P. Heterotopic limb allotransplantation model to study skin rejection in the rat. Microsurgery. 24 (6), 448-453 (2004).
- Ulusal, A. E., Ulusal, B. G., Hung, L. M., Wei, F. C. Heterotopic hindlimb allotransplantation in rats: an alternative model for immunological research in composite-tissue allotransplantation. Microsurgery. 25 (5), 410-414 (2005).
