2010年4月29日
当复制体与迎面而来的RNA聚合酶(RNAP)发生碰撞后其命运尚不清楚。我们发现,复制体在与迎面而来的RNAP碰撞后会停滞,但在将RNAP从DNA上移除后可恢复延伸。Mfd通过促进碰撞后RNAP的移除,从而促进复制的重新启动。
本实验的总体目标是观察复制区(Repli zone)与RNA聚合酶(RNAP)在迎头碰撞后各自的命运。该目标通过以下步骤实现:首先,在生物素标记的DNA上组装转录复合物,并将其固定在Stripp平板和磁珠上,从而获得停滞的RNAP延伸复合物。实验的第二步是将预先制备的叉状DNA连接至RNAP延伸复合物,以在迎头方向的RNAP下游形成一个复制叉。
该实验步骤的第三步是组装复制区,并在复制叉处启动前导链的合成。实验步骤的最后一步是从磁珠中分离DNA,并通过PCR纯化柱纯化DNA。最终,可通过纯化的放射性标记DNA产物的碱性琼脂糖凝胶电泳结果,观察到复制叉在与对向转录复合物碰撞时发生停滞现象。
大家好,我是来自洛克菲勒大学 Mike O'Donnell 实验室的 Richard Pomerance。今天我将向您展示如何在固相体系中实现核糖体与迎面而来的RNA聚合酶的碰撞实验。在我们的实验室中,该实验方法被用于研究DNA上的转录复合物如何影响复制过程。
接下来我们开始实验。首先,将RNAP全酶与含有T7A1启动子的生物素标记3.6 KB DNA模板在100 µL缓冲液A中混合,37°C孵育10分钟。孵育10分钟后,加入核糖核苷三磷酸:腺苷三磷酸(ATP)、胞苷三磷酸(CTP)和腺苷尿苷(Aden allele uridine),以将RNA合成限制在20个核苷酸以内。
在37摄氏度下将溶液额外孵育10分钟,以将停滞的RN酶延伸复合物固定到磁珠上。将溶液加入链霉亲和素包被的磁珠中。室温下孵育混合物10分钟。
用0.9毫升高盐缓冲液洗涤磁珠,纯化固定化的停滞RNAP延伸复合物。每次洗涤后,通过磁分离去除上清液,以除去非特异性的R-N-A-P-D-N-A复合物。此洗涤步骤应重复五次。
然后,珠子需再用 0.9 毫升缓冲液 A 洗涤两次。最后一次洗涤后,可在头对头 RNAP 阻滞处下游组装复制叉,将磁力架上的珠子(其上结合了停滞的 RNAP 延伸复合物)重悬于 100 微升 New England Biolabs 缓冲液 4 中。接着加入 10 单位的虾碱性磷酸酶(SAP),在 37 摄氏度下孵育样品 10 分钟。用 0.9 毫升缓冲液 A 将珠子洗涤三次。然后将珠子重悬于 50 微升快速 T4 连接反应缓冲液中。
加入2 µL快速T4连接酶和预处理的分叉DNA,室温孵育10分钟。最后,用0.9 mL缓冲液A洗涤磁珠三次,将六聚体、DNAB解旋酶与连接在停滞的RNAP延伸复合物及下游复制叉上的磁性Strep A磁珠混合。用150 µL缓冲液A配制溶液,在23°C孵育30秒。
在23摄氏度下短暂孵育32分钟后。在聚合酶三β夹中,加入A-T-P-D-G-T-P-D-A-T-P αP32标记的dGTP和αP32标记的dATP,总体积为200微升。将样品在37摄氏度下孵育5分钟。
通过加入单链DNA结合蛋白、dCTP和dTTP启动复制反应。同时加入α-P³²标记的dTTP和dCTP,终体积为250微升。反应10分钟后,加入12微升0.5摩尔EDTA终止反应。
接下来,将链霉亲和素包被的磁珠煮沸,以释放磁珠上的DNA。用蛋白酶K在50摄氏度下处理磁珠30分钟,去除残留的DNA。再次煮沸磁珠,并通过磁分离法移除上清液。
使用Kyogen PCR纯化试剂盒纯化含有DNA的合并上清液。最后,通过碱性琼脂糖凝胶分析纯化的放射性标记DNA产物。当区带与前方的RNA聚合酶发生正面碰撞时,通常会产生长度分别为2.5 KB和3.6 KB的两种产物。其中2.5 KB的产物代表从复制叉到停滞的RNA聚合酶之间的DNA长度。
这是由于复制体在与RNAP碰撞时发生停滞所致。3.6 KB的产物代表全长DNA,其产生原因可能是RNAP对启动子的占据不完全,或复制体部分穿透了与复制方向相反的RNAP。理想的结果显示约有50%的全长DNA被生成。
然而,在某些情况下,RNA聚合酶在启动子上的占据率较低,因此观察到较大部分的全长DNA。这是因为更多的复制区域未遇到与复制方向相反的RNA聚合酶;在没有停滞的RNA聚合酶时,仅产生全长DNA。我们刚刚向您展示了如何在DNA上存在停滞的RNA聚合酶延伸复合物的条件下,进行复制及固相实验。进行此操作时,重要的是要用高盐溶液洗涤停滞的转录复合物,以去除非特异性结合在DNA上的过量RNA聚合酶,后者会抑制复制过程。
以上就是全部内容。感谢观看,祝您的实验顺利成功。
本研究探讨了复制体在遇到迎面而来的RNA聚合酶(RNAP)时的行为。复制体在发生碰撞后会停滞,但在Mfd的协助下,可通过将RNAP从DNA上移除而恢复延伸。
理解复制-转录冲突对于评估临床前模型中的基因组稳定性至关重要,因为未解决的碰撞可导致诱变并影响靶点验证。复制体的内在稳定性及其在RNA聚合酶被置换后恢复合成的能力,为降低与疾病相关系统中复制保真度假设的风险提供了机制基础。本研究强调了转录偶联修复因子(如Mfd)如何增强对DNA维持通路的预测可信度,从而支持在基因组完整性影响靶点选择的早期发现决策。
该方法将复制叉稳定性评估置于早期假设验证与先导化合物优化之间,在评估调控DNA代谢或染色质动态的化合物时尤为适用。