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取一个底部带有滤膜的多孔板。
加入含有不同细胞因子的测试样本。
添加不同组的微球,这些微球通过大小和内部荧光强度进行区分。
每组均偶联了一种靶向特定细胞因子的抗体。
在避光条件下振荡孵育该板。
抗体与其靶向的细胞因子结合,将它们固定在微球上。
施加真空以去除未结合的细胞因子。由于膜的孔径较小,与微球结合的细胞因子得以保留。
加入与微球结合的细胞因子结合的生物素标记检测抗体混合物。
加入荧光报告分子偶联的链霉亲和素,在避光、振荡条件下孵育。链霉亲和素与生物素结合,使报告分子固定在微球复合物上。
去除未结合的分子并重悬微球。
通过流式细胞术,测定微球的大小和内部荧光,从而鉴定结合的细胞因子。
为了确定特定细胞因子的含量,需测量报告分子的荧光强度。
进行检测前,需将所有试剂恢复至室温。
本实验演示中使用聚丙烯滤板。在整个检测过程中,包括洗涤步骤,必须始终保持滤板直立,以避免磁珠丢失。
向每个孔中加入 100 微升 1× 洗涤缓冲液,预润滤纸,室温下静置 1 分钟。使用真空 manifold 去除缓冲液体积。将平板压在干净的纸巾堆上,吸去底部多余的洗涤缓冲液。然后将平板放置在倒置的平板盖上。
对于细胞培养上清液样本,向所有孔中加入 25 微升检测缓冲液。向标准品孔中加入每种标准品各 25 微升。最后,向样本孔中加入每种样本各 25 微升。将混合的微球涡旋振荡 30 秒。然后,向每个孔中加入 25 微升混合微球,在加样过程中间歇震荡微球瓶,以防止微球沉淀。
使用封板膜密封反应板。密封后,用铝箔包裹整个反应板,包括倒置的板盖。将反应板置于板式摇床上,固定后在室温下以约500转/分钟的速度振荡两小时。不翻转反应板,直接将其放入真空 manifold 中,按之前方法施加真空。随后,向每个孔中加入200 µL的1×洗涤缓冲液。
通过真空抽滤去除检测板孔中的内容物。用吸水垫或纸巾从板底部吸去多余的洗涤缓冲液,然后重复此步骤一次。接着,向每个孔中加入25微升检测抗体。使用新的板密封膜密封板后,用铝箔包裹整个板,包括倒置的板盖。
将酶标板置于板式摇床上,于室温下以约 500 RPM 的速度振荡 1 小时。无需抽真空,直接向每孔中加入 25 微升链霉亲和素-藻红蛋白试剂。按之前方法密封并包裹酶标板。然后,将酶标板置于板式摇床上,于室温下以约 500 RPM 的速度振荡 30 分钟。
重复真空过滤步骤两次后,向每个孔中加入 200 µL 的 1× 洗涤缓冲液。在平板振荡器上重悬磁珠 1 分钟。使用多通道移液器将样品从滤板转移至流式管中,以便在流式细胞仪上检测样品。