Name: 解剖宿主 - 病毒相互作用模型疱疹病毒裂解性复制 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-10-07T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 28 s
Description: 学习利用基因敲除小鼠和空斑实验解析Mavs蛋白在γHV68疱疹病毒裂解性复制中的宿主-病毒相互作用机制。该方法为抗病毒策略研究提供重要依据。

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作者感谢德克萨斯大学西南医学中心分子生物学系的 James (Zhijian) Chen 博士提供了本研究所必需的试剂，包括 Mavs-/- 小鼠，以及加州大学洛杉矶分校药理学与分子医学系的 Ren Sun 博士提供了 γHV68 的细菌人工染色体。

1. 小鼠感染γHV68
<ol>
	<li>使用6至8周龄、性别匹配的同窝小鼠（每组8至12只小鼠）进行病毒感染实验。小鼠运输到达后，需在实验前适应环境至少四整天（96小时）。</li>
	<li>涉及病毒的操作步骤应在生物安全二级（BSL2）柜中进行，并采取标准的BSL2防护措施。</li>
	<li>实验前，将γHV68病毒用无菌PBS配制成每只小鼠30 μl的病毒悬液（含40至1 × 105斑块形成单位[PFU]）。病毒悬液需置于冰上保存。</li>
	<li>配制用于小鼠麻醉的氯胺酮/赛拉嗪溶液（每20 g体重给予1.5 mg氯胺酮和0.15 mg赛拉嗪，每只小鼠注射100 μl）。通过脚趾夹捏测试确认小鼠已进入麻醉状态。</li>
	<li>通过腹腔注射方式，按每20 g体重1.5 mg氯胺酮和0.15 mg赛拉嗪（每只小鼠100 μl）的剂量对小鼠进行麻醉。</li>
	<li>将病毒悬液（每只小鼠30 μl）以滴加方式经鼻腔接种至麻醉小鼠的一侧鼻孔。</li>
	<li>将小鼠侧卧放置5至10分钟，以促进病毒通过气道进入肺部。</li>
	<li>将小鼠放回笼中，并持续观察直至其从麻醉状态完全恢复。</li>
	<li>在感染后的不同时间点，采用CO2窒息法处死小鼠，并在确认死亡或深度意识丧失后取出肺组织。将肺组织放入含有500 μl 1.0 mm氧化锆/二氧化硅珠的无菌1.5 ml螺口管中。样本管应置于冰上。若当天不进行后续操作，样本应储存于-80°C。根据实验时间安排，此时也可采集脾脏或肝脏组织用于病毒潜伏感染的分析。</li>
	<li>向管中加入1 ml冷的无血清DMEM培养基，使用珠击法匀浆30秒。将管置于冰上冷却至少1分钟，重复该过程一次。</li>
	<li>将肺组织裂解液在4°C下以16,000 rcf离心1分钟，取上清液用于通过斑块测定法测定病毒滴度，测定所用细胞单层为NIH3T3或BHK21细胞（详见第5节）。</li>
</ol>
2. 测定γHV68在小鼠胚胎成纤维细胞中的多步生长动力学
<ol>
	<li>在接种细胞前一天，将野生型小鼠胚胎成纤维细胞（MEFs）及其宿主基因缺陷型细胞培养至亚汇合状态（约80%密度）。</li>
	<li>感染前一天，将MEFs以每孔10,000个细胞的密度接种于24孔板中，用于低感染复数（MOI）实验。通常实验设置三个重复，MOI一般采用0.001–0.05之间。</li>
	<li>制备含有适量病毒的γHV68悬液（每孔0.5 ml）。</li>
	<li>吸除培养基，每孔加入0.5 ml γHV68悬液覆盖MEFs。</li>
	<li>将培养板置于组织培养孵箱中孵育，每隔30分钟轻轻摇动一次，持续孵育2小时。</li>
	<li>移除病毒悬液，每孔加入0.5 ml含8%胎牛血清的新鲜完全DMEM培养基覆盖细胞。</li>
	<li>在感染后不同时间点，收集培养上清和细胞至无菌的1.5 ml离心管中，立即于-80°C冷冻保存。</li>
	<li>通过-80°C冷冻、37°C水浴解冻并涡旋振荡的方式释放MEFs中的γHV68病毒。通常对样品进行三次冻融循环。</li>
	<li>使用NIH3T3或BHK21单层细胞进行空斑实验测定病毒滴度（详见第5节）。</li>
	<li>读取病毒滴度，并绘制γHV68在MEFs上的多步生长曲线。</li>
</ol>
3. 小鼠胚胎成纤维细胞中γHV68裂解性复制的分子解析
<ol>
	<li>按照第2节中2.1至2.6步骤所述进行病毒感染。</li>
	<li>在感染后的不同时间点，弃去上清液。用预冷的PBS洗涤细胞，随后进行胰蛋白酶消化。在室温下以1,000 rcf离心1分钟收集细胞，弃去上清液，将细胞沉淀储存在-80°C。</li>
	<li>根据已发表的方法5,6提取总DNA（宿主和病毒基因组）和总RNA。</li>
	<li>使用总DNA以及针对病毒裂解期转录本（如RTA（ORF50）、ORF57和ORF60）的特异性引物进行实时PCR。以宿主看家基因（例如β-actin）为参照，确定细胞内γHV68基因组的相对含量。</li>
	<li>为去除基因组DNA污染，在使用总RNA和oligo(dT)11-19引物制备cDNA时，必须使用无RNase的DNase进行处理。有关RNA提取（包括无RNase的DNase处理和RT-PCR）的更多细节，请参见参考文献5。使用上述cDNA和引物进行实时PCR，以宿主看家基因为参照，测定病毒转录本的相对含量。</li>
</ol>
4. 利用细菌人工染色体产生重组γHV68
本文所述方法用于在参与宿主-病毒相互作用的γHV68基因中引入突变。
<ol>
	<li>通过PCR制备一段约1.5 kb的DNA片段，该片段包含野生型序列或在中央区域带有目标突变的序列。</li>
	<li>通过中等规模纯化（OriGene）制备含有转座子插入的细菌人工染色体（BAC），该插入位于目标基因突变位点附近，可特异性失活目标基因7。将BAC DNA储存于4°C（避免反复冻融）。</li>
	<li>使用Lipofectamine 2000（Invitrogen）将BAC DNA和含有目标基因突变的PCR产物共转染至对γHV68裂解复制高度敏感的细胞中（例如NIH3T3或BHK21细胞）。</li>
	<li>持续传代培养细胞，直至单层细胞出现细胞病变效应（CPE）。收集含病毒的上清液，并在必要时于NIH3T3或BHK21细胞中扩增病毒。</li>
	<li>通过在30°C、1,800 rpm条件下离心30分钟，用重组病毒感染NIH3T3细胞。</li>
	<li>收集γHV68感染的NIH3T3细胞，并按照Hirt法8,9提取环状病毒基因组。</li>
	<li>通过电穿孔法将Electro-MAX DH10B感受态细胞（Invitrogen）转化，并筛选对氯霉素（Cm）耐药但对卡那霉素（Kan）敏感的菌落（Cm抗性基因位于BAC骨架中，而Kan抗性基因位于转座子插入片段中）。</li>
	<li>在含氯霉素的培养基中培养CmRKanS菌落，并通过小量或中量纯化（OriGene）提取BAC DNA。</li>
	<li>使用针对突变位点侧翼区域设计的特异性引物，通过PCR扩增并测序，验证目标基因中是否成功引入预期突变。</li>
	<li>通过选用特定的限制性内切酶进行酶切，并结合脉冲场凝胶电泳，确认BAC中无染色体结构重排。</li>
	<li>使用Lipofectamine 2000（Invitrogen）将重组BAC转染至NIH 3T3或BHK21细胞，以获得重组γHV68病毒。</li>
	<li>持续传代细胞，直至单层细胞出现细胞病变效应（CPE）。收集含病毒的上清液，并在NIH3T3或BHK21细胞中扩增重组γHV68病毒。</li>
	<li>测定重组病毒的滴度，并按照第1和2节所述方法，在体外（ex vivo）和体内（in vivo）条件下表征其生长特性。</li>
</ol>
5. 通过噬斑实验测定病毒滴度
<ol>
	<li>在接种细胞前，将 NIH3T3 细胞培养至亚汇合状态（约 80% 汇合度）。</li>
	<li>感染前一天，将 NIH3T3 细胞以每孔 20,000 个细胞的密度接种至 24 孔板中。</li>
	<li>用含有 8% 新生牛血清（NCS）的 DMEM 培养基对病毒上清液进行 10 倍倍比稀释。</li>
	<li>吸除培养基，加入 0.5 ml γHV68 悬液覆盖 NIH3T3 细胞。</li>
	<li>将培养板置于组织培养孵箱中，每 30 分钟轻轻摇动一次，共孵育 2 小时。</li>
	<li>移除病毒悬液，加入含 2% NCS 和 0.75% 甲基纤维素（Sigma）的 0.5 ml DMEM 培养基覆盖细胞。</li>
	<li>将培养板继续置于组织培养孵箱中孵育。在感染后第 6 天计数噬斑。可使用结晶紫等染色剂对单层细胞进行染色，以辅助噬斑计数。</li>
	<li>使用以下公式计算未稀释组织裂解液或细胞裂解液中的病毒滴度：滴度（PFU/ml）= D × N × 1000 μl/ml ÷ V μl。其中，N 为合适稀释度下的平均噬斑数；D 为稀释倍数（如 5、10、100……）；V（μl）为每孔加入的倍比稀释上清液体积。</li>
</ol>
6. 代表性结果：
此处展示了三个代表性实验结果，包括野生型和Mavs-/-小鼠肺组织中γHV68的裂解性复制10、小鼠胚胎成纤维细胞（MEF）中γHV68裂解性复制的表型，以及携带由MAVS依赖性IKKβ调控的磷酸化位点突变的重组γHV68。这三个相互验证的实验共同构成了一套研究方案，用于明确先天免疫组分在体内（in vivo）和离体（ex vivo）条件下对γHV68裂解性复制的作用。
<img alt="显示MAVS激活、细胞因子和IFNα/β产生的RIG-I通路示意图；肺组织中的PFU图。" src="/files/ftp_upload/3140/3140fig1.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图1"> 
图1. γHV68在Mavs+/+和Mavs-/-小鼠肺组织中的病毒载量。A) MAVS下游两条主要的天然免疫信号通路。MAVS衔接分子将胞质RIG-I样受体的信号传递至NFκB和干扰素调节因子（IRFs），从而上调促炎性细胞因子和干扰素的基因表达。B) 通过鼻内接种40 PFU γHV68感染Mavs+/+和Mavs-/-小鼠，并在指定时间点采用NIH3T3单层细胞噬斑实验测定肺组织中的病毒载量。每个符号代表一只小鼠。
<img alt="病毒感染后的病毒增殖与mRNA水平；两个图表，分别显示PFU/ml和感染后天数的mRNA数量。" src="/files/ftp_upload/3140/3140fig2.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 2"> 
图 2. γHV68 在小鼠胚胎成纤维细胞（MEFs）中的裂解性复制动力学。通过多步生长曲线（A）和定量实时PCR（B）评估γHV68在Mavs+/+和Mavs-/- MEFs上的裂解性复制。两个实验均使用相同数量的MEFs和等量的γHV68进行病毒感染，感染复数（MOI）为0.01。（A）在指定时间点收集细胞和上清液，并进行噬斑测定以确定病毒滴度。（B）从感染γHV68的MEFs中提取总RNA，并使用针对选定裂解期转录本（RTA、ORF57和ORF60）的特异性引物进行定量实时PCR分析。
<img alt="病毒感染生长曲线；Mavs 基因型比较；PFU/ml，mRNA 含量；实验图表。" src="/files/ftp_upload/3140/3140fig3.jpg" data-altupdatedat="1788235205000" data-alt="图 3"> 
图 3. 携带 RTA 转录激活域突变（该突变可消除 IKKγ 介导的磷酸化）的重组 γHV68 病毒裂解性复制动力学。(A) 重组野生型病毒（γHV68.wt）和突变型病毒（γHV68.mut）在 Mavs+/+ 和 Mavs-/- MEF 细胞中的多步生长曲线（MOI=0.01）。以 MOI 为 0.01 感染 MEF 细胞，于指定时间点收集细胞及上清液，并通过 NIH 3T3 单层细胞的空斑实验测定病毒滴度。(B) γHV68 感染 NIH3T3 细胞（MOI=0.01）后 γHV68 RTA mRNA 水平。感染后 30 小时，提取 γHV68 感染的 NIH 3T3 细胞总 RNA，并采用定量实时 PCR 进行分析。

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</ol>

未声明任何利益冲突。

在病毒感染的刺激下，依赖MAVS的先天免疫信号通路被激活，从而促进抗病毒炎症性细胞因子的产生10-14利用小鼠γHV68作为研究人类致瘤性卡波西肉瘤相关疱疹病毒和EB病毒的模型病毒3,4我们发现，γHV68 利用 MAVS-IKKβ 通路，通过转录激活促进病毒裂解复制5. 利用基因修饰的小鼠胚胎成纤维细胞（MEFs）以及分子病毒学技术，本方案可高效鉴定特定信号通路中对γHV68裂解复制至关重要的信号组分。因此，本方案包括 体内 感染， 离体 裂解性复制，以及先天免疫信号通路的解析。为阐明其分子机制，还需进行其他实验操作，包括利用细菌人工染色体构建重组疱疹病毒，以及开展分子生物学实验。此外，基因敲除小鼠品系和成纤维细胞是这些实验的关键材料。鉴于目前已有大量可用的基因敲除小鼠品系，本方案将有助于在分子水平上解析宿主信号通路及其被病毒干预的机制。若基因敲除小鼠和小鼠胚胎成纤维细胞（MEFs）不可获得（例如因基因敲除导致胚胎致死），可考虑采用RNAi/shRNA介导的基因沉默方法。本方案的其他局限性包括：1）信号通路之间的串扰；2）候选病毒因子...

<table><tbody><tr><td>Lipofectamine 2000</td><td>Invitrogen</td><td>11668-019</td><td></td></tr><tr><td>Electro-MAX DH10B 感受态细胞</td><td>Invitrogen</td><td>18290-015</td><td></td></tr><tr><td>甲基纤维素</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M0512</td><td></td></tr><tr><td>POWERPREP HP 质粒小量提取系统</td><td>OriGene</td><td>NP100004</td><td></td></tr><tr><td>POWERPREP HP 质粒中量提取系统</td><td>OriGene</td><td>NP100006</td><td></td></tr></tbody></table>

解析模型疱疹病毒裂解复制中的宿主-病毒相互作用

Dissecting Host-virus Interaction in Lytic Replication of a Model Herpesvirus

面对病毒感染，宿主会产生多种防御反应，例如激活先天免疫信号通路，从而诱导抗病毒细胞因子的产生1,2。为了在宿主体内定植，病毒必须逃避宿主的抗病毒反应，并操控相关信号通路。解析宿主与病毒之间的相互作用，将有助于阐明针对病毒感染的新型治疗策略的开发。
小鼠γHV68与人类致瘤性卡波西肉瘤相关疱疹病毒和EB病毒密切相关3,4实验室小鼠感染γHV68为研究宿主应答和病毒感染的全过程提供了一个可行的小型动物模型 体内，这在人类疱疹病毒中尚不可行。在本方案中，我们提供了一系列方法，用于对γHV68裂解性复制过程中的宿主信号通路组分进行表型表征和分子解析 体内 和 离体基因修饰小鼠品系的可获得性使得研究人员能够探究宿主信号通路在γHV68急性感染过程中的作用 体内此外，从这些缺陷型小鼠品系中分离得到的小鼠胚胎成纤维细胞（MEFs）可用于进一步解析这些分子在γHV68裂解性复制过程中的作用 离体.
利用病毒学和分子生物学检测方法，我们可以确定宿主-病毒相互作用的分子机制，并鉴定对病毒裂解复制至关重要的宿主和病毒基因。最后，细菌人工染色体（BAC）系统有助于将突变引入特异性中断宿主-病毒相互作用的病毒因子中。携带这些突变的重组γHV68可用于重现关键宿主信号组分缺陷型小鼠胚胎成纤维细胞（MEFs）中γHV68裂解复制的表型。本方案提供了一种在多个干预层面上探究宿主-病原体相互作用的优良策略 体内 和 离体.
最近，我们发现γHV68会劫持一种先天免疫信号通路以促进病毒的裂解性复制5。具体而言，γHV68的新生感染会激活免疫激酶IKKβ，而活化的IKKβ可磷酸化病毒主要转录因子——复制和转激活因子（RTA），从而促进病毒转录的激活。通过这种方式，γHV68高效地将病毒转录激活与宿主先天免疫激活相偶联，进而促进病毒转录和裂解性复制。本研究提供了一个极佳的范例，可用于研究其他病毒与宿主相互作用的机制。

我们描述了一种用于鉴定宿主信号分子在模式疱疹病毒——γ疱疹病毒68（γHV68）裂解性复制中关键作用的实验方案。通过利用基因修饰小鼠品系和胚胎成纤维细胞进行γHV68的裂解性复制，该方案可同时实现对病毒-宿主相互作用的表型特征分析和分子水平研究。

在病毒感染下，宿主会产生多种防御反应，例如激活可诱导抗病毒反应的先天免疫信号通路……

以下实验的总体目标是利用多种病毒学和生物化学方法，解析宿主信号通路在模式疱疹病毒裂解性复制过程中的作用。在此，我们以线粒体抗病毒信号蛋白 Mavs 在 γHV68 疱疹病毒感染过程中的作用为例进行研究。首先，为了研究 Mavs 在急性感染期间的作用，将野生型小鼠和 Mavs 基因敲除小鼠感染 γHV68，以建立急性病毒感染模型。收集小鼠肺组织，并通过蚀斑实验测定病毒载量，其中样本经连续稀释后接种于单层细胞。在单层细胞上计数蚀斑数量。基因敲除小鼠中病毒载量的增加表明该目的基因具有抗病毒作用。相比之下，基因敲除小鼠中病毒载量的降低表明该基因是病毒感染所必需的。为验证这一发现，在小鼠胚胎成纤维细胞中进行体外病毒多步生长动力学分析：将野生型和 mavs 基因敲除的小鼠胚胎成纤维细胞感染 gamma HV 68 病毒，并在不同时间点进行培养。随后收集细胞，通过空斑实验比较野生型细胞与 mavs 缺陷型细胞之间的多步生长动力学差异。为了进一步验证这些发现，我们用γ疱疹病毒68（gamma HV 68）感染野生型和mavs基因敲除的小鼠胚胎成纤维细胞。随后从感染的细胞中分别提取DNA和RNA，并通过实时PCR分析病毒基因组转录本。当我们研究宿主免疫通路在病毒裂解性感染过程中的作用时，首次提出了该实验方案的想法。该方案可潜在地用于研究其他病原体感染过程中宿主信号通路的调控规律。实验开始前，将六至八周龄、性别匹配的同窝小鼠在运输后于实验环境中适应四天。以下实验将在生物安全设施中进行。准备阶段，在生物安全二级柜中穿戴个人防护装备，包括实验服、手套、口罩和鞋套。为每只需要感染的小鼠准备含有 40 至 10,000 PFU 的 gamma HV 68 病毒及 30 微升无菌 PBS 的病毒悬液。在腹腔注射氯胺酮-赛拉嗪后，将病毒悬液保持在冰上。通过脚趾夹捏测试确保小鼠已进入麻醉状态。然后使用移液器将30微升病毒悬液逐滴加入左侧或右侧鼻孔中。将小鼠侧卧放置5至10分钟，以促进病毒经气道递送至肺部。随后将小鼠放回笼中，并持续观察直至其从镇静状态完全恢复。接着采集注射小鼠的肺组织，制备细胞裂解液，用于检测感染后不同时间点的病毒滴度。将安乐死小鼠的肺组织放入预冷的无菌1.5毫升螺口管中，管内含500微升1.0毫米氧化锆-二氧化硅珠，置于冰上。若当天不进行下一步操作，将样品于-80摄氏度保存。否则，加入一毫升冰冷的无血清DMEM。将离心管放入珠磨机中，按下启动键，匀浆肺组织30秒。为避免样品过热导致病毒失活。匀浆30秒后，将离心管置于冰上冷却至少1分钟。然后重复此过程。接下来，将匀浆后的组织在4°C条件下以16,000 RCF离心1分钟。离心后，细胞碎片将位于管底，而脂质将位于液体表面。立即吸取上清液，如图所示，使用 NIH 3T3 或 BHK-21 单层细胞进行蚀斑实验。接下来，通过对接种病毒的上清液进行系列稀释，开始蚀斑实验，以测定样品中的病毒滴度。首先使用多通道移液器向96孔板中每孔加入270微升培养基，第一行留空。然后将上清液每样三复孔加入96孔板的第一行，每孔200微升。接下来，将第一行中的30 µL样品转移至下一行并混匀。然后将30 µL的混合液转移至下一行并混匀。重复此步骤多次，以进行10倍系列稀释。接下来，将稀释后的病毒上清液加入细胞单层中，使用24孔板。将该板放入培养箱中，在2小时的孵育期间每30分钟摇动一次。孵育结束后，为去除细胞碎片，吸出孔板中的上清液。然后用新鲜培养基洗涤细胞一次。洗涤后，向细胞中加入含有甲基纤维素的培养基。将细胞培养4至6天。经过四到六天后，使用显微镜读取每个样本的噬斑数量。记录每个稀释度的噬斑数。然后计算平均值和标准差。含有过多或过少噬斑的孔无法用于准确计算滴度。因此，对于每个样本，应使用含有7到70个噬斑的稀释度。此样品稀释1000倍后，每孔平均有23个噬斑。要计算未稀释溶液中的病毒滴度，需将稀释倍数乘以噬斑数，再乘以每毫升中的微升数，然后除以每孔加入的稀释上清液体积。因此，在本示例中，1000 乘以 23 个噬斑乘以每毫升 1000 微升，再除以 100 微升，等于每毫升 2.3 × 10⁵ 形成单位。接下来，使用已知滴度的病毒储备液来确定 gamma HV 68 在小鼠胚胎成纤维细胞中的生长动力学。实验开始时，将野生型细胞和缺乏某种宿主基因的细胞分别以每孔 10,000 个细胞的密度接种至 24 孔板中。次日，将每孔中的培养基更换为 0.5 毫升低感染复数（MOI）的 gamma HV 68 悬液。将培养板置于37摄氏度的培养箱中，持续孵育两小时。孵育结束后，每30分钟轻轻摇动培养板一次。使用移液器吸除病毒悬液，并向感染病毒的细胞中加入0.5毫升含有8%胎牛血清的新鲜完全DMEM培养基。在感染后的不同时间点将细胞放回培养箱中。通过反复吹打收获培养基中的细胞，并立即转移至无菌的1.5毫升离心管中，随后将离心管在-80摄氏度下冷冻，以释放Mets中的γHV68。进行三次冻融循环。将细胞置于37摄氏度条件下解冻，然后涡旋振荡，再放回-80摄氏度冰箱中。通过噬斑实验测定病毒滴度，使用 NIH 3T3 或 BHK-21 单层细胞（如前所述），以检测宿主基因或病毒基因缺陷是否影响 DNA 或 RNA 的复制。从感染后不同时间点的感染细胞开始，弃去上清液，用冷 PBS 洗涤细胞，并用胰蛋白酶在冰上处理细胞。随后在室温下以 1000 ×g 离心 1 分钟收集细胞沉淀，离心后弃去上清液，将细胞沉淀于 -80 °C 保存。提取宿主和病毒来源的总DNA和RNA。然后对离心柱进行离心。使用总DNA和特异性针对病毒裂解期转录本的引物进行实时PCR。通过参考宿主看家基因（如β-肌动蛋白）来确定细胞内gamma HV 68基因组的相对含量。使用总RNA和寡核苷酸dT引物制备cDNA。使用上述cDNA和引物进行实时PCR，以测定病毒转录本的相对含量。相对于宿主看家基因而言，Mavs 是线粒体抗病毒信号蛋白（mitochondrial antiviral signaling）的缩写，如图所示。Mavs 衔接分子将来自胞质内 RIG-I 样受体的信号进行转导，从而激活 NF-κB 和干扰素调节因子（IRFs），进而上调促炎性细胞因子和干扰素的基因表达。此处显示了 γHV 感染的野生型小鼠及其同窝 Mavs 缺陷型小鼠肺组织中的病毒载量。Mavs 缺陷在感染后10天显著降低了肺部的病毒载量，表明Mavs是体内高效病毒感染所必需的。该图显示了野生型小鼠胚胎成纤维细胞以及Mavs缺陷型小鼠胚胎成纤维细胞上的病毒多步生长曲线。在Mavs缺陷的细胞中，病毒生长显著延迟，表明Mavs是体外高效病毒复制所必需的。通过实时PCR分析了γHV68感染的小鼠胚胎成纤维细胞中病毒裂解期基因的mRNA水平，结果显示Mavs缺陷显著降低了三个关键裂解期基因的mRNA水平。上述所有结果共同支持以下结论：Mavs 对于伽马疱疹病毒 68（gamma HV 68）的转录激活及裂解性复制是必需的。观看本视频后，您应能够充分理解如何在体外（VO）和体内（Vevo）多个层面上探究宿主与病原体之间的相互作用。请务必注意，操作病原体时可能存在极高风险。操作过程中应采取佩戴个人防护装备等预防措施。

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免疫学与感染

解剖宿主 - 病毒相互作用模型疱疹病毒裂解性复制

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一种用于研究单纯疱疹病毒潜伏与再激活的原代神经元培养系统

活细胞成像技术可对α疱疹病毒感染过程中的定向运输和细胞间扩散等动态事件进行分析。本文介绍了利用表达荧光融合蛋白的重组病毒株，在原代神经元感染过程中实现病毒组装体可视化的方法。...

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我们建立了一种荧光原位杂交方案，用于检测动物模型组织切片中持续性DNA病毒基因组。该方案可通过在同一细胞内共检测病毒基因组、其RNA产物以及病毒或细胞蛋白，来研究感染过程。...

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利用虫媒病毒感染作为筛选工具鉴定病毒免疫调节因子和宿主抗病毒因子

ICP0 在 HSV-1 感染过程中会发生从细胞核到细胞质的转位。这一事件的分子机制尚不清楚。本文介绍了使用共聚焦显微镜作为量化 HSV-1 感染中 ICP0 运动的工具，为今后在机制研究中对 ICP0...

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利用siRNA电穿孔技术调控单纯疱疹病毒1型感染的单核细胞来源树突状细胞中的自噬

假病毒（PVs）是一类复制缺陷型病毒颗粒，可用于在比操作真实病毒更安全的条件下研究宿主与病毒之间的相互作用。本文展示了一项详细方案，说明如何利用SARS-CoV-2假病毒检测新冠疫苗接种后患者血清的中和能力。...

假病毒作为通过中和试验监测针对SARS-CoV-2体液免疫应答的分子工具

本方案描述了一种 体外 用于建模的系统 从头合成...

建立与定量 从头合成 游离型卡波西肉瘤相关疱疹病毒对细胞的裂解性感染

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解析模型疱疹病毒裂解复制中的宿主-病毒相互作用

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