多蛋白复合物的比较分析新方法基于 15Ñ代谢标记和定量质谱
March 13th, 2014
所描述的比较，定量蛋白质组学方法的目的是获得见解多蛋白复合物的组成不同的条件下，并证明通过比较基因不同的菌株。为定量分析从蔗糖密度梯度不同的馏分等体积完全由质谱混合并进行分析。
该程序的总体目标是比较分析不同条件下thal cord 膜中 MultiPro 复合物的组成。这是通过首先从暴露于厌氧条件下的 lamona 细胞中分离thal membrane来实现的。接下来，将 th 脐带膜溶解并在蔗糖密度梯度上分级分离。
然后将等体积的所需级分混合并在 SDS 页面上分离。最后，用胰蛋白酶消化 kumasi 染色条带。最后，通过定量质谱分析样品，以观察所研究组分之间蛋白质丰度的变化。
与现有方法（如比较确定量蛋白质的定量蛋白质组学研究）相比，该技术的主要优点是，在我们的方法中，将等体积的分馏样品合并和分析。这允许研究蛋白质在梯度内的迁移行为，此外，还可以分析第三组膜中不同非蛋白质复合物的组成。关于应用的菌株 培养衣藻后 rein 耐寒菌株，根据文本方案，使用两磨牙蔗糖、10%β DM 水溶液和 0.5 摩尔 trice pH 8.0 的储备溶液。
为了制备以下蔗糖密度梯度溶液，使用 14 x 89 毫米离心管设置梯度，首先缓慢倒入 1 毫升 1.3 摩尔溶液，然后倒入 1 毫升 1.0 摩尔溶液。然后倒入 0.85、0.7、0.65 各 2 毫升，最后倒入 0.4 摩尔溶液。将梯度在冷藏室中储存过夜以诱导厌氧条件。
在衣藻培养物中，将玻璃移液管插入培养瓶中，用 Argonne 鼓泡 4 小时，持续搅拌和照明以分离thal cord 膜。孵育后，首先在 2， 500 倍重力和 4 摄氏度下将细胞沉淀 5 分钟。然后复苏，将细胞沉淀悬浮在 30 毫升 H 1 缓冲液中。
重复离心，然后再次复苏。将细胞悬浮在 H 1 缓冲液中以打破细胞，将它们通过氮气压力为 1， 500 帕斯卡的雾化器。确保陶瓷球和金属之间的距离足够小，以便电池破裂。
然后在 2， 500 倍重力和 4 摄氏度下将细胞旋转 7 分钟。上清液应为浅绿色。如果细胞破损成功，则复苏将细胞悬浮在 50 毫升 H 2 缓冲液中，并在 32， 800 倍重力和 4 摄氏度下沉淀 10 分钟。
然后在 Resus 将细胞悬浮在 10 毫升 H 3 缓冲液中后，使用 Potter 将重悬的上颚匀浆。接下来准备 thal cord 蔗糖密度梯度。从 H 3 缓冲液中的 12 毫升细胞开始。
然后缓慢倒入一层 12 毫升的 H four 缓冲液，最后加入 12 毫升的 H five 缓冲液。使用 H 5 平衡转子，并在 70， 700 倍重力下离心梯度 1 小时。从梯度中去除 TH 条带，并使用适当体积的 H 6 缓冲液稀释它们。
在 4 摄氏度下以 37， 900 倍重力离心细胞 20 分钟。如果沉淀不紧密，请在离心步骤中加入更多的 H six 缓冲液。然后复苏。
将 thal 绳索悬浮在小体积的 H 6 缓冲液中，以加载光系统蔗糖密度梯度。首先，计算每个梯度所需的 thal cords、beta DM 和 H 六种缓冲液的量。按照这些指南，每个梯度在 0.9%β DM 中含有每毫升 0.8 毫克的叶绿素，H 6 缓冲液将使最终体积达到 700 微升。
为了溶解 thys，为每个梯度准备单独的 Eloqua 与 Thylakoids beta DM 和 H 六缓冲液。将样品在冰上孵育 20 分钟，然后每隔几分钟倒置一次以混合。在 14， 000 倍重力下离心样品 10 分钟和 4 摄氏度后。
沉淀应小而发白，上清液为深绿色。将上清液上样到梯度天平上，加入 H 6 缓冲液，并以 134、470 倍重力和 4 摄氏度的超速离心 14 小时。旋转后，拍摄梯度的照片，然后进行分级。
用针头在管底部刺穿一个孔，并在 500 微升管中收集馏分。或者 96 孔板工艺。根据此处所示的文本方案，凝胶消化和质谱分析中的 SDS 样品页面，使用来自野生型的免疫血液分析级分 6 和来自 delta PS one 的级分 13 的结果。
图中选择了 A 和 R 1 的峰分数来分析循环电子流超级复杂组分。表示野生型 delta PS one 上的相对蛋白质比率，对于几个 PS one 核心和 PS one 的光捕获蛋白以及分配有环状电子流超级复合物的蛋白质，NR 1 和 CAS 在野生型和 delta PS one 的级分 6 和 13 中的丰度差异表明它们是该复合物的新组分所示以下是野生型和 PG L 一基因敲除菌株之间这种环状电子流超级复合物的定量比较结果。有趣的是，HCF 1 36、细胞色素 B 6、细胞色素 B 6、F 亚基 4 和 PET C 似乎在野生型中富集，而 FTSH 2、细胞色素 F 和 PET O 似乎在 PG L 1 中富集。
观看此视频后，您将很好地了解如何比较不同条件下 di 液膜中 MultiPro 复合物的组成。请记住，为了成功制备液膜和分离循环电子流，超复杂细胞破碎、细胞灌浆和液膜化是关键步骤。此外，蔗糖密度梯度需要离心至少 12 小时，以实现光合复合物的完全分离。
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概述
本研究对不同条件下thall脊髓膜中多蛋白复合物的组成进行了比较分析。该方法涉及从接受厌氧条件的lamona细胞中分离出thall膜，并通过质谱分析蛋白质组成。
关键研究组成部分
科学领域
- 蛋白质组学
- 细胞生物学
- 质谱分析
背景
- 理解多蛋白复合物对阐明细胞功能至关重要。
- 不同环境条件可以影响蛋白质组成。
- 质谱分析是定量蛋白质组学分析的强大工具。
- 比较研究可以揭示遗传变异的洞见。
研究目的
- 分析thall脊髓膜中多蛋白复合物的组成。
- 观察不同条件下蛋白质丰度的变化。
- 利用定量蛋白质组学方法获得详细见解。
使用的方法
- 从lamona细胞中分离出thall膜。
- 在蔗糖密度梯度上分级分离膜。
- 混合相等体积的所需级分。
- 通过定量质谱分析样品。
主要结果
- 确定了不同级分之间蛋白质丰度的变化。
- 对多蛋白复合物的组成提供了洞见。
- 证明了比较蛋白质组学方法的有效性。
- 突出了厌氧条件对蛋白质组成的影响。
结论
- 本研究成功阐明了多蛋白复合物的组成。
- 定量质谱分析对蛋白质组学分析是有效的。
- 研究结果有助于理解在不同条件下蛋白质动态。
