Name: 通过荧光基冰平面亲和力确定防冻蛋白的冰结合平面 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-15T14:15:00.000+00:00
Duration: 8 min 46 s
Description: 了解荧光基冰平面亲和力分析方法，用于可视化防冻蛋白与冰晶的结合模式。该技术通过荧光标记实现冰结合平面的直接成像，为低温生物学和蛋白质化学研究提供重要工具。

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PLD 担任加拿大蛋白质工程研究主席。本工作获得了加拿大卫生研究院向 PLD 提供的资助。本工作还得到了日本学术振兴会（JSPS）科学研究费补助金（编号 23310171）以及日本生物导向技术研究推进机构（BRAIN）的资助。我们感谢 Chris Marshall 博士和 Mike Kuiper 博士在推动 FIPA 发展方面的开创性工作。我们还感谢 Sakae Tsuda 博士为本研究部分工作提供实验设施&#160;，并感谢 Laurie Graham 博士协助设置荧光激发和发射滤光片。

1. 生长单个冰晶
<ol>
	<li>取一个洁净的金属盘（直径 15 cm，高 4.5 cm），该金属盘应能放入乙二醇冷却浴中并漂浮于其上。</li>
	<li>通过将管材切割成段，制备聚氯乙烯（PVC）圆柱形模具（直径 4.5 cm，高 3–4 cm，壁厚 4 mm）。
	<ol>
		<li>在模具一侧切出一个缺口（宽 1 mm，高 2 mm）&#160;（图 1A）。</li>
		<li>准备足够数量的模具，使其能够舒适地放入金属盘中&#160;（图 1B）。 
		注意：有研究表明聚乙烯醇（PVA）可能影响冰的成核22。然而，在我们这种开放式的 PVC 模具系统中，尚未观察到异常冰形成的问题。&#160;</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在每个模具底部带缺口的环形表面均匀涂抹一层薄薄的真空润滑脂。将涂有润滑脂且带有缺口的一面密封到金属盘上，确保缺口朝向远离盘中心的方向。注意不要用润滑脂填充或堵塞缺口。</li>
	<li>向金属盘中心区域（模具外部）加入经 0.22 μm&#160;滤膜过滤并脱气/去离子的水，使水通过缺口缓慢进入模具内部。操作时注意避免引入气泡。水层深度应约为 5 mm。</li>
	<li>将金属盘放入温度可控的乙二醇浴中，调节浴温至 -0.5 °C。确保金属盘完全水平。如有必要，可在盘的两侧添加配重块以保持平衡。</li>
	<li>待金属盘和水温均达到 -0.5 °C 后，在盘中央区域（模具外部）加入一小块冰。
	<ol>
		<li>这将引发过冷水在整个盘内及模具中的冰晶生长。每个模具底部的小缺口仅允许一个冰晶通过，从而在每个模具中形成单一冰晶。</li>
		<li>静置过夜，以形成一层冰。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>在接下来的三天内，每天向每个模具中加入 13 ml 4 °C 的脱气/去离子水，并在每次加水后将乙二醇浴的温度逐步降低：第一天降至 -0.8 °C，第二天降至 -1.1 °C，第三天降至 -1.5 °C。
	<ol>
		<li>每次调节温度后均静置过夜。</li>
		<li>到第四天时，模具应完全被冰填满。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将模具从金属盘上取下，将冰晶从模具中推出，并将其置于洁净表面（如称量舟）上，在 -20 °C 冰箱中保存约 1 小时后再进行操作。</li>
	<li>除制备多个小型单晶冰外，还可按照 Knight23 所述方法，在恒温培养箱中制备体积达数升的大型单晶冰。若将大块单晶冰覆盖后保存于 -15 至 -20 °C 冰箱中，可稳定储存一年以上。根据需要，可用锯子从冰块上切割所需部分使用。</li>
</ol>
2. 确定冰晶的奇异性与取向
<ol>
	<li>在冷冻室中，通过将冰块置于两个交叉的偏振片之间观察，判断从模具中取出的冰是否为单晶&#160;（图1D）。
	<ol>
		<li>若冰晶为单晶，则不应观察到裂纹或不连续区域，且冰晶内部的光传播方向应保持一致。 
		注意：若无冷冻室，可在所有必要步骤中改用低温室，但需注意操作迅速，并尽量减少对冰的接触。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>由于冰具有双折射特性，可同时确定其c轴的取向。请依据以下信息判断取向：
	<ol>
		<li>当c轴与入射光方向完全平行时，理论上无光通过交叉的偏振片。若入射光方向相对于c轴略有倾斜，则在旋转冰晶通过交叉偏振片时，晶体将透射出均匀的多色光谱。这种均匀透射现象源于冰Ih&#160;沿其c轴方向的光学惰性24。冰晶的基面垂直于c轴。</li>
		<li>当c轴与入射光方向的夹角进一步增大时，在旋转冰晶通过交叉偏振片的过程中，透射光强将在每旋转90°时在0%至100%之间交替变化。</li>
		<li>通常情况下，c轴垂直于圆柱形冰晶的圆形端面。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>通过冰坑蚀法（ice pitting）25确定a轴的取向：将冰晶用铝箔紧密包裹，在铝箔上用针于基面（垂直于c轴）处刺一小孔，随后将其置于真空条件下20分钟。
	<ol>
		<li>该处理将在基面上形成具有六重对称性的蚀坑，其中a轴穿过六角星形的六个顶点（图2A）。</li>
		<li>如需要，可使用锯沿六边形的一侧平行或垂直方向切割冰晶，以便将其安装成主棱柱面或次棱柱面分别垂直于冷指（图3）。</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
3. 荧光标记的抗冻蛋白在单个冰晶上的吸附
<ol>
	<li>将单个冰晶安装到冷指上(图1C)&#160;，首先在冰晶顶部钻出一个空腔。为此，使用两根直径略有不同但与冷指直径相近的铝棒交替加热融化冰，从而形成可容纳冷指的空腔。</li>
	<li>将冷指冷却至 -0.5 °C，插入冰晶空腔中，并固定冰晶直至其冻结在金属表面&#160;(图2B)。将晶体附着于冷指时应避免产生气泡，因为气泡会阻碍热量从冷指向冰晶的有效传递。</li>
	<li>用过滤后的去离子水或缓冲液填充一个半球形杯，液体体积约为冰晶直径的两倍，并将其冷却至约 4 °C。将附着在冷指上的冰晶浸入杯中，去除多余的水或缓冲液，使冰晶顶部大致与液面齐平，且冰晶不接触杯壁。
	<ol>
		<li>用隔热材料覆盖杯口，并将温度降至 -5 °C。</li>
		<li>等待约 1 小时，使冰晶逐渐形成半球形，期间每隔约 20 分钟检查一次其状态&#160;(图2C)。</li>
		<li>冰晶将通过融化与再生长的方式适应半球形杯的形状，但不得过度生长而接触杯壁。杯壁与半球形冰之间应至少保持 1 cm 的间隙，且冷指不应从冰中突出。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将杯从冰晶上取下，加入荧光蛋白溶液至终体积为 25–30 ml，并达到所需的分析浓度，注意保持杯内总液体体积不变。典型的抗冻蛋白（AFP）浓度为 0.1 mg/ml。
	<ol>
		<li>重新将冰晶浸入杯中，使冰晶顶部与液面齐平，且冰晶不接触杯壁&#160;(图2D)。</li>
		<li>将冷指温度降至 -8 °C，让蛋白溶液在冰晶中冻结 2–3 小时，期间频繁搅拌溶液。由蛋白溶液形成的冰层厚度应至少达到 5 mm 后方可停止冰的生长。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将仍附着在冷指上的冰晶从杯中取出。通过向冷指内通入略高于 0 °C 的冷却介质使冰晶升温，待其自然融化脱离冷指。</li>
	<li>将冰晶平面朝下放置于洁净表面（如称量皿）上，注意勿触碰新形成的冰面，并在 -20 °C 下保存至少 20 分钟后再进行后续操作。</li>
</ol>
4. 冰晶中结合抗冻蛋白的晶面可视化
<ol>
	<li>在暗化的冷冻室或低温房间中，将冰晶的平面朝下放置于带有波长特异性激发滤光片的光源下，以激发荧光标记，并使用相机发射滤光片阻挡非特异性光线，从而观察荧光信号。根据荧光分布模式，可推断出被抗冻蛋白（AFPs）结合的冰晶面 （图4）。</li>
	<li>若无波长特异性光源，可改用紫外光灯箱进行观察。</li>
	<li>也可通过传统冰蚀法进行观察：将冰半球在 -20 °C 下升华至少 3 小时，之后残留在冰表面的蛋白质粉末可能变得可见 （图5）。</li>
	<li>可重复步骤 2.3，以确定完整冰半球的 a 轴取向。</li>
</ol>

<ol><li>Devries, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antifreeze+peptides+and+glycopeptides+in+cold-water+fishes%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Antifreeze peptides and glycopeptides in cold-water fishes.</a> Annu. Rev. Physiol. 45, 245-260 (1983).</li>
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</ol>

无利益冲突声明。

Charles Knight 开发的冰蚀刻法用于确定抗冻蛋白（AFP）结合的冰晶面，极大地推动了抗冻蛋白与冰结合机制的研究。尽管可通过X射线&#160;晶体学26,27解析抗冻蛋白的结构，但此前尚无明确方法推断出与抗冻蛋白结合的冰表面互补结构。当首次表征来自冬鲽鱼的I型抗冻蛋白时，曾假设其结合于冰的主棱柱面28。然而，Knight 具有开创性的I型抗冻蛋白冰蚀刻实验表明，这类蛋白实际上结合于冰的锥面13。这一结果促使抗冻蛋白研究领域重新思考抗冻蛋白与冰结合的机制，并更精确地确定抗冻蛋白的冰结合面9。Knight 最初的冰蚀刻实验使用的是从天然产生抗冻蛋白的生物体中纯化的天然抗冻蛋白。随着重组抗冻蛋白的发展以及GFP标签的广泛应用，这些研究得以拓展至更多种类的抗冻蛋白29。
将共价荧光蛋白染料（如四甲基罗丹明-5-（和6-）异硫氰酸酯（TRITC））引入分析的想法，是在GFP融合AFP的FIPA分析取得成功之后才出现的11。已有观察表明，嵌合荧光蛋白标签...

抗冻蛋白（AFPs）的产生是一些生活在含冰环境中的生物体重要的生存机制。直到最近，人们一直认为抗冻蛋白的唯一功能是阻止或减缓体内冰晶的生长，因为这些冰晶会阻塞循环系统，造成组织损伤和渗透压应激。像鱼类这样无法耐受任何程度冻结的生物，会表达抗冻蛋白以完全抑制冰晶的生长1。而另一些生物，如某些草类，则具有耐冻能力，其表达抗冻蛋白的作用是抑制冰的再结晶，从而减少其组织中大冰晶的形成2。此外，抗冻蛋白还被提出具有在低温下稳定细胞膜的功能3。最近，有研究提出一种来自南极冰封咸水湖中细菌Marinomonas primoryensis的抗冻蛋白具有新的功能4。这种抗冻蛋白是更大分子量的黏附蛋白的一部分5&#160;，被认为可使细菌附着于冰上，从而更易获取氧气和营养物质6。已知其他一些微生物也会分泌抗冻蛋白，这些蛋白可能改变其生存环境中冰的结构7。
在某些鱼类、昆虫、植物、藻类、细菌、硅藻和真菌中已发现抗冻蛋白（AFPs）。这些蛋白具有显著不同的序列和结构，表明它们在不同时间从不同的祖先蛋白独立进化而来；然而，它们均能通过吸附-抑制机制与冰结合并抑制其生长8。每种AFP都有一个特定的表面区域作为其冰结合位点（IBS）。这些位点通常通过定点突变表面残基的方法得以鉴定9-11。目前假说认为，IBS可将水分子排列成与冰晶特定晶面相匹配的类冰结构，因此AFP在结合之前即已形成其配体5, 12。冰晶晶面可通过其密勒指数（Miller indices）来定义，不同AFP可结合不同的晶面。例如，冬鲽鱼的I型AFP结合于20-21锥面13，III型AFP则利用复合冰结合表面同时结合主棱柱面和锥面11,14，而云杉卷叶蛾的AFP作为一种高效抗冻蛋白，可同时结合主棱柱面和基面15,16。其他高效抗冻蛋白（如MpAFP）可结合多个冰晶晶面，这一点已通过其对单个冰晶半球的完全覆盖得到证实5,17。目前推测，高效AFP能够结合基面以及其他晶面的能力，可能是其活性比中等活性AFP高出10倍的原因18。尽管高效AFP的效能已有充分文献记录，但其结合多个冰晶晶面的机制仍不清楚。
确定抗冻蛋白（AFP）结合冰面的原始方法由Charles Knight开发13,19。该方法中，将一个宏观的单晶冰固定在一根中空金属棒（冷指）上，并通过将其浸入装有脱气水的半球形杯中形成半球形冰晶。随后，将该冰半球浸入稀释的抗冻蛋白（AFP）溶液中，并通过调节流经冷指的乙二醇温度，在数小时内从AFP溶液中在冰晶半球表面生长出一层新的冰。之后将冰晶从溶液中取出，从冷指上取下，并置于-10至-15 °C的冷冻室内。用锋利的刀片刮除冰表面冻结的抗冻蛋白溶液薄膜，然后使冰晶在该环境中升华至少3小时。升华后，结合了抗冻蛋白的冰面会以白色蚀刻图案的形式显现&#160;，这些图案来源于残留的蛋白质。通过将冰半球定位至其c轴和a轴，可识别冰的基面（basal plane）和柱面（prism plane），并确定蚀刻区域的密勒指数（Miller indices）。
本文介绍了一种对原始方法的改进，用于确定抗冻蛋白（AFP）结合的冰晶晶面，该方法被称为基于荧光的冰晶面亲和性分析法（fluorescence-based ice plane affinity, FIPA）11。抗冻蛋白可通过嵌合标签（如绿色荧光蛋白，GFP）11,16,17,20，或通过共价连接的荧光染料5,21进行荧光标记。将荧光标记的抗冻蛋白吸附至单个冰晶表面，并采用与原始冰蚀刻实验相同的实验程序进行冰晶生长。在实验过程中，可使用紫外（UV）灯实时监测抗冻蛋白在生长中的冰半球表面的结合程度。实验结束后，可直接将冰半球从冷指上取下进行成像，无需经过升华步骤。然而，若需要，也可让冰半球继续升华，以观察传统的冰蚀刻图案。对FIPA方法的改进使传统的冰蚀刻流程缩短了数小时。此外，该方法还具备同时成像多种带有不同荧光标记的抗冻蛋白的潜力，从而可视化不同抗冻蛋白所结合的冰晶面之间的重叠模式。

<table><tbody><tr><td>NESLAB RTE 制冷浴/循环器</td><td>Thermo Scientific</td><td>RTE7</td><td></td></tr><tr><td>乙二醇，预混防冻液/冷却液</td><td>Certified</td><td>29-3037-0</td><td>常见的汽车防冻液</td></tr><tr><td>冷指管</td><td>不可用</td><td>不可用</td><td>定制黄铜材质（长 9 cm，外径 1.5 cm）</td></tr><tr><td>半球形杯</td><td>不可用</td><td>不可用</td><td>树脂定制（外径 8 cm，内径 6 cm）</td></tr><tr><td>高亮度双输出照明系统</td><td>Lightools Research</td><td>LT-99D2, Illumatools DLS 120 volts AC, LT-9470FX, LT-9549FX</td><td>可从 Lightools Research 购买额外或定制的激发滤光片</td></tr><tr><td>相机</td><td>Canon</td><td>EOS 50D</td><td></td></tr><tr><td>发射滤光片</td><td>Lightools Research</td><td>LT-9EFPVG, LT-9GFPVG, LT-9RFPVG</td><td>可能需要滤光片环适配器以将滤光片安装到相机镜头上</td></tr></tbody></table>

通过基于荧光的冰平面亲和法测定抗冻蛋白的冰结合平面

Determining the Ice-binding Planes of Antifreeze Proteins by Fluorescence-based Ice Plane Affinity

抗冻蛋白（AFPs）在多种耐寒生物中表达，以防止或减缓体内冰晶的生长。AFPs通过其冰结合表面与冰的特定晶面结合。基于荧光的冰晶面亲和性（FIPA）分析是一种经过改进的技术，用于确定AFPs结合的冰晶面。FIPA基于最初的冰蚀刻法来确定AFPs结合的冰晶面，可在更短的实验时间内获得更清晰的图像。在FIPA分析中，AFPs通过嵌合标签或共价染料进行荧光标记，然后缓慢地整合到预先形成的半球形单晶冰中，并调整其取向以确定a-轴和c-轴。在紫外光下对结合了AFPs的冰半球进行成像，利用滤光片阻断非特异性光信号，从而可视化AFPs结合的晶面。AFPs的荧光标记可实现对AFPs吸附进入冰晶过程的实时监测。研究发现，这些标记不会影响AFPs结合的晶面。FIPA分析还允许在同一单晶冰上结合多种带有不同标签的AFPs，有助于区分它们各自的结合晶面。FIPA的这些应用正在推动我们深入理解AFPs如何结合冰晶以阻止其生长，以及为何许多产生AFPs的生物会表达多种AFPs异构体。

制备和安装单晶冰是FIPA实验过程中最容易出错的两个步骤。判断所制备的冰晶是否为单晶的方法是通过交叉偏振片观察冰晶，具体操作如方案部分的步骤2.1所述(图1D)。如果在FIPA分析中使用了多晶冰，则抗冻蛋白（AFP）在半球表面的结合将呈现不连续状态，且缺乏一致的结合模式(图6B)。若冰晶的界面位于AFP结合的冰晶面附近，则最终结果可能无法解读。因此，在进入后续步骤之前，应仔细检查冰晶是否为单晶。为了提高获得可用于FIPA分析的单晶冰的概率，建议同时制备多个冰晶。
另一个常见错误是在安装过程中未将晶体面与冷指正确对齐。为了使主棱镜面或次棱镜面垂直于冷指，必须首先通过冰坑法确定单个冰晶的取向，然后根据星形蚀刻的取向进行切割 （图2A 和 3)，如方案部分第2.3步所述。若冰晶安装时未对准，最终结果将产生一个半球，其半球赤道与冰晶面的对称性不一致 （图6C）尽管这是一个可解释的结果，但其信息量将不如正确对齐的冰晶，因为半...

抗冻蛋白（AFPs）可结合到冰晶的特定晶面，从而阻止或减缓冰晶的生长。基于荧光的冰晶面亲和性（FIPA）分析法是对原始冰蚀刻方法的一种改进，用于确定与抗冻蛋白结合的冰晶面。该方法将抗冻蛋白进行荧光标记后，使其嵌入宏观单晶冰中，并在紫外光下进行观察。

抗冻蛋白（AFPs）在多种耐寒生物体中表达，以防止或减缓体内冰晶的生长。AFPs 结合到冰晶的特定晶面……

以下实验的总体目标是观察由荧光标记的抗冻蛋白结合的冰晶平面。该目标通过两个步骤实现：首先培养单个冰晶，随后使抗冻蛋白结合于冰晶表面。通过交叉偏振器观察每个冰晶，以确认其单一性及取向。接下来，将一块冰晶安装到温度可控的冷指上，并塑造成半球形。然后将其浸入荧光标记的抗冻蛋白溶液中，使抗冻蛋白吸附到正在生长的半球形冰晶的特定结合晶面上。在低温暗室中，利用特定波长的光源和滤光片对结合了荧光标记抗冻蛋白的冰晶进行观察和成像，从而获得实验结果。该技术相较于现有的冰蚀刻等方法的主要优势在于，抗冻蛋白经过荧光标记，可立即可视化蛋白结合的冰晶晶面。通过准备一个温度控制在负0.5摄氏度的乙二醇浴，并选择一个洁净且能漂浮其上的金属盘，以开始晶体生长。晶体在模具中形成，使用从聚氯乙烯管上截取的高3至4厘米的圆柱形模具。每个模具的一侧应有一个1毫米宽、2毫米高的缺口。在切出缺口的金属环侧面均匀涂抹一层薄薄的真空脂。将涂有真空脂并带有缺口的表面密封在金属盘上，确保缺口方向朝向远离盘中心的位置。务必注意不要将润滑脂填入或堵塞凹槽。准备尽可能多的模具以放入盘中。接着，将过滤、脱气并去离子的水加入盘内模具外的中心区域。注意不要引入任何气泡。当水层上升至五毫米时，水应通过刻槽缓慢进入模具。完成后，将托盘完全水平地放入乙二醇浴中。当平底锅和水的温度降至负0.5摄氏度后，向模具外的锅中央加入一小块冰。孵育过夜，随后三天内形成一层冰。返回水浴中，向模具内加水。向每个模具中加入13毫升4摄氏度的脱气去离子水。加水后每天降低乙二醇浴的温度。到第四天时，模具应完全被冰填满。取出模具，并为冰晶准备一个清洁的表面。将每个模具从托盘上取下，推出冰晶。将带有模具的清洁表面放入-20摄氏度的冰箱中冷冻一小时。处理前。当冰制备好后，将其带入冷冻室或冷室，以确定其是否为单晶。将冰置于两个交叉的偏振器之间。如果冰为单晶，则不应观察到任何裂纹或不连续结构，且光在晶体内部的传播方向不应发生变化。在保持偏振器位置不变的情况下，通过旋转冰样并观察透射光来确定C轴的取向。为确定A轴的取向，需将冰样紧密包裹在铝箔中。将针垂直于海平面轴线放置，通过箔片并在冰上刺一个小孔。接着，将冰置于0.5毫巴的真空环境中20分钟。一旦晶体取出，即在低温室内将其暴露。观察基面上的六边形蚀刻。AAEs 穿过六角星的顶点。该晶体将沿一条与六角星相对顶点平行的直线切成两半。为了暴露一个主要棱柱面，将晶体牢固地固定在实验台上。使用钢锯将晶体切成两半。收集切下的晶体碎片，用于安装到冷指上。必须进一步制备冰晶以将其安装到冷指上。找到两根直径略有不同但尺寸与冷指相近的铝棒。交替使用这两根铝棒在冰晶顶部熔出一个空腔，直至形成一个可容纳冷指的凹腔为止。将冷指冷却至零下0.5摄氏度，并将其放入冰晶的空腔中。将晶体固定在原位，直至其冻结在金属上。接下来，取一个半球形杯，加入约两倍于冰晶直径的、冷却至4°C的过滤去离子水。将附有冰晶的冷指浸入杯中，去除多余的水，使冰晶顶部与液面大致齐平，且冰晶不与杯壁接触。将杯壁覆盖在杯子上以进行隔热，并将温度降至零下五摄氏度。静置约一小时，使冰形成半球状。准备加入荧光蛋白。当半球体制备完成后，将冰晶从杯中取出，并将杯中的水去除。然后加入 25 至 30 毫升预冷的、含有荧光标记的蛋白质溶液，浓度为所需浓度。在保持总体液体体积不变的情况下，将冰晶浸入杯中。再次确保冰晶的顶部与液面齐平，且未接触杯壁。将冷指温度降至负八摄氏度，使蛋白质溶液在冰晶中冻结两到三小时。当蛋白溶液中形成的冰层厚度至少达到五毫米时，停止冰的生长。保持冷指装置连接状态，将冰晶从杯中取出。通过将冷却剂温度升至略高于零摄氏度，使冷指装置脱离。等待冰晶完全融化脱落。当冰晶从冷指管上脱落后，将其平整的一面朝下放置在干净的表面上。注意不要触碰新形成的冰。将晶体在 -20 摄氏度下保存至少 20 分钟，然后在可避光的低温室内进行荧光观察。准备带有特定波长激发滤光片的光源以激发荧光标记，并配备相应的相机发射滤光片。为排除非特异性光干扰，将冰块平放于光源下方，关闭室内灯光，观察冰面上被照亮的荧光图案。为了估算由抗冻蛋白结合的冰晶面，可将传统的冰蚀刻图像与相应的基于荧光的冰平面亲和性分析图像进行比较，两者均显示由冬季比目鱼（Pseudopleuronectes americanus）产生的Ⅰ型抗冻蛋白。该技术可用于同时比较不同抗冻蛋白的冰结合模式。在此例中，使用太平洋蓝（Pacific Blue）标记的Ⅲ型 NFEA FP8 与三重标记（trixy）标记的Ⅰ型抗冻蛋白。这是仅可视化三型N-F-E-A-F-P八的结果，而在此图像中仅可视化了一型抗冻蛋白。两者被共同可视化。请注意，每个图像的C轴均相同。观看本视频后，您应能够充分理解如何培养和定向单晶冰，并利用基于荧光的冰平面亲和性分析方法，评估荧光标记的抗冻蛋白在冰平面上的结合模式。

determining-ice-binding-planes-antifreeze-proteins-fluorescence-based

Research

科研

JoVE Journal

Chemistry

化学

通过荧光基冰平面亲和力确定防冻蛋白的冰结合平面

冰结合蛋白（IBPs），也称为抗冻蛋白，能够抑制冰晶生长，是组织低温保存中一种具有前景的添加剂。研究IBPs的主要工具是纳升渗透压计。我们开发了一种自制的冷却台，安装在光学显微镜上，并通过自行编写的LabVIEW程序进行控制。本文所述的纳升渗透压计可对样品温度进行超灵敏的调控。...

由LabVIEW控制的新型纳升渗透压仪用于冰结合蛋白研究

在本视频中，我们介绍了利用荧光各向异性技术研究荧光标记的Shwachman-Diamond综合征（SBDS）蛋白与延伸因子样1...

基于荧光各向异性的蛋白质-蛋白质相互作用检测

本视频介绍了高灵敏度荧光各向异性技术，可用于监测转录因子与DNA之间的相互作用。该检测方法通过测量荧光标记DNA分子因分子旋转或荧光基团各向异性所产生的偏振程度，来监测荧光标记DNA分子与其特异性转录因子之间的相互作用。...

利用荧光各向异性测定转录因子-DNA结合亲和力

差示扫描荧光法是一种广泛用于筛选小分子文库与蛋白质相互作用的方法。本文介绍了一种简单的方法，可将此类分析扩展至估算小分子与其靶标蛋白之间的解离常数。...

使用差示扫描荧光法测定蛋白质-配体相互作用

蛋白质相互作用是细胞功能的核心。通常使用量热法和光谱技术来表征这些相互作用。本文中，我们描述了荧光各向异性作为一种研究Shwachman-Diamond综合征相关突变蛋白（SBDS）与延伸因子样1...

荧光各向异性作为研究蛋白质-蛋白质相互作用的工具

利用微尺度热泳技术绘制适配体在ATP上的结合位点

本文概述了通过评估抑制冰重结晶活性，并利用冰亲和纯化技术分离天然冰结合蛋白，从而从耐冻植物中鉴定冰结合蛋白的方法。...

通过冰重结晶抑制评估和冰亲和纯化分离鉴定植物冰结合蛋白

本文介绍一种在溶液中高灵敏度、大规模测定平衡状态下结合亲和力的新方法。该方法可改进转录因子与DNA结合的定量分析。本方法基于在受控递送系统中进行的自动化荧光各向异性测量。...

利用荧光显微镜通过竞争性滴定法高灵敏度测定转录因子-DNA结合亲和力

监测目标蛋白熔解温度的变化即热移位分析（thermal shift assay, TSA）是一种用于筛选包含数百种化合物的片段库的高效方法。本文介绍了一种采用机器人辅助纳米微分扫描荧光法（nano-DSF）的TSA实验方案，通过监测内在色氨酸荧光和光背向散射进行片段筛选。...

基于片段的先导化合物发现中用于筛选的纳米差示扫描荧光法

本方案描述了在微流控装置中结晶微观冰晶和笼形水合物的方法，可实现晶体形成后周围液体的交换。这为研究抑制剂的结晶过程及其结合机制提供了前所未有的可能性。...

一种用于研究冰和笼形水合物结晶的微流控方法

了解荧光基冰平面亲和力分析方法，用于可视化防冻蛋白与冰晶的结合模式。该技术通过荧光标记实现冰结合平面的直接成像，为低温生物学和蛋白质化学研究提供重要工具。

通过基于荧光的冰平面亲和法测定抗冻蛋白的冰结合平面

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