2015年8月23日
我们开发了一种眼刺激性测试方法,该方法采用三维重建的人角膜样上皮(RhCE)组织模型。该测试能够区分具有眼刺激性或腐蚀性的物质(GHS 第1类和第2类合并)与无需标注分类的物质(GHS 未分类)。
眼刺激试验的总体目标是根据物质和混合物的眼刺激潜力对其进行分类和标识。该实验采用一种三维重建的角膜样组织模型。试剂盒到达后,需在检测培养基中预先孵育过夜;次日,对组织进行水化处理,随后将阳性对照、阴性对照以及待测化学品分别重复施加于组织表面。
经过固定时间的暴露后,通过清洗去除受试化学品。将组织在新鲜的培养基中进行后续孵育,然后通过MTT法评估化学品的毒性。最终,通过比较受试物处理组组织与阴性对照组组织的相对存活率,可评估受试物的刺激潜力。
与快速兔眼刺激试验等现有方法相比,该技术的主要优势在于无需使用实验动物。它采用体外构建的类似角膜的组织模型进行眼部测试,该模型由正常的人体细胞组成。该方法适用于所有类型的物质和混合物,能够区分引起眼部刺激或严重眼损伤的化学品与材料。
无需分类和标签的非刺激性物质。重建的人角膜上皮样组织或眼表上皮在带有多孔膜的插入物中制备,营养物质通过该多孔膜传递给细胞。
重建的组织形成非角化上皮,其模拟角膜上皮,具有逐步分层但未角化的细胞。收到人角膜样上皮试剂盒后,将24孔运输容器中的组织平衡至室温。15分钟后,在无菌条件下打开装有24孔组织板的袋子,检查所有组织的琼脂凝胶与插入物之间是否存在气泡。切割。打开胶带。
使用无菌纱布移除盖子,并检查组织表面。接下来,将一毫升 37 摄氏度的试剂盒检测培养基加入已预先标记的六孔板的各孔中。然后使用无菌镊子将含有组织的插入物在无菌纱布上轻轻吸干,以去除任何残留的运输液,并将其放入六孔板的各个独立孔中。
一小时后,将培养基更换为1 mL新鲜的37摄氏度测定培养基,并在标准培养条件下过夜孵育组织。次日,向每个组织的顶面滴加20 µL无钙镁的DPBS。如果DPBS未扩散至整个组织表面,可轻轻用镊子夹住小室并在培养板上轻敲,以确保盐溶液润湿整个组织表面。
将培养板孵育30分钟。然后,根据时间表,以每组两个复孔的方式,向组织中加入50微升阴性对照、阳性对照以及相应的液体受试物,以进行处理。注意确保处理液覆盖整个组织表面。对于固体受试物的处理,则将插入物孵育30分钟。
首先,将插入物转移至无菌表面。保持培养皿盖上,以防止空气中的固体颗粒造成污染。然后,使用已调平的勺子,根据时间表将50毫克的受试物均匀地涂抹于重复的组织上,注意确保处理物覆盖整个组织表面。
或者,使用一支预先装好且已切掉针头的1毫升注射器,将粉末直接施加到培养物上。在施加固态受试物后,立即推动活塞以施加粉末,随后将插入物放回六孔板中,并将组织孵育6小时以冲洗组织。
处理后,在暴露孵育结束时,每种受试物品使用3个150毫升烧杯,每个烧杯加入100毫升DPBS。用弯头镊子夹住小室的上边缘,将其从孔中取出。然后用镊子夹住同一处理组的两个小室的上边缘,将处理液倾倒至干净的吸水材料上。
接下来,将插入物浸入第一个盛有DPBS的烧杯中,以环形旋转动作清洗组织,持续两秒钟。然后提起插入物,使其大部分充满DPBS,再将液体倒回烧杯中。在第一个烧杯中重复此清洗步骤两次。
最后一次洗涤后,以相同方式用第二和第三个烧杯中的 DPBS 各洗涤小室 3 次。将每个小室旋转至大约 45 度角,开口端朝下,将上缘接触吸水材料,以倾去残留的 DPBS。然后立即将组织浸入 5 毫升室温的检测培养基中。
在预标记的12孔板中,于浸泡后孵育期结束时,倾去检测培养基,并将插入物置于吸水材料上轻轻吸干。随后将插入物转移至新的6孔板中,每孔加入1毫升预温的检测培养基,将板放入培养箱中以开始MTT活力检测。再将插入物转移至含有0.3毫升新鲜配制的MTT溶液的24孔板中。
在转移前,将插入物轻轻蘸在吸水材料上。释放插入物下方困住的任何气泡,并在三小时后将组织放回培养箱,将插入物底部置于吸水材料上。对于非着色液体测试样品的浸没提取,将插入物浸入预先标记的24孔板中,每孔加入两毫升适当的提取液;对于固体或液体着色剂的非浸没提取,则采用相应方法。
将插入物转移至预标记的六孔板中,每孔加入一毫升提取液。然后使用热封仪或封口膜密封板体,以防止蒸发,并在室温下于旋转摇床上轻柔振荡提取两到三小时,完成浸没提取的最后步骤。穿刺组织后,将每个插入物中的液体倾倒回对应的孔中,随后丢弃带有组织的插入物。
混匀每个孔中的提取液,然后将每个样本的两份200微升等分试样转移至预先标记好的96孔板中的相应孔中,具体操作如非浸没提取末尾示意图所示。弃去插入物和组织时不得穿刺,向每个孔中加入1毫升提取液。充分混匀各孔中的提取液,然后如前所述,将每个样本的两份200微升等分试样转移至预先标记好的96孔板中的相应孔中。
最后,在96孔分光光度计中于570纳米波长下读取样品的光密度值,不使用参考滤光片,并将结果输入电子表格以计算相应的组织活性。根据本实验方案文本中所述,需对测试化学品干扰进行校正。本实验展示了使用10种测试物品以及阴性与阳性对照进行的代表性眼刺激测试结果。阴性对照的平均光密度为1.31,对应100%的组织活性;阳性对照的相对组织活性为31.2%。测试物品1、2、4、7和8的组织活性均高于60%,被归类为非刺激物;测试物品3、5、6、9和10则未达到该阈值。
另一方面,所展示的组织变异性小于或等于60%,导致其被分类为刺激物。本实验中,除2号受试物外,所有受试物的重复组织之间的组织活性差异均小于20%。因此,除2号受试物外,所有受试物的结果均被视为合格,因其符合全部眼刺激试验的接受标准。
观看本视频后,您应充分了解如何利用体外重建的人角膜类似组织模型4进行DICATION测试,以实现化学品的危害识别与分类。该方法已被纳入EOC D测试指南,作为分级测试策略的一部分。
本研究介绍了一种利用三维重建人角膜样上皮(RhCE)组织模型进行的眼刺激性测试。该测试能够有效区分眼部刺激物和腐蚀性物质与无需标注的物质。
利用重建的人类角膜上皮(RhCE)组织模型进行的眼刺激试验(EIT)为眼部危害识别提供了一种经过验证的、无需动物实验的替代方法,支持符合欧盟REACH法规和OECD TG 492指南的要求。该方法能够早期区分全球化学品统一分类和标签制度(GHS)分类的刺激性/腐蚀性物质与无分类物质,提高毒理学筛选中的预测可靠性,同时减少对动物模型的依赖。这种基于机制的风险评估方法通过提供定量且可重复的细胞活力终点,支持靶点验证和检测方法开发流程,用于化学品安全性评价。
眼刺激性测试(EIT)可整合到发现工作流程中,作为危害识别的分级筛选工具,位于初始先导化合物识别之后、临床前毒理学研究之前,能够基于眼部刺激潜力实现数据驱动的继续/终止决策。