侵染微生物利用数字条码平台的基因表达谱

本实验的总体目标是准确测量体内病原体基因表达，以阐明病原体如何适应感染环境并对其宿主造成损害。这项技术为传染病领域的研究人员在实际感染期间对各种组织类型和多个时间点的病原体基因表达动力学铺平了道路。这种方法的主要优点是它高度敏感且具有极高的可重复性。

这种方法使得量化来自现实生活中感染的微量组织的病原体基因表达成为可能。要开始制备试剂，请将 2-巯基乙醇添加到缓冲液 RLT 中并充分混合。制备苯酚-氯仿异戊醇溶液的 25：24：1 混合物。

标记 M 型均质管并在冰上冷却。标记两个 ml 螺口盖管，并向每个管中加入大约 300 μL 的氧化锆珠。准备好以下仪器以供使用，包括组织解离器、微珠打浆器、带有 50 毫升试管和 96 孔板适配器的台式离心机以及光度计。

从 80 摄氏度的冰箱中取出从白色念珠菌感染的小鼠中分离的先前冷冻的肾脏，并放在冰上。向每个肾脏中加入 1.2 毫升缓冲液 RLT。然后将每个装有缓冲液的肾脏倒入 M 型匀浆管中。

使用的缓冲区 RLT 量是根据经验确定的。缓冲液 RLT 过多会稀释样品浓度，而缓冲液 RLT 过多会使匀浆非常粘稠且极难处理。接下来，在预装的 RNA 2.01 上使用组织解离剂，匀浆肾脏。

然后，以 1000 x G 离心 1 分钟。将 600 μL 的匀浆转移到含有氧化锆珠的螺旋盖管中，并将剩余的匀浆保存在冰上。向每管中加入 600 微升苯酚-氯仿异戊醇，盖紧盖子，并在 4 摄氏度下在珠子打浆器上涡旋 3 分钟。

在 4 摄氏度下以 15， 000 G 离心 5 分钟。小心地将水相转移到新的 1.5 ml 微量离心管中，加入等体积的 70% 乙醇。然后加载到离心柱上并以 8， 000 x G.用 700 微升缓冲液 RW 洗涤每个离心柱一次，然后用 500 微升缓冲液 RPE 洗涤两次。

将色谱柱转移到干燥的收集管中，再旋转 1 分钟以去除任何残留液体。最后，使用 50 微升水洗脱 RNA。然后使用 OD 216 animeters 的分光光度计测量 RNA 浓度。

要使用数字条形码进行基因表达分析，首先在冰上解冻报告基因代码集和捕获代码集。向报告基因代码集中添加 130 μL 杂交缓冲液。Invert 进行混合并向下旋转。

接下来，向 12 个反应管中的每个反应管中加入 20 微升混合物。然后向每管中加入 10 μg 总组织 RNA，并通过移液混合。根据感染模型、接种量和使用的病原体菌株，病原体 RNA 在总 RNA 中的百分比从 0 到 2% 不等，因此应根据经验优化需要为每种添加的 RNA 总量。

现在向每个试管中添加 5 微升捕获代码组。通过翻转试管混合并快速旋转。然后在 65 摄氏度的热循环仪中用加热盖孵育反应物约 18 小时。

从 20 摄氏度中取出一个样品柱，使其升温至室温。从 4 摄氏度中取出两个试剂板，在台式离心机中以 670 x G 离心 2 分钟。接下来，按照屏幕上的分步说明设置制备站，选择高灵敏度选项。

然后从热循环仪中取出反应物，并立即加载到制备站上。运行三个小时的高灵敏度程序后，取出小柱并使用透明胶带密封泳道。如果需要，将矿物油涂抹在墨盒底部。

然后将小柱加载到数字分析仪上。按照屏幕上的分步说明设置数字分析仪，选择高分辨率扫描选项。运行扫描程序后，下载结果或选择通过电子邮件接收结果，并将原始数据导入制造商的软件。

根据文本协议分析数据。本视频中演示的方案具有独特的优势，因为它同时使用捕获探针和报告探针来提高特异性并降低宿主 RNA 的噪音。如此处所示，未感染组织样本的背景原始计数均低于 10，而两个感染组织样本的原始计数均高于 10。

来自两个生物样品的原始计数与 0.945 的 R 平方值具有非常好的相关性。该平台还提供足够的动态范围来涵盖自然生物表达水平。使用指定 248 个环境反应基因的探针组，确定了病原体基因表达的两个阶段。

早期基因表达反应包括接种物和感染后 12 小时样本之间 RNA 水平显著不同的基因。还发现了一个晚期基因表达反应，其包含的基因在 RNA 水平在感染后 12 小时和 48 小时样本之间显著不同。这些结果表明，白色念珠菌基因表达在哺乳动物宿主的侵袭性感染过程中受到动态调节。

这种方法既简单又快速。从组织采集到表达数据的整个过程需要不到 48 小时。12 个样品的手动作时间约为 4 小时。

虽然这种方法是为了在体内捕获病原体基因表达而开发的，但同样也可用于回答宿主基因表达。因此，研究人员可以同时从感染的两侧获得有用的信息。