2017年2月24日
为了区分心肌细胞的细胞分裂与细胞周期变化,我们提供了使用两种转基因小鼠品系的实验方案:Myh6-H2B-mCh 转基因小鼠,用于明确鉴定心肌细胞的细胞核;以及 CAG-eGFP-anillin 转基因小鼠,用于区分细胞分裂与细胞周期的变化。
本实验的总体目标是可视化出生后心肌细胞的细胞周期活性,并确定其核型特征。该方法有助于回答心脏再生领域中的关键问题,例如:心肌细胞是否真正发生分裂,还是仅仅增加了其倍性或转变为多核状态?该技术的主要优势在于,能够以高时空分辨率观察细胞周期的M期,并可通过荧光信号识别心肌细胞的细胞核。
演示该实验操作的是本实验室的技术员 Patricia Freitag。若使用非纯合子的配对繁殖小鼠,需首先通过荧光显微镜鉴定转基因小鼠的心脏,检测其 EGFP analin 和 H2B-mCherry 的表达情况。EGFP analin 的细胞核信号在心房边缘处最为明显,通过聚焦组织的不同层次即可观察到。
为了分离心肌细胞,将适当数量的心脏放入含有1毫升新生小鼠心脏解离试剂盒酶混合液的1.5毫升离心管中,并用剪刀将心脏剪成小块。随后,将溶液转移至15毫升离心管中。将离心管置于接近水平的位置,在37摄氏度下孵育15分钟,孵育结束时用5毫升移液器吹打组织5到10次以混匀。
第三次消化结束后,加入7.5毫升培养基二终止反应,并通过70微米细胞滤网过滤细胞悬液。用3毫升培养基二冲洗细胞滤网,将洗涤液与收集的细胞合并,离心收集细胞。将细胞沉淀重悬于500微升培养基一中进行计数。
然后,将每孔 1 × 10⁴ 个细胞接种于 96 孔平底板中,每孔加入 120 µL 培养基 1,接种后离心细胞,再放入细胞培养箱中过夜培养。次日,大多数心肌细胞应已开始搏动。开始转染前,使用 RNase 去污染溶液擦拭实验台面及所有转染用品,以清除任何 RNase。
所有材料准备就绪后,向每个孔中加入20微升新鲜制备的siRNA混合物,并将细胞放回培养箱中孵育48小时。两天后,将每个孔中的上清液更换为120微升培养基一,并将细胞放回培养箱中继续孵育至少24小时。孵育结束后,用PBS洗涤细胞一次,随后在4%甲醛溶液中固定20分钟。
为了通过共聚焦视频显微镜分析细胞,将培养板转移至共聚焦显微镜载物台上,并启动成像软件。打开 A1plus 设置,选中通道一、通道二、通道三和通道四的复选框。在下拉菜单中,将通道一设置为 DAPI,通道二设置为 eGFP,通道三设置为 RFP,通道四设置为 Cy5。
单击通道电压,使用滑动条将每个通道的电压设置为 80。使用滑动条将偏移量设置为零,然后单击“归位”按钮,将针孔设置为初始位置。在下拉菜单中将扫描尺寸设置为 1024 × 1024 像素。
单击“优化”以打开 XYZ 尺寸设置窗口,并在建议的 Z 步长下勾选“完美的体素框”。选择 20 倍物镜,并调节激光强度,直至图像既不欠曝也不过曝。当所有参数设置完成后,打开“采集”菜单,选择“扫描大图”,然后在“区域”下选择“当前位置为左上角”。
然后将X和Y方向的视野数均设置为3×3,点击扫描。为确定心肌细胞核的数量,点击测量、手动测量和计数。选择具有H2B-mCherry信号的细胞核,对其进行标记并计数。
然后,选择α-肌动蛋白in阳性细胞以确定心肌细胞的数量。为计数处于G1期、S期和G2期且具有核EGFP-analin信号的心肌细胞,选择“测量”、“手动测量”和“计数”功能。通过点击标记表达EGFP-analin和H2B-mCherry的细胞核,并手动计数具有有丝分裂特异性EGFP-analin信号(如收缩环和中间体)的心肌细胞。
然后,点击“测量”、“手动测量”和“计数”,并标记具有有丝分裂特异性 EGFP analin 信号、胞质信号、收缩环以及中体的 cardiomyocytes。与阴性对照相比,转染 miRNA 和 siRNA 的 cardiomyocytes 显示出细胞周期活性的激活。进行内复制的 cardiomyocytes 表现出 exclusively 核内 EGFP analin 表达,而 undergoing 细胞分裂的 cardiomyocytes 则在 M 期典型定位中显示 EGFP analin 表达。
在Langendorff灌注装置中对心脏组织进行酶消化后,可将心房和心室进行机械分离并独立分析,从而能够观察到H2B-mCherry转基因心室心肌细胞,其中含有大量H2B-mCherry阳性双核心肌细胞。相比之下,大多数心房心肌细胞为单核。酶消化后并未获得100%的单细胞群体,但通过α-肌动蛋白染色可显示出横纹结构模式,这进一步有助于区分双核心肌细胞(呈现连续的横纹结构)与细胞双联体。
为了分析厚切片中心肌细胞的双核指数,有必要手动浏览图像堆栈,因为细胞核不一定位于同一Z平面内,而麦胚凝集素染色有助于识别细胞边界。通过对成年转基因小鼠心脏固定切片进行三维重建,可检测并自动计数肌纤维钩状结构、染色阳性以及H2B-mCherry阳性的细胞核,从而确定在生理条件下心肌细胞核在组织中的比例。一旦掌握操作技巧,心脏组织解离过程若操作得当,可在两至三小时内完成。
在进行该实验操作时,必须持续操作以保持细胞在整个实验过程中的活性。通过本实验流程,可对 microRNA 或其他小分子物质在出生后心肌细胞中促进增殖的作用进行筛选。
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本文介绍了利用转基因小鼠品系区分心肌细胞分裂与心肌细胞周期变化的实验方案。这些方法可实现对心肌细胞核及M期活性的高分辨率可视化。
准确评估心肌细胞增殖与多倍化过程对于评价临床前模型中的心脏再生策略至关重要。对核标志物的误读可能导致真实有丝分裂活性被高估,从而影响靶点验证和先导化合物的筛选。本方法通过区分真正的细胞分裂与内复制或无胞质分裂的有丝分裂,提供了一种机制层面的风险排除策略, thereby 提高早期发现阶段的预测可信度。
该方法适用于从靶点验证到先导化合物筛选直至临床前评估的整个发现过程,尤其适用于调控心肌细胞周期动态的化合物。