2018年3月12日
本方案描述了一种倒置垂直侵袭实验方法,可用于在三维环境中定量评估细胞的迁移和侵袭能力,同时保持细胞微环境的完整性。该实验适用于稀有和/或敏感细胞。
本侵袭实验的总体目标是在三维环境中定量评估稀有且敏感细胞的迁移和侵袭能力,同时不使细胞脱离其微环境。该方法有助于回答癌症研究领域中关于敏感细胞或罕见事件(如癌细胞融合产物)侵袭能力的关键问题。该技术的主要优势在于,可在三维环境下于细胞原有的微环境中对其进行分析。
该技术的意义延伸至癌症治疗领域,因为它可用于筛选能够抑制癌细胞侵袭和转移的药理学试剂。对该技术进行直观演示至关重要。胶原蛋白混合物的温度和pH值会影响其聚合,操作粗暴则会导致凝胶脱落。
首先,向一个带有10毫米玻璃底孔的35毫米培养皿中加入1毫升1摩尔的盐酸,以降低玻璃的疏水性。15分钟后,每次用1毫升PBS洗涤培养皿两次,随后用1毫升70%乙醇洗涤一次。接下来,用1毫升适用于目标细胞的培养基冲洗培养皿。
将目标细胞接种到培养板中,然后将培养板放入细胞培养箱中。当细胞达到100%融合度时,在冰上一个微量离心管中加入114.5 µL新配制的大鼠尾胶原蛋白、16.6 µL 10× DMEM培养基以及33.1 µL添加了目标趋化因子的培养液,混合均匀。
用14微升碳酸氢钠中和胶原混合物,并在细胞上覆盖80微升凝胶。将胶原置于37摄氏度、5%二氧化碳的湿化培养箱中孵育30分钟,使其聚合。随后,在凝胶上层加入2毫升含2%血清的减量细胞培养基,小心地将细胞放回培养箱中,进行相应实验所需的时间,注意避免扰动胶原凝胶。
孵育结束后,轻轻移除培养基,并用一毫升磷酸盐缓冲液(PBS)小心冲洗凝胶。用一毫升4%多聚甲醛固定细胞15分钟,随后每次用一毫升PBS洗涤,共洗涤两次。然后在室温下用DAPI溶液对细胞染色20分钟,通过共聚焦显微镜观察体外三维胶原侵袭情况。
此处展示了乳腺癌细胞系及乳腺癌细胞融合产物在趋化因子作用下,于48小时迁移期内侵袭胶原凝胶的定量结果。值得注意的是,稀有的乳腺癌细胞融合产物在趋化因子刺激下向胶原凝胶内的迁移现象也被观察到。在整个胶原凝胶实验过程中,细胞保持良好的健康状态,这体现在凝胶聚合48小时后细胞数量稳定且形态正常。
这种垂直胶原凝胶实验还可通过Z轴系列成像来分析细胞侵袭过程中的迁移动力学,同时原位捕获迁移细胞的形态。在进行该操作时,需注意使用与显微镜兼容的培养皿。在完成该操作后,可引入其他变量,例如调整胶原蛋白的浓度强度或使用不同的趋化因子,以分别探究细胞外基质(ECM)相互作用对细胞侵袭的影响,或不同趋化因子对细胞侵袭的作用。
该技术问世后,为生物学和癌症领域的研究人员提供了筛选转移抑制药物以及在体内探索所有炎症反应中伤口愈合过程的新途径。观看本视频后,您应能够充分掌握如何在三维环境中评估稀有且敏感细胞的迁移与侵袭能力,同时避免因微环境干扰而对细胞造成形变。请务必注意,操作人源癌细胞、盐酸、多聚甲醛和DAPI时具有极高危险性,因此在进行本实验时,必须采取相应防护措施,例如使用二级生物安全柜和通风橱。
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本方案描述了一种倒置垂直侵袭实验,可在三维环境中定量评估稀有且敏感细胞的迁移与侵袭能力,同时保持细胞微环境的完整性。该方法在癌症研究中具有重要意义。
该检测方法使生物制药研发团队能够在生理相关的三维微环境中评估稀有且敏感细胞模型的侵袭潜能,同时不破坏细胞与细胞外基质(ECM)的天然相互作用。通过维持细胞原有的微环境,该方法有助于对与转移相关的靶点进行机制性风险评估,并提高早期靶点验证的预测可靠性。该技术解决了临床前筛选中的一个关键瓶颈,即传统检测方法会破坏微环境的完整性,从而增强了从发现到先导化合物优化阶段的转化连续性。
该检测方法适用于从早期靶点验证到先导化合物鉴定的整个发现流程,为与转移相关的研究项目提供了替代 Boyden 小室或 transwell 系统的、可保持微环境特征的方案。