Name: 双光子激光显微镜在细胞膜修复中的应用 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-01-02T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 35 s
Description: 学习使用双光子激光消融技术实时定量分析肌营养不良患者成纤维细胞的细胞膜修复能力。该方法通过FM4-64染料可视化膜修复过程，为研究膜再封闭动力学与基因突变关系提供重要工具。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

本工作由阿尔伯塔大学医学与牙科学院、Garrett Cumming 研究主席基金之友、HM Toupin 神经科学研究中心基金、加拿大肌肉萎缩症协会、加拿大创新基金会（CFI）、阿尔伯塔省先进教育与技术部（AET）、加拿大卫生研究院（CIHR）、Jesse's Journey — 基因与细胞治疗基金会、妇女与儿童健康研究所（WCHRI）以及阿尔伯塔创新健康解决方案（AIHS）提供支持。
我们感谢 Steven Laval 博士为我们提供了全长 dysferlin 质粒。我们还要感谢 Katsuya Miyake 博士提供的技术指导。

本研究中使用的人成纤维细胞已获得阿尔伯塔大学医学与牙科学院人类伦理委员会的批准。
1. 使用全长 DYSF 质粒转染细胞
<ol>
	<li>在含有 40 mL 生长培养基（36 mL 达尔伯克改良伊格尔培养基（DMEM）、4 mL 胎牛血清（FBS）和 20 µL 青霉素/链霉素（P/S））的 T225 培养瓶中培养成纤维细胞，置于 37°C 的 CO2 培养箱中。 
	注意：细胞应培养至约 70–80% 汇合度，不应让其完全汇合。</li>
	<li>为接种细胞做准备，用 40 mL 磷酸盐缓冲液（PBS）冲洗细胞两次，然后加入 5 mL 0.05% 胰蛋白酶以使细胞脱落。将细胞放回 37°C CO2 培养箱，孵育 5 分钟。
	<ol>
		<li>当细胞完全脱落时，加入 40 mL 生长培养基以终止胰蛋白酶反应。</li>
		<li>使用血细胞计数板或其他细胞计数装置对细胞进行计数。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>将浓度为 1×105 个细胞/mL 的 2 mL 细胞悬液接种至 35 mm 胶原包被的玻璃底培养皿中。在 37°C 的 CO2 培养箱中过夜孵育。 
	注意：次日细胞汇合度应约为 50–60%。</li>
	<li>移除生长培养基，并替换为 2 mL 无血清培养基（不含 FBS 的生长培养基）。</li>
	<li>使用脂质体转染法将全长 dysferlin 质粒转染至细胞中。
	<ol>
		<li>在 1.5 mL 离心管中准备 150 µL 无血清培养基（每块待转染的培养皿使用一管）。</li>
		<li>向每个含有无血清培养基的 1.5 mL 离心管中加入 3 µL 转染试剂。室温孵育至少 5 分钟。</li>
		<li>在另一个 1.5 mL 离心管中，加入 175 µL 无血清培养基和 3.5 µg 质粒 DNA。 
		注意：若需转染更多培养皿，按比例增加上述用量。</li>
		<li>将含有质粒 DNA 的 150 µL 培养基加入含有 150 µL 无血清培养基和转染试剂的离心管中。室温孵育 20 分钟。</li>
		<li>将 300 µL 含质粒和转染试剂的培养基均匀分布于培养皿中。在 37°C 的 CO2 培养箱中孵育 24 小时。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>更换为含血清的新鲜生长培养基，并在 37°C 的 CO2 培养箱中继续孵育 24 小时。</li>
</ol>
2. 双光子损伤实验的细胞准备
<ol>
	<li>用移液器吸去培养基，加入 1 mL Tyrode 溶液轻柔冲洗细胞一次，随后加入 1 mL 新鲜 Tyrode 溶液，并加入 1 µL 的 2.5 mM FM 4-64 染料。 
	注意：FM 4-64 染料的终浓度为 2.5 µM。</li>
	<li>若需在无钙环境中评估细胞膜修复能力，先用 1 mL PBS 冲洗细胞，然后加入含 1 mM EGTA 的 1 mL PBS。 
	注意：由于 PBS 会随时间推移导致细胞脱落，因此损伤实验应尽快完成。</li>
</ol>
3. 双光子激光损伤检测
<ol>
	<li>使用倒置共聚焦显微镜及配套程序软件，创建一个 0.2 µm × 2 µm 的目标区域，并将其放置在细胞膜边缘，使目标线与细胞膜走向重叠且垂直（图 2）。</li>
	<li>使用 543 nm 的 HeNe 激光激发 FM 染料信号，并将检测范围设定为 600–760 nm；使用 488 nm 的氩离子激光激发 GFP 信号（图 4），并将检测范围设定为 500–550 nm。
	<ol>
		<li>创建一个持续 5 分钟的时间序列，进行连续图像扫描，每 5 秒对细胞成像一次。</li>
		<li>为制造细胞膜损伤，使用设定为 820 nm 的双光子激光对细胞进行漂白处理，激光功率为 15%，迭代次数为 10 次，在时间序列开始后 25 秒进行漂白。</li>
	</ol>
	</li>
	<li>为定量分析 FM 4-64 染料的荧光强度，使用软件绘制一个 6 µm × 6 µm 的感兴趣区域（ROI），将其置于损伤部位附近且位于细胞内部（图 3）。 
	注意：通过软件中的&#34;Range Indicator&#34;功能避免采集像素过饱和区域——在此应用中，红色像素代表过饱和像素。将原始荧光值导出至电子表格中用于统计分析。</li>
	<li>通过减去背景值（膜损伤前时间点的平均荧光值），再将净增加量除以 t = 0 时的荧光值，计算每个时间点的相对荧光值（图 5、6）。</li>
</ol>

<ol><li>Cong, X., Hubmayr, R. D., Li, C., Zhao, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+membrane+wounding+and+repair+in+pulmonary+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Lung+Cell+Mol+Physiol%22%5BJournal%5D)">Plasma membrane wounding and repair in pulmonary diseases.</a> Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 312 (3), L371-L391 (2017).</li>
<li>Demonbreun, A. R., McNally, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+Membrane+Repair+in+Health+and+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Top+Membr%22%5BJournal%5D)">Plasma Membrane Repair in Health and Disease.</a> Curr Top Membr. 77, 67-96 (2016).</li>
<li>McNeil, P. L., Ito, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gastrointestinal+cell+plasma+membrane+wounding+and+resealing+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Gastrointestinal cell plasma membrane wounding and resealing in vivo.</a> Gastroenterology. 96 (5 Pt 1), 1238-1248 (1989).</li>
<li>McNeil, P. L., Kirchhausen, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+emergency+response+team+for+membrane+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">An emergency response team for membrane repair.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 6 (6), 499-505 (2005).</li>
<li>Cooper, S. T., McNeil, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+Repair%3A+Mechanisms+and+Pathophysiology%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Membrane Repair: Mechanisms and Pathophysiology.</a> Physiol Rev. 95 (4), 1205-1240 (2015).</li>
<li>Geeraerts, M. D., Ronveaux-Dupal, M. F., Lemasters, J. J., Herman, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytosolic+free+Ca2%2B+and+proteolysis+in+lethal+oxidative+injury+in+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Cytosolic free Ca2+ and proteolysis in lethal oxidative injury in endothelial cells.</a> Am J Physiol. 261 (5 Pt 1), C889-C896 (1991).</li>
<li>McDade, J. R., Archambeau, A., Michele, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+actin-cytoskeleton-dependent+recruitment+of+plasma+membrane-derived+dysferlin+at+wounds+is+critical+for+muscle+membrane+repair%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Rapid actin-cytoskeleton-dependent recruitment of plasma membrane-derived dysferlin at wounds is critical for muscle membrane repair.</a> FASEB J. 28 (8), 3660-3670 (2014).</li>
<li>Benninger, R. K., Piston, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+excitation+microscopy+for+the+study+of+living+cells+and+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Two-photon excitation microscopy for the study of living cells and tissues.</a> Curr Protoc Cell Biol. Chapter 4 (Unit 4), 11-24 (2013).</li>
<li>Demonbreun, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+actin-dependent+annexin+complex+mediates+plasma+membrane+repair+in+muscle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">An actin-dependent annexin complex mediates plasma membrane repair in muscle.</a> J Cell Biol. 213 (6), 705-718 (2016).</li>
<li>McNeil, P. L., Khakee, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruptions+of+muscle+fiber+plasma+membranes.+Role+in+exercise-induced+damage%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Pathol%22%5BJournal%5D)">Disruptions of muscle fiber plasma membranes. Role in exercise-induced damage.</a> Am J Pathol. 140 (5), 1097-1109 (1992).</li>
<li>Rodriguez, A., Webster, P., Ortego, J., Andrews, N. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lysosomes+behave+as+Ca2%2B-regulated+exocytic+vesicles+in+fibroblasts+and+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Lysosomes behave as Ca2+-regulated exocytic vesicles in fibroblasts and epithelial cells.</a> J Cell Biol. 137 (1), 93-104 (1997).</li>
<li>Reddy, A., Caler, E. V., Andrews, N. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+membrane+repair+is+mediated+by+Ca%282%2B%29-regulated+exocytosis+of+lysosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Plasma membrane repair is mediated by Ca(2+)-regulated exocytosis of lysosomes.</a> Cell. 106 (2), 157-169 (2001).</li>
<li>Bansal, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defective+membrane+repair+in+dysferlin-deficient+muscular+dystrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Defective membrane repair in dysferlin-deficient muscular dystrophy.</a> Nature. 423 (6936), 168-172 (2003).</li>
<li>Han, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dysferlin-mediated+membrane+repair+protects+the+heart+from+stress-induced+left+ventricular+injury%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Invest%22%5BJournal%5D)">Dysferlin-mediated membrane repair protects the heart from stress-induced left ventricular injury.</a> J Clin Invest. 117 (7), 1805-1813 (2007).</li>
<li>Huynh, C., Roth, D., Ward, D. M., Kaplan, J., Andrews, N. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defective+lysosomal+exocytosis+and+plasma+membrane+repair+in+Chediak-Higashi%2Fbeige+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Defective lysosomal exocytosis and plasma membrane repair in Chediak-Higashi/beige cells.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 101 (48), 16795-16800 (2004).</li>
<li>Corrotte, M., Castro-Gomes, T., Koushik, A. B., Andrews, N. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Approaches+for+plasma+membrane+wounding+and+assessment+of+lysosome-mediated+repair+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Approaches for plasma membrane wounding and assessment of lysosome-mediated repair responses.</a> Methods Cell Biol. 126, 139-158 (2015).</li>
<li>Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two-photon+laser+scanning+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Two-photon laser scanning fluorescence microscopy.</a> Science. 248 (4951), 73-76 (1990).</li>
<li>Jontes, J. D., Buchanan, J., Smith, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Growth+cone+and+dendrite+dynamics+in+zebrafish+embryos%3A+early+events+in+synaptogenesis+imaged+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Growth cone and dendrite dynamics in zebrafish embryos: early events in synaptogenesis imaged in vivo.</a> Nat Neurosci. 3 (3), 231-237 (2000).</li>
<li>Galbraith, J. A., Terasaki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlled+damage+in+thick+specimens+by+multiphoton+excitation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Biol+Cell%22%5BJournal%5D)">Controlled damage in thick specimens by multiphoton excitation.</a> Mol Biol Cell. 14 (5), 1808-1817 (2003).</li>
<li>McNeil, P. L., Miyake, K., Vogel, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endomembrane+requirement+for+cell+surface+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">The endomembrane requirement for cell surface repair.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (8), 4592-4597 (2003).</li>
<li>Weisleder, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+MG53-mediated+cell+membrane+repair+using+in+vivo+and+in+vitro+systems%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Visualization of MG53-mediated cell membrane repair using in vivo and in vitro systems.</a> J Vis Exp. (52), (2011).</li>
<li>Matsuda, C., Kiyosue, K., Nishino, I., Goto, Y., Hayashi, Y. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dysferlinopathy+Fibroblasts+Are+Defective+in+Plasma+Membrane+Repair%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Curr%22%5BJournal%5D)">Dysferlinopathy Fibroblasts Are Defective in Plasma Membrane Repair.</a> PLoS Curr. 7, (2015).</li>
<li>Philippi, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dysferlin-deficient+immortalized+human+myoblasts+and+myotubes+as+a+useful+tool+to+study+dysferlinopathy%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Curr%22%5BJournal%5D)">Dysferlin-deficient immortalized human myoblasts and myotubes as a useful tool to study dysferlinopathy.</a> PLoS Curr. 4, RRN1298(2012).</li>
<li>Cai, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MG53+nucleates+assembly+of+cell+membrane+repair+machinery%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">MG53 nucleates assembly of cell membrane repair machinery.</a> Nat Cell Biol. 11 (1), 56-64 (2009).</li>
<li>Swaggart, K. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Annexin+A6+modifies+muscular+dystrophy+by+mediating+sarcolemmal+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Annexin A6 modifies muscular dystrophy by mediating sarcolemmal repair.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 111 (16), 6004-6009 (2014).</li>
<li>Roostalu, U., Strahle, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+imaging+of+molecular+interactions+at+damaged+sarcolemma%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">In vivo imaging of molecular interactions at damaged sarcolemma.</a> Dev Cell. 22 (3), 515-529 (2012).</li>
<li>Azakir, B. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modular+dispensability+of+dysferlin+C2+domains+reveals+rational+design+for+mini-dysferlin+molecules%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Modular dispensability of dysferlin C2 domains reveals rational design for mini-dysferlin molecules.</a> J Biol Chem. 287 (33), 27629-27636 (2012).</li>
<li>Lee, J., Yokota, T. Ch 6. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLee%2C+J+%22Translational+Research+in+Muscular+Dystrophy%22">Translational Research in Muscular Dystrophy</a>. Takeda, S., Miyagoe-Suzuki, Y., Mori-Yoshimura, M. , Springer Japan. 87-102 (2016).</li>
<li>Barthelemy, F., Wein, N., Krahn, M., Levy, N., Bartoli, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Translational+research+and+therapeutic+perspectives+in+dysferlinopathies%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Med%22%5BJournal%5D)">Translational research and therapeutic perspectives in dysferlinopathies.</a> Mol Med. 17 (9-10), 875-882 (2011).</li>
</ol>

作者无任何利益冲突需要披露。

双光子激光损伤细胞膜是一种用于评估膜修复动态过程的精确且多功能的技术 体外本文介绍了一种利用双光子激光损伤检测法测定肌萎缩蛋白病患者细胞膜修复能力的实验方案。我们的结果显示，肌萎缩蛋白病患者的细胞在细胞膜修复方面存在缺陷，该结果与其他研究者的发现一致，进一步凸显了肌肉细胞与非肌肉细胞在细胞膜修复动力学方面的显著相似性。3,11,15,22我们还观察到，转染了含有全长dysferlin序列质粒的患者细胞，其膜修复缺陷表型得到了挽救，表明全长dysferlin质粒不仅可在肌肉细胞中，也可在非肌肉细胞类型中挽救表型27. 
综上所述，我们的结果进一步验证了双光子细胞膜损伤实验在评估细胞膜修复能力方面的可行性和可靠性，使其成为该领域的金标准方法 体外然而...

真核细胞的细胞膜由双层镶嵌蛋白质的磷脂构成，它界定了细胞的胞内/胞外环境，对维持细胞稳态和细胞存活至关重要。由机械或化学损伤引起的细胞膜损伤在多种哺乳动物细胞类型中十分常见，包括骨骼肌和心肌细胞、胃细胞以及肺细胞1,2,3,4。除了日常生理功能所导致的损伤外，细胞膜还可能受到环境因素、细菌毒素以及缺血再灌注的损害5。若细胞膜破裂后无法重新封闭，将导致细胞外Ca2+及其他潜在有毒的胞外成分不受调控地涌入细胞内，进而激活下游信号级联反应，最终迅速引发细胞死亡1,4,5,6。
迄今为止，已有多种关于细胞膜修复的模型被提出。不同的修复机制可能根据膜破裂的大小和性质被激活。例如，有研究认为细胞膜可能通过侧向流动或蛋白质堵塞来修复微小损伤（&#60;1 nm）。侧向融合模型提出，膜破裂可通过快速募集含dysferlin的膜结构进行侧向修复7，而蛋白质堵塞模型则认为微小穿孔是通过蛋白质聚集（主要是annexins）实现修复的8。相反，较大的膜损伤会触发依赖Ca2+、由dysferlin介导的囊泡融合，并形成修复性“斑块”。在修复斑块模型中，细胞内迅速流入的Ca2+会募集多种蛋白质（dysferlin、annexins、mitsugumin-53和EDH蛋白），这些蛋白在膜损伤部位与细胞内囊泡或溶酶体融合，共同形成一个复合物或“&#34;斑块&#34;）4,9,10,11,12。需要指出的是，这些模型并非互斥，可能协同作用以促进膜修复。若细胞膜损伤无法有效重新封闭，则与多种疾病状态相关，包括肌营养不良（dysferlinopathy——包括Miyoshi肌病、肢带型肌营养不良II型B以及胫前肌起始的远端肌病）13、心肌病14以及Chediak-Higashi综合征（CHS）15。
鉴于细胞膜完整性和重新封闭在健康与疾病中具有重要作用，深入理解细胞膜修复的潜在分子机制将有助于寻找新的治疗策略。因此，必须具备适当的实验技术来&#160;监测细胞膜修复的动力学过程，并评估其修复能力。多个 体外 已设计出多种用于模拟膜修复的方法。其中一种策略是通过机械损伤实现，可通过移液器、手术刀或剃刀刮擦细胞，或通过在细胞上滚动玻璃珠来完成。16然而，这种机械损伤会产生较大的病灶，并在培养物内部及不同培养物之间导致细胞损伤程度的高度变异。
另一种产生细胞膜损伤的方法是利用双光子显微镜进行激光消融。与采用单光子激发的传统激光共聚焦显微镜不同，双光子激光同时使用两个长波长、低能量的光子，以激发高能电子17。这种非线性过程仅在焦平面内发生激发，而不会沿整个光路发生激发17（图1）。这种减小的激发体积有助于在对活细胞成像时最小化光损伤18,19。因此，研究人员能够通过荧光染料在细胞膜破裂并随后重新封闭的过程中，实时观察荧光强度的变化，从而在细胞膜上产生精确的损伤并监测其重新封闭过程。
该方法已被多次用于研究膜损伤 体外 和 在体 以及在多种细胞类型中20,21例如，利用该技术评估了由肌 dysferlin 病患者来源的成纤维细胞和肌管细胞的膜修复缺陷22,23此外，还使用从小鼠分离的单个肌纤维来监测修复斑块的形成13,24,25荧光标记蛋白在单根肌纤维膜修复过程中的移动也可被观察到。9此外，可以在斑马鱼胚胎中实时观察双光子激光损伤后肌膜修复的过程。 体内26.
本文介绍了一种利用双光子激光损伤技术评估成纤维细胞细胞膜修复动态的方法，尽管该方法也可应用于多种其他细胞类型，以在体外定量分析细胞质膜的再封闭能力。in vitro。在该方法中，细胞与FM4-64共同孵育，这是一种亲脂性、不可透过细胞膜的染料，当其通过细胞膜损伤处进入细胞并结合胞质内带负电荷的磷脂时，会迅速产生荧光（图2&#38;3）。通过定量分析膜损伤附近区域的染料荧光强度，可监测细胞膜自我再封闭所需的时间。为展示该方法的应用价值，我们采用转染了GFP标记的全长dysferlin（DYSF）质粒的dysferlinopathy患者来源成纤维细胞，评估其对细胞膜修复功能的挽救效果。

<table><tbody><tr><td>杜尔贝科改良伊格尔培养基（DMEM）</td><td>Thermo Fisher</td><td>11320033</td><td></td></tr><tr><td>胎牛血清</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F1051</td><td></td></tr><tr><td>青霉素-链霉素（10,000 U/mL）</td><td>Thermo Fisher</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>胰蛋白酶-EDTA（0.05%），含酚红</td><td>Thermo Fisher</td><td>25300062</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s 磷酸盐缓冲液</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>35 mm 胶原包被的玻璃底培养皿</td><td>MatTek</td><td>P53GCOL-1.5-14-C</td><td></td></tr><tr><td>无血清培养基</td><td>Thermo Fisher</td><td>31985070</td><td></td></tr><tr><td>转染试剂</td><td>Thermo Fisher</td><td>15338100</td><td></td></tr><tr><td>FM 4-64 染料</td><td>Invitrogen</td><td>T13320</td><td></td></tr><tr><td>Tyrode&amp;rsquo;s 盐溶液</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T2397</td><td></td></tr><tr><td>共聚焦激光扫描显微镜</td><td>Carl Zeiss</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>Chameleon 双光子激光器</td><td>Coherent</td><td>NA</td><td></td></tr></tbody></table>

使用双光子激光显微镜的细胞膜修复检测方法

Cell Membrane Repair Assay Using a Two-photon Laser Microscope

多种病理生理损伤可导致细胞膜受损，当这些损伤与细胞膜修复或完整性的先天缺陷相结合时，可能引发疾病。因此，阐明细胞膜修复相关的分子机制，对于开发针对细胞膜动力学功能障碍相关疾病的新型治疗策略具有重要意义。许多 体外 和 在体内 旨在研究多种疾病背景下细胞膜修复机制的研究常采用双光子激光消融技术，作为评估实验处理后功能结果的标准方法。在该检测中，利用双光子激光对细胞膜造成损伤，导致细胞膜破裂并使荧光染料进入细胞内。随后可通过监测细胞内荧光强度的变化，定量分析细胞自我修复的能力。目前存在多种评估细胞膜损伤反应的替代方法，且双光子激光损伤技术本身也存在较大差异，因此建立一种统一、标准化的细胞损伤模型将有助于减少不同方法之间的变异。本文概述了一种用于评估细胞膜修复能力的简易双光子激光损伤实验方案 体外 在转染或未转染全长dysferlin质粒的健康人和dysferlinopathy患者成纤维细胞中。

对健康人成纤维细胞、未经处理的肌营养不良蛋白病患者成纤维细胞以及转染了含有全长dysferlin序列质粒的患者成纤维细胞进行双光子激光损伤，以实时评估细胞膜的修复能力。激光损伤后，健康人成纤维细胞表现出较低水平的FM 4-64荧光激活，而未经处理的患者成纤维细胞在损伤后显示出较高的相对荧光强度（图5&amp;6）。转染了全长dysferlin质粒的患者细胞其相对FM 4-64荧光强度较未经处理的患者对照组降低，且与健康对照组观察到的荧光值相当（图5&amp;6）。
<img alt="能级图、激发与发射、单光子（1P）与双光子（2P）过程。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56999/56999fig1.jpg" dat...

通过双光子激光对细胞膜造成损伤是评估细胞膜修复能力的常用方法，可应用于多种细胞类型。本文介绍了一种实验方案 体外 活体成像双光子激光消融后肌萎缩蛋白病患者细胞的膜修复过程

多种病理生理损伤可导致细胞膜受损，当这些损伤与细胞膜修复或完整性的先天缺陷相结合时，可……

本实验的总体目标是定量评估肌营养不良症患者细胞的细胞膜修复能力。该方法有助于回答肌营养不良研究中的关键问题，例如特定基因突变与细胞膜重封动力学之间的关系。该技术的主要优势在于能够对活细胞中的细胞膜重封动力学进行实时定量分析。首先，在含有40毫升培养基的T225培养瓶中，于37摄氏度的二氧化碳培养箱中培养成纤维细胞。当细胞培养至70%至80%融合度时，每次用40毫升磷酸盐缓冲液（PBS）洗涤细胞两次，随后加入5毫升0.05%胰蛋白酶，在37摄氏度下作用5分钟。当细胞脱落后，加入40毫升新鲜培养基终止反应，并将2毫升浓度为每毫升10万个细胞的悬液接种至35毫米胶原包被的玻璃底培养皿中，在37摄氏度和5%二氧化碳条件下过夜培养。每孔转染培养物加入150微升新鲜的无血清培养基至一个1.5毫升离心管中。然后向每根离心管中加入3微升转染试剂，在室温下孵育至少5分钟。在孵育期间，为每块培养板另取一个1.5毫升离心管，加入175微升含血清培养基和3.5微克dysferlin质粒DNA。然后将每块培养板对应的150微升质粒DNA溶液与150微升转染试剂混合于一个新离心管中，室温孵育20分钟。次日早晨，将生长培养基更换为2毫升含血清培养基。孵育结束后，将全部300微升质粒溶液均匀分布至每块培养板中，并将培养板置于37摄氏度的二氧化碳培养箱中继续孵育24小时。第二天，将质粒上清液更换为新鲜培养基，将培养板放回培养箱中继续培养24小时。为进行双光子损伤实验，用1毫升Tyrode溶液冲洗转染后的细胞培养物一次，然后向细胞中加入1毫升新鲜Tyrode溶液，并添加1微升浓度为2.5毫摩尔的FM4-64染料。接下来，使用倒置共聚焦显微镜，在显微镜软件中创建一个0.2 × 2微米的靶区，并将靶区置于细胞膜边缘，使靶区线段与细胞膜重叠且垂直。选择543纳米的氦氖激光激发FM染料信号，选择488纳米的氩激光激发GFP信号，并分别将检测范围设置为600至760纳米和500至550纳米。然后创建一个持续五分钟的连续图像扫描时间序列。为制造细胞膜损伤，使用双光子激光器在时间序列开始后25秒，以820纳米波长、15%激光功率进行10次扫描以漂白细胞。为定量FM4-64染料的荧光信号，使用软件绘制一个6微米×6微米的兴趣区域，并将该区域放置在细胞内损伤位置附近。随后减去背景值，并将净荧光增加量除以零时刻的荧光值，以计算每个时间点的相对荧光值。健康的成纤维细胞在激光损伤后表现出较低水平的FM4-64荧光激活，而未经处理的患者成纤维细胞在损伤后则表现出较高的相对荧光强度。转染全长dysferlin质粒的患者细胞与未经处理的患者对照组相比，其相对FM4-64荧光强度降低，且与健康对照组观察到的荧光值相似。在进行该操作时，需注意细胞在缓冲液中会逐渐死亡，因此操作应迅速，并定期更换新鲜细胞。观看本视频后，您应能充分理解如何利用双光子显微镜再生细胞膜损伤，以及如何实时定量分析细胞膜的修复过程。

cell-membrane-repair-assay-using-a-two-photon-laser-microscope

Research

科研

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学与感染

双光子激光显微镜在细胞膜修复中的应用

本文描述了用于在整体动物和细胞水平上可视化MG53介导的细胞膜修复动态过程的实验方案。这些方法可用于研究质膜再封闭的细胞生物学及再生医学。...

利用MG53介导的细胞膜修复可视化 体内 和 体外 系统

本视频展示了一种用于研究哺乳动物细胞质膜修复效率的实验方法。将细胞暴露于一种细菌性成孔毒素中，该毒素可在细胞膜上形成孔道。在细胞外钙离子存在的情况下，孔道导致钙离子内流，从而诱导细胞膜修复事件的发生。通过使用DNA结合性染料碘化丙啶来评估膜修复效率，该染料仅能进入未完成膜修复的细胞。...

一种基于荧光的体外检测方法用于测量细胞质膜修复效率

对暴露于亲脂性染料FM1-43的细胞进行活体成像，可精确测定孔形成毒素从质膜上被清除的动力学过程。该方法是一种灵敏的检测手段，可用于评估Ca2+、鞘磷脂酶及其他因素在质膜修复过程中的作用需求。...

活体成像实验用于评估Ca2+和鞘磷脂酶在孔形成毒素损伤修复中的作用

修复受损细胞的过程涉及特定蛋白质和亚细胞区室向细胞膜损伤部位的转运。本方案描述了监测这些过程的实验方法。...

成像细胞膜损伤及参与修复的亚细胞过程

激光常用于研究细胞对DNA损伤的响应。然而，激光产生的损伤位点之间的间距、发生频率及其与复制叉的碰撞情况很少被表征。本文中，我们描述了一种利用激光定点诱导链间交联的方法，可实现对这些参数的测定。...

单分子分析激光定位补骨脂素加合物

本实验方案的目的是描述如何利用激光显微照射诱导不同类型的DNA损伤，包括相对简单的链断裂和复杂损伤，以研究DNA损伤信号传导及修复因子在损伤位点的聚集。 在体.

激光微辐照技术用于研究 体内 细胞对简单和复杂DNA损伤的反应

共聚焦荧光显微镜与激光显微照射技术可用于在细胞核内特定区域诱导DNA损伤，并监测DNA修复蛋白的响应。该技术极大地推动了我们对损伤识别、信号传导及蛋白募集过程的理解。本文展示了如何利用这些技术研究单链和双链断裂的修复过程。...

激光微照射技术在哺乳动物细胞单链与双链断裂修复研究中的应用

本文介绍一种基于荧光的高通量检测方法，通过活细胞的荧光定量和成像分析来测定质膜修复效率。该方法可用于筛选调控哺乳动物细胞质膜修复的药物或靶基因。...

哺乳动物细胞质膜修复效率的高通量测定

AlPcS2a介导的染料辅助激光失活（CALI）是一种用于研究活细胞内细胞内囊泡（IVs）时空损伤的有力工具。...

一种研究细胞内囊泡破裂功能的光动力学方法

本方案描述了支撑脂双层的形成，以及细胞骨架丝和马达蛋白的添加，用于通过荧光显微镜研究重建的膜锚定细胞骨架网络的动力学。...

在支撑脂双层上重建膜锚定的最小肌动蛋白皮层

热等离子体穿孔法结合了共聚焦显微镜、光镊技术和金纳米颗粒，用于研究细胞和巨大单层囊泡中细胞质膜修复过程中的蛋白质响应。该技术可实现快速且局部的膜穿孔，有助于鉴定关键蛋白质及其在复杂的细胞质膜修复机制中的功能作用。...

一种用于研究活细胞和模型膜中质膜修复的热等离子体方法

学习使用双光子激光消融技术实时定量分析肌营养不良患者成纤维细胞的细胞膜修复能力。该方法通过FM4-64染料可视化膜修复过程，为研究膜再封闭动力学与基因突变关系提供重要工具。

使用双光子激光显微镜的细胞膜修复检测方法

探索更多视频