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DOI: 10.3791/57467-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
在这里, 我们提出了一个协议, 以净化外来体从血浆和血清与减少共同纯化的非 exosomal 血液蛋白。优化的协议包括超滤、蛋白酶处理和尺寸排除色谱。增强纯化外来体的好处下游分析, 包括更准确的定量的囊泡和蛋白质组特征。
该程序的总体目标是从血液中纯化囊泡,同时减少可能干扰下游分析(包括纳米颗粒追踪和蛋白质组学)的共纯化蛋白质和复合物。这种方法可以帮助回答关键问题,例如与健康状态相比,疾病状态下血清或血浆囊泡的蛋白质组学变化是什么。该技术的主要优点是提高了囊泡计数的准确性。
在去除丰富的非囊泡污染物时,我们增加了对低丰度蛋白质和疾病潜在生物标志物的鉴定。该方法的含义延伸到发现新的诊断生物标志物。它能够更准确地测定复杂基质(如血液)中细胞外囊泡的蛋白质组学组成。
一般来说,刚接触囊泡纯化的人会很挣扎,因为有很多已发表的技术。下游蛋白质组学分析的可重复性受丰度血清蛋白共纯化的影响。将试管置于非摇动条件下,置于 4 摄氏度冰箱中过夜,以平衡血清或血浆样品。
第二天,使用 1, 000 μL 移液管将 250 μL 样品分装到微量离心管中。将样品在 4 摄氏度下以 18, 000 倍 G 离心 30 分钟。使用 200 μL 移液器,去除 200 μL 澄清的上清液,并将其添加到新的微量离心管中。
转移上清液时避免任何沉淀材料。使用制造商的方案通过 BCA 测定定量样品的蛋白质含量。要进行检测,请将样品稀释在 1 至 50 的 X 磷酸盐缓冲盐水中。
测试每个样品一式两份。首先向锥形管中加入相应量的蛋白酶 K,在 PBS 中制备浓度为 50 μg/mL 的蛋白酶 K 溶液。然后加入缓冲液,在室温下涡旋 3 次,每次 30 秒。
接下来,将 50 微升蛋白酶 K 溶液添加到 10 毫克样品等分试样中,并使用 200 微升移液管上下移液轻轻混匀。将样品在 37 摄氏度下在水浴中孵育 30 分钟,然后将试管放在浮管架上。为防止潜在的泄漏,请避免将管子完全浸入水浴中。
孵育后,将样品和支架转移到 60 摄氏度的水浴中 10 分钟,以灭活蛋白酶 K.接下来,在使用前用 PBS 冲洗含有 100 kdalton 分子量截止过滤器的超滤装置。使用 1, 000 微升移液器向过滤器中加入 500 微升 PBS。将装置以 3, 700 倍 G 离心 5 分钟后,丢弃所有剩余的截留物和洗脱液。
通过添加 PBS 将样品体积增加到 500 微升。然后将样品移液到预冲洗的超滤装置中。在固定角度的台式离心机中以 3, 700 倍 G 和 4 摄氏度离心超滤装置,直到样品减少到 50 微升的体积。
接下来,将 500 微升 PBS 直接添加到滤膜上。并上下移液五次,然后像以前一样再次离心。将最后的 50 μL 截留物转移到新的微量离心管中。
用 200 微升 PBS 冲洗滤膜,上下移液 10 次。并将洗涤液转移到试管中。然后,将过滤器支架置于新试管中的相反位置。
以 2, 000 倍 G 的浓度运行反向离心回收 5 分钟,以从膜中取回剩余样品。将色谱柱放在尺寸合适的架子中。使用 1, 000 微升移液管加入 850 微升 SEC 浆液,其中珠子的截留分子量为 700 道尔顿。
打开色谱柱底部的盖子,让液体排入废液容器中 5 分钟。排干后,加入 10 μL PBS 洗涤树脂。等待 20 分钟,让清洗液从色谱柱中排出。
将经浓缩蛋白酶 K 处理的样品放入 15 mL 锥形管中。并通过用血清移液管添加 PBS 将样品体积增加到 5 毫升。摇动 1 分钟,轻轻混合试管。
然后,用血清移液管将样品缓慢地涂到准备好的柱上。将流出液收集到新的 15 mL 锥形管中。再次将收集的材料移液到树脂上,以去除低于 700 道尔顿的任何残留材料,将流出物收集在新的 15 mL 锥形管中。
每次加入 1 毫升 PBS,洗涤树脂两次。将流出液收集在试管中。最终总体积约为 7 毫升。
像以前一样,用 3 千道尔顿分子量过滤器冲洗超滤装置。在摆动桶转子中以 3, 700 倍 G 和 4 摄氏度离心。Buffer 将通过过滤器,可以丢弃。
浓缩的外泌体将保留在过滤器上方。离心样品,直到过滤器上方的体积减少到 200 μL。使用制造商的方案通过 BCA 测定定量样品的蛋白质含量。
将 5 微克纯化的外泌体添加到 1 毫升 PBS 中。并以中低速涡旋 15 秒。将样品放入 1 毫升一次性注射器中。
如果可用,将注射器设置在自动注射泵组中,以每分钟 30 μL 的速率注入稀释的外泌体样品。定义分析脚本,以运行三个技术重复,每次重复至少 30 秒,每个重复使用恒定流。对于分析,请将捕获阈值设置为 5。
最后,按照文本方案中的说明确定可溶性蛋白还原。显示了纯化血清囊泡的纳米颗粒跟踪分析的代表性结果。正如预期的那样,囊泡大小约为 100 纳米。
此处显示的是考马斯染色的蛋白质凝胶,比较了粗血清、SEC 前后馏分,显示蛋白和其他非囊泡污染物的减少。蛋白质印迹显示蛋白酶 K 处理和纯化后 CD63 的保留情况,CD63 是一种标志性的外泌体蛋白。蛋白酶 K 步骤旨在消化可溶性蛋白质。
CD63 是一种跨膜蛋白,在确定的浓度和孵育时间下不易受蛋白酶 K 的影响。在这里,蛋白质印迹显示了蛋白的消耗,蛋白是血液中最丰富的蛋白质,也是纯化后常见的共纯化蛋白。一旦掌握,这项技术可以在 6 小时内完成。
看完这个视频,你应该对如何使用离心机超滤、蛋白酶消化、体积排阻层析从生物体液中获得囊泡有了很好的了解。在色谱和纳米颗粒示踪之前,通过 BCA 或等效技术进行蛋白质定量非常重要。如果蛋白质浓度超过本协议中记录的浓度,结果会有所不同。
不要忘记,使用生物液体可能非常危险,并且在执行此程序时应始终采取预防措施,例如佩戴个人防护设备,包括手套、实验室外套和安全眼镜。在此程序之后,可以执行其他方法,如液相色谱质谱,以确定纯化的囊泡中所含的确切蛋白质。虽然这种方法可以深入了解血管的组成,但它也可以应用于其他样品类型,例如尿液、CSF 或细胞培养上清液。
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