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CRISPR/Cas9 核糖核酸蛋白介导的精确基因编辑通过管电穿孔
CRISPR/Cas9 核糖核酸蛋白介导的精确基因编辑通过管电穿孔
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JoVE Journal Genetics
CRISPR/Cas9 Ribonucleoprotein-mediated Precise Gene Editing by Tube Electroporation

CRISPR/Cas9 核糖核酸蛋白介导的精确基因编辑通过管电穿孔

Full Text
14,784 Views
08:31 min
June 20, 2019

DOI: 10.3791/59512-v

Linyuan Ma*1, Lydia Jang*1, Jian Chen2, Jun Song1, Dongshan Yang1, Jifeng Zhang1, Y. Eugene Chen1, Jie Xu1

1Center for Advanced Models for Translational Sciences and Therapeutics, Department of Internal Medicine,University of Michigan Medical Center, 2Celetrix LLC

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

这里介绍的是使用管电穿孔在哺乳动物细胞中高效CRISPR/Cas9核苷酸介导基因编辑的协议。

安全有效地将Cas9元素传递到细胞中对于基于基因编辑的疗法至关重要。我们在这里展示的协议显示了朝这个方向提供的新方法。该协议采用一种新的电穿孔方法,称为管电穿孔。

这导致高细胞存活率以及基因编辑率。管电穿孔法是病毒、药物,记者无浓缩。这些在临床应用中是首选,因此使用基于基因编辑的疗法。

该方法普遍适用于许多细胞类型。例如,人类造血细胞、原生T细胞和其他细胞都可以使用我们的方法进行编辑。这种管电穿孔方法使用薄管。

如果您是第一次使用,您可以尝试GP表达质粒DNA。演示这个程序的将是我实验室的博士后马林元。要开始此过程,请从美国类型文化收藏获取人类 iPSC。

在37摄氏度的细胞培养箱中培养人工细胞外基质上的 iPSC,按照供应商的指示培养5%的二氧化碳。转染前两小时,用含有蛋白激酶抑制剂Y-27632的10微摩尔罗相关盘绕处理 iPSCs。转染时,将具有细胞分离溶液的 iPSC 分离到 37 摄氏度的单细胞中,使用 5 分钟。

然后计算单元格数。要建立兔子成纤维细胞培养,从兔子耳朵的尖端获得耳皮活检。用含有5%青霉素链霉素的DPBS冲洗组织两次。

将冲洗过的耳组织转移到新的六厘米组织培养盘中,将组织切成小块,每个大小各一毫米。加入几滴FBS,防止组织干燥。在此之后,将切碎的组织在10厘米的组织培养盘中,加入10毫升的培养基。

在37摄氏度下用5%的二氧化碳孵育细胞3至5天。电镀后三到五天使用 Trypsin-EDTA 在 37 摄氏度下消化细胞两分钟,然后计算细胞数量。在设计和合成gRNA和供体寡分后,准备前面描述的细胞。

在20微升电穿孔缓冲液中再填充2万至3万个细胞。小心地上下移液,产生单个细胞悬浮液。对于Cas9 RNP转染,在室温下将两微克Cas9 NLS蛋白与0.67微克的gRNA预混合10至15分钟。

将形成的 RNP 复合物与两微克的 ssODN 与细胞轻轻地混合。使用电穿孔套件中的通用移液器尖端,将细胞混合物转移到 20 微升电穿孔管中。将电穿孔管放入电穿孔器的插槽中,然后按压完成。

电穿孔器显示屏上的脉冲报告指示了成功的电穿孔循环。电穿孔后,将人类 iPS 细胞转移到一毫升预加热的 Y-27632,其中包含前面所述的培养介质。然后在12井细胞培养板的一个井中将重新暂停的细胞进行盘。

继续培养板材,确保每天改变文化媒介。Y-27632在电穿孔后24小时从人类 iPSC 培养介质中去除。电穿孔72小时后,收获细胞。

对于兔子成纤维细胞,使用 Trypsin-EDTA 消化培养板中的细胞。对于人类 iPSC 使用细胞分离解决方案来消化培养板中的细胞。以 1000 rpm 的速度短暂离心样品 5 分钟,然后用 350 毫升的解解缓冲液重新向电池重新暂停。

在55摄氏度下孵育过夜。第二天使用标准程序提取含有苯酚-氯仿的基因组DNA。使用凝胶提取试剂盒或直接使用 PCR SV 迷你试剂盒从 PCR 产品中放大 100 到 200 个 DNA 片段碱基对。

要通过细菌菌落测序确定基因编辑效率,请使用 TOPO-TA 克隆试剂盒将纯化 PCR 产品放入 PCR4-TOPO 载体中。使用 TOPO-TA 克隆试剂盒提供的通用测序底转器随机拾取细菌克隆并测序插入物。要通过深度测序确定基因编辑效率,请将以前获得的纯化 PCR 产品发送给 DNA 测序核心的 CRISPR 安培康测序。

在这项研究中,一种管电穿孔法被有效地用于向兔子和人类细胞提供CRISPR/Cas9 RNP和sSODN,从而产生健壮、精确的基因编辑。首先,在IL2RG基因中产生C231Y和Q235X突变,在兔成纤维细胞的SPR基因中产生R150G突变。此处显示了由细菌 TA 克隆确定的特定 sgRNA 设计和基因编辑速率。

IL2RG C231位点,在28个克隆中,一个携带精确的C231Y突变,四个携带插入或删除突变,其余23个是野生型的。在IL2RG Q235位点,在27个测序的克隆中,两个携带精确的Q235X突变,三个携带一个内德尔突变,其余为野生型。在SPG R150位点,在20个克隆中,有5个带有精确的R150基因突变,10个携带内德尔突变,其余为野生型。

然后,管电穿孔用于将Cas9 RNP和sSODN传递到人类 iPSC,并针对EGFR、Mybpc3和HBB基因中临床相关位点。在EGFR位点,15.68%的等位基因携带精确点突变,22.75%携带内德尔突变,其余61.57%为野生型。在 Mybpc3 位点, 37.92% 携带精确的四基对 TGAA 删除, 2.24% 携带内德尔突变, 其余 59.84% 为野生类型。

在HBB位点,11.5%携带精确的E6V突变,35.4%携带内德尔突变,其余65%为野生型。Cas9 RNP 是 Cas9 的首选形式,因为它与质粒 DNA 相比体积更小。管电穿孔是提供Cas9 RNP的有效方法。

我们特别感兴趣的是利用Cas9 RNP的管电穿孔在原发T细胞中用于汽车T应用。

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遗传学 问题 148 基因编辑 CRISPR/Cas9 核糖核蛋白 管电穿孔 寡核苷酸 哺乳动物细胞

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