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DOI: 10.3791/61152-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
在这里,我们描述了一种使用基于 piggyBac的供体质粒和Cas9切口酶突变体在人类多能干细胞中进行无缝基因编辑的详细方法。将两点突变引入人胚胎干细胞(hESCs)肝细胞核因子4α(HNF4α)位点的外显子8。
在人类多能干细胞中编辑基因具有挑战性。该协议提供了使用配对 Cas-90 案例与靶向载体结合在这些细胞中进行基因组编辑的详细程序。它可靠且易于遵循。
该方案的主要优点是它是无缝的基因组编辑。两步选择有助于增加靶向细胞,并使基因分型筛选更加高效。在 mTeSR1 培养基中,将人多能干细胞维持在重组层粘连蛋白 21 编码表面上。
细胞应在 1 比 3 分流比后 72 小时达到 70% 至 85% 汇合度。在转染当天,用 300 μL 层粘连蛋白 521 溶液包被 24 孔板的足够孔,并在 37 摄氏度下孵育板至少两个小时。孵育后,轻轻去除包被溶液,并立即向每个孔中加入 300 μL 新鲜 mTeSR1 培养基,并补充有 10 μmolar ROCK 抑制剂。
然后将板放回培养箱中。从培养箱中取出原液人多能干细胞。取出用过的培养基,用 1 毫升无菌 DPBS 洗涤细胞一次。
然后向每个孔中加入 1 毫升温和的细胞解离试剂,并在 37 摄氏度下孵育 6 至 8 分钟以解离细胞。轻轻敲击板以确保细胞可以轻松分离。然后使用 P1000 吸头通过上下移液来提起细胞。
加入 2 毫升含 ROCK 抑制剂的 mTeSR1 培养基以终止解离。将悬浮液充分混合,然后转移到 50 毫升试管中。将细胞以 200 G 离心 3 分钟。
然后去除上清液,将细胞重悬于含 ROCK 抑制剂的 2 mL mTeSR1 培养基中。使用血细胞计数器和台盼蓝对细胞进行计数。对于每个核转染反应,将 800, 000 至 100 万个细胞转移到 1.5 mL 试管中,并以 200 G 离心 3 分钟。
然后小心吸出上清液。将 3 μg 配对的 Cas-9n 单向导 RNA 表达质粒和 5 μg 靶向载体质粒混合到来自人干细胞核转染试剂盒的 100 μL 混合核转染溶液中。还准备 GFP 对照质粒混合物。
用 DNA 混合物重悬细胞,并将其转移到电穿孔比色皿中,确保避免气泡。使用人多能干细胞的优化条件,用核转染装置对细胞进行电穿孔。立即向电穿孔细胞中加入 500 微升新鲜温热的 mTeSR1 培养基,其中补充有 10 微摩尔的 ROCK 抑制剂。
然后将混合物转移到先前制备的 24 孔板的两个孔中。将板放入提供 37% 二氧化碳的 5 摄氏度培养箱中,以使细胞恢复。12 至 16 小时后更换细胞维持培养基,如果细胞建立细胞间接触,则停用 ROCK 抑制剂。
24 至 48 小时后,通过检查对照细胞中的 GFP 表达来检查成核转染效率。在核酸转染后 48 小时,通过在 mTeSR1 培养基中补充 1 μg/mL 嘌呤霉素来开始选择细胞。72 小时后,向培养基中补充 0.5 μg/mL 嘌呤霉素。
如果细胞汇合度低于 30%,则还要用 10 微摩尔 ROCK 抑制剂补充培养基。核转染后 4 至 6 天,将嘌呤霉素抗性细胞以每孔 0.8 个细胞的浓度传代至 10 至 15 个 96 孔板中。确保用 ROCK 抑制剂和嘌呤霉素补充培养基。
将细胞在 37 摄氏度和 10% 二氧化碳下维持 10 至 12 天,以形成单细胞衍生菌落。播种后 7 天加满培养基。标记含有单个菌落的孔,并用新鲜的 mTeSR1 培养基替换培养基,该培养基含有 0.5 μg/mL 嘌呤霉素,但不含 ROCK 抑制剂。
将细胞在 37 摄氏度和 5% 二氧化碳下再培养两天。然后更换含有未分化菌落的孔的培养基。轻轻刮掉菌落,将细胞悬液从一个菌落转移到单独的 96 孔板上的两个新孔中。
一个用于基因分型,一个用于维护。一旦基因分型细胞的汇合度达到 50% 或更高,倾倒用过的培养基并用 DPBS 洗涤细胞一次。用 Bradley 裂解缓冲液裂解细胞,并从每个孔中分离基因组 DNA。
在进行 3 次引物连接 PCR 并对产物进行测序后,保留具有正确基因型的菌落并丢弃其余菌落。在连续嘌呤霉素选择下扩增正确的菌落,并在尽可能早的传代时将其冷冻。该方案用于将两点突变引入肝细胞核因子 4 α 基因的 Exon8 中。
采用基于三引物的 PCR 方法筛选正确靶向的细胞,并进行 Sanger 测序以确认 PCR 结果。去除选择盒后,再次对修饰的区域进行测序,以确认所需点突变的正确引入。选择具有正确基因型的菌落,并在进一步分析之前对细胞进行表征。
编辑后的细胞具有与亲本细胞相同的形态,并表达具有代表性的人多能干细胞标志物,包括转录因子 Nanog 和 Oct4,以及细胞表面标志物 SSEA-4 和 TRA-160。尝试此程序时,请务必记住在选择 puromycin 后的前 24 小时内检查细胞汇合度。必须用 ROCK 抑制剂补充中位数。
如果细胞汇合度低于 30%,则保持细胞继续运行。一旦建立了基因组编辑的多能干细胞系,它们就可以用于研究基因功能或定向分化。这项技术为研究人员研究不同的问题铺平了道路,例如基因的特定功能或遗传疾病的靶向基因校正。
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