2021年2月28日
携带BRCA1基因突变的个体患癌风险更高,因此有必要对BRCA1变异体的功能进行准确评估。本文介绍了一种利用CRISPR介导的胞嘧啶碱基编辑器在活细胞中实现靶向C:G到T:A转换的功能评估BRCA1变异体的实验方案。
通过利用CRISPR介导的胞嘧啶碱基编辑器高效诱导点突变,可以鉴定对疾病预防和诊断具有重要意义的BRCA1变异体的功能。该技术的优势在于能够直接对内源性表达的BRCA1进行突变,从而克服了使用外源性表达BRCA1进行功能评估的局限性。BRCA1功能缺失突变的鉴定可用于预测由BRCA1突变引发的相关癌症的发病风险,例如乳腺癌、卵巢癌、前列腺癌和胰腺癌。
它还可用于通过搜索必需基因来发现潜在的药物靶点,这些基因在功能缺失后其存活能力会降低。首先,从美国国家生物技术信息中心(NCBI)的GenBank中获取BRCA1基因组序列,并在目标突变位点周围搜索含有原间隔序列邻近基序(NGGNCCN)的20个碱基对长的靶序列。目标突变应位于向导RNA靶序列的PAM远端4至8个核苷酸范围内。
每条向导RNA订购两条免费的寡核苷酸。对于正向寡核苷酸,在向导序列的5'端添加CACCG;对于反向寡核苷酸,在5'端添加AAC,在3'端添加C。收到寡核苷酸后,将其用蒸馏水重悬,最终浓度为100微摩尔(µM)。
将两条互补的寡核苷酸与T4连接缓冲液混合,使其终浓度为10微摩尔,加热至95摄氏度持续5分钟,然后冷却至室温以完成退火。使用限制性内切酶BsaI在37摄氏度下消化pRG2质粒1小时,随后将消化产物在1%琼脂糖凝胶上电泳,并纯化适当大小的条带。根据制造商说明书,使用购买的DNA连接酶将退火后的寡核苷酸双链与载体DNA连接,并将连接产物转化至DH5-alpha感受态细胞中。
将转化子接种至含有100微克/毫升氨苄青霉素的琼脂平板上,于37摄氏度培养过夜。从多个转化子中提取质粒DNA,并使用在U6启动子处结合的引物通过Sanger测序分析其向导RNA序列。转染前一天,将每孔5×10⁵个HAP1-BE3细胞接种于24孔板中,培养至转染时细胞融合度达到70%至80%。
根据制造商的说明书,使用购买的转染试剂转染靶向 BRCA1 的向导 RNA。使用 1 微克靶向 BRCA1 的向导 RNA 在 BRCA1 靶位点诱导 CG 转换为 TA,随后将细胞在 37 摄氏度培养,并每三至四天传代一次。转染后第 3、10 和 24 天收集细胞沉淀,以分析碱基编辑效率。
使用基因组DNA纯化试剂盒提取基因组DNA。设计第一轮PCR引物以扩增BRCA1靶位点。尽管对第一轮PCR产物的大小没有限制,但建议产物大小小于1 kb,以高效扩增特定区域。
根据二代测序(NGS)读长,设计位于第一轮PCR产物内部的第二轮PCR引物,并考虑扩增片段的大小。为了添加NGS分析所需的序列,需在第二轮PCR引物的5'端加入额外序列。使用高保真聚合酶,对从三个时间点获得的基因组DNA中的BRCA1靶位点进行扩增。
第一次PCR反应使用100纳克基因组DNA进行15个循环的扩增。第二次PCR反应取1微升第一次PCR产物进行20个循环的扩增。取5微升第二次PCR产物在2%琼脂糖凝胶上电泳,确认片段大小。
然后使用文稿中列出的引物,通过扩增第二次PCR产物来连接NGS分析所需的序列。使用不同的引物组分别扩增每个样本。每次扩增使用一微升第二次PCR产物,采用高保真聚合酶进行最多30个循环的扩增。
取5 µL PCR产物在2%琼脂糖凝胶上电泳,以确认扩增片段大小,并使用 commercial PCR cleanup kit 纯化扩增产物。将各样本等量混合,构建NGS文库。使用分光光度计对NGS文库进行定量,并用重悬缓冲液或pH 8.5的10 mmol/L Tris-HCl将其稀释至1 nmol/L的浓度。
准备100微升文库,稀释至适当的上样浓度。作为对照,将PhiX与稀释后的样本混合。将文库上样至芯片,并按照制造商的说明书运行高通量测序(NGS)。
每个目标扩增子需获得超过 10,000 条读长,以进行碱基编辑效率的深入分析。本方案用于对基于 CRISPR 的胞嘧啶碱基编辑器生成的内源性 BRCA1 变体进行功能评估。将 CAS-9 和向导 RNA 转染至 HAP1 细胞系以破坏 BRCA1,并分析突变频率。
HAP1 细胞系中的突变频率随时间显著降低,表明 BRCA1 是这些细胞存活所必需的基因。为了研究 CG 到 TA 的替换变异是否影响 BRCA1 的功能,将能够诱导每种突变的 DNA 质粒和编码向导 RNA 转染至 HAP1-BE3 细胞系,并分析了替换频率。
致病性变异3598C到T(可引发无义突变)的相对替换频率显著降低,而良性变异4527C到T(同样可引发无义突变)的替换频率则随时间保持相对稳定。研究发现,这三种变异的核苷酸替换频率均呈时间依赖性下降。
由于需要获得较高的初始突变频率,才能清晰地观察到随着时间推移细胞活力的变化,因此首要任务是建立优化的转染条件。该方法可用于验证其他未知的遗传变异,例如BRCA VUS。该方法可能为患者来源的未知变异的致病性及其治疗提供线索。
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本研究介绍了一种利用CRISPR介导的胞嘧啶碱基编辑器评估BRCA1变异体功能的实验方案。该方法可在活细胞中实现靶向突变,对于理解与BRCA1突变相关的癌症风险具有重要意义。
CRISPR介导的胞嘧啶碱基编辑技术能够直接对内源性BRCA1变异体进行功能评估,克服了基于过表达检测方法在变异体分类中的关键局限性。该方法可提高对变异体致病性预测的可信度,支持在靶点验证和早期发现阶段进行基于风险评估的决策。该技术策略上有助于优化肿瘤学研发管线中具有意义未明变异基因的项目筛选。
该CRISPR碱基编辑方案融合了靶点验证与早期临床前研究,能够无缝衔接从变异发现到功能表征及风险评估的全过程。