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Methodenartikel

Isolierung von Maus-Megakaryozyten-Vorläufern

7.1K Aufrufe

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DOI:

10.3791/62498

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20. Mai 2021

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In diesem Artikel

Erratum-Hinweis

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Zusammenfassung

Diese Methode beschreibt die durch Durchflusszytometrie gereinigte Reinigung von MEP und MKp von Mäuse femuren, Tibias und Beckenknochen.

Zusammenfassung

Knochenmark-Megakaryozyten sind große polyploide Zellen, die die Produktion von Blutplättchen sicherstellen. Sie entstehen aus hämatopoetischen Stammzellen durch Megakaryopoese. Die Endstadien dieses Prozesses sind komplex und umfassen klassischerweise die bipotenten Megakaryozyten-Erythrozyten-Vorläufer (MEP) und die unipotenten Megakaryozyten-Vorläufer (MKp). Diese Populationen gehen der Bildung von echten Megakaryozyten voraus, und als solche könnte ihre Isolierung und Charakterisierung eine robuste und unvoreingenommene Analyse der Megakaryozytenbildung ermöglichen. Dieses Protokoll stellt detailliert das Verfahren zur Sammlung hämatopoetischer Zellen aus dem Knochenmark der Maus, die Anreicherung hämatopoetischer Vorläufer durch magnetische Depletion und schließlich eine Zellsortierungsstrategie vor, die hochreine MEP- und MKp-Populationen ergibt. Zuerst werden Knochenmarkzellen aus dem Femur, der Tibia und auch dem Beckenkamm, einem Knochen, der eine hohe Anzahl hämatopoetischer Vorläufer enthält, gesammelt. Die Verwendung von Beckenkammknochen erhöht drastisch die Gesamtzellzahl pro Maus und trägt somit zu einer ethischeren Verwendung von Tieren bei. Eine magnetische Linienverarmung wurde unter Verwendung von 450 nm magnetischen Kügelchen optimiert, was eine sehr effiziente Zellsortierung mittels Durchflusszytometrie ermöglicht. Schließlich präsentiert das Protokoll die Markierungs- und Gating-Strategie für die Sortierung der beiden hochreinen Megakaryozyten-Vorläuferpopulationen: MEP (Lin-Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9dim) und MKp (Lin- Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9hell ). Diese Technik ist einfach zu implementieren und liefert genügend zelluläres Material, um i) molekulare Charakterisierung für ein tieferes Wissen über ihre Identität und Biologie, ii) In-vitro-Differenzierungsassays, die ein besseres Verständnis der Mechanismen der Reifung von Megakaryozyten liefern, oder iii) In-vitro-Modelle der Interaktion mit ihrer Mikroumgebung durchzuführen.

Einleitung

Blutplättchen werden von Megakaryozyten produziert. Diese großen polyploiden Zellen befinden sich im Knochenmark und stammen wie alle Blutzellen aus hämatopoetischen Stammzellen (HSC)1. Der klassische Weg der Produktion von Megakaryozyten im Knochenmark stammt von HSC und beinhaltet die Erzeugung verschiedener Vorläufer, die ihr Differenzierungspotenzial progressiv einschränken2. Der erste Vorläufer, der das Engagement für die megakaryozytäre Linie unterzeichnet, ist der Megakaryocyte-Erythrocyte Progenitor (MEP), ein bipotenter Vorläufer, der sowohl erythroide Zellen als auch Megakaryozyten produzieren kann

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Protokoll

Die Protokolle mit Tieren wurden in Übereinstimmung mit dem CREMEAS-Ausschuss für die Ethik von Tierversuchen der Universität Straßburg (Comité Régional d'Ethique en Matière d'Expérimentation Animale Strasbourg) durchgeführt. Genehmigungsnummer: E67-482-10).

1. Sammlung von Mausknochen

  1. Opfern Sie das Tier in Übereinstimmung mit den institutionellen Richtlinien.
    HINWEIS: Die in diesem Manuskript präsentierten Daten stammen von C57Bl/6-Mäusen im Alter von 8 bis 12 Wochen. Die Anzahl der erhaltenen Zellen und die Häufigkeit der zitierten Populationen können je nach Alter und Mausstamm variieren.
  2. Besprühen Sie den Körper ....

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Ergebnisse

Die phänotypische Analyse der als MEP und MKp identifizierten Zellen wurde mittels Durchflusszytometrie durchgeführt. Die Zellen wurden mit fluoreszenzkonjugierten Antikörpern gegen CD41a und CD42c, klassische Marker der megakaryozytären und Thrombozytenlinien, markiert. Beide Marker wurden von den Zellen der MKp-Population exprimiert, während diese Marker an der Oberfläche der Zellen der MEP-Population noch nicht nachgewiesen sind (Abbildung 4Ai,4Aii). Polyploidie ist ein K.......

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Diskussion

Die in diesem Artikel beschriebene Methode ermöglicht die Extraktion und Reinigung von Maus-MEP und MKp. Ein wichtiger Parameter bei der Optimierung des Protokolls war es, eine ausreichende Anzahl von Zellen zu erhalten, die mit den meisten molekularen und zellulären Assays kompatibel sind. Die allgemeine Praxis der Mausknochenentnahme für die hämatopoetische Zellextraktion besteht normalerweise darin, sowohl die Femuren als auch die Tibien jeder Maus zu ernten. Der Beckenknochen, eine weitere Quelle für hämatopoetisches.......

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Offenlegungen

Die Autoren erklären keine konkurrierenden finanziellen Interessen.

Danksagungen

Die Autoren danken Monique Freund, Catherine Ziessel und Ketty für die technische Unterstützung. Diese Arbeit wurde von ARMESA (Association de Recherche et Développement en Médecine et Santé Publique) und von Grant ANR-17-CE14-0001-01 an Henri.de la unterstützt. Salle.

....

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
21-Gauge-NadelnBD Microlance301155
7AADSigma-AldrichA9400
Antikörper Gr-1-biotineBioscience13-5931-85Magnetischer Abbau
Antikörper B220-biotineBioscience13-0452-85
Magnetischer Abbau Antikörper Mac-1-biotineBioscience13-0112-85Magnetisch Depletion
Antikörper CD3e-biotineBioscience13-0031-85Magnetische Depletion
Antikörper CD4-biotineBioscience13-9766-82Magnetische Depletion
Antikörper CD5-biotineBioscience13-0051-85Magnetische Depletion
Antikörper CD8a-biotineBioscience13-0081-85Magnetische Depletion
TER119-biotineBioscience13-5921-85Magnetischer Abbau
Antikörper CD127-biotineBioscience13-1271-85Magnetischer Abbau
Antikörper CD45-FITCeBioscience11-0451-85Zellsortierung
Antikörper CD45-PEeBioscience12-0451-83Zellsortierung
Antikörper TER119-APCeBioscience17-5921-83Sortierung der Zellen
Antikörper CD45-PECy7eBioscience25-0451-82Zellsortierung
Antikörper CD45-biotineBioscience13-0451-85Zellsortierung
Antikörper CD9-FITCeBioscience11-0091-82Zellsortierung
Antikörper  c-kit-APCeBioscience17-1171-83Zellsortierung
Antikörper Sca-1-PEeBioscience12-5981-83Zellsortierung
Antikörper CD16/32-PEeBioscience12-0161-83Zellsortierung
Antikörper CD150-PECy7eBioscience25-1502-82Zellsortierung
Kulturmedium StemSpan-SFEMStemcell technologies#09650
DissektionskissenFisher Scientific10452395
DPBSLife Technologies14190-094
EthanolvWR Chemie83813.360
PinzetteEuronexiaP-120-AS
GlaspasteurpipetteDutscher42011
Magnet :  DynaMag-5Thermo Fisher Scientific12303D
Magnetische Kügelchen: Dynabeads Schafe Anti-RatteIgG Thermo Fisher Scientific11035
MegacultStemcell technologies#04970
MethoCult SF M3436Stemcell technologies#03436
Neugeborenen-KälberserumDutscher50750-500
Lyse roter Blutkörperchen LösungBD Bioscience555899
SkalpelleFisher Scientific12308009
SchereEuronexiaC-165-ASB
Sterile 1 mL SpritzenBD Bioscience303172
Sterile 15 ml RöhrchenSarstedt62.554.502
Sterile 5 mL Polypropylen RöhrchenFalcon352063
Sterile 5-ml-Polystyrol-RöhrchenFalcon352054
Sterile Röhrchen mit 70 μm; m cell SiebkappeFalcon352235
Sterile PetrischaleFalcon353003
Streptavidin-APC-Cy7BD Biosciences554063Zellsortierung
RöhrchenrolleBenchmark ScientificR3005
Antikörper

Referenzen

  1. Kaushansky, K. Historical review: megakaryopoiesis and thrombopoiesis. Blood. 111 (3), 981-986 (2008).
  2. Akashi, K., Traver, D., Miyamoto, T., Weissman, I. L. A clonogenic common myeloid progenitor that gives rise to all myeloid lineages. Nature. 404 (6774), 193-197 (....

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Nachdrucke und Genehmigungen

Erratum


Formal Correction: Erratum: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors
Posted by JoVE Editors on 7/28/2021. Citeable Link.

An erratum was issued for: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors. A figure was updated.

Figure 2 was updated from:

Hematopoietic cell separation diagram with flow cytometry result, showing Lin+ and Lin- fractions.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

to:

Hematopoietic cell separation process diagram with antibody labeling and magnet use, flow cytometry results.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

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