Name: Hochauflösendes Video Tracking von Locomotion in Adult Drosophila melanogaster (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-02-20T00:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 8 s
Description: Erfahren Sie hochauflösendes Video-Tracking von Lokomotion bei adulten Drosophila melanogaster ohne Anästhesie. Diese Methode ermöglicht die präzise Quantifizierung von Fliegenbewegungen für die Verhaltensforschung.

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Diese Arbeit wurde vom National Institutes of Health Grants R01 GM54408 verliehen LC Griffith unterstützt. Wir möchten Fred Wolf für seine Hilfe bei der Gestaltung unserer quadratischen Kammer und der Einrichtung unseres Tests, Frank Mello an der Brandeis University Werkstatt für den Aufbau unserer Kammer, und Dan Valente und Tim Lebestky für hilfreiche Gespräche über Analyse Fragen danken.

Teil 1: Fütterung und Management von Fliegen <ol><li> Fliegen sollte in Flaschen mit hefefrei gängigen Medien kultiviert werden. Sie benötigen eine große Zahl von Fliegen, so kreuzt müssen entsprechend eingestellt werden. Dunkel-Zyklus bei 25 º C: Fliegen sollte in einem 12-Stunden-Licht angebaut werden </li><li> Fliegen sollte bald nach eclosion gesammelt werden (1-3 Tage). Fliegen können mit in dieser Phase mit einem Kohlendioxid-Diffusor gearbeitet werden, und sollte in Reagenzgläser mit autoklaviert oder Hefe-freien Medien sortiert werden. Wir verwenden nur bei Männern, gespeichert 10 bis ein Reagenzglas. </li><li> Planen Sie mindestens ein oder zwei Tage nach der Verwendung von Kohlendioxid, bevor Sie die Verhaltensexperimente. Wir betreiben fliegt in unsere Verhaltensweisen Assay 3-5 Tage nach ECLOSION. </li><li> Assays sollte immer in der gleichen 2-3 Stunden Zeitfenster pro Tag durchgeführt werden, um zirkadianen Rhythmus zu vermeiden. </li></ol> Teil 2: Einrichten der Tracking-System in einer kontrollierten Umgebung <ol><li> Alle Experimente werden in einer Umgebung, Zimmer, die eine konstante Temperatur von 25 º C mit 70% Luftfeuchtigkeit gewahrt bleibt. </li><li> Suspend einer digitalen Videokamera über das Gebiet zu erfassen (Kamera nach unten) sein. Da unser Tracking-Software ist hingegen basiert, auszusetzen wir die Kamera über einen Licht-Box. Die Kamera zeichnet Videos direkt auf einem Dell-Computer über eine FireWire-Verbindung. Wir verwenden ein Sharp digitale Videokamera, bis zu einem Dell-Computer mit Windows Moviemaker angeschlossen (Vista-Version) für Video-Akquisition. </li><li> Air Impulse in diesem Protokoll wird verabreicht werden, so eine Quelle für den Luftstrom vorhanden sein muss in den Raum. Mit Gummi-Schlauch, verbinden die Luft Quelle zu einem Kohlefilter für Luftreinhaltung. </li><li> Mit mehr Gummischlauch, verbinden Sie die andere Seite der Aktivkohlefilter in einen Erlenmeyerkolben über eine hohle Gummistopfen, und füllen Sie die Flasche mit etwa einem halben Zentimeter Wasser. Dies wird zu befeuchten die Luft. </li><li> Der Kolben sollte auch eine Waffe, die zu einer Y-förmigen Ventil über Gummischlauch verbindet. </li><li> Ein Zweig der Y-Ventil sollte ein Durchflussmesser angeschlossen werden. Der andere Zweig sollte die Luft auf den Platz Fortbewegung Kammer zu liefern. </li></ol> Teil 3: Delivering fliegt in die Fortbewegung Kammer <ol><li> Der Platz Fortbewegung Kammer ist auf die Gestaltung von Wolf et al. 2002 1, mit der Zugabe von kleinen Tropfen Schalen, um die Fliegen vom Fliegen in der Kammer zu verhindern. Die Kammer sollte auseinander genommen werden, und alle Komponenten gründlich abgewischt werden mit 70% Ethanol und getrocknet, bevor verwenden. </li><li> Anästhesie unmittelbar vor der Durchführung einer Verhaltens-Test kann potenziell kompromisslose Leistung. Um dies zu vermeiden, sind Fliegen sanft in die Kammer mit einem Trichter mit einem kleinen Auslauf klopfte. Um eine Steckdose mit der richtigen Größe, legen einen blauen Pipettenspitze (für P1000) bis zum Ende eines Trichters. Mit einer Schere abzuschneiden ganz am Ende der Pipettenspitze, um die Öffnung groß genug für eine Fliege passieren. </li><li> Die Spitze unserer Kammer ist ein kleines Stück Plexiglas mittels Schrauben an den Rändern befestigt. Wenn die Schrauben entfernt werden, können die Löcher eingesetzt, um Fliegen in die Kammer zu liefern. Positionieren Sie den Plexiglas oben, so dass das Schraubenloch direkt sitzt über der inneren Kammer statt, wo eine Schraube in der Regel sitzt. Nehmen Sie ein Reagenzglas mit dem Fliegen und legen Sie sie kopfüber in den Trichter, die dann in das Schraubenloch platziert werden soll. </li><li> Bewegen Sie den Trichter, da dies zu verletzen oder Schäden die Fliegen. Stattdessen sanft bang die ganze Kammer, Trichter und alle, bis alle Fliegen in der Kammer sind. Das Klopfen sollte auf einem Mousepad getan werden, um den Schock dieses Klopfen zu absorbieren. Wenn Fliegen drin sind, entfernen Sie den Trichter, und eine neue Position der Plexiglas-top über die Schraube Betten. Dann wieder schrauben Sie die Plexiglas oben einrasten. </li></ol> Teil 4: Ausführen des Bewegungsapparates Assay <ol><li> Sobald die Fliegen richtig geladen sind, sollen sie in die Kammer für 30 Minuten akklimatisieren. Diese Eingewöhnungszeit sollte in der kontrollierten Umgebung (25 º C, 70% Luftfeuchtigkeit) zu nehmen, und der Kammer sollte auf der Oberseite des Licht-Box platziert werden (das sollte eingeschaltet sein). Schalten Sie anderen Raum Lichter aus. </li><li> Nach der Eingewöhnungszeit, schalten Sie das Y-Ventil in den Luftstrom so, daß die Luft nur auf das Messgerät fließen. Schalten Sie die Luft, und Rampe die Luft bis die gewünschte Geschwindigkeit (4,0-6,0 L / min). Wir verwenden in der Regel 5,0 bis 5,5 L / min, aber jeder Geschwindigkeit in diesem Bereich arbeiten werden. </li><li> Sobald die gewünschte Geschwindigkeit erreicht ist, schalten Sie das Y-Ventil, so dass die Luft strömt um die Fortbewegung Kammer. Die Zeit dieser Luft Puls für 15 Sekunden, und dann plötzlich wieder die Luft aus. Wie Sie die Luft auszuschalten, schalten Sie die Kamera im Aufnahme-Modus. (Dieser Teil braucht Übung, um alle auf einmal zu tun). </li><li> Beenden Sie die Aufnahme nach der gewünschten Zeit und SAVE. Wir erfassen 30 Sekunden Studien bei 10 Frames pro Sekunde (mindestens 8 Versuche pro Genotyp). </li></ol> Teil 5: Analyse von Videos <ol><li> Wir nutzen dieDynamic Image Analysis System (DIAS) Software 3.2 für Motion-Tracking-2. Um diese Software nutzen, haben wir zuerst konvertieren unsere Videos in eine AVI-Datei-Format mit Quicktime 7.5.5. </li><li> So verfolgen die Fliegen an Kontrast basiert, verwenden wir die &quot;Autotrace von Threshold&quot;-Funktion. Wir verwenden dann die &quot;Make-Pfad von Trace&quot;-Funktion zu digitalisieren diese Spuren. </li><li> Zur Ausgabe der momentanen Geschwindigkeiten der einzelnen fliegen, benutzen wir die &quot;Compute-Parameter&quot;-Funktion, um eine Datenbank-Datei zu erzeugen (DIAS-spezifisch). Mit dieser Funktion haben wir auch glatt die Daten mit Hilfe eines &quot;5,15,60,15,5&quot; Tukey Smoothing-Fenster. </li><li> Sobald diese Informationen als eine Datenbank-Datei ausgegeben wird, kann es in Microsoft Excel geöffnet werden. Wir verwenden ein Matlab-Skript, um die momentane Geschwindigkeit in Excel erstellen und berechnen zusätzliche Parameter, die zum Verständnis Bewegungsdynamik und Kampf-Struktur. </li></ol> Repräsentative Ergebnisse: Abbildung 1 zeigt repräsentative Spuren von Wildtyp Canton S Organismen (Abbildung 1, links) und fliegt null für die dCASK Gen, das durch die Kreuzung zweier großer Überlappung Deletionen (Df (3R) X307 und Df (3R) X313) (Abbildung 1 erzeugt wurden, , rechts). dCASK null Fliegen haben bisher gezeigt, dass Bewegungsapparat Probleme mit Buridans Paradigm 3 haben und in unser Paradigma, im Vergleich zu Canton S, zeigen sie sich sehr Fortbewegung zurück. Wir laufen immer Wildtyp Organismen ersten stellen Sie sicher, dass die Bedingungen und das Verhalten im normalen Bereich an einem bestimmten Tag werden. Wir haben Abweichungen von Standard-Antworten in weniger als 5% des Testens Tagen beobachtet. Diese Unterschiede können in der Regel zu Problemen mit den Parametern unserer kontrollierten Umgebung zugeschrieben werden. <img src="/files/ftp_upload/1096/figure_1.png" alt="" width="600" height="298" /> Abbildung 1. DIAS-generated Spuren sowohl Wildtyp Canton S Fliegen (oben, links) und Bewegungsapparat-defizienten dCASK Null fliegt von überlappenden Deletionen (oben rechts) erzeugt. Die Spuren zu repräsentieren, was in den aufgezeichneten Videos gesehen. Beide Bilder kontraindiziert Spuren von 8 bis 10 fliegt für 30 Sekunden in der Video-Tracking-Assay nach einer Luft-Puls. <img src="/files/ftp_upload/1096/figure_2.png" alt="" width="600" height="438" /> Abbildung 2. Wildtyp-Fliegen wurden in den Bewegungsapparat Assay (oben) nach einem Luft-Impuls (lila Balken) und ohne Luft-Impuls (blau) ausgeführt werden. In alle Parameter von der Analyse-Programm berechnet, gab es keine signifikanten Unterschiede zwischen den beiden Bedingungen (bestimmt mit zweiseitigen Student t-Test). Dies zeigt, dass im Anschluss an eine Luft-Impuls, Fliegen fortbewegen normalerweise in unserer Einrichtung.

<ol><li>Wolf, F. W., Rodan, A. R., Tsai, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-Resolution+Analysis+of+Ethanol-Induced+Locomotor+Stimulation+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">High-Resolution Analysis of Ethanol-Induced Locomotor Stimulation in Drosophila.</a> J Neurosci. 22 (24), 11035-11044 (2002).</li>
<li>Soll, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+use+of+computers+in+understanding+how+animal+cells+crawl%5BTitle%5D)+AND+%22International+review+of+cytology%22%5BJournal%5D)">The use of computers in understanding how animal cells crawl.</a> International review of cytology. 163, 43-104 (1995).</li>
<li>Martin, J. R., Ollo, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+Drosophila+Ca2%2B%2Fcalmodulin-dependent+protein+kinase+%28Caki%29+is+localized+in+the+central+nervous+system+and+implicated+in+walking+speed%5BTitle%5D)+AND+%22The+EMBO+journal%22%5BJournal%5D)">A new Drosophila Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase (Caki) is localized in the central nervous system and implicated in walking speed.</a> The EMBO journal. 15 (8), 1865-1876 (1996).</li>
<li>Levine, J. D., Funes, P., Dowse, H. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resetting+the+Circadian+Clock+by+Social+Experience+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Resetting the Circadian Clock by Social Experience in Drosophila melanogaster.</a> Science. 298, 2010-2012 (2002).</li>
</ol>

In unserer Einrichtung, ein mäßig starkes Luftimpuls vorübergehend stoppt fliegen Bewegung. Wenn die Luft Impuls endet, werden die Fliegen von diesem stationären Zustand und Fortbewegung in der Regel frei, wie in Abbildung 2 dargestellt. Da diese Luft-Impuls effektiv synchronisiert Fortbewegung der Bevölkerung, verwenden wir sie in den Prozess zu beginnen, so dass wir auch studieren können, das Einsetzen der Bewegung nach einem Momentum-breaking Reiz. Der Test kann jedoch ohne Luftimpuls getan werden, da Bewegungsappara...

<table><tbody><tr><td>Quadratische Kammer</td><td>Werkzeug</td><td>Werkstatt</td><td>N/V</td><td>Konstruktion nach Wolf &lt;em&gt;et al.&lt;/em&gt; 2002&lt;sup&gt;1&lt;/sup&gt;</td></tr><tr><td>Digitalkamera</td><td>Kamera</td><td>Sharp</td><td>ViewcamZ VL-23</td><td></td></tr><tr><td>Durchflussmesser</td><td>Werkzeug</td><td>Cole-Parmer</td><td>SY-32003-12</td><td></td></tr><tr><td>Leuchtkasten</td><td>Werkzeug</td><td>DNASTAR</td><td>Seq-Easy</td><td></td></tr><tr><td>Aktivkohlefilter</td><td>Werkzeug</td><td>Fisher Scientific</td><td>09-744-37</td><td></td></tr><tr><td>DIAS 3.2</td><td>Software</td><td>Soll technologies</td><td>N/V</td><td>www.solltechnologies.com</td></tr></tbody></table>

hochauflösendes video tracking von locomotion in adult drosophila melanogaster

High-Resolution Video Tracking of Locomotion in Adult Drosophila Melanogaster

Fliegen ein wichtiges Modell für die Untersuchung komplexer Verhalten aufgrund der Vielzahl von genetischen Werkzeugen zur Verfügung, um Forscher in diesem Bereich. Studieren Bewegungsapparates Verhalten in<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Beruht auf der Fähigkeit der Lage sein, Veränderungen in der Bewegung während oder in Reaktion auf eine bestimmte Aufgabe zu quantifizieren. Aus diesem Grund ist eine hochauflösende Video-Tracking-System, wie die, die wir beschreiben, in diesem Papier, ein wertvolles Werkzeug zur Messung der Fortbewegung in Echtzeit. Unser Protokoll beinhaltet die Verwendung einer ersten Luftimpuls, um die Fliegen Impulse, die von 1 / 32 Drehzeit in einer quadratischen Kammer folgte brechen. Ein Tracking-Programm wird dann verwendet, um die momentane Geschwindigkeit der einzelnen fliegen innerhalb der Kammer in 10 ms-Schritten berechnen. Analyse-Software kompiliert dann diese Daten und gibt eine Vielzahl von Parametern wie Durchschnittsgeschwindigkeit, Höchstgeschwindigkeit, die Zeit in Bewegung verbracht, Beschleunigung, etc. Dieses Protokoll wird richtige Fütterung und Management von Fliegen für Verhaltenstherapie Aufgaben zu besprechen, die Handhabung Fliegen ohne Betäubung oder Immobilisierung , die Einrichtung einer kontrollierten Umgebung, und läuft der Test von Anfang bis Ende.

Die Untersuchung der komplexen Bewegungsapparat Verhalten in<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Ist abhängig von der Fähigkeit, Veränderungen in einem bestimmten Fliege Bewegung zu quantifizieren. Dieser Artikel zeigt, wie Sie dies tun mit einer hochauflösenden Tracking-System.

Hochauflösendes Video Tracking von Locomotion in Adult Drosophila melanogaster

Fliegen stellen ein wichtiges Modell zur Untersuchung komplexen Verhaltens dar, da Forschern auf diesem Gebiet eine Vielzahl genetischer Werkzeuge zur Verfügung steht. Die Untersuchung ...

Bei dem Video-Tracking-Assay müssen Fliegen ohne Verwendung von Anästhetika in eine quadratische Beobachtungskammer geladen werden. Dazu muss ein kleiner Trichter mit den Schraublöchern der Kammer ausgerichtet werden, um die Fliegen in die Kammer zu befördern. Mithilfe dieses Trichters werden anschließend die Löcher der Kammer mit Schrauben verschlossen, und ein Luftimpuls wird über die Lüftungsöffnungen zugeführt, um die Fortbewegung auszulösen.Eine über der Kammer angebrachte Videokamera erfasst diese Fortbewegung und sendet die Aufnahmen an einen Computer, wo die Bewegungsbahnen der Fliegen verfolgt und analysiert werden. Hallo, ich bin Justin Slawson vom Griffith-Labor der Biologieabteilung der Brandeis University. Heute zeigen wir Ihnen ein Verfahren zur hochauflösenden Videoverfolgung von Fortbewegungsbewegungen.Wir werden dieses Verfahren in unserem Labor verwenden, um das Bewegungsverhalten erwachsener Fliegen zu untersuchen. Beginnen wir also. Um mit dem Experiment zu beginnen, ziehen Sie Fliegen in Flaschen mit standardisiertem, hefe-freiem Medium heran.Dieses Protokoll erfordert eine große Anzahl von Fliegen, daher müssen die Kreuzungen entsprechend angelegt werden. Die Fliegen sollten bei einem 12-Stunden-Licht-Dunkel-Wechselzyklus bei 25 Grad Celsius gezüchtet werden. Sammeln Sie die Fliegen ein bis drei Tage nach dem Schlüpfen und verwenden Sie einen Kohlendioxid-Diffusor, um die Fliegen in Reagenzgläser mit kochsalzfreiem Medium zu sortieren; sortieren Sie jeweils 10 Männchen pro Reagenzglas.Warten Sie mindestens einen oder zwei Tage nach der Verwendung von Kohlendioxid, bevor Sie die Verhaltensversuche durchführen. Sobald die Fliegen gesammelt und sortiert wurden, können sie im Videotrackingsystem verwendet werden. Die Videotrackings-Experimente werden in einem Umweltkammer durchgeführt, die eine konstante Temperatur von 25 Grad Celsius bei 70 % Luftfeuchtigkeit aufrechterhält.Um Fliegen in Bewegung aufzunehmen, muss eine digitale Videokamera über dem Aufnahmebereich angebracht werden. Mit der Kamera nach unten gerichtet befestigen wir sie über einer Leuchtkiste, da unsere Verfolgungssoftware auf Kontrast basiert. Anschließend verbinden Sie die Kamera mithilfe eines Firewire-Kabels mit einem Computer. Wir verwenden das Softwareprogramm Windows Movie Maker, um das Video direkt auf dem Computer aufzuzeichnen. Da in diesem Protokoll Luftstöße verabreicht werden, muss eine Luftstromquelle im Raum vorhanden sein. Ein Gummischlauch verbindet die Luftquelle mit einem Kohlefilter zur Luftfiltration.Ein Gummischlauch verbindet auch die andere Seite des Kohlefilters über einen hohlen Gummistopfen mit einem Erlenmeyerkolben. Der Kolben sollte mit etwa einem halben Zoll Wasser gefüllt sein, um die Luft zu befeuchten. Der Kolben sollte außerdem einen kleinen Seitenhals besitzen, der über einen weiteren Gummischlauch mit einem Y-förmigen Ventil verbunden werden sollte.Ein Zweig des Y-Ventils ist mit einem Durchflussmesser verbunden, während der andere Zweig mit der quadratischen Bewegungskammer verbunden ist. Diese quadratische Bewegungskammer basiert auf dem Design von Wolf et al. 2002, mit der Ergänzung kleiner Tropfwanne, um zu verhindern, dass die Fliegen innerhalb der Kammer fliegen, bevor die Kammer an das Trackingsystem angeschlossen wird. Denken Sie daran, 70 % Ethanol zu verwenden, um alle Kamerakomponenten zu sterilisieren. Lassen Sie die Komponenten vor der Verwendung trocknen.Nun, da das Verfolgungssystem bereit ist, können wir die Fliegen in die Bewegungskammer bringen, um sie in die Kammer einzubringen. Entfernen Sie die Schrauben, die normalerweise die kleine Plexiglasscheibe der Kammer fixieren. Positionieren Sie dann die Plexiglasscheibe so, dass das Schraubenloch direkt über der inneren Kammer sitzt.Betäubung der Fliegen unmittelbar vor der Durchführung. Ein Verhaltensassay kann die Leistung möglicherweise beeinträchtigen. Um eine Betäubung zu vermeiden, verwenden Sie einen Trichter mit kleiner Öffnung, um die Fliegen sanft in die Kammer zu befördern.Um einen Trichter mit einer kleinen Öffnung herzustellen, befestigen Sie eine blaue P-1000-Pipettenspitze an der Spitze des Trichters. Schneiden Sie mit einer Schere das äußerste Ende der Pipettenspitze ab, um die Öffnung so groß zu machen, dass eine Fliege hindurchpassen kann. Nehmen Sie danach ein Reagenzglas mit den Fliegen und stellen Sie es verkehrt herum über den Trichter.Bringen Sie dann das Ende des Trichters in das Schraubloch ein. Bewegen Sie den Trichter nicht, da dies die Fliegen verletzen oder beschädigen könnte. Schlagen Sie stattdessen vorsichtig die gesamte Kammer samt Trichter, bis sich alle Fliegen in der Kammer befinden.Verwenden Sie eine Mausunterlage, um den Aufprall dieses Schlagens zu dämpfen. Wenn sich die Fliegen im Inneren befinden, entfernen Sie den Trichter und setzen Sie die Plexiglaskappe erneut über die Schraubbetten, dann schrauben Sie die Plexiglaskappe fest. Sobald die Fliegen ordnungsgemäß geladen sind, stellen Sie die Kammer auf eine Lichtbox.Schalten Sie die anderen Lichter im Versuchsraum aus und lassen Sie die Fliegen 30 Minuten lang in der Kammer akklimatisieren. Nach der 30-minütigen Akklimatisierungsphase führen Sie den Lokomotor-Assay durch, um den Assay zu starten. Schalten Sie das Y-Ventil im Luftstromsystem so um, dass die Luft nur zum Durchflussmesser geleitet wird, schalten Sie die Luft ein und erhöhen Sie die Luftgeschwindigkeit auf die gewünschte Stufe.Jede Geschwindigkeit zwischen vier und sechs Litern pro Minute ist geeignet. Üblicherweise verwenden wir fünf bis fünfeinhalb Liter pro Minute. Sobald die gewünschte Luftgeschwindigkeit erreicht ist, schalten Sie das Y-Ventil um, sodass die Luft in die Bewegungskammer strömt.Dieses Luftstoßimpuls für 15 Sekunden zeitlich festlegen und dann abrupt die Luft abschalten, während Sie die Kamera in den Aufnahmemodus schalten. Dieser Schritt erfordert Übung, um alles gleichzeitig ausführen zu können.Wir nehmen 32 Versuche mit 10 Bildern pro Sekunde auf und mindestens acht Versuche pro Genotyp. Beenden Sie die Aufnahme, wenn der Versuch abgeschlossen ist, und vergewissern Sie sich, dass der Film gespeichert wird, sobald alle Versuche abgeschlossen sind. Danach können wir mit der Videoanalyse fortfahren, um die Bewegungsverfolgung in den Videos des Lokomotionsassays durchzuführen.Wir verwenden das System der dynamischen Bildanalyse, um diese Software nutzen zu können. Konvertieren Sie die Videos mit QuickTime 7.5 0.5 in das AVI-Dateiformat. Verwenden Sie anschließend die Funktion „Automatisches Verfolgen nach Schwellenwert“, um die Fliegen basierend auf dem Kontrast zu verfolgen, gefolgt von der Funktion „Pfad aus Spur erstellen“, um die Daten zu digitalisieren.Diese Spuren wenden dann die Berechnungsfunktion für Parameter an, um die momentanen Geschwindigkeiten jeder Fliege in eine Datenbankdatei auszugeben. Diese Funktion ermöglicht auch eine Glättung der Daten. Wir verwenden ein Glättungsfenster mit der Abfolge 5 15 60 15 5.Sobald diese Informationen als Datenbankdatei ausgegeben sind, öffnen und speichern wir die Dateien in Microsoft Excel. Die Excel-Dateien werden mithilfe eines MATLAB-Skripts verarbeitet, um die Momentangeschwindigkeiten zusammenzustellen und zusätzliche Parameter zu berechnen, die für das Verständnis der Bewegungsdynamik und der Bouts-Struktur erforderlich sind.Hier ist ein repräsentatives Ergebnis dieses Assays. Die Abbildung links zeigt Spuren von Wildtyp-Organismen des Stamms Canton S, während die Abbildung rechts Fliegen zeigt, die für das dask-Gen null sind und die durch Kreuzung zweier großer, sich überlappender Deletionen erzeugt wurden. Wie Sie in unserem Paradigma sehen können, zeigen die Dask-Null-Mutanten eine stark verminderte Lokomotion im Vergleich zu Canton S, was in der Literatur bereits unter Verwendung eines anderen Typs von Lokomotorassay beschrieben wurde.Wir haben Ihnen gerade gezeigt, wie man einen Bewegungs-Video-Tracking-Assay einrichtet und durchführt. Bei dieser Methode ist es wichtig, die Assays täglich innerhalb desselben Zeitfensters von zwei bis drei Stunden durchzuführen, um Einflüsse durch circadiane Rhythmen zu vermeiden, und stets zuerst Wildtyp-Organismen zu untersuchen, um sicherzustellen, dass die Verhaltensreaktionen an einem bestimmten Tag im normalen Bereich liegen. Das war's also.Vielen Dank fürs Zuschauen und viel Erfolg bei Ihren Experimenten.

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