Name: Isolation of Human Lymphatic Endothelzellen durch Multiparameter-Fluoreszenz-aktivierten Zellsortierung (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-01T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 36 s
Description: Erfahren Sie die Isolation hochreiner lymphatischer Endothelzellen aus menschlichen Lymphfehlbildungen und Vorhäuten mittels Multiparameter-Fluoreszenz-aktivierter Zellsortierung. Diese Methode ermöglicht genetische und funktionelle Studien.

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Die Autoren möchten die Baker-Stiftung und dem Königskinder &quot;Women in Science Fellowship &#39;Foundation Unterstützung Zerina Lokmić anzuerkennen. Andrew G. Elefanty und Edouard G. Stanley sind NHMRC Senior Research Fellows. Arbeit in ihren Labors wurde von NHMRC und Stammzellen Australien unterstützt.

Ethics Statement: Ethische Genehmigung für die Sammlung von Lymphmissbildung und Vorhaut Geweben wurde von den Human Research Ethik-Kommissionen in der Royal-Kinderklinik, Melbourne, Australien erhalten. Unterzeichnet Zustimmung wurde von Patienten Eltern erhielten vor der Operation. Gewebeproben wurden von Patienten mit LMs zogen chirurgischen Verfahren als Teil ihrer klinischen Management und elektiven Beschneidung diagnostiziert gesammelt. Alle Experimente wurden in Übereinstimmung mit den Richtlinien des National Health und Medical Research Council, Australien durchgeführt. 1. Herstellung der Zellsuspension aus Vorhaut und Lymphmissbildung Tissues <ol><li> Puffer und Medienvorbereitung. <ol><li> Bereiten komplette Endothelzellen-Medien mit handelsüblichen EGM-2 MV Kugel Kit durch Erwärmen EGM-2-Medien und schonend Auftauen der Kit-Komponenten in 37 ° C warmes Wasserbad. In der Klasse II Biosicherheitswerkbank, aseptischfügen Sie jede Komponente auf die Medien EGM-2. Nachdem alle Komponenten zu den Medien, auf diese Medien als &quot;komplette Endothelzellen Medien&quot; beziehen. Verwenden Sie sterile 50 ml-Pipette, um den Inhalt vor der Verwendung zu mischen. HINWEIS: Alle Schritte in Bezug auf Zellkultur in einer Klasse II Biohazard Schrank durchgeführt. Alle Lösungen sind bei 4 ° C gemäß den Anweisungen des Herstellers gespeichert und auf Raumtemperatur vor der Verwendung erwärmt. Die kompletten endothelialen Zellmedien, Zellkultur-Puffer und Enzymlösungen werden bei 37 ° C für 20 min vor der Verwendung erwärmt. </li><li> Ergänzen vollständige endotheliale Zellmedium mit 50 ng / ml VEGF-C. Aliquot der ergänzt Endothelzellen Medien in 50 ml sterilen Röhrchen und lagern bei 4 ° C bis zur Verwendung. Das Medium ist für mindestens 4 Wochen stabil, wenn sie bei 4 ° C gelagert. </li><li> Vorbereitung Calcium und Magnesium freie Phosphat-gepufferter Salzlösung (PBS) durch Auflösen von 8,752 g NaCl, 1,416 g Na 2 HPO 4 · 2H 2 O und0,395 g KH 2 PO 4 in 1000 ml Wasser. PH-Wert auf 7,4. Filter sterilisieren PBS mit 0,22 um Filter und bei 4 ° C. Vor der Verwendung hinzufügen Antibiotikum / Antimykotikum-Lösung (bei 1: 100). </li><li> Um Humanfibronectin vorzubereiten, aufzulösen 1 mg von Fibronektin in 10 ml sterilem Wasser. Shop fertige Lösung in 100 ul Aliquots bei -20 ° C. Am Tag der Anwendung 10 ml sterilem PBS auf 100 ul von Fibronektin Aliquot (um eine endgültige Arbeitskonzentration von 10 ug / ml zu ergeben). </li><li> Für die Enzym Medien, bereiten eine Lösung, die 0,04% Dispase II, 0,25% Collagenase II und 0,01% DNase I in sterilem PBS. Erstens wiegen Dispase und Collagenase, in eine sterile 50-ml-Röhrchen, fügen Sie das erforderliche Volumen an PBS und Inkubation für 30 min unter Schütteln bei 37 ° C zu lösen. Einmal gelöst, Filter zu sterilisieren (0,22 um Filter) Dispase / Collagenase-Lösung in die biologische Sicherheit Kapuze. Die enzymatische Lösung aseptisch DNase I. Shop bei 37 ° C bisverwenden. HINWEIS: DNase I ist eine kommerzielle Zellkultur grade Reagenz als sterile gefriergetrocknetes Pulver zur Verfügung. </li></ol></li></ol> 2. Herstellung der Zellsuspension aus Vorhaut und des lymphatischen Missbildungen <ol><li> Wiege eine 50-ml-Röhrchen mit 10 ml DMEM / 2% Antibiotikum Antimykotika-Lösung. Dieses Rohr wird für die Gewebesammlung verwendet werden. </li><li> Nach der chirurgischen Entfernung der Vorhaut Lymphmissbildung und Gewebe aseptisch Gewebeprobe in den das Rohr und den Transfer auf Eis zum Zellkulturlabor. </li><li> Wiegen Sie das Rohr in das Gewebe enthält, und berechne Gewebegewicht. Verwenden dieses Gewicht, das Volumen der benötigt wird, um das Gewebe zu verdauen Enzymlösung zu berechnen. </li><li> In der Klasse II Biosicherheitswerkbank, sterilen Pinzette verwenden, um das Gewebe und Medien in einen 100 mm-Gewebekulturschale zu übertragen. Verwenden einer sterilen Schere fein zerkleinern das Gewebe in ~ 1 mm 3 Stück. </li><li> Transfer zerkleinerte Gewebe mit Medien i gemischtnin ein 50 ml Röhrchen, enthaltend zusätzlich 10 ml steriles DMEM / 2% Antibiotikum Antimykotika-Lösung. Mischen durch Inversion zu resuspendieren das Gewebe. Zentrifugieren Sie die Probe bei 300 xg für 5 min. </li><li> Entfernen Sie den Überstand. Basierend auf Gewebegewicht, 1 ml der vorgewärmten (37 ° C) Collagenase II / DNase I / Dispase II Aufschlusslösung pro 100 mg zerkleinerte Gewebe. Im Allgemeinen benutzen 10 ml Enzymlösung für etwa 1 g des zerkleinerten Gewebes. </li><li> Inkubieren des Gewebes in einem Inkubator bei 37ºC für 20-90 min unter konstantem Schütteln bei 200 Upm. Am Ende dieses Zeitraums sicherzustellen, dass nahezu der gesamte Gewebe wird in feine Fragmente verdaut. HINWEIS: Exposition der Zellen gegenüber Collagenase und Dispase bei der Isolation von der primären Geweben beeinflusst das Überleben der Zelle. Wir haben empirisch festgestellt, dass die meisten neonatalen Vorhaut Proben optimal benötigen 20-30 Minuten der Verdauung, während fibrotische Lymphmissbildung Proben 60-90 min der Verdauung benötigen. LM LEC Ausbeuteweiter Bindegewebe s werden durch die Menge an vorhandenem Fibrose beeinflusst wodurch weniger Zellen, möglicherweise aufgrund der schädlichen Wirkungen von längerer Einwirkung von Collagenase II und Dispase II. </li><li> Nach der Verdauung, übertragen Sie die Röhre auf die Biosicherheitswerkbank und übergeben die verdaute Gewebe Lösung durch ein 70 um Sieb in ein steriles 50 ml-Röhrchen gegeben. Verwendung von 3 ml Spritzenkolben mit Gummistopfen, schleifen Sie die verbleibende Gewebe, bis nur noch geringe Spuren von extrazellulärer Matrix eingehalten werden. </li><li> Mit einem Volumen von Endothelzellmedium entspricht dem Volumen des Mediums dissoziierenden Enzyms an Zellen klebte Sieb gegeben und zur Inaktivierung der Enzyme zu erholen wäscht den Zellsieb. Beispielsweise wird für 2 ml dissoziierenden Enzyms Medium, um das zerkleinerte Gewebe zu verdauen, 2 ml endothelialer Zellmedium, um die Enzyme zu inaktivieren. </li><li> Zentrifugieren Sie die Zell-Lösung bei 300 xg für 5 Minuten und saugen Sie den Überstand. R&gt; E-die Zellen in 10 ml PBS. Centrifuge Zellen bei 300 gfür 5 Minuten, entfernen Sie den Überstand dann zweimal wiederholen Zelle waschen. &gt; Zellpellet in 20 ml Endothelzellmedium. Zählen von Zellen unter Verwendung von Trypanblau dann seed 2 x 10&gt; 6 Zellen in 150 cm&gt; 2 -Kolben mit Fibronectin vorbeschichtet wurde in einem Endvolumen von 20 ml Endothelzellmedium. Bei 37 ° C in einem 5% CO&gt; 2 in angefeuchteter Luft Inkubator.&gt; HINWEIS: Es wird erwartet, dass 75% -90% der kernhaltigen Zellen überleben Gewebe Verdauung durch Trypanblau-Ausschluß bestimmt. Die anfängliche Zellzahl spiegelt alle kernhaltigen Zellen in der Zellsuspension (dh Keratinozyten, Leukozyten, Makrophagen, Bindegewebszellen und Zellen von Blutgefäßen). Die Zellzahl auf 5-7 Tage spiegelt Zellen, die angebracht wurden, überlebte und während der Zellkultur vermehrt. Beschichtung von Gewebekulturflaschen mit Fibronektin verbessert auch die nachfolgenden LEC und LM LEC Überleben. </li><li> Nach Inkubation über Nacht abzuwaschen ungebundenen Zellen in drei Waschungen mit PBS / 1% Antibiotikum-Antimykotikum-Lösung und fügen Sie frische Endothelzellmedium. Führen Sie drei Wäschen, um ungebundene Zellen und roten Blutkörperchen im Kolben vorhanden effektiv zu entfernen. Ändern Sie jeden zweiten Tag Medien. Die Zellen werden nach 5-7 Tagen sein ~ 80% konfluent. </li></ol> 3. Antikörper-Färbung von Zellen für lymphatische endotheliale Zelloberflächenmarker für die Durchflusszytometrie <ol><li> Nachdem die Zellen 80% Konfluenz Aspirat Mediums und Spülen Zellen mit PBS erreicht. </li><li> Lösen adhärenten Zellen durch Inkubieren der Zellen mit 7 ml Zellablösung Lösung wie Accutase pro 150 cm 2 -Kolben für 5-7 Minuten bei 37 ° C. </li><li> Ernte abgelösten Zellen inaktivieren, die Zellablösung Lösung durch Zugabe von 3 Volumina Endothelzellmedium und übertragen die Zellsuspension in ein neues steriles Röhrchen. </li><li> Zentrifugieren der Zellen bei 300 g für 5 min. </li><li> Überstand wird abgesaugt und wieder die Zellen in 5 ml PBS. Centrifuge Zellen bei 300 xg für 5 Minuten, entfernen Sie die supernatant wiederholen Sie dann Zelle waschen. Resuspendieren der Zellen in 5 ml PBS. </li><li> Zählen die Anzahl von lebensfähigen Zellen. Mischen Sie 10 ul der Zellsuspension mit 90 &amp; mgr; l von 0,4% Trypanblau. Transfer 10 ul dieser Suspension bis zum Zählen Zählkammer. BEACHTEN SIE: Der endgültige Zellausbeute auf der Stichprobengröße verarbeitet abhängen. Die übliche Zellausbeute pro 150 cm 2-Kolben reicht von 7 x 10 5 bis 1,2 x 10 6 lebensfähigen Zellen. </li><li> Bereiten Sie die Antikörperlösungen für Zellfärbung. HINWEIS: Die folgenden Verdünnungen wurden zum Anfärben 1 x 10 6 in einer Färbung von 100 ul titriert. <ol><li> Verdünnter PE konjugierten Maus-anti-Mensch-VEGFR-3 (1:50); PE-Cy7 konjugierten Maus-anti-Mensch-konjugierten CD34 (1: 200); APC-konjugiertem Maus-anti-Mensch-CD31 (1: 100) und Alexa 488-konjugiertes Ratte-anti-Mensch podoplanin (1: 200) in einem Gesamtvolumen von 100 ul steriler 5% FBS / PBS-Lösung pro Gewebeprobe. Nach der HerstellungAntikörperlösung, halten auf Eis bis zum Gebrauch. Ebenso bereiten verdünnter Isotypkontrollantikörper Mischung, um die Einstellung der Durchflusszytometrie Tore zu erleichtern. </li></ol></li><li> Um nicht-spezifische Bindung der Antikörper zu reduzieren, Zentrifuge Zellen bei 300 × g für 2 min, zu entfernen Überstand dann die Zellen zu suspendieren in 100 ul sterile 5% FBS / PBS-Lösung pro Probe zu gefärbt werden. Inkubieren Zellen auf Eis für 20 min bei 4 ° C. </li><li> Zentrifuge Zellen bei 300 g für 5 min, Überstand abnehmen, dann resuspendieren Zellen in der konjugierten Antikörper-Cocktail. Auch einen kleineren Fleck Aliquot von Zellen (1 x 10 &amp; sup5;) in 100 ul Isotypkontrollantikörper Gemisches. Inkubieren Zellen auf Eis für 20 min. </li><li> Um die ungebundenen Antikörper zu entfernen, fügen Sie 2 ml 2% FBS / PBS-Lösung und Zentrifuge die Zellen bei 300 xg für 5 min. Den Überstand aspirieren und wiederholen Sie die Wäsche. </li><li> Zellpellet zur Isotypenkontrolle und dem Antikörper gefärbten Probe in 300 ul 0,5 mg / ml Propidiumiodid io sortiertdide / 2% FBS / PBS-Lösung. Zeigen Röhrchen auf Eis, bis die Sortierung. </li></ol> 4. Zellsortierung <ol><li> Verwenden Sie die folgenden Materialien, um das Gerät einzurichten; Ausrichtungsperlen wie im Handel erhältlichen fluoreszierenden Teilchen, phosphatgepufferter Kochsalzlösung auf der Basis Hüllflüssigkeit und Tröpfchenverzögerungs Perlen, wie Accudrop fluoreszierenden Kügelchen. </li><li> Isolieren der gereinigten menschlichen LECs auf einer Multi-Parameter-Fluoreszenz-aktivierten Zellsortierung Instruments. Stellen Sie das Gerät und richten Sie nach den Empfehlungen des Herstellers. Darüber hinaus laufen einzigen Fleck Entschädigung Kontrollen bei jeder Art, um die Kompensationsmatrix zu erzeugen und damit zu beseitigen erhebliche Blutung durch die Emission von Fluoreszenzfarbstoffen wie PE in die PE-Cy-Kanal. HINWEIS: Ein höherer Anteil der FACS sortierten Zellen überleben die Isolation, wenn ein 100 &amp; mgr; m Düse verwendet, und die Zellen werden in Endothelzellmedium sortiert. </li></ol> 5. Cell Culture Beitrag FACS Sortierening <ol><li> Folgende Sortier zentrifugieren Zellen bei 300 g für 5 min. Aspiration des Überstands und Resuspendieren der Zellen in 5-10 ml Medium (je nach dem zur Herstellung der Zell Impfkolben). Wenn weniger als 50.000 Zellen sortiert, sind die Zellen in Fibronectin-beschichteten 25 cm 2 -Kolben kultiviert. </li><li> Ob die Kultur werden die Zellen in 75 cm 2 fibronektinbeschichtete Kolben bei 37 ° C in einem 5% CO 2, Luft befeuchteten Inkubator. Ändern Sie Medien nach 2 Tagen. HINWEIS: Cell-Medium wird jeden zweiten Tag gewechselt, weil die Verlängerung der Zeit zwischen den Medienwechsel scheint das Überleben der nicht-endothelialen Zellen begünstigen. Wir überprüfen das lymphatische Endothelzellen Phänotyp mit immunhistochemischen Nachweis von Markern: PROX-1, VEGFR-3, Podoplanin, CD34 und CD31, wenn die Zellen zunächst Split für die weitere Expansion 15. </li></ol>

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Die Autoren haben nichts offenzulegen.

LECs spielen eine wichtige Rolle bei der Aufrechterhaltung der Homöostase Fluid, Immunantwort auf fremde Antigene, und die Absorption und den Transport von bestimmten Nährstoffen. LEC-Homöostase durch Krankheitsprozesse wie bakterielle Infektionen und Tumormetastasen betroffen sein, aber LECs können somatische Mutationen, die in der Bildung von dysfunktionalen Lymphgefäße und signifikante Morbidität für die betroffenen Patienten führen zu entwickeln. Um mehr Verständnis Lymphmissbildung Ätiologie durch Implantation ...

Eine Hauptfunktion des lymphatischen Gefäßsystems ist es, Lymphe, einen Überschuß der interstitiellen Flüssigkeit enthaltenden Lipide, Proteine ​​und Zellbestandteile aufnehmen und führen es in die Blutvenensystem. Ein Netzwerk von lymphatischen Kapillaren lenkt Lymphe zu den Lymphknoten, wo sie auf das Vorhandensein von fremden Antigenen, ein wichtiger Prozess bei der Immunüberwachung und Bereitstellung von weißen Blutkörperchen auf fremde Antigene zu neutralisieren gescreent. Die unidirektionale Lymphsystem beginnt in Geweben mit dem anfänglichen lymphatischen Kapillaren, eine einzigartige Struktur mit einer diskontinuierlichen Einzelschicht von dünnwandigen flachen Endothelzellen mit spezialisierten Zellverbindungen, die Lymphe Eintrag 1,2 ermöglichen. Diese Kapillaren sind an das Nachbar Bindegewebsmatrix via Verankerung Filamente Gefäß Zusammenbruch in Gegenwart von erhöhten interstitiellen Druck 3 zu verhindern, angebracht. Die anfänglichen Lymphkapillaren münden in Sammel Lymphkapillarendie in größeren Lymphgefäße oder Venen zusammenwachsen. Im Vergleich zu lymphatischen Kapillaren anfänglichen Sammel Lymphgefäße dickere Gefäßwände gepaart lymphatischen Ventile und werden von einem diskontinuierlichen Basalmembran in der wenige glatte Muskelzellen eingebettet 4 umhüllt. Koordiniertes Öffnen und Schließen der Ventile und lymphatischen Kontraktion der glatten Muskelzellen erleichtert Lymphfluß 3. Bei Menschen, die lymphatischen Adern aus verschiedenen Regionen des Körpers verbinden, um Lymphstämme die an zwei Lymphbahnen bilden verschmelzen zu bilden: das Brustgang und das Recht lymphatischen Kanal. Der Ductus Lymphe von der linken Seite des Körpers und von der rechten Seite unterhalb der Brust, während die rechte lymphatischen Kanal Lymphe vom rechten Arm und rechten Seite des Kopfes, des Halses und Thorax. Beide Kanäle leiten Lymphe in die subclavia in den Hals 5. Erkrankungen des lymphatischen Systems erworben werden grob in einen gruppiertennd angeboren (Tabelle 1). Beispiele für erworbene Bedingungen Lymphangitis und sekundären Lymphödem. Lymphangitis ist eine Entzündung ein Lymphgefäß aufgrund bakterieller Infektionen. Die betroffenen Lymphgefäße erweitern und füllen mit Exsudat enthält polymorphkernigen Zellen. In der Haut sind diese Lymphgefäße als rote, schmerzhafte subkutane Streifen oft durch Erweiterung der zugehörigen Lymphknoten (Lymphadenitis) 6 begleitet sichtbar. Sekundären Lymphödemen entsteht als Folge einer Beschädigung oder Behinderung der Lymphgefäß oder Lymphknoten Obstruktion. Dies führt zu chronischer progressiver Schwellung aufgrund einer Ansammlung von Lymphe distal zur Beschädigung oder Verstopfung. In den entwickelten Ländern wird sekundäre Lymphödem am häufigsten mit malignen Erkrankungen, wo metastasierenden Tumoren behindern Lymphgefäße oder regionalen Lymphknoten oder als Folge der Anti-Krebs-Therapie nach der chirurgischen Entfernung der Lymphknoten, nach der Bestrahlung Fibrose und post-entzündlichen Throm zugeordnetBosis und Narbenbildung 7. In anderen Teilen der Welt, kann sekundäre Lymphödem sekundär lymphatischen Obstruktion von parasitischen Würmern verursacht werden, wie Wuchereria bancrofti 6. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td colspan="4"> Erkrankungen des Lymphgefäßsystems </td></tr><tr><td> Erworben </td><td colspan="3"> Angeboren </td></tr><tr><td rowspan="3"> Lymphadenitis Sekundäre Lymphödeme </td><td> Primary Lymphödem 10 </td><td> Sporadische Lymphatische Fehlbildungen 13 </td><td> Lymphatische Fehlbildungen mit Syndromes 13 </td></tr><tr><td rowspan="2"> zB Milroy-Syndrom Meige Syndrom </td><td> Ganz einfach: Lymphatische Fehlbildungen </td><td rowspan="2"> zB Klippel-Tranaunay Syndrom Parks Weber-Syndrom Sturge-Weber-Syndrom </td></tr><tr><td> Kombiniert: Kapillar-lymphatischen Missbildungen Kapillar-lymphatischen-venöse Malformation Kapillar-lymphatischen-arteriovenöse Missbildung Kapillar-lymphatischen venösen-arteriovenöse Missbildung </td></tr></tbody></table> Tabelle 1 Übersicht über die Erkrankungen des lymphatischen Kreislauf-System. Angeborenen Erkrankungen des lymphatischen Systems umfassen primäre (idiopathische) Lymphödem gedacht, durch genetische Mutationen, Lymphangiektasie und Anomalien des Lymphsystems 8,9 verursacht werden. Primary Lymphödem kann sporadisch vermutlich durch Neumutationen verursacht, oder geerbt. Lymphsystems kann auch isoliert werden oder einen Teil eines allgemeineren Syndrom 10. In der pädiatrischen Population, 97% der LympheÖdem ist sporadisch mit Anomalien in lymphatischen Gefäßstruktur, die regionalen Lymphdrainage 11 beeinträchtigen. Milroy Krankheit ist ein Beispiel für primäre Lymphödem durch Mutation in der VEGFR-3-Gen offensichtlich bei der Geburt oder kurz nach 12 verursacht. Obwohl meist familiäre Zustand der Milroy Krankheit kann auch bei Säuglingen ohne Familiengeschichte von Milroy Krankheit 32 identifiziert werden. Die Schwere einer Lymphödem ist abhängig von der Menge der Lymphe Produktion und die Fähigkeit, Lymphtransport zurück zur venösen Kreislauf 6. Basierend auf der klinischen Präsentation und In-situ Endothelzellproliferation sind Anomalien des Lymphsystems lymphatischen Tumoren oder lymphatischen Mißbildungen 13 klassifiziert. Kaposiform Lymphangiomatose ist ein Beispiel einer LEC Tumor 14. Lymphatische Fehlbildungen gedacht werden, um während der Embryonalentwicklung entstehen und wachsen im Verhältnis zum Kind 15,16. Sie Regress selten, kann aber Leistungsbezogenen asymptomatisch bis zum Trauma oder Infektion fällt schnelles Wachstum, was zu klinischen Komplikationen. Die geordnete Struktur des lymphatischen Netzwerks und Durchführung von Lymphe aus dem Gewebe, um oben beschrieben venösen Blutkreislauf wird in lymphatischen Missbildungen, die von lokalen Sammlungen von abnormalen zystische Strukturen mit Lymphflüssigkeit gefüllt bestehen gestört. Zwar gibt es keine klinischen oder experimentellen Beweis, dass diese zystische Schiffe werden an die Lymphzirkulation verbunden oder dass sie funktions lymphatischen Ventile enthält, wird ihre lymphatischen Identität durch Expression Reihe von lymphatischen Zellmarker wie Podoplanin, CD31, Lymphgefäß Endothelial Receptor 1 bestätigt (LYVE-1), Prospero homeobox protein 1 (PROX-1) und VEGFR-3 15,17,18. Diese zystische Strukturen kann entweder klein (mikrozystischen) oder groß (macrocystic), aber die meisten lymphatischen Bildungen enthalten sowohl mikrozystischen und macrocystic Komponenten (1) 16. Nach der Operation injection Sklerotherapie und / oder Radiofrequenz-Ablation des lymphatischen Missbildungen häufig wieder auftreten. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/52691/52691fig1highres.jpg" width="700" /> Abbildung 1. Morphologie der menschlichen Lymphgefäße und lymphatischen Missbildungen. Normale menschliche Lymphsystem (A) und Lymphmissbildung Gefäße (B und C) mit einem Antikörper gegen Podoplanin beschriftet (braun-Label, Pfeil). Menschen Lymphmissbildung Gefäße werden durch deutliche Dilatation und erhebliche Unterschiede in der Lumengröße gekennzeichnet. Diese lokalisierten abnormalen zystischen Strukturen können sowohl kleine (mikrozystischen, *) (B) oder groß (macrocystic, #) (C) sein. Die meisten lymphatischen Missbildungen enthalten sowohl mikrozystischen und macrocystic Komponenten. <a href="/files/ftp_upload/52691/52691fig1highres.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version der Abbildung zu sehen.</a> &lt;/ P&gt; Einige Forscher haben vorgeschlagen, dass lymphatische Fehlbildungen sind eine Entwicklungsstörung des lymphatischen Gefäßsystems, in dem die LECs keinen abnormalen Wachstumspotential, sondern es nicht gelungen, in den normalen Kreislauf 19 angeschlossen werden. Jedoch haben wir gefunden, dass die LM LECs proliferieren schneller und sind widerstandsfähiger gegen Apoptose als Vorhaut LECs 15 darauf hindeutet, dass es eine primäre Defekt im LM LECs. Wenn LM LECs sind in einem Maus-Xenograft-Modell implantiert, bilden sie Strukturen erinnern an lymphatischen Missbildungen 15. Dies unterstützt die Hypothese, dass lymphatischen Bildungen können durch eine oder mehrere somatische Mutationen entstehenden LM LECs während der fetalen Entwicklung verursacht werden. In der Tat haben die jüngsten Berichte eine solche Mutation im p110α katalytische Untereinheit der Phosphoinositid-3-Kinase (PIK3CA) Gen 20 identifiziert. Angesichts der Fortschritte in der DNA-Sequenzierung Technologie, relevante Mutationen cOuld leichter in isolierten LM LECs identifiziert werden, Führungs zukünftige Studien dieser Bedingungen. Die Isolierung von lebensfähigen LECs würde Vergleiche zwischen abnormalen und normalen LECs in Assays wie Migration, Proliferation, Rohrbildungsfähigkeit und das Überleben in Antwort auf eine reduzierte Nährstoffverfügbarkeit oder proapoptotischen Mittel 15 zu erleichtern. Isolated LECs würde weiter ermöglichen es uns, zellspezifische Genexpression und Proteomik-Studien durchzuführen, um neue LEC-Subpopulationen abzugrenzen und entdecken Sie neue pharmakologische Wirkstoffe für klinische Behandlung von lymphatischen Missbildungen. Wir haben bereits eine LEC Isolierung in Anlehnung an magnetische Kügelchen Trennung von LECs von neonatalen Vorhaut und lymphatischen Missbildungen 15 veröffentlicht. Berichteten wir eine Strategie der Trennung normaler und erkrankter LECs von vaskulären endothelialen Zellen auf der Basis der Abwesenheit von CD34-Expression, gefolgt von Unterwerfen CD34 Neg Zellfraktion einer positiven Selektion für CD31.Jedoch wurde dieses Verfahren durch die Anwesenheit von restlichem nicht-endothelialen Zellen behindert. Dies war unabhängig von der Entfernung von Epidermis vor den nachfolgenden Bindegewebe Verdauung. Diese Verunreinigungen in der Regel vermehrt sich schneller und damit schließlich die Endothelzellkulturen trotz nachfolgenden Versuche, LEC Isolierung wiederholen überwuchsen. Tatsächlich wird eine anfängliche Kontamination der Nicht Endothelzellen so niedrig wie 2% bis 5% war ausreichend, um den LEC Bevölkerung 15 überwältigen. Dies veranlasste uns, fluoreszenzaktivierte Zellsortierung Verfahren als Option zu LEC Zelle Ausbeute und Reinheit zu verbessern erkunden. Zusätzlich verwendeten wir Multiparameter Sortierung die Spezifität der LEC Populationen erweitern, Zugabe VEGFR-3 und podoplanin den Selektionsmarker CD34 CD31 Low Pos VEGFR-3 Pos podoplanin Pos LECs identifizieren. Die Gründe für die Auswahl dieser Marker wurde auf die Berichte auf der Grundlage, dass, während LECs und Blut vaskulären endothelialen cells haben viele Zelloberflächenmarker gemeinsam, wie CD31, LECs zeigen phänotypische Veränderung ihrer Expression von CD34, Podoplanin und VEGFR-3 Zelloberflächenmarker im Vergleich zu Blutgefäßendothelzellen 21-23. CD31 ist ein 130 kDa Transmembranglycoprotein auch als Thrombozyten endothelial cell adhesion molecule 1 (PECAM-1) bekannt. Es wird betrachtet, eine pan-endotheliale Zellmarker, da es auf allen Arten von Blut- und Lymphgefäße 21,24,25 zum Ausdruck kommt. CD34 ist auf den meisten hämatopoetischen Vorläufer vorliegende 110-kDa Transmembran-Glykoprotein und Stammzellen, vaskuläre Endothelzellen und einige Lymphgefäße 26. VEGFR-3, der Rezeptor für den vaskulären endothelialen Wachstumsfaktoren C und D, ist anfänglich vorhanden auf die Entwicklungs Venen im Maus-Embryo, aber nach lymphatischen Spezifikation durch den Transkriptionsfaktoren reguliert SRY bezogenen HMG-Box (SOX) -18, c hicken o valbumin u pstream p romoter t ranscription f Schauspieler 2 (COUPTF-II) und PROX-1, VEGFR-3 ist venösen Ausdruck verloren, und es wird zu embryonalen LECs 25,27 beschränkt. Podoplanin, ein 38 kDa Membran Mucoprotein, wird zuerst auf Lymphgefäße bei etwa embryonaler Tag 11 (~ E11.0) von Maus-Embryonalentwicklung 28 festgestellt und während es ist stark von mikrovaskulären Lymphgefäße, Podoplanin Expression durch macrocystic Lymphendothel in lymphatischen Missbildungen zum Ausdruck ist variabler 15. Durchflusszytometrie Experimente legen nahe, dass zumindest einige CD34 CD31 hoch Pos Endothelzellen exprimieren das lymphatische Marker podoplanin 29. Obwohl systematische Bewertung LYVE-1 und Podoplanin Färbung in menschlichen lymphatischen Malformationen zeigten, dass beide sind effektiv bei der Färbung Lymphmissbildung Endothel 30, in normalen Geweben, LYVE-1 wurde berichtet, dass stark in der Anfangs lymphatischen vorhandenKapillarendothel aber reduziert und in der Sammel Lymphendothel 31 gar nicht vorhanden. Da unser Ziel ist es, zu isolieren, sowohl die Anfangs- und Sammeln lymphatischen Endothelzellen wir entschieden haben, nicht zu LYVE-1 als Teil unserer Zellenauswahl-Strategie zu verwenden. Schließlich wurde die Entscheidung, diese Marker setzen auch von der Verfügbarkeit von Antikörpern, die diagnostisch für die Markierung von Lymphgefäßen für mikroskopische Bildgebung verwendet werden, eine Funktion, die Korrelation zwischen der Durchflusszytometrie und Immunfluoreszenz-Studien erlauben würde basiert. Dieser Artikel wird die Gewebeaufschlussverfahren, Zellfärbung und FACS-Einstellungen für eine erfolgreiche Isolierung von CD34 Low CD31 Pos VEGFR-3 Pos Podoplanin Pos LECs als auch CD34 Hohe CD31 Pos VEGFR-3 Pos Podoplanin Pos Endothelzellen aus Vorhaut und Lymphmissbildung erforderlich beschreiben Gewebe.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies (Gibco)</td><td>11965-092</td><td>Wird zur Entnahme von Gewebeproben aus dem Operationssaal verwendet.</td></tr><tr><td>EGM-2 MV Bullet Kit</td><td>Lonza</td><td>CC-3202</td><td>EGM-2 MV Bullet Kit enthält 500 ml EBM-2 Medium und humanes EGF, Hydrocortison, Gentamycin (GA-1000), fötales Rinderserum (FBS), VEGF, humanes FGF-b, R3-IGF-1 und Ascorbinsäure.</td></tr><tr><td>VEGF-C</td><td>R& D Systems</td><td>2179-VC-025</td><td>Vollständiges Endothelzellmedium wird mit 50 ng/ml VEGF-C</td></tr><tr><td>Antibiotika-Antimykotik-Lösung (100x) ergänztLife</td> <td>Technologies (Gibco)</td><td>15240-062</td><td>Diese Lösung enthält 10.000&nbsp; U/ml Penicillin, 10.000 &nbsp; mg/ml Streptomycin und 25&nbsp; mg/ml Fungizone Antimykotikum. Bei einer Verdünnung von 1:100 verwenden.</td></tr><tr><td>Fibronektin aus humanem Plasma</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F2006</td><td>Wird in Konzentrationen von 10 mg/ml verwendet. Es kann bis zu 1 Monat lang wiederverwendet werden, wenn es bei 4&nbsp; &#176; C und steril gehalten. Verwenden Sie 7&nbsp; ml zum Beschichten von 150 cm2 Kolben.</td></tr><tr><td>StemPro Accutase Reagenz zur Zelldissoziation</td><td>Life Technologies (Gibco)</td><td>A11105-01</td><td>StemPro&reg; Accutase&reg; wird mit 0,05 ml pro cm2 verwendet, um die gesamte Oberfläche des Kolbens abzudecken. Die Verwendung kleinerer Volumina kann zu einer unvollständigen Zellablösung führen.</td></tr><tr><td>0,4 % Trypanblau-Farbstoff</td><td>Life Technologies (Gibco)</td><td>15250-061</td><td>Wird als Viabilitätsfleck verwendet.</td></tr><tr><td>Dispase II</td><td>Roche Applied Biosciences</td><td>4942078001</td><td>Verwendet mit 0,04 %</td></tr> <tr><td>Kollagenase II</td><td>Worthington Lab</td><td>4176</td><td>Verwendet mit 0,25 %</td></tr> <tr><td>DNase I</td><td>Roche Applied Biosciences</td><td>11284932001</td><td>Verwendet mit 0,01 %</td></tr><tr><td>70 mm Nylon-Zellsiebe</td><td>BD Falcon</td><td>352350<</td><td></td></tr><tr>td colspan="4">[header]</td></tr><tr><td>PE-konjugierter VEGFR-3-Klon 9D9F9, Klon WM59</td><td>BioLegend</td><td>356204</td><td>Verwendet bei einer Verdünnung von 1:50</td></tr><tr><td>PE-Cy7-konjugiertem CD34, Klon 581</td><td>BioLegend</td><td>343516</td><td>Verwendet bei einer Verdünnung von 1:200</td></tr><tr><td>APC-konjugiertes Maus gegen humanes CD31, Klon WM59</td><td>BioLegend</td><td>303116,</td> <td>verwendet bei 1:100 Verdünnung</td></tr><tr><td>Alexa 488-konjugiertes Ratten-Anti-Human-Podoplanin, Klon NC-80.</td><td>BioLegend</td><td>337006</td><td>Verwendet bei einer Verdünnung von 1:200</td></tr><tr><td>PE-konjugiertes Maus-IgG1, k-Isotyp, Klon MOPC-21</td><td>BioLegend</td><td>400112</td><td>Verwendet bei einer Verdünnung von 1:50</td></tr><tr><td>PE-Cy7-konjugiertes Maus-IgG1, k-Isotyp, Klon MOPC-21</td><td>BioLegend</td><td>400126</td><td>Verwendet bei einer Verdünnung von 1:200</td></tr><tr><td>APC-konjugiertes Maus-IgG1, k-Isotyp, Klon MOPC-21</td><td>BioLegend</td><td>400120</td><td>Verwendet bei einer Verdünnung</td></tr> <tr><td>von 1:100Alexa 488-konjugierte Maus IgG2a, k-Isotyp, Klon RATK2758</td><td>BioLegend</td><td>400525</td><td>Verwendet in einer Verdünnung von 1:200</td></tr></tbody></table>

isolation of human lymphatic endothelzellen durch multiparameter-fluoreszenz-aktivierten zellsortierung

Isolation of Human Lymphatic Endothelial Cells by Multi-parameter Fluorescence-activated Cell Sorting

Lymphsystems, wie primäre Lymphödem, lymphatischen Missbildungen und lymphatischen Tumoren sind seltene Erkrankungen, die einer erheblichen Morbidität verursachen, aber wenig über ihre Biologie bekannt. Isolierung hochreiner menschlichen lymphatischen Endothelzellen (LECs) von kranken und gesunden Gewebe wäre Studien des lymphatischen Endothels bei genetischen, molekularen und zellulären Ebene zu erleichtern. Es wird erwartet, dass diese Untersuchungen können Ziele für neue Therapien, die die klinische Behandlung von diesen Bedingungen ändern können offenbaren. Ein Protokoll, die Isolierung von humanen Vorhaut LECs und Lymphmissbildung lymphatischen Endothelzellen (LM LECs) beschreibt, wird vorgestellt. Zu erhalten, eine Einzelzellsuspension Gewebe wurde zerkleinert und mit Dispase II und Collagenase II enzymatisch behandelt. Die resultierenden Einzelzellsuspension wurde dann mit Antikörpern gegen Cluster of Differentiation (CD) Marker CD34, CD31, Vascular Endothelial Growth Factor-3 (VEGFR-3) und podoplanin markiert. StaiNed lebensfähige Zellen wurden auf einem Fluoreszenz-aktivierten Zellsortierer (FACS) sortiert werden, um das CD34-CD31 Low Pos VEGFR-3 Pos podoplanin Pos LM LEC Population aus anderen endothelialen und nicht-endothelialen Zellen abzutrennen. Die sortierten LM LECs wurden kultiviert und auf Fibronektin-beschichteten Kolben für weitere experimentelle Nutzung erweitert.

Nach der anfänglichen Gewebe Verdauung, nach 24 Stunden in Kultur von unfraktionierten Proben deutliche endothelialen Zellkolonien zusammen mit Fibroblasten-ähnliche Zellen und glatten Muskelzellen beobachtet werden (Abbildung 2A). Im Anschluss an das Sortieren und nach 24 Stunden in der Zellkultur, die CD34 Low CD31 Pos VEGFR-3 Pos Podoplanin Pos Zellen befestigen und zeigen typische Kopfsteinpflastermorphologie (2B und C). V...

Das Ziel des Protokolls ist es, lymphatische Endothelzellen menschlicher Lymphmissbildung zystenartige Gefäße und Vorhaut mittels Fluoreszenz-aktivierter Zellsortierung (FACS) isoliert werden. Anschließende Zellkultur und Expansion dieser Zellen ermöglicht eine neue Stufe der experimentellen Raffinesse für genetische, Proteomik, funktionale und Zelldifferenzierung Studien.

Isolation of Human Lymphatic Endothelzellen durch Multiparameter-Fluoreszenz-aktivierten Zellsortierung

Lymphatic system disorders such as primary lymphedema, lymphatic malformations and lymphatic tumors are rare conditions that cause significant morbidity ...

Das übergeordnete Ziel dieses Verfahrens besteht darin, hochreine lymphatische Endothelzellen zu isolieren, die die lymphatischen Gefäße menschlicher lymphatischer Malformationen und Vorhäute auskleiden, unter Verwendung der fluoreszenzaktivierten Zellsortierung. Dies wird zunächst erreicht, indem eine Gewebeprobe eines Patienten enzymatisch verdaut wird. Im zweiten Schritt wird die Einzelzell-Suspension kultiviert, um die Anzahl an lymphatischen Endothelzellen anzureichern.In der Probe werden die Zellen anschließend mit Antikörpern gegen die gewünschten Zelloberflächenmarker markiert und mittels mehrparametrischer fluoreszenzaktivierter Zellsortierung sortiert. Letztendlich können die Zellen aus dem Penisvorhautgewebe und aus lymphatischen Missbildungen, lymphatische Endothelzellen, in der Zellkultur zur weiteren downstream-Analyse vermehrt werden.Der Hauptvorteil dieser Technik gegenüber bestehenden Methoden liegt darin, dass die fluoreszenzaktivierte Zellsortierung Zellen mit einer Reinheit von über 99 % liefert und somit Probleme vermeidet, die durch den Verlust lymphatischer Endothelzellen aufgrund einer Überwucherung durch kontaminierende Zellen entstehen. Beginnen Sie damit,

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Dieses Video zeigt eine experimentelle Untersuchung der Lymphozytentransmigration über ein Blut-Hirn-Schranke (BHS)-Endothelmodell. In vitro wird eine Monoschicht aus mikrovaskulären Endothelzellen (HBMECs) des menschlichen Gehirns erzeugt, und mononukleäre Zellen des peripheren Blutes (PBMCs), die Lymphozyten enthalten, werden der Monoschicht hinzugefügt. Die Zellen werden dann inkubiert, um eine Lymphozytentransmigration zu ermöglichen, und die migrierten Zellen werden mittels...

Untersuchung der Lymphozytentransmigration durch eine mikrovaskuläre Endothelzell-Monoschicht

Die Isolierung von Lymphknotenstromazellen ist ein mehrstufiges Verfahren, das enzymatische Verdauung und mechanische Disaggregation umfasst, um fibroblastische retikuläre Zellen, lymphatische und Blutendothelzellen zu erhalten. Bei dem beschriebenen Verfahren wird ein kurzer Verdau mit einer automatisierten mechanischen Disaggregation kombiniert, um den Oberflächenmarkerabbau lebensfähiger Lymphknotenstromazellen zu minimieren.

Isolierung von murinen Lymphknoten Stromazellen

Wir beschreiben ein Protokoll zur effizienten Isolierung von hautresidenten T-Zellen aus menschlichen Hautbiopsien. Dieses Protokoll liefert eine ausreichende Anzahl lebensfähiger Lymphozyten in der menschlichen Haut für die durchflusszytometrische Analyse und die Ex-vivo-Kultur.

Lymphocyte Isolierung von menschlicher Haut für phänotypische Analyse und<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Zellkultur

Hier beschreiben wir ein detailliertes Protokoll für die Isolierung von Lymphozyten aus die induktive Stätten wie das Darm-assoziierte Lymphgewebe Peyer Patches und mesenterialen Lymphknoten und der Effektor-Websites einschließlich der Lamina Propria und der Darmepithel des kleinen intestinalen Immunsystems.

Isolieren von Lymphozyten aus der Maus kleinen intestinalen Immunsystems

Das Ziel dieses Protokolls ist, lymphatische Endothelzellen Populationen innerhalb der Leber mit den beschriebenen Markern zu identifizieren. Wir nutzen Kollagenase IV und DNase und eine sanfte Zerkleinerung des Gewebes, kombiniert mit Durchflusszytometrie, um eine verschiedene Bevölkerung der lymphatische endothelial Zellen zu identifizieren.

Verdauung der murinen Leber für eine durchflusszytometrischen Analyse der lymphatische Endothelial Zellen

Dieses Protokoll bietet eine effiziente Kollagenase-Verdauungsmethode für die Isolierung lebensfähiger Adipozyten und stromaler vaskulärer Fraktions-SVF-Zellen aus menschlichem viszeralem Fett in einem einzigen Prozess, einschließlich einer Methodik zur Gewinnung hochwertiger RNA aus Adipozyten und einer Phänotypisierung von SVF-Makrophagen durch Färbung mehrerer membrangebundener Marker für die Analyse durch Durchflusszytometrie.

Isolierung lebensfähiger Adipozyten und stromaler vaskulärer Fraktion aus menschlichem viszeralem Fettgewebe, geeignet für RNA-Analyse und Makrophagen-Phänotypisierung

Dies ist eine Methode, um uteruslymphoide Zellen sowohl von schwangeren als auch von nicht schwangeren Mäusen zu isolieren. Diese Methode kann für mehrere nachgelagerte Anwendungen wie FACS-Phänotypisierung, Zellsortierung, funktionelle Assays, RNA-seq und Proteomik verwendet werden. Das Protokoll hier zeigt, wie man angeborene lymphatische Zellen der Gruppe 1 durch Durchflusszytometrie phänotypisiert.

Isolierung von angeborenen lymphatischen Zellen der Gebärmutter zur Analyse mittels Durchflusszytometrie

Obwohl die Isolierung von pulmonalen Endothelzellen eine Herausforderung darstellt, ist sie für Studien zur Lungenentzündung unerlässlich. Das vorliegende Protokoll beschreibt ein Verfahren zur hochwirksamen, hochreinen Isolierung von makrovaskulären und mikrovaskulären Endothelzellen.

Mikrovaskuläre und makrovaskuläre Endothelzellisolierung und -reinigung aus Lungenproben

In dieser Arbeit wird ein Verfahren zur magnetischen Bead-basierten Isolierung von murinen Endothelzellen aus dermalen lymphatischen Kapillaren beschrieben. Die isolierten lymphatischen Endothelzellen können für nachgelagerte In-vitro-Experimente und Proteinexpressionsanalysen verwendet werden.

Isolierung von dermalen lymphatischen Endothelzellen der Maus

Leptomeningeale lymphatische Endothelzellen (LLECs), ein kürzlich identifizierter intrakranieller Zelltyp, haben nur unzureichend verstandene Funktionen. In dieser Studie wird ein reproduzierbares Protokoll für die Entnahme von LLECs aus  Mäusen und die Etablierung von In-vitro-Primärkulturen vorgestellt. Dieses Protokoll soll es Forschern ermöglichen, sich mit den zellulären Funktionen und möglichen klinischen Auswirkungen von LLECs zu befassen.

Gewinnung und Primärkultur von leptomeningealen lymphatischen Endothelzellen

Erfahren Sie die Isolation hochreiner lymphatischer Endothelzellen aus menschlichen Lymphfehlbildungen und Vorhäuten mittels Multiparameter-Fluoreszenz-aktivierter Zellsortierung. Diese Methode ermöglicht genetische und funktionelle Studien.

Isolation of Human Lymphatic Endothelzellen durch Multiparameter-Fluoreszenz-aktivierten Zellsortierung

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