Name: Eine Referenz Broth Mikrodilutionsverfahren für Dalbavancin In-vitro- Empfindlichkeitsprüfung von Bakterien, die wachsen aerob (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-09T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 28 s
Description: Lernen Sie das Broth-Mikrodilutionsverfahren zur Bestimmung der Dalbavancin-Empfindlichkeit bei grampositiven Bakterien. Diese Methode liefert reproduzierbare MIC-Ergebnisse für die klinische Mikrobiologie.

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Frühere Arbeiten in Bezug auf Empfindlichkeitstests von Dalbavancin waren wertvoll für die Entwicklung einer standardisierten Methode und Anerkennung für diese Arbeit wird JMI Laboratories, Robert Rennie und Beth Goldstein gegeben.

Hinweis: Lesen Sie CLSI Dokumenten M7-A10 und M100-S25 und / oder ISO / FDIS 20776-1 für weitere Informationen des Referenz Bouillon-Mikroverdünnungsverfahren für antimikrobielle Empfindlichkeit 2, 3, 4 Die Referenzmethoden ermöglichen die Optionen in einigen der. spezifischen Inokulumzubereitung und MIC-Panel-Produktion Verfahren das gleiche Endergebnis zu erzielen. Die hier gezeigten Verfahren bezieht sich auf ein antimikrobielles Mittel, Dalbavancin und einige der Schritte stellen eine potentiell mehrere Möglichkeiten der Referenzverfahren durchgeführt werden kann. Enden Sicherheitsvorkehrungen (im Einklang mit der biologischen Sicherheitsstufe 2) sollten genutzt 10 werden. Die MIC-Panel-Format für die Zwecke dieses Video Publikation ist in Tabelle 1 dargestellt. 1. Bewahren Dalbavancin Powder <ol><li> Nach Erhalt der Diagnosegrad Dalbavancin Pulver, bei -20 ° C in einem trockenen Umgebung in einer nicht-Abtauen Gefrierfach. Vor der Verwendung sollte das Pulver äquilibrierenerreichen RT vor dem Öffnen. </li></ol> 2. Bereiten Sie MIC Steuerung Verdünnungen <ol><li> Bereiten Sie eine Stammlösung nicht höher als 1.600 &amp; mgr; g / ml Dalbavancin in saubere (reine) DMSO in sterile Glas- oder Kunststoffröhrchen, und verwenden Sie am selben Tag der Vorbereitung oder bei -20 bis -60 ° C oder darunter für die zukünftige Verwendung in ein nicht-Abtauen Gefrierfach. Berücksichtigen Sie die Potenz Dalbavancin wie auf der mit dem Pulver erhielt Dokumentation, bei der Abwägung des Pulvers (siehe Gleichung 1 beispielsweise 800 &amp; mgr; g / ml Stoffaufbereitung). </li><li> Von der Stamm Verdünnung ähnlich dem Schema wie in Spalte 1 (&quot;Source Konzentration&quot;) in der Tabelle 2 mit reinem DMSO in sterile Glas- oder Kunststoffröhrchen dargestellt ist. Verwenden Sie eine Pipette zur Messung Verdünnungsmittel und andere Pipette für das Hinzufügen der ersten Dalbavancin Lager mit dem ersten Rohr. Für jede nachfolgende Dalbavancin Stammkonzentration verwenden Sie eine neue Pipette. </li><li> Bereiten 100X endgültigen MIC Panel concentRation Verdünnungen (Zwischen Konzentrationen) mit reinem DMSO. Wie dies in den Spalten 2-4 der Tabelle 2 gezeigt, zu verbinden und geeignete Mengen von Quelle und DMSO in gewünschte Zwischenkonzentration zu erreichen (um verwendet wird, hängt Anzahl von MIC Platten abhängen Volumina vorgenommen werden). </li><li> Bereiten 0,004% P80: Bereiten Sie eine frische Arbeitsstammlösung von 2% P80 durch Zugabe von 0,1 ml bis 4,9 ml P80 dH 2 O Sterilisiert, indem sie durch ein 0,22-Mikron-Filter und Gebrauchslösung am gleichen Tag der Herstellung. Vorbereitung 0,004% P80 Verdünnungsmittel, indem eine 1: 500-Verdünnung von 2% P80 (zB 0,3 ml 2% P80 149,7 ml CAMHB). </li><li> Weiter verdünnen die mittleren Konzentrationen in Schritt 2.2 1 hergestellt: 100 in Kation eingestellt Mueller Hinton-Brühe (CAMHB) mit 0,004% ergänzt (v / v) Polysorbat 80 (P-80) P-80 und / oder LHB (Streptokokken) hinzugefügt 2 Verdünnung: mit der doppelten Endkonzentration weil Zugabe von Impfgut (Schritt 4.3) werden in einem 1 führen. Siehe Spalten 6 und 7 in Tabelle 2 </strong&gt;. </li></ol> 3. Bereiten Sie MIC Panels <ol><li> Geben Sie 50 ul jeder in Schritt 2.3 vorbereitet Dalbavancin Lösung in die entsprechenden Wells der MIC-Panel und schließen Medien nur in einem gut (Wachstumskontrolle). Ein Mehrkanal-Pipette mit einer sterilen Pipettenspitzen können für diesen Schritt verwendet werden. </li><li> Verwenden Platten sofort oder Dichtung mit Kunststofffolie, in Plastiktüten und sofort in einem nicht-Abtauen Gefrierfach legen bei ≤-20 ° C (vorzugsweise bei ≤-60 ° C), bis sie benötigt. Wenn gefrorene Platten verwendet werden, entfernen Sie Dichtungen und legen einzelnen Platten auf Labortisch für 15-30 min (bis weit Inhalts aufgetaut werden), bevor Sie mit Panel Inokulation. </li></ol> 4. Impfen MIC Panels, Führen Reinheit und Setup Koloniezahl <ol><li> Wählen Sie mehrere gut isolierte Kolonien von einer 18-24 h Blutagar oder andere nicht-selektiven Agar-Platte. Tippen Sie auf die oben auf jeder Kolonie mit einer sterilen Schleife oder Tupfer und Transfer zum 1-5 ml CAMHB oder saline bis eine Trübung entspricht einem 0,5-McFarland-Standard. Beurteilen Trübung durch visuellen Vergleich mit dem 0,5 McFarland oder mit einem photometrischen Gerät. </li><li> Innerhalb von 15-30 min Vorbereitungs verdünnt das Inoculum 1: 100 in CAMHB (100 ul in 10 ml CAMHB). Für die meisten Bakterien, gegen Dalbavancin getestet, mit der Ausnahme von S. pneumoniae wird diese Verdünnung einen Abschluss gut Konzentration von 5 × 10 5 CFU / ml (akzeptierbare Bereich 2-8 × 10 5 CFU / ml). Für S. pneumoniae ist die bakterielle Konzentration basierend auf dem Vergleich der Trübung, um eine 0,5 McFarland typischerweise wesentlich weniger daher verdünnt das Inokulum 1.25 (400 ul in 10 ml CAMHB + 10% + LHB). </li><li> Innerhalb von 15 Minuten nach der Inokulumzubereitung, Transfer 50 ul der endgültige Inokulum in jede Vertiefung (mit Ausnahme der Sterilitätskontrolle auch) der MIC-Panel in Schritt 3 vorbereitet Ein Mehrkanal-Pipetten mit sterilen Spitzen können für diesen Schritt verwendet werden. </li><li> Führen Sie eine Reinheitskontrolledurch die Übertragung und Verbreitung einer 1-10 ul-Aliquot aus der positiven Wachstumskontroll-Vertiefung mit einer sterilen Schleife zu einer nicht-selektiven Agar (zB Trypticase-Soja-Agar mit 5% Schafblut). </li><li> Setup-Koloniezahl, indem 10 &amp; mgr; l aus der Wachstumskontrolle mit einem einzigen Kanal Pipette und sterile Spitze und Transfer in 10 ml Kochsalzlösung (1: 1000 Verdünnung). Mischen Sie und Transfer 100 ul mit einem Einkanal-Pipette und sterile Spitze an eine geeignete, nicht-selektiven Agar-Medium (zB Trypticase-Soja-Agar mit 5% Schafblut) und über die gesamte Agaroberfläche verteilt mit einer sterilen Schleife, wiederholen zweimal in verschiedenen Richtungen um eine gleichmßige Verteilung des Inokulums (1:10 Verdünnung) zu gewährleisten. </li></ol> 5. Inkubieren MIC Panels, Koloniezählung und Reinheit Teller <ol><li> Dichten Sie jeden MIC Tafel oder Stapel von nicht mehr als 4 Platten in einem Plastikbeutel, mit Kunststoffband oder mit einem eng anliegenden Kunststoffabdeckung vor der Inkubation. Alternativ platzieren leere MIC-Panel auf der top der Stapel von nicht mehr als 4 MIC-Panels, legen Sie einen feuchten Papiertuch in einem Kunststoffbehälter, Ort, MIC-Panels in den Kunststoffbehälter und in der Nähe Behälter sicher mit Deckel. </li><li> MIC Platten in einem Umgebungsluft-Inkubator bei 35 ° C ± 2 ° C für 16-20 h (Staphylokokken und Enterokokken) und 20-24 h (Streptokokken) innerhalb von 30 min der Inokulation. Inkubieren Sie die Koloniezahl und Reinheit Platten unter den gleichen Bedingungen, außer Inkubat Streptokokken in einer 5% CO 2 Inkubator. </li></ol> 6. Lesen Sie den MIC und Colony Count Plates; Überprüfen Reinheit Teller <ol><li> Lesen des MIC als die niedrigste Konzentration, die vollständig hemmt das Wachstum von Bakterien in den Vertiefungen durch das bloße Auge erkannt. </li><li> Graf Kolonien auf der Koloniezahl Platte. Multiplizieren jede Kolonie durch Verdünnungsfaktor (1: 10.000) (zB 50 Kolonien äquivalent zu 5 x 10 &amp; sup5; CFU / ml). Ein akzeptabler Bereich 20-80 Kolonien (2-8 x 10 5 CFU / ml) und wird als ein appro verwendetximate Leitlinie. </li><li> Überprüfen Sie die Reinheit Platte. Wenn alle Kolonien ähnlich wie die in Schritt 4.1 verwendet Kolonien sind, dann können das Inokulum als rein angesehen werden. Wenn es irgendwelche anderen vorhandenen Kolonien, dann gibt es Potenzial für eine Verunreinigung in dem MIC-Panel vorhanden sein, und der Test sollte wiederholt werden. </li></ol> 7. Prüfen Ergebnisse der Qualitätskontrolle. <ol><li> Siehe Tabelle 3 für die erwarteten Bereiche der CLSI Qualitätskontrollstämme. Nur Bericht Ergebnisse der Test-Isolaten, wenn Dalbavancin MIC-Ergebnisse für die Qualitätskontrolle Organismus (en) sind im erwarteten Bereich. </li><li> Wenn eine MIC von ≥0.25 ug / ml für jede klinische S erhalten aureus zu isolieren, wiederholen Sie den Dalbavancin MIC-Tests und / oder zu senden an ein Referenzlabor für die Prüfung. </li></ol>

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</ol>

Sandra McCurdy ist Mitarbeiter von Durata Therapeutics; Laboratory Specialists, Inc., Arbeitgeber von Laura Koeth und Jeanna Fisher, wurde von Durata Therapeutics unter Vertrag, das Manuskript vorzubereiten. Publikationskosten für diesen Artikel wurden vom Labor Specialists, Inc. bezahlt

Die folgenden Verfahren Details werden für zusätzliche Überlegungen bei der Vorbereitung für Dalbavancin MHK-Bestimmung. Das Design des MIC Panel wird abhängig von der Anzahl von antimikrobiellen Mitteln zu prüfenden (das heißt., Dalbavancin allein oder mehrere Agenten) und die Bakterienspezies getestet werden kann. Die Dalbavancin Konzentrationen sollten die interpretative Haltepunkte für alle für mindestens eine QC-Stamm erwartet Bakterienarten getestet werden und den gesamten Bereich der Verdünnungen zu umfassen. Die antimikrobielle Verdünnungsreihe entweder in Zeilen oder Spalten, je nach Anzahl antimikrobieller Mittel und / oder isoliert / Platte und das Verfahren der Inokulation durchgeführt werden. Das Volumen des Pulvers und Dalbavancin Brühe berechnet werden sollte, um sicherzustellen, daß optimale Mengen produziert und Abfall ist gering. Für die in dieser Publikation verwendeten Beispiel werden die Umsätze auf Herstellung von zwei MIC-Panels basiert. Kation eingestellt Mueller-Hinton-Brühe sollte nach Mann vorbereitet und autoklavierbarsteller Anweisungen und Sterilität der Medien überprüft. MIC-Panels hergestellt und am selben Tag der Herstellung verwendet werden oder sie können mit entsprechenden Qualitätskontrollorganismen und der validierten Platten gefroren gelagert für die zukünftige Verwendung zu prüfen. Es ist wichtig, sterile Techniken in dem Verfahren zu verwenden. Es gibt keine strengen Kriterien für die Überprüfung der Inokulumkonzentration mit Koloniezahlen. Koloniezählungen kann zunächst für jede getestete und / oder in regelmäßigen Abständen, um den Verdünnungsschritt in Schritt 4.2 durchgeführt zu validieren Arten überprüft werden. Es ist wichtig, dass die Gültigkeit des 0,5 McFarland Standard wird auch routinemäßig mit E. geprüft coli ATCC 25922 mit einem Verfahren ähnlich wie in Schritt 4.5. Wenn die Ergebnisse nicht gleichwertig sind 1-2 x 10 8 KBE / ml, ein neuer 0,5-McFarland-Standard sollte erhalten werden. Wenn die Koloniezählungen von MIC Vertiefungen außerhalb des akzeptablen Bereichs (2-8 × 10 5 CFU / ml und MIC-Ergebnisse für die klinische Isolat (e) variieren von the erwarteten Normalverteilung (z. 0,03 bis 0,12 ug / ml für S. aureus) und / oder MIC-Ergebnisse für die Qualitätskontrolle Isolat (n) außerhalb des erwarteten Bereiche ist Validierungstests notwendig und Verfahren Änderung gerechtfertigt sein. Es wird vorgeschlagen, dass eine validierte 0,5 McFarland-Standard verwendet, um die Koloniezahl (n) zu wiederholen und wenn die Ergebnisse wieder außerhalb der erwarteten Ergebnisse sollte das Inokulum Verdünnung wie in Schritt 4.2 durchgeführt entsprechend angepasst werden, und die MIC wiederholt. Beachten Sie, dass eine Reinheitskontrolle ist notwendig, auch wenn eine Koloniezahl wird durchgeführt, weil die Koloniezahl Prozedur verwendet eine verdünnte Volumen, das nicht unbedingt niedrigere Konzentrationen von kontaminierenden Organismen erkennen kann. Für eine MIC-Test als gültig betrachtet werden, müssen akzeptablen Wachstum in der Wachstumskontrolle erfolgen. Für die meisten Bakterien, die gegen Dalbavancin getestet werden (dh., Staphylokokken, Streptokokken und Enterokokken, Wachstum wird als Schaltfläche (in der Regel&gt; 2 mm) und weniger fr gesehen werdenequently kann das Wachstum als Trübung in der gut angezeigt. Im Gegensatz zu einigen antimikrobiellen Mitteln, die zeigen können nachlaufende Wirkung wie Konzentrationen zu erhöhen, werden Dalbavancin Endpunkte in der Regel gut definiert. Es gibt verschiedene Betrachtungsvorrichtungen vorgesehen, um das Lesen microdilution Tests zu erleichtern, die verwendet werden, um Dalbavancin enthaltenden Platten, solange es keinen Kompromiss in der Fähigkeit, das Wachstum in den Vertiefungen zu erkennen gelesen werden kann. Die kritischen Schritte im Rahmen des Protokolls sind die Teile des Verfahrens, das zur Löslichkeit Dalbavancin und Zugabe von P80 verbunden sind verwandt. Wichtig ist, daß die maximale Konzentration des Dalbavancin verwendet nicht größer ist als 1,600 &amp; mgr; g / ml, dass DMSO als Lösungsmittel, bevor die Brühe Verdünnungen verwendet wird und daß Zwischenkonzentrationen werden in DMSO hergestellt, daß die Endkonzentration von DMSO in dem MIC Platte Vertiefungen nicht größer ist als 1%. DMSO ist hygroskopisch und daher der Einsatz von älteren Flaschen DMSO war consideratIonen hinsichtlich Dalbavancin Löslichkeit. Doch während ein kleiner BMD-Studie mit Qualitätskontrollstämme hat gezeigt, nicht auf eine wichtige Variable sein (siehe Ergebnisteil), ist es gute Praxis, um neue oder kürzlich eröffnete Flaschen DMSO zu verwenden. Es ist auch wichtig, dass P80 ist mit der Brühe in dem letzten Schritt des Arzneimittelverdünnung Herstellung zugesetzt und in einer Endkonzentration von 0,002% in der MIC gut. Die BMD-Verfahren, die hier verwendet Vorbereitung der MIC-Panels mit 50 ul / Vertiefung in Dalbavancin und P-80-Konzentrationen zweimal die endgültige Konzentration und Zugabe von Impfgut mit 50 ul / Vertiefung, so dass Endvolumen / Vertiefung 100 ul. Dieses Verfahren ermöglicht eine MIC Tafelformat für das Testen von sowohl S. hergestellt werden aureus und S. pneumoniae weil die lysiertem Pferdeblut kann das Inokulum hinzugefügt. Alternative Methoden zur Herstellung von MIC Platten mit 100 ul / Vertiefung unter Zusatz von bis zu 10 ul / Vertiefung in der beschriebenenCLSI und ISO-Verfahren. Die Dalbavancin anfällig Haltepunkt für S. aureus ist ≤0.12 ug / ml (FDA Packungsbeilage). Wie es in den letzten Überwachungs gezeigt, sind die Mehrzahl der Isolate Dalbavancin in Konzentrationen von 0,06 ug / ml 15 gehemmt. Mit einem anfälligen Haltepunkt in der Nähe des modalen MIC kann jede Variation MIC infolge Verfahren Unterschiede Suszeptibilität Raten auswirken. Da der BMD Verfahren für Dalbavancin enthält einige einzigartige Schritte (genauer gesagt, die Verwendung von DMSO in Vorbereitung der Lager und Zwischenwirkstoffverdünnungen und 0,002% P80 in der MIC gut, ist es unerlässlich, dass das Verfahren genau befolgt werden. Die S. aureus QC Organismus (ATCC 29213) mit einer sehr klaren Dalbavancin modalen MIC von 0,06 ug / ml, ist ein guter Indikator für die Verfahrensvariante und sollte routinemäßig verwendet, um die BMD Methode zu bestätigen. Wenn MIC Ergebnisse werden mit dem erwarteten Bereich von 0,03-0,12 g / ml, sind aber tendiert entweder an den niedrigen oder high Seite dieses Bereichs liegt, wird eine weitere Validierung der Methode gerechtfertigt. Die Zugabe von 0,002% P80 wird für alle relevanten grampositive Organismen empfohlen (staphylococcci, Enterokokken und Streptokokken.) Es ist jedoch bemerkenswert, dass es wurde gezeigt, dass Pferdeblut lysiert wirkt ähnlich wie P-80, bezogen auf seine Anti-Bindungs Fähigkeit und daß die Zugabe von P-80 bis + CAMHB LHB keinen zusätzlichen Effekt auf Dalbavancin Streptokokken MIC-Ergebnisse. Es gibt derzeit keine Plattendiffusionsverfahren zum Testen Dalbavancin und wegen der schlechten Korrelation von BMD und AD Ergebnisse, Empfindlichkeitsprüfung von Dalbavancin mit dem AD-Verfahren wird nicht empfohlen, 12, 14. Der BMD-Methode sollte für die Zukunft Einschätzung Dalbavancin Anfälligkeit verwendet werden und als Goldstandard für die Entwicklung der kommerziellen antimikrobielle Empfindlichkeitstests.

Dalbavancin ist ein halbsynthetisches lipoglycopeptide die von der FDA Mai 2014 für die Behandlung von akuten bakteriellen Haut- und Hautstruktur-Infektionen durch grampositive Organismen 1 verursacht genehmigt wurde. Das primäre Ziel der Detaillierung diese Methode in einer Video-Format ist es, klare Leitlinien zu den klinischen Labors und Wissenschaftler für die Prüfung und Berichterstattung über genaue und reproduzierbare Dalbavancin Anfälligkeit Ergebnisse zu liefern. Die Bestimmung eines antimikrobiellen Mittels MIC durch kommerzielle Verfahren routinemßig in klinischen Laboratorien zur Beurteilung der in-vitro-Aktivität des Agenten gegen pathogene Bakterien durchgeführt. Die hier beschriebene Methode ist die Bouillon-Mikroverdünnungsverfahren, wie durch CLSI und ISO 2,3,4 empfohlen. Seit Dalbavancin kommerziellen Anfälligkeit Verfahren sind derzeit nicht erhältlich (zum Zeitpunkt dieser Veröffentlichung) und Disk Diffusion und Agar-Verdünnungsverfahren sind derzeit nicht empfohlen foder Dalbavancin, sind Referenzbouillonverdünnungsverfahren die gegenwärtigen Möglichkeiten 12,14. Da diese Referenzmethode ist keine kommerzielle und FDA in vitro-Diagnoseverfahren, klinische Labors in den USA, die dieses Verfahren für die Patiententests verwenden müssen von regulatorischen Anforderungen für ein Labor entwickelten Tests (LDT) einzuhalten. Es wird erwartet, dass, wie die Dalbavancin Nutzung steigt, mehr Labors wird eine Notwendigkeit, diese Verbindung zu testen. Vancomycin Testen als Ersatz für die Bestimmung der Empfänglichkeit von S. Dalbavancin aureus wurde validiert 5. Jedoch kann Dalbavancin gegen Vancomycin Zwischen S. aktiv sein aureus (VISA) und daher kann Kliniker Dalbavancin MIC Ergebnisse verlangen. Zusätzlich kann MIC-Ergebnisse für andere Bakterienarten angefordert werden. Die FDA anfällig Haltepunkt für Dalbavancin gegen S. aureus wurde auf ≤0.12 ug / ml festgestellt. FDA zugeordnet nur susceptible Kategorie, da der Mangel an Daten über resistente Isolate. Die normalen MIC Verteilung unter den Wildtyp-S aureus-Isolaten ist zwischen 0,03 bis 0,12 ug / ml, mit einem klaren modalen MIC von 0,06 ug / ml. Eine leichte Veränderung der MIC Ergebnisse durch Verfahren Differenz, zusätzlich zu der inhärenten BMD Variation ± eine Verdünnung, die möglicherweise haben könnte erhebliche Auswirkungen auf die Anfälligkeit Raten. 6 Ähnlich wie bei anderen lipoglycopeptide Mittel, können Dalbavancin Empfindlichkeitsprüfung anspruchs als Folge sein der Löslichkeit und der relativ großen Grße des Moleküls und seine Bindungseigenschaften 7.8.9. Die hier beschriebenen Referenz BMD Verfahren umfasst zwei spezifische Schritte, die einzigartig für unlösliche Wirkstoffe und / oder lipoglycopeptide Mittel sind: (1) die Verwendung von DMSO zur Herstellung von Stammlösungen und (2) Zugabe von 0,002% P-80 in der endgültigen MIC Panel Verdünnungen. Das Ziel dieser Veröffentlichung ist die Video Klarheit in den Dalbavancin BMD Verfahren und Spezifika bereitzustellenlly konzentrieren sich auf diese wichtigen Schritte, um genaue und reproduzierbare MIC Ergebnisse zu gewährleisten.

<table><tbody><tr><td>Dalbavancin</td><td>Metrics, Inc.</td><td>Greenville, NC</td><td>BI-397</td></tr><tr><td>Vancomycin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>St. Louis, MO</td><td>C5793</td></tr><tr><td>Kationenangepasste Mueller Hinton Brühe</td><td>Becton Dickinson</td><td>Sparks, MD</td><td>212322</td></tr><tr><td>Lysiertes Pferdeblut</td><td>Cleveland Scientific</td><td>Bath, OH</td><td></td></tr><tr><td>Dose-it peristaltische Pumpe</td><td>Integra Biosciences</td><td>Hudson, NH</td><td></td></tr><tr><td>Mehrkanalpipette (Viaflo II)</td><td>Integra</td><td>Hudson, NH</td><td>4164</td></tr><tr><td>12-Kanal-Pipette (Matrix)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>Einkanalpipetten (Ovation 10 & micro; L - 100 &Mikro; l)</td><td>VistaLab</td><td>Brewster, NY</td><td></td></tr><tr><td>96-Well-Mikrotiterplatte</td><td>Greiner Bio-one</td><td>Monroe, NC</td><td></td></tr><tr><td>650161 50 ml Zentrifugenröhrchen mit flacher Kappe mit konischem Boden</td><td>ThermoFisher</td><td>Scientific Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>16x125 mm Einweg-Glasröhrchen</td><td>ThermoFisher</td><td>Scientific Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>12x17 mm Schnappverschluss, Styroporröhrchen</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>16 ml Zentrifugenröhrchen</td><td>BioExpress</td><td>Kaysville, UT</td><td>C-3394-2</td></tr><tr><td>Reagenzreservoire</td><td>Integra Biosciences</td><td>Hudson, NH</td><td>4312</td></tr><tr><td>Einweg-SterilelLoops (1 & Mikro; L & 10 & Mikro; l)</td><td>Biologix</td><td>Lenexa, KA</td><td>65-0001,65-0010</td></tr><tr><td>Tryptischer Soja-Agar + 5% Schafsblut</td><td>Becton Dickinson</td><td>Sparks, MD</td><td></td></tr><tr><td>Inkubator (Umgebungstemperatur)</td><td>Sanyo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inkubator (5% CO2)</td><td>Sanyo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Analysenwaage&nbsp;</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>Handschuhe</td><td>Kimberly-Clark</td><td></td><td>52817</td></tr><tr><td>Laborkittel</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

eine referenz broth mikrodilutionsverfahren für dalbavancin<em&gt; in-vitro-</em&gt; empfindlichkeitsprüfung von bakterien, die wachsen aerob

A Reference Broth Microdilution Method for Dalbavancin In Vitro Susceptibility Testing of Bacteria that Grow Aerobically

Antimikrobielle Empfindlichkeitstests (AST) ausgeführt, um die in vitro-Aktivität von Antibiotika gegen verschiedene Bakterien zu beurteilen. AST-Ergebnisse, die als minimale Hemmkonzentration (MHK), ausgedrückt werden, werden in der Forschung zur Entwicklung und Überwachung antimikrobielle Resistenzentwicklung und bei der klinischen Einstellung für die antimikrobielle Therapie Führung verwendet. Dalbavancin ist ein halbsynthetisches lipoglycopeptide antimikrobielle Mittel, die Mai 2014 von der Food and Drug Administration (FDA) für die Behandlung von akuten bakteriellen Haut- und Hautstruktur-Infektionen durch Gram-positive Organismen verursacht genehmigt wurde. Der Vorteil Dalbavancin über aktuelle Anti-Staphylokokken-Therapien ist die lange Halbwertszeit, die für die Dosierung einmal pro Woche erlaubt. Dalbavancin eine Aktivität gegen Staphylococcus aureus (einschließlich Methicillin-empfindlichen S. aureus [MSSA] und Methicillin-resistente S. aureus [MRSA]), Koagulase-negative Staphylokokken, <em&gt; Streptococcus pneumoniae, Streptococcus anginosus Gruppe, β-hämolytischen Streptokokken und Enterokokken Vancomycin empfindlich. Ähnlich wie bei anderen bisherigen lipoglycopeptide Mittel, Optimierung CLSI und ISO Brühe Empfindlichkeits-Testverfahren umfaßt die Verwendung von Dimethylsulfoxid (DMSO) als Lösungsmittel bei der Herstellung von Stammlösungen und Polysorbat 80 (P80), um die Haftung des Mittels an Kunststoff zu vermindern. Vor den klinischen Studien und in der Anfangsphase der Entwicklung Dalbavancin wurden Anfälligkeit Studien nicht mit der Verwendung von P-80 durchgeführt und die MIC-Ergebnisse tendenziell 2-4-fach höher und entsprechend höheren MIC Ergebnisse wurden mit dem Agar-Verdünnungs Suszeptibilität Verfahren erhalten. Dalbavancin wurde erstmals im CLSI-Bouillon-Mikroverdünnungsmethode Tische im Jahr 2005 aufgenommen und im Jahr 2006 geändert, um die Verwendung von DMSO und P-80 zu klären. Die Brühe microdilution (BMD) hier gezeigte Verfahren ist spezifisch für Dalbavancin und ist in Übereinstimmung mit den CLSI und ISO-Verfahren, mit Schritt-für-Schritt-Detail und focuns auf die kritischen Schritte hinzugefügt für Klarheit.

Standardisiert MIC Methoden sind, um die Resistenzentwicklung, ein wichtiges Ziel der verschiedenen antimikrobiellen Überwachungsprogramme überwachen notwendig. Dalbavancin MIC Ergebnisse für Isolate in Europa und USA im Zeitraum 2011-2013 gesammelt wurden &lt;0,25 ug / ml für 99,9% der S. aureus und 100% der Streptokokken (Tabelle 4). Um die Bedeutung der Verwendung von frischem (versiegelt) DMSO, dreifacher Prüfung von Dalbavancin BMD MICs für QC-Stämme S. bewerten aureus ATCC 29213 und E. faecalis ATCC 29212 und Dublettenprüfung für S. pneumoniae ATCC 49619 wurde unter Verwendung von (1) DMSO von versiegelten Ampullen, (2) DMSO aus einer 1 l-Flasche, die in dem Ablaufdatum war und zuvor für 2 Jahre und verwendet worden (3) ein Aliquot des DMSO aus dem gleichen 1 l Flasche (Probe 2), der erlaubt wurde, in einem offenen Becherglas für 72 Stunden vor der Verwendung zu sitzen. Dalbavancin MIC Ergebnisse mit Platten mit allen drei DMSO Proben hergestellt waren ähnlich und wnnerhalb die akzeptablen QC Bereiche (Tabelle 5). Der Verlust Dalbavancin Aktivität nach Exposition der Stammlösung auf Kunststoff und ohne die Zugabe von P-80 wurde gut dokumentiert. 7 In 2 weiteren Studien wurde die Zugabe von P-80 in den anfänglichen und mittleren Stammlösungen (Tabelle 6) und die Verwendung von Glas oder Kunststoffrohre für die Herstellung der anfänglichen und mittleren Stammlösungen (Tabelle 7) keine Auswirkung auf haben die Dalbavancin MIC Ergebnisse. Es gab auch keinen Einfluss auf Dalbavancin MIC Ergebnisse, wenn Polypropylen und Polystyrol-Platten von drei Herstellern wurden verwendet (Tabelle 7). Die Anwesenheit von lysiertem Pferdeblut in die Brühe Medien zur Prüfung von Streptokokken wurde gezeigt, dass ein oberflächenaktives Mittel-artige Aktivität, vergleichbar mit P-80 7, 8 haben. Die Dalbavancin Referenzmethode für Streptokokken nicht schließen sowohl P-80 und mit lysiertem Pferdeblut .Jedoch anders als Staphylokokken und Enterokokken Dalbavancin MIC-Ergebnisse für Streptokokken sind ähnlich (innerhalb +/- 1 Verdünnung) mit und ohne die Zugabe von P-80. Wie zuvor dargestellt worden und in Figur 1 gezeigt, Dalbavancin Agarverdünnung (AD) MICs sind typischerweise 2-8 mal höher im Vergleich zum derzeitigen BMD Bezugszeichen 12, 13, 14. Im Gegensatz zu BMD, die Zugabe von 0,002% P-80 nicht beeinflussen Dalbavancin AD MIC führt 12. <img alt="Gleichung 1" src="/files/ftp_upload/53028/53028eq1.jpg" /> Gleichung 1: Beispiel für Dalbavancin Stammlösung Vorbereitung Vorbereitung Schritte für 25 ml von 800 ug / ml Dalbavancin Lösung.. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/53028/53028fig1.jpg" /> Abbildung 1. Vergleich der Dalbavancin und Vancomycin BMD AD. Die Ergebnisse der Studie, die im Vergleich dalbavancin und Vancomycin BMD und AD MIC Ergebnisse für ausgewählte Gram-positive bakterielle Isolate. Durchschnittlich (A) Dalbavancin und (B) Vancomycin Broth Mikrodilution und Agar-Verdünnungs MIC Ergebnisse in pg / ml für 15 Staphylococcus aureus, 8 Koagulase negative Staphylokokken (CNS), 5 Enterococcus faecalis und 14 Streptokokken (Gruppen A, B und C). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53028/53028fig1highres.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td></td><td> 1 </td><td> 2 </td><td> 3 </td><td> 4 </td><td> 5 </td><td> 6 </td><td> 7 </td><td> 8 </td><td> 9 </td><td> 10 </td><td> 11 </td><td> 12 </td></tr><tr><td> EIN </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL; 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> B </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> C </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> D </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> E </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td&gt; <td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> F </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> G </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> H </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> DAL </td><td colspan="2"> Dalbavancin </td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td&gt; </td><td></td></tr><tr><td></td><td colspan="12"> Konzentrationen sind in ug / ml nach 50 ul / Vertiefung angegeben Inokulation </td></tr></tbody></table> Tabelle 1 MIC-Platte-Format. Die 96-Well-Plattenformat, die Position der Dalbavancin Verdünnungen und positiven Kontrollvertiefungen als Beispiel in diesem Video-Veröffentlichung verwendet <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 1 </td><td> 2 </td><td> 3 </td><td> 4 </td><td> 5 </td><td> 6 </td><td> 7 </td><td> 8 </td></tr><tr><td> Quelle Conc. (ug / ml) </td><td> Volume Quelle (ml) </td><td> Volumen DMSO (ml) </td><td> Zwischen Conc. in DMSO (ug / ml) </td><td> Volume Intermediate Conc. (ml) </td><td> Volumen CAMHB + 0,004% P80 * (ml) </td><td> 2X Conc. Nach dem 1: 100 Verdünnung in CAMHB (ug / ml) </td><td> Schlusssteuerung Conc. Nach der Inokulation (ug / ml) </td></tr><tr><td> 800 </td><td> 1.0 </td><td>1.0 </td><td> 400 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 4 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> 400 </td><td> 0,5 </td><td> 0,5 </td><td> 200 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 2 </td><td> 1 </td></tr><tr><td> 400 </td><td> 0,5 </td><td> 15 </td><td> 100 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 1 </td><td> 0,5 </td></tr><tr><td> 400 </td><td> 0,5 </td><td> 3.5 </td><td> 50 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,5 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> 50 </td><td> 0,5 </td><td> 0,5 </td><td> 25 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,25 </td><td> 0,125 </td></tr><tr><td> 50 </td><td> 0,5 </td><td> 15 </td><td> 12,5 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,125 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 50 </td><td> 0,5 </td><td> 3.5 </td><td> 6.25 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> 6.25 </td><td> 0,5 &lt;/ td&gt; <td> 0,5 </td><td> 3.13 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 6.25 </td><td> 0,5 </td><td> 15 </td><td> 15 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,015 </td><td> 0,008 </td></tr><tr><td> 6.25 </td><td> 0,5 </td><td> 3.5 </td><td> 0.8 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,008 </td><td> 0,004 </td></tr><tr><td> 0.8 </td><td> 0,5 </td><td> 0,5 </td><td> 0,4 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,004 </td><td> 0,002 </td></tr><tr><td colspan="5"> Diese Tabelle wurde von CLSI M100-S25, Tabelle 8B 3 geändert worden </td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table> Tabelle 2. Schema zur Herstellung von Verdünnungen von wasserunlöslichen Antimicrobial Agents in Broth Verdünnungen Empfindlichkeitsprüfung angewendet werden. Volumes von Dalbavancin Arbeitslösungen und Verdünnungsmittel zur Herstellung der endgültigen MICDalbavancin Lösungen von 0,002-2 ug / ml. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> Qualitätskontrollstamm </td><td> Erwartete Dalbavancin MIC (ug / ml) </td></tr><tr><td> S. aureus ATCC 29213 </td><td> 0,03-0,12 </td></tr><tr><td> E. faecalis ATCC 29212 </td><td> 0,03-0,12 </td></tr><tr><td> S. pneumoniae ATCC 49619 </td><td> 0,008-0,03 </td></tr></tbody></table> Tabelle 3. Erwartete Dalbavancin MIC Ergebnisse für die Qualitätskontrolle Stämme 3, 11. CLSI Ergebnisse der Qualitätskontrolle für die vorgeschlagenen Stämme zusammen mit klinischen Isolaten, um die richtige Methode geprüft werden, ob <img alt="Tabelle 4" src="/files/ftp_upload/53028/53028table4.jpg" /> Tabelle 4. Verteilung Dalbavancin MIC Ergebnisse (Anzahl an jedem MIC) aus den USA und Europa 2011-2013 Surveillance Study 15. Dalbavancin MIC Ergebnisse aus einer veröffentlichten Studie von neuen klinischen Isolate als Indikator der aktuellen Dalbavancin in vitro Aktivität. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><colgroup></colgroup><tbody><tr><td rowspan="2"> Isolieren # </td><td colspan="3"> Dalbavancin MIC (ug / ml) </td></tr><tr><td> DMSO 1 </td><td> DMSO 2 </td><td> DMSO 3 </td></tr><tr><td rowspan="3"> S. aureus ATCC 29213 </td><td> 0,12 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 0,12 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td rowspan="3"> E. faecalis ATCC 29212 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td rowspan="2"><em&gt; S. pneumoniae ATCC 49619 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td colspan="4"> DMSO 1 = Ungeöffnete Flamme versiegelt 10 ml Ampullen </td></tr><tr><td colspan="2"> DMSO 2 = häufig geöffnet 1L Flasche </td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> DMSO 3 = häufig geöffnet 1L bottle - saß auf der Bank im unbedeckten Becherglas 72 Stunden </td></tr></tbody></table> Tabelle 5. Dalbavancin MIC Ergebnisse (ug / ml) unter Verwendung von DMSO Lizenz und Intermediate Verdünnungen Vorbereitung mit DMSO aus 3 Quellen. Ergebnisse einer Dalbavancin MIC Studie, die Wirkung der Verwendung von verschiedenen DMSO Lösungsmittel bei der Herstellung der Dalbavancin Lager und Zwischen Verdünnungen verglichen. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td rowspan="2"> Isolieren Anzahl </td><td rowspan="2"> Replizieren Anzahl </td><td colspan="2"> Dalbavancin MIC (ug / ml) </td></tr><tr><td> DALB w / P80 in DMSO </td><td> DALB W / O-P80 in DMSO </td></tr><tr><td rowspan="4"> S. aureus ATCC 29213 </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> S. aureus klinischen DP80-002SA </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> S. aureus ATCC 700699 </td><td> 1 </td><td> 0,5 </td><td> 0,5 </td></tr><tr><td rowspan="4"> S. pneumoniae ATCC 49619 </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td>S. pyogenes klinischen: </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DP80-004PY </td><td> 1 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> DP80-005PY </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-006PY </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> DP80-007PY </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-008PY </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> S. agalactiae klinischen: </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DP80-009AG </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,12 </td></tr><tr><td> DP80-010AG </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-011AG </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> DP80-012AG </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> S. dysgalactiae clinical DP80-013DY </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> S. pneumoniae klinisch: </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DP80-014SP </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> DP80-015SP </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-016SP </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-017SP </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr></tbody></table> Tabelle 6. Dalbavancin MIC Ergebnisse unter Verwendung von DMSO Lizenz und Intermediate Verdünnungen Vorbereitung mit und ohne 0,002% P-80. Ergebnisse einer Dalbavancin MIC Studie, die Wirkung der Zugabe von 0,002% P-80 auf Lager und Zwischenverdünnungen Dalbavancin verglichen. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td rowspan="3"> Isolieren </td><td rowspan="3"> Replizieren Anzahl </td&gt; <td colspan="4" rowspan="2"> Auf Verdünnungsröhrchen </td><td colspan="4"> Mikrotiterplatte (Kunststoff Art) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Poly-Propylen, Greiner </td><td colspan="3"> Polystyrol </td></tr><tr><td> Scheibe </td><td> Plastic </td><td> Kunststoff 1 Stunde </td><td> Kunststoff 1 Std / 1 Std Intermediate </td><td> Greiner </td><td> Corning </td><td> Nunc </td></tr><tr><td rowspan="3"> S. aureus ATCC 29213 </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td rowspan="3"> E. faecalis ATCC 29212 </td><td&gt; 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td rowspan="2"> S. pneumoniae ATCC 49619 </td><td> 1 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,008 </td><td> 0,008 </td><td> 0,008 </td><td> 0,008 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,008 </td><td> 0,015 </td><td> 0,008 </td><td> 0,008 </td></tr><tr><td colspan="10"> Glass = Anfangsbestand in der Glasflasche hergestellt, verwendet sofort auf Zwischen Konzentration machens in Kunststoffröhrchen, sofort verwendet werden, um Brühe Verdünnungen zu machen. </td></tr><tr><td colspan="10"> Plastic = Anfangsbestand in Zentrifugenröhrchen aus Kunststoff hergestellt, sofort verwendet werden, um Zwischenkonzentrationen in Kunststoffröhrchen, sofort verwendet werden, um Brühe Verdünnungen zu machen. </td></tr><tr><td colspan="10"> Kunststoff 1 hr = Anfangsbestand in Zentrifugenröhrchen aus Kunststoff hergestellt, lassen Sie sich auf der Bank für 1 h dann verwendet, um Zwischenkonzentrationen in Kunststoffröhrchen, sofort verwendet werden, um Konzentrationen in der Brühe zu machen. </td></tr><tr><td colspan="10"> Kunststoff 1 h / Mittelstufe 1 hr = Anfangsbestand in Zentrifugenröhrchen aus Kunststoff hergestellt, lassen Sie sich auf der Bank für 1 h dann verwendet, um Zwischenkonzentrationen in Kunststoffrohren zu machen, lassen Sie sich auf der Bank für 1 h dann verwendet, um Konzentrationen in der Brühe zu machen. </td></tr></tbody></table> Tabelle 7. Dalbavancin MIC Ergebnisse unter Verwendung von Lizenz Verdünnungen Herstellung in Kunststoff und Glas-Tubes und MIC-Platte Kunststoff-Typen. Ergebnisse ofa Dalbavancin MIC-Studie, die Wirkung der Verwendung von Kunststoff- oder Glasrohren bei der Herstellung der Stammlösungen und Effekt der Verwendung von verschiedenen Quellen und Arten von Kunststoff für Mikrotiterplatten verglichen.

Hier präsentieren wir ein Protokoll zur Bestimmung der Dalbavancin-Suszeptibilität klinisch relevanter grampositiver Bakterien unter Verwendung einer Bouillon-Mikrodilutions-Referenzmethodik.

Eine Referenz Broth Mikrodilutionsverfahren für Dalbavancin<em&gt; In-vitro-</em&gt; Empfindlichkeitsprüfung von Bakterien, die wachsen aerob

Antimicrobial susceptibility testing (AST) is performed to assess the in vitro activity of antimicrobial agents against various bacteria. The AST results, ...

Das allgemeine Ziel des folgenden Verfahrens besteht darin, die minimale Hemmkonzentration für Dalbavancin zu bestimmen. Dazu wird die Brühen-Mikroverdünnungsmethode verwendet, wobei der Schwerpunkt auf den entscheidenden Schritten liegt, die spezifisch für Dalbavancin sind. Die Stammlösung und die Zwischenverdünnung von Dalbavancin werden in DMSO hergestellt, und die Endverdünnung erfolgt in kationengepuffertem Mueller-Hinton-Brühe, das mit Polysorbat angereichert ist.Die Verdünnungen werden in eine 96-Well-Platte abgefüllt und mit einer standardisierten Bakteriensuspension beimpft. Anschließend wird die Platte 16 bis 24 Stunden inkubiert und anschließend untersucht, um die minimale Menge an Dalbavancin zu bestimmen, die erforderlich ist, um das bakterielle Wachstum zu hemmen. Die Einhaltung dieses standardisierten Verfahrens gewährleistet konsistente Ergebnisse sowohl mit klinischen Isolaten als auch – wie hier gezeigt – mit Qualitätskontrollisolaten. Dalbavancin ist ein halbsynthetisches Lipoglycopeptid-Antimikrobiellum, das im Mai 2014 von der FDA zur Behandlung akuter bakterieller Haut- und Weichteilinfektionen, verursacht durch grampositive Organismen, zugelassen wurde.Diese Methode beschreibt das standardisierte Brühen-Mikroverdünnungs-Testverfahren zur Empfindlichkeitsprüfung von Dassin, das die Verwendung von DMSO zur Herstellung von Stammlösungen in Polysorbat 80 umfasst, um die Anlagerung des Wirkstoffs an Kunststoff zu vermindern. Eine visuelle Demonstration dieses Verfahrens ist hilfreich, da die Schritte zur Herstellung der Stammlösungen und der Mikrobenwirksamkeitskonzentrations-(MIC-)Platten von den üblichen Verfahren bei den meisten antimikrobiellen Substanzen abweichen. Diese Schritte sind spezifisch für lipophile Glycopeptid-Wirkstoffe und müssen befolgt werden, um reproduzierbare und genaue MIC-Ergebnisse zu erzielen.Die Durchführung des Verfahrens wird Gina Fisher, eine Wissenschaftlerin aus meinem Labor, demonstrieren. Bitte beachten Sie, dass bei der Durchführung des folgenden Verfahrens geeignete Sicherheitsvorkehrungen entsprechend der Biosicherheitsstufe zwei getroffen werden müssen. Beginnen Sie damit, die geeignete Menge Dalbavancin abzuwiegen, um eine Stammlösung von 800 Mikrogramm pro Milliliter herzustellen.Geben Sie die geeignete Menge reines DMSO in ein steriles Glas- oder Plastikröhrchen und überführen Sie anschließend das Pulver in das Röhrchen, dann wirbeln Sie es. Als Nächstes bereiten Sie mit der DALBAVANCIN-Stammlösung mit 800 Mikrogramm pro Milliliter die 100-fachen endgültigen MIC-Plattenkonzentrationen wie in den Spalten eins bis vier angegeben vor. Diese werden als Zwischenkonzentrationen bezeichnet.Das hergestellte Gesamtvolumen hängt von der Anzahl der MIC-Platten ab. Verdünnen Sie die Zwischenkonzentrationen abschließend im Verhältnis 1 zu 100 in kationenausgeglichener Mueller-Hinten-Brühe, auch bekannt als C-A-M-H-B, ergänzt mit 0,004 % P 80. Die resultierende Arbeitskonzentration von DALBAVANCIN und P 80 beträgt das Doppelte der Endkonzentration.Da die Zugabe des Inokulums mittels Mehrkanalpipette mit sterilen Spitzen zu einer Verdünnung im Verhältnis eins zu zwei führt, pipettieren Sie 50 Mikroliter jeder Verdünnung von Dalbavancin in die entsprechenden Vertiefungen des sterilen 96-Loch-Mikroverdünnungsplatten. Das MIC-Plattenformat ermöglicht es, acht Inokula pro Platte zu testen. Falls die Platten nicht sofort verwendet werden, verschließen Sie sie mit einer Plastikfolie, legen Sie sie in Plastikbeutel und lagern Sie sie bis zur Verwendung in einem nicht abtauenden Gefrierschrank bei mindestens minus 60 Grad Celsius.In dieser Demonstration wird eine frisch hergestellte Platte beimpft. Zur Herstellung des Inokulums wählen Sie mehrere gut isolierte Kolonien von einer 18 bis 24 Stunden alten Blutagar- oder einer anderen nichtselektiven Agarplatte aus. Hier werden Qualitätskontrollstämme von S. aria und EPHI verwendet.Berühren Sie die Oberseite jeder Kolonie mit einem sterilen Abstrichstab und überführen Sie etwas davon in ein Reagenzglas, das ein bis fünf Milliliter C-A-M-H-B oder physiologische Kochsalzlösung enthält. Fahren Sie fort, bis die Trübung innerhalb von 15 bis 30 Minuten nach der Herstellung einem 0,5-McFarland-Standard entspricht; verdünnen Sie den Inokulum dann im Verhältnis ein zu 100 in C-A-M-H-B, um eine Endkonzentration von fünf mal 10 hoch fünf KBE pro Milliliter zu erreichen. Der akzeptable Bereich liegt zwischen zwei und acht mal 10 hoch fünf KBE pro Milliliter.Unmittelbar unter Verwendung einer Mehrkanalpipette mit sterilen Spitzen 50 Mikroliter des endgültigen Inokulums in die entsprechenden Vertiefungen der MIC-Platten hier übertragen. Vier Reihen werden mit jeweils einem der beiden Isolate beimpft, insgesamt vier Wiederholungen pro Isolat. Als Nächstes zur Durchführung einer Reinheitsprüfung mit einer Pipette 1 bis 10 Mikroliter der Lösung aus der positiven Wachstumskontrolle auf ein nichtselektives Agar enthalten, wie z. B. Try-Decay-Soja-Agar mit 5 % Schafsblut übertragen.Verwenden Sie eine sterile Öse, um die Lösung auf der Oberfläche der Platte zu verteilen. Drehen Sie die Platte um 90 Grad und stricheln Sie erneut, um sicherzustellen, dass das Inokulum gleichmäßig verteilt ist. Decken Sie die Platte ab und stellen Sie sie beiseite.Zur Vorbereitung einer Koloniezählung übertragen Sie mit einer Einzelkanal-Pipette 10 Mikroliter der Lösung aus dem Wachstumskontrollbrühenansatz in 10 Milliliter Salinmischung und anschließend 100 Mikroliter auf ein geeignetes nichtselektives Agarmedium, beispielsweise Trypticase-Soja-Agar mit 5 % Schafsblut, unter Verwendung eines sterilen Öse. Verteilen Sie die Lösung gleichmäßig über die gesamte Agaroberfläche. Wiederholen Sie diesen Vorgang zweimal in unterschiedlichen Richtungen, um eine gleichmäßige Verteilung des Inokulums sicherzustellen. Danach stapeln Sie bis zu vier MIC-Platten in einem Kunststoffbehälter, wobei sichergestellt sein muss, dass die oberste Platte mit einem Deckel fest verschlossen ist.Dann legen Sie ein feuchtes Papiertuch in den Plastikbehälter und verschließen Sie ihn innerhalb von 30 Minuten nach der Inokulation sicher mit dem Deckel. Inkubieren Sie die MIC-Platten, die Koloniezählplatte und die Reinheitsprüftplatte in einem Brutschrank mit Umgebungsluft bei 35 ± 2 °C für 16 bis 20 Stunden. Am nächsten Tag bestimmen Sie die minimale Hemmkonzentration als die niedrigste Konzentration, die das bakterielle Wachstum in den Vertiefungen vollständig hemmt, wie mit bloßem Auge festgestellt wird.Bestimmen Sie die Anzahl der Kolonien auf der Koloniezählplatte. Multiplizieren Sie die gezählte Zahl mit dem Verdünnungsfaktor. Zum Beispiel entsprechen 50 Kolonien multipliziert mit einem Verdünnungsfaktor von 10.000 fünf mal 10 hoch fünf KBE pro Milliliter.Ein akzeptabler Bereich liegt zwischen 20 und 80 Kolonien, was zwei- bis achtmal 10 hoch fünf koloniebildende Einheiten pro ml entspricht. Die Konzentration des Inokulums ist eine wichtige Variable, um die Empfindlichkeitsprüfung zu kontrollieren und genaue Ergebnisse zu erhalten. Überprüfen Sie abschließend die Reinheitsplatte. Wenn alle Kolonien den als Inokulum verwendeten Kolonien ähneln, kann dies als rein betrachtet werden. Falls andere Kolonien vorhanden sind, besteht die Möglichkeit, dass eine Kontamination in der MIC-Platte vorliegt, und der Test sollte wiederholt werden. DAL bevans, die MIC-Ergebnisse wurden mit den unter Verwendung der Agri-Verdünnungsmethode erhaltenen Ergebnissen verglichen, wie hier gezeigt.Die Agri-MIC-Ergebnisse für Dal bevans liegen typischerweise zwei- bis achtmal höher als bei der Brühe. Mikroverdünnung, MIC-Ergebnisse. Dies steht im Gegensatz zu Vancomycin-Ergebnissen, die durch Brühe- und Agri-Methoden ermittelt werden.Daher wird eine Agri-Verdünnung für die Untersuchung von Dalbavancin in Brühe nicht empfohlen. Die Ergebnisse der Mikroverdünnungs-MIC für die Qualitätskontrolle sollten innerhalb der erwarteten Bereiche liegen, wie hier gezeigt. Der Qualitätskontrollstamm SS, A TCC 2 9 2 1 3, mit einer sehr klaren modalen MIC von 0,06 Mikrogramm pro Milliliter, hat sich als guter Indikator für Methodenvariationen erwiesen.Wenn die erhaltenen Ergebnisse außerhalb der erwarteten Bereiche für die Qualitätskontrollorganismen liegen oder tendenziell an das untere oder obere Ende des Bereichs heranreichen, ist eine weitere Validierung des Verfahrens erforderlich. Zusätzlich zur Validierung des Verfahrens mithilfe von Qualitätskontrollorganismen können MIC-Daten aus regionalen antimikrobiellen Überwachungsprogrammen eine Grundlage für die zu erwartenden MIC-Ergebnisse im klinischen Labor liefern. Wie hier gezeigt, lagen die Dalbavancin-MIC-Ergebnisse für Isolate, die zwischen 2011 und 2013 in Europa und den USA gesammelt wurden, für 99,9 % der SIUs und 100 % der Streptokokken unter 0,25 Mikrogramm pro Milliliter. Auf der Grundlage dieser Überwachungsdaten ist ersichtlich, dass Dalbavancin-MIC-Ergebnisse für Staphylokokken und Streptokokken, die über 0,12 Mikrogramm pro Milliliter liegen, selten sind.Wenn höhere Werte beobachtet werden, sollte der Test wiederholt und/oder zur Validierung an ein Referenzlabor geschickt werden. Die Herstellung der Stammlösung in DMSO und die Zugabe von P 80 zur Brühenverdünnung in einer Endkonzentration von 0,002 % im MIC-Testfeld sind entscheidende Schritte, um genaue und reproduzierbare Dalbavancin-MIC-Ergebnisse zu erhalten. Wie stets, aber besonders in diesem Bereich der bakteriellen Resistenzentwicklung, sind genaue Ergebnisse zur antimikrobiellen Empfindlichkeit entscheidend für die Wahl der geeigneten Therapie durch den behandelnden Arzt.

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Research

Forschung

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie und Infektion

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