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Behavior

Einem Mausmodell der Subchronische und Mild Social Niederlage Stress-for Understanding Stress-induzierten verhaltensmäßigen und physiologischen Defizite

Published: November 24, 2015 doi: 10.3791/52973

Summary

Hier, Methoden für die Entwicklung eines Maus-Modell der subchronischen und einem milden sozialen Niederlage Stress beschrieben und verwendet, um die pathogenen Eigenschaften der Depression einschließlich hyperphagia- und Polydipsie ähnliche Symptome folgenden erhöhtes Körpergewicht zu untersuchen.

Introduction

Viele Arten von belastenden Ereignissen auftreten, in den Leben der Menschen. Übermäßigen Druck oft schädliche physiologische Konsequenzen bei Menschen und Tieren. Beim Menschen belastende Ereignisse sind wichtige Risikofaktoren für die Ausfällung von psychiatrischen Erkrankungen wie Depression 1. A Global Burden of Disease Studie zeigte, dass Depression ist eine der Sperrung Störungen in Bezug auf Behinderungen bereinigte Lebensjahre (DALYs) und Jahren mit einer Behinderung 2 lebten. Darüber hinaus entfallen Depression den größten Anteil der Selbstmord DALYs 3. Menschen mit Depressionen finden es schwierig, ihr Leben zu verwalten, und als ein Ergebnis, ihre Lebensqualität verschlechtert sich oft. Daher gibt es ein starkes Bedürfnis, wirksame Arzneimittel zur Verbesserung der Lebensqualität dieser Patienten zu verbessern.

Viele Studien haben sich auf schwerer depressiver Störungen durchgeführt worden und haben gezeigt, dass die genetische Beitrag zur Krankheits susceptibility beträgt etwa 30-40%, was durch die Wirkungen mehrerer Genloci kleine Effekte 4 erläutert wird. Aufgrund der komplexen pathogenen Mechanismen zugrunde liegenden Depression, bleibt die detaillierte Ätiologie der Erkrankung schwer fassbar. Klinische Berichte zeigen, dass es Subtypen der Depression wie melancholischen und atypische Depression 5, die reduziert und erhöhtes Körpergewicht, jeweils 6 zeigen. Obwohl 25-30% und 15-30% der Patienten mit Depressionen stellen reine melancholischen und atypische Merkmale jeweils die meisten von ihnen haben gemischte Merkmale beider Subtypen 7. Daher hat die Hauptdepression ein breites Spektrum von Symptomen. Um Biomarker zu finden und zu entwickeln Ziel Therapeutika für die verschiedenen Arten von Depressionen bei Menschen, ist es wichtig, verschiedene Tiermodellen der Vertiefung 8 herzustellen.

Tiermodelle der Depression wurden eingerichtet mit mehreren Ansätzen, einschließlich gelerntHilflosigkeit, chronische unvorhersehbare milden Stress und chronischen sozialen Niederlage Stress (CSD) 9-12. Toyoda und seine Kollegen festgestellt CSDs Modelle von Ratten und Mäusen 13-17, um den Stoffwechsel und Verhaltensweisen, die im Zusammenhang mit Depressionen sind aufzuklären. Da die Tiermodellen der Depression durch Augenscheinvalidität 18 bewertet, ist der Kontext, in dem das Modell etabliert wichtig. Außerdem Golden et al. 19 berichtet, die Methoden zum Erstellen CSDS Mäusen im Detail. Es ist bekannt, dass die Defizite im Sozialverhalten der CSDS Mäusen kann durch chronische Behandlung zurückgewonnen werden, aber nicht durch eine akute Behandlung mit Antidepressiva, und dass sie gemeinsam ähnlich denen bei Patienten mit Depressionen Symptome in Bezug auf die Regulierung von brain-derived neurotrophic Faktor 6.

Goto et al. 13 zuvor entwickelten die subchronische und mild soziale Niederlage Stress (sCSDS) Mausmodell durch Änderung der MethodenGolden et al. 19. Die sCSDS Mäuse zeigen polydipsia- und Hyperphagie ähnliche Symptome folgenden Gewinne in Körpergewicht und erhöhte Körperwassergehalt 13. In diesem Bericht wird das Protokoll für die Gründung der sCSDS Maus-Modell zur Verfügung gestellt und wir besprechen die Nützlichkeit dieses Modells.

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Protocol

Die tierexperimentellen Studien wurden durch genehmigt und erfüllt die Richtlinien sowohl der Animal Care und Verwenden Ausschuss Ibaraki University und dem Ministerium für Bildung, Kultur, Sport, Wissenschaft und Technologie (MEXT), Japan (Mitteilung No.71). Eine vollständige Übersicht über das Protokoll ist in Abbildung 1 dargestellt.

1. Geräte

  1. Bereiten Sie zwei Arten von Käfigen: einen einzigen Käfig (Breite [W] × Tiefe [D] x Höhe [H] = 143 mm × 293 mm × 148 mm) und eine "soziale Niederlage (SD)" Käfig (B × T × H = 220 mm × 320 mm × 135 mm).
  2. Wie in Figur 2 gezeigt, unterteilen die SD Käfig in zwei Kammern mit einem Acryl transparente Platte Teiler (5 mm dick) mit 15 kreisförmigen Löchern (3 × 5-Matrix: 8 mm im Durchmesser).
  3. Erhalten Hobelspan Späne aus Fichten, gereinigt-Diätfutterpellets und einem Trinkwasserflasche hergestellt. Darüber hinaus erhalten Papierhandtücher, eine Maske und Latexhandschuhe. Für die soziale Interaktionstest, bereiten eine Open-field-Arena (B × T × H = 40 cm x 40 cm x 40 cm) aus grauem Polyvinylchlorid, ein Gewicht von Stahl (190 g) hergestellt, und eine Kunststoffinteraktionsfeld (W × T × H = 10 cm x 10 cm x 13 cm; 100 g) mit drei Gitterfenster (B × T = 5 cm x 5 cm) (Abbildung 3).
  4. Legen Sie eine CCD-Kamera (2,8 bis 12 mm; F ​​= 1: 1,4; 1/3 Zoll CCD) und eine automatische Tracking-System in der Verhaltens-Testraum in der Tierhaltung. Ein pass Regal für den Mäusekäfigen in der Verhaltenstestraum, um die Mäuse an die Umgebung des Testraum für mindestens 30 min zu gewöhnen.

2. Die Gewöhnung an die Umwelt

  1. Verwenden männlichen C57BL / 6JJmsSlc (B6) Mäuse, die 7 Wochen alt und männliche Slc sind: ICR (ICR) Mäusen, die mehr als 5 Monate alt und zu liefern, um die Anlage aus einem Tierzuchtunternehmen.
  2. Unabhängig voneinander bewegen zwei Gruppen von B6-Mäusen (n= 12 in jeder Gruppe) an die Einrichtung; Verwenden Sie eine Gruppe (Screener B6-Mäusen) für das Screening von aggressiven ICR-Mäuse und eine andere Gruppe (vorbehaltlich B6-Mäuse) zum Entwickeln des sCSDS Modell.
  3. Einzuführen ICR-Mäuse (n = 12) zu der Einrichtung, um ihr aggressives Verhalten zu screenen.
  4. Haus die Mäuse einzeln in Einzelkäfigen für 1 Woche im Rahmen eines 12-stündigen Licht-Dunkel-Zyklus (ca. 100 lux Leuchtstofflicht, Licht an um 8.00 Uhr) mit konstanter Temperatur (etwa 23 ° C) und Luftfeuchtigkeit (ca. 40%) um sie an die Umgebung zu gewöhnen. Partitionieren jeder Käfig durch Platzieren weiß gefärbten Kunststoffplatten zwischen den Käfigen, so daß die Mäuse nicht durch das Verhalten der benachbarten Mäuse beeinflußt.
  5. Machen gereinigten-Diätfutterpellets und Umkehrosmosewasser ad libitum zur Verfügung. Verwenden AIN-93G Chow, weil die Bestandteile von anderen reine Nahrung Pellets können variieren.
  6. Messen Sie das Körpergewicht, Nahrungsaufnahme (FI), und Wasseraufnahme (WI) der Mäuse jeden Tag. Berechnen Sie die body Gewichtszunahme (BWG) von der ersten Tag.

3 Screening von aggressiven ICR-Mäusen

  1. Nach Gewöhnung für 1 Woche, wie oben erwähnt, zu screenen die ICR-Mäuse (resident) mit Wohnsitz-Eindringlings-Tests für einen 3-min-Studie mit Screener B6-Mäusen (Eindringling, 8 Wochen alt) am Nachmittag (14: 00-17: 00) unter Beleuchtung von rund 300 Lux im Gehäuse Raum.
    1. Insbesondere prüfen jedes ICR-Maus für die drei Versuche pro Tag an 5 aufeinander folgenden Tagen (15 Studien mit insgesamt) in Richtung auf viele verschiedene B6-Mäuse wie möglich zu finden, die ICR-Mäuse zeigen eine hohe Aggression gegen die Eindringlinge. Während der Tests aufzeichnen den Angriff Latenzzeit und die Dauer der aggressives Verhalten (schnelle Bewegungen mit beißenden Angriff).
  2. Identifizieren Sie hyper-aggressive ICR-Mäusen, indem Sie die Schäden Wunden an B6 Eindringling Mäusen nach jedem Versuch.
  3. Berechnen des Verhältnisses von Versuchen, in denen der Anschlag Latenzzeit weniger als 30 Sekunden als ein erster Index der Aggression des Gastes.
  4. Calculate das Verhältnis von Versuchen, in denen der Anschlag Latenz von weniger als 3 min als zweite Index der Aggression des Gastes.
  5. Werten Sie die Aggression trifft mit dem ersten Index. Verwenden Sie den zweiten Index, wenn der erste Index ist gleich.
  6. Wählen Sie die ICR-Mäuse, die eine hohe Aggression Partituren ohne hyper-aggressives Verhalten als aggressive ICR-Mäuse hatten. Verwenden Sie die aggressive ICR-Mäusen wiederholt über die nächste Reihe von Experimenten, bis ca. 12 Monate alt sind; jedoch führen die Screening-Verfahren für aggressive ICR-Mäuse wie oben vor jedem Experiment beschrieben, um die Aggressivität des ICR-Mäusen bestätigen.
  7. Nach jeder Sitzung des Screening, notieren Sie die Grad der Verletzung der Screener B6-Mäusen. Wenn eine Maus ist verwundet, zu isolieren, die Maus in einem Käfig und die Fortschritte, die Überprüfung ihrer Körpergewichtszunahme, Nahrungsaufnahme, und Wasseraufnahme zu beobachten. Im Falle einer schweren Wunden, die Physiologie und das Verhalten bei Mäusen beeinflussen euthanize sie gemäß den IACUC Richtlinien.

4. sCSDS

  1. Einzuführen unterliegen B6-Mäuse 7 Tage vor (Tag -6) der Tag der Anfangsspannung Exposition (Tag 1) und Haus die Mäuse einzeln in Einzelkäfigen, um sie an die Umgebung zu gewöhnen.
  2. Drei Tage vor Tag 1 (am Tag -2), verschieben Sie die aggressive ICR-Mäuse in ein Fach der einzelnen SD-Käfig, der von einer Acrylteiler geteilt wird, damit die Mäuse zu etablieren ihrem Hoheitsgebiet in den SD-Käfigen (die gleiche Anzahl von Gegenstand B6 Mäuse).
  3. Teilen Sie die SD-Käfigen unter Verwendung von weißer Farbe Partitionierungsplatten, wie in der oben beschriebenen Einzelkäfig Zustand.
  4. Für unbelasteten Kontroll B6-Mäusen, bereiten SD Käfigen (die Hälfte der Anzahl von Mäusen), um die Mäuse in Paaren zu halten; stellen zwei Mäusen in jedem Abteil in einer SD-Käfig, geteilt durch den Teiler für 10 Tage.
  5. Nach den täglichen BWG, FI, und WI-Messungen an Tag 1, unter Vorbehalt B6-Mäusen in einer der Kammern der SD-Käfigen (home-Käfig Bewohners) im afternoon (14: 00-16: 00 Uhr) unter Beleuchtung von rund 300 Lux im Gehäuseraum und Messung der physikalischen Kontaktzeit von dem ersten Angriff Biss, den Wohnsitz-Eindringling Test abgeschlossen.
  6. Am Tag 1, setzen Sie den physischen Kontakt Zeit auf 5 min von der ersten Angriffs Biss und haben Beobachter zählen die Anzahl der Angriffs Bisse von ICR-Mäusen, die vorzugsweise an der Rückseite oder an den Flanken des Gegners durch Miczek et al gerichtet sind. 20 bis bestimmen den Grad der körperlichen Belastung zu B6-Mäusen.
  7. Nach der physikalischen Kontaktzeit, Rettungs unterliegen B6-Mäusen und überprüfen und aufzeichnen ihr Fell Status und Wunden. Dann legen Sie die B6-Mäusen in einem anderen Abteil neben den ICR-Mäuse in den SD-Käfigen, bis die Exposition gegenüber physischen Stress am nächsten Tag.
  8. Da der Acrylteiler auf der SD-Käfig ist transparent und enthält Löcher, aussetzen unterliegen B6-Mäusen zu verschiedenen emotionalen Belastungen, einschließlich visuelle, auditive und olfaktorische Reize, von den ICR-Mäuse in der Nachbarfachment der SD-Käfig für 24 Stunden jeden Tag.
  9. Messen Sie die BWG, FI, und WI Kontrolle B6-Mäusen täglich und dann legen Sie sie in jedem Fach in den SD-Käfige für 1 Tag.
  10. Am Tag 2 nach den täglichen Messungen der BWG, FI, und WI, einzuführen unterliegen B6-Mäuse in das Hoheitsgebiet der anderen ICR-Mäuse, um sie an körperliche Belastung aussetzen.
  11. Stellen Sie die Dauer der physischen Kontakt bei 4,5 min aus dem ersten Angriff Biss am Tag 2 und zählen die Anzahl der Angriffsstichen.
  12. Bewegen Steuer B6-Mäuse in verschiedene Fächer und ändern Sie die Paarkombinationen, um die Platzierung und Partner der Paare jeden Tag mischen.
  13. Verringern Sie die Dauer der physischen Kontakt von 0,5 min pro Tag, so dass die Dauer an Tag 10 bis 0,5 min aus dem ersten Angriff Biss gesetzt.
  14. Am Tag 7 ersetzen etwa die Hälfte der Holzspäne in allen Kammern in den SD Käfigen.
  15. Nach Exposition gegenüber dem letzten physischen Stress am Tag 10, zu bewegen unterliegen B6-Mäuse in Einzelkäfigen. Ähnlich wie bei den Gegenstand B6-Mäusen, bewegen Steuerung B6-Mäuse in Einzelkäfigen am Tag 10.
  16. Wenn ein ICR-Maus hat keine Angriffsstiche bis 5 min in jedem Versuch an den Tagen 1 bis 10 ist, beenden Sie den Prozess. Ersetzen Sie die ICR-Maus mit Ersatz aggressive ICR-Mäusen und führen eine alternative Testversion für das Thema B6 Maus.
  17. Wenn eine Maus ist verwundet, zu isolieren, die Maus in einem Käfig und die Fortschritte, die Überprüfung ihrer Körpergewichtszunahme, Nahrungsaufnahme, und Wasseraufnahme zu beobachten. Folgen Sie Ihrem IACUC Richtlinien für die Analgesie. Im Falle einer schweren Wunden, die Physiologie und das Verhalten bei Mäusen beeinflussen euthanize sie gemäß den IACUC Richtlinien.

5. Soziale Vermeidungstest (Soziale Interaktion Test)

  1. Führen Verhaltenstests für die soziale Vermeidung am Morgen (09: 00-12: 00) am Tag 11.
  2. Dreißig Minuten vor dem Test, übertragen Sie die Käfige der Kontrolle und Gegenstand B6-Mäuse auf einem Regal (schwaches Licht von weniger als 1 Lux) im VerhaltensTestraum unter Beleuchtung von weniger als 20 Lux, damit sie an die Umgebung zu gewöhnen.
  3. Um zu bestellen Wirkungen zu reduzieren, abwechselnd testen Kontrolle und unterliegen B6-Mäusen.
  4. Reinigen Sie eine Open-field-Arena (mit einer Licht von 20 lux in der Mitte des Feldes beleuchtet) und eine Kunststoffinteraktionsfeld mit Papierhandtüchern mit 70% Ethanol eingeweicht, bevor die Verhaltenstest für jede Maus, um Kot, Urin zu entfernen und Gerüche .
  5. Platzieren Sie eine unbekannte ICR-Maus (nicht als Aggressor verwendet) aus einem einzigen Käfig in der Nähe des Freifeldgerät.
  6. Legen Sie eine B6-Maus in das offene Feld des vakanten Interaktionsfeld, wie in Abbildung 4 dargestellt. Überwachen und sein Verhalten für 2,5 min zu analysieren mit dem automatischen Analysesystem (in Schritt 5.10 beschrieben).
  7. Nach dem ersten Versuch, entfernen Sie die B6-Maus aus dem Feld und legen Sie sie in ihre Heimat Käfig.
  8. Anschließend legen Sie die unbekannten männlichen ICR-Maus (soziale Ziel) in die Interaktionsfeld und dann führen die B6Maus in das freie Feld und sein Verhalten für 2,5 min zu überwachen.
  9. Nach dem zweiten Versuch zurück sowohl die B6 und ICR-Mäuse in ihre Heimatkäfige, und reinigen Sie den Bereich und das Zusammenspiel Feld wie oben erwähnt.
  10. Wiederholen Sie diese Schritte für jede B6 Maus, um ihre Sozialverhalten zu testen. Bei jedem Versuch, Rekord Top-View-Filme mit einer CCD-Kamera.
    1. Nach den Verhaltenstests, die Berechnung der Zeit in der Wechselwirkungszone für jeden Versuch verbracht (in Sekunden) und in der Eckzone (in Sekunden), wie in Goto et al. 13 gezeigt. Beurteilen die Position der Maus auf der Basis der Mitte der Maus.
    2. Berechnen Sie die soziale Interaktion Partituren als 100 × (Interaktionszeit, mit Ziel) / (Interaktionszeit, ohne Ziel), im Anschluss an die in Krishnan et al. 21 veröffentlichten Verfahren.

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Representative Results

Um den Grad der körperlichen Belastung für den 10-Tage-Zeitraum wurde die Anzahl von Angriffen Stichen durch ICR-Mäuse manuell von einem Forscher gezählt überwachen. 5A zeigt die individuellen Werte für die Anzahl der empfangenen Angriffsstichen. Es gab eine beträchtliche Variabilität in der Anfangsphase (ca. 10-120 Stiche am Tag 1), aber diese Variabilität in der späteren Phase (ungefähr 5-20 Stiche am Tag 10) reduziert. 5B zeigt, dass die durchschnittliche Anzahl der Angriffsstichen empfangenen mit der Zeit allmählich verringert wird, da die Dauer der körperlichen Kontakt verringert (von 5 min bis 0,5 min).

Das Thema Mäuse zeigten Gewichtszunahme Veränderungen sowie Veränderungen in ihrer täglichen Verzehr von Nahrung und Wasser nach der Exposition gegen sCSDS Mäusen für 10 Tage. Es gab einen signifikanten Unterschied in der Gesamtkörpergewichtszunahme zwischen der Kontrolle und unterliegen Mäusen (p <0,0001, ungepaarter zweiseitiger Student der t-Test). Die Gesamt BWG der Kontrollmäuse betrug ungefähr 0,5 g, während die von der Subjekt-Mäusen betrug etwa 2,0 g (Abbildung 6). Es gab eine suggestive Unterschied in der Gesamt FI zwischen den beiden Gruppen von Mäusen (p = 0,0904, ungepaarten zweiseitigen Student-t-Test). Die Steuer- und unterliegen Mäuse verbraucht ca. 30 g und 33 g des Lebensmittels, bzw. (Abbildung 7). Es gab einen signifikanten Unterschied in der Gesamt WI zwischen den beiden Gruppen (p <0,0001, ungepaarten zweiseitigen Student-t-Test). Die Gesamt WI des Subjekts Mäuse (etwa 80 g) wurde zwei Mal größer als die der Kontrollmäuse (ca. 40 g), wie in 8 gezeigt.

Für die soziale Interaktion Punktzahl gab es einen signifikanten Unterschied zwischen den beiden Gruppen (p = 0,0033, ungepaarten zweiseitigen Student-t-Test). Die Kontrollmäuse hatten einen Wert von 2; 100, während das Thema Mäuse hatten einen Wert von <100 (Abbildung 9).

Abbildung 1
Abbildung 1. Experimentelle Zeitplan der subchronischen und einem milden sozialen Niederlage Stress (sCSDS) Paradigma. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Figur 2
Abbildung 2. Bild der sozialen Niederlage (SD) Käfig in der subchronischen und einem milden sozialen Niederlage Stress verwendet (sCSDS) Experimente. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

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Abbildung 3. Bild von dem Kunststoffinteraktionsfeld mit drei Gitterfenster, die in der sozialen Interaktion Test verwendet wurde. Um die Mäuse vor Bewegen der Box zu verhindern, wurde ein Gewicht von Stahl auf dem Feld platziert. Bitte klicken Sie hier, um vergrößern Version dieser Figur.

Figur 4
Abbildung 4. Schematische Darstellung der sozialen Interaktion zu testen. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Figur 5
Abbildung 5. Anzahl der attac k von Tag 1 bis Tag 10. Die physikalischen Stresspegel empfangen Stiche wurden von einem Forscher, der die Anzahl der Angriffs Bisse gezählt ausgewertet. (A) Einzeldaten werden dargestellt (n = 23). Obwohl es einen hohen Anteil an Variabilität (ungefähr 10-120 Stiche) für die 5-Minuten-Periode, in der frühen Phase, diese Variabilität allmählich in Richtung Spätstadium, da die Dauer der körperlichen Kontakt verringert (von 5 min bis 0,5 min) . (B) Die Daten (n = 23) werden als Mittelwert ± Standardabweichung des Mittelwerts dargestellt. Obwohl die Zahl der Angriffsbissen war ungefähr 35-40 in der Frühphase, verringerte sich diese Zahl auf ca. 15-20 im Spätstadium. Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

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Abbildung 6. Körpergewichtszunahme von Tag 1 bis Tag 10. Es gibt einen signifikanten Unterschied zwischen der Kontrolle (n = 24) und subchronische und einem milden sozialen Niederlage Stress (sCSDS) (n = 23) Mäuse in Bezug auf die Gesamtkörpergewichtszunahme (*** p <0,0001, ungepaarten zweiseitigen Student-t-Test). Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Figur 7
Abbildung 7. Die Nahrungsaufnahme von Tag 1 bis Tag 10. Obwohl es nicht signifikant war, gibt es eine suggestive Unterschied zwischen Kontrolle (n = 24) und subchronische und einem milden sozialen Niederlage Stress (sCSDS) (n = 23) Mäuse im Hinblick auf die Gesamtnahrungsaufnahme († p = 0,0904, ungepaarter Zwei tailedStudent-t-Test). Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Abbildung 8
Abbildung 8. Die Wasseraufnahme von Tag 1 bis Tag 10. Es gibt einen signifikanten Unterschied zwischen Kontrolle (n = 24) und subchronische und einem milden sozialen Niederlage Stress (sCSDS) (n = 23) Mäuse in Bezug auf die Gesamtwasseraufnahme (** * p <0,0001, ungepaarten zweiseitigen Student-t-Test). Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

Figur 9
Abbildung 9. Soziale Interaktion Punktzahl auf day 11. Es gibt einen signifikanten Unterschied zwischen Kontrolle (n = 24) und subchronische und einem milden sozialen Niederlage Stress (sCSDS) (n = 23) Mäusen für die soziale Interaktion Punktzahl (** p = 0,0033, ungepaarten zweiseitigen Student-t - Test). Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.

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Discussion

Es definitive Unterschiede im Körpergewicht zwischen sCSDS Mäusen und Mäusen CSDS dem Standard CSDS Protokoll (5-10 min physischer Kontakt mit Angreifern pro Tag) 19 unterzogen. Die sCSDS Mäuse zeigten während des Stresszeitraum um BWG, während die Standard CSDS Mäuse zeigten eine Abnahme des Körpergewichts während der Stressperiode 21,22,23. Es gibt einen wesentlichen Unterschied zwischen den beiden Protokollen in Bezug auf die Gesamtdauer der physischen Kontakt mit Aggressoren während der 10-Tage-Belastungszeit. Während die ursprüngliche CSDS Paradigma umfasst 50 oder 100 min physischer Interaktion zwischen dem Angreifer und dem untergeordneten Mäusen insgesamt (eine groß angelegte CSD), enthalten die sCSDS Methode 27,5 min dieser Interaktion insgesamt (eine halbe Skala CSD). Obwohl die Intensität der körperlichen Belastung des Standard CSDS Mäuse war unbekannt 19 wurde bestätigt, dass die durchschnittliche Anzahl von Angriffen Stiche erhalten betrug etwa 30 pro Tag in sCSDS Mäusen. EINs in Goto et al. 13, sCSDS Mäuse sind eine mildere Modell der Depression im Vergleich zu den Standard-CSDS Mäuse (die soziale Aversion ist für mehr als 1 Monat nach der letzten Niederlage Stress erlitten) 21, da die sCSDS Mäuse erholen in der Regel innerhalb von 1 Monat erwähnt nach der letzten Niederlage Stress. Zusätzlich Savignac et al. 24 berichtet, dass die relativ kurze physischen Kontakt mit Aggressoren könnte die BWG von Subjekt Mäusen während des Stress period.Interestingly beschleunigen, Warren et al. 23 haben berichtet, dass emotional gestressten Mäusen, die nur den physischen Kontakt der anderen Mäusen beobachtet während der CSDS Paradigma zeigten verringerte BWG ohne körperliche Belastung. Auf diese Weise werden die ursprünglichen und modifizierten CSDS Paradigmen produzieren verschiedene Modelle, die eine breite Palette von BWG Phänotypen 13. Diese Manifestationen ähnlich denen bei Patienten beobachtet, die an melancholischen und atypische Depression, einschließlich Verluste und Gewinne in sindKörpergewicht, jeweils 6. Darüber hinaus wurden mehrere Beweislinien legen nahe, dass schwere belastende Ereignisse im Leben, einschließlich körperlicher Misshandlung sind stark mit Depressionen bei Menschen 25,26,27 verbunden. In Bezug auf das Gesicht ihrer Gültigkeit 18 für Stress-induzierte Gewichtszunahme und Überernährung können die sCSDS Mäusen einige Funktionen auf atypische Depression beim Menschen bezogen haben.

Es gibt jedoch einige Einschränkungen der sCSDS Mäusen als Modell der Depression. In Tiermodellen, depressionsartige Veränderungen (zB Anhedonie in der Saccharose Präferenztest, Verzweiflung artigen Verhaltensweisen im Forced Swim und / oder Schwanzaufhängungstests) werden verwendet, um die Modelle zu bewerten. Zwar gab es keine Unterschiede zwischen sCSDS und nicht-gestressten Mäusen in ihrer Verzweiflung artigen Verhaltensweisen 13 sollte Anhedonie in der Zukunft untersucht werden. Außerdem molekularen Veränderungen in der Hypothalamus-Hypophysen-Nebennieren-Systems (HPA), das Immunsystem, und das zentrale Nervensystem sollteuntersucht werden. Zusätzlich sollte Arzneimittelversuchen mit Antidepressiva durchgeführt werden. Wie oben erwähnt, das Gesicht, zu konstruieren und prädiktive Gültigkeiten für ein Modell der Depression sollten für die sCSDS Mäusen gesammelt werden.

Die sCSDS Mäuse zeigten übermäßige WI Verhaltensweisen (Stress-induzierten Polydipsie-ähnliche Symptome). Bei Patienten mit psychiatrischen Erkrankungen, psychogene Polydipsie und / oder Wasser Intoxikation mit Polyurie und Polydipsie sind häufig beobachtet 28. Zwar gibt es einige Behandlungen einschließlich Flüssigkeitsrestriktion und Verhaltens- und pharmakologische Therapien, 29, bleibt die zugrunde liegende Pathophysiologie dieser Symptome unklar. Daher sind Tiermodellen von Polydipsie wesentlich für das Verständnis der Mechanismen von Stress-induzierten Polydipsie. Polydipsic STR / N-Mäuse 30 und Zeitplan-induzierte Polydipsie Modelle 31 sind bekannte Modelle der Polydipsie. Zusätzlich zu diesen Modellen sind die sCSDS Mäusen ein nützliches Modell für polydipsia, die verwendet werden können, um die Merkmale für Stress-induzierte Polydipsie verstehen.

Darüber hinaus glauben die Autoren, dass die Fütterung der Mäuse ein gereinigter Diät (AIN-93G), eher als eine ungereinigte Ernährung, ist für die Festlegung der sCSDS Mäusen überaus wichtig. Weil Darmflora können Tier beeinflussen Verhaltensweisen 32 sollten die bakterielle Darmflora jedes Tieres und indigenen Bakterienflora der einzelnen Tierhaltung in der Zukunft untersucht werden. Bis jetzt wurde der Nachweis über die Verwendung des sCSDS Mäusen als Modell der Depression fehlt, und während die früheren Ergebnisse von Goto et al. 13,14 Unterstützung ihrer Verwendung, weitere Forschung zu diesem Modell sollte durchgeführt, um die Gültigkeit der sCSDS Mäusen erhöhen als ein Modell der Depression. Die Ergebnisse der aktuellen Studie zeigen jedoch, dass die Verwendung sCSDS Mäusen ist vorteilhaft, weil die sCSDS Mäusen kann uns helfen, weiterhin die Mechanismen Stress-induzierten Gewichtszunahme und polydip zugrunde liegenden verstehenSIA- und Hyperphagie ähnliche Symptome.

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Disclosures

Die Autoren erklären, dass sie keine konkurrierenden finanziellen Interessen.

Acknowledgments

Die Autoren danken Drs. Kentaro Nagaoka (Tokyo University of Agriculture and Technology) und Wataru Iio (Präfektur Ibaraki) für die hilfreiche Diskussionen. Diese Forschung wurde teilweise durch Ibaraki Universität Die Zusammenarbeit zwischen Landwirtschaft und Medical Science (IUCAM) (Die MEXT, Japan) und dem Forschungsprojekt zur Entwicklung der landwirtschaftlichen Erzeugnisse und Lebensmittel mit gesundheitsfördernden Vorteile (NARO) unterstützt (Das MAFF, Japan) .

Materials

Name Company Catalog Number Comments
single cage Charles River Laboratories Japan width [W] × depth [D] × height [H] = 143 × 293 × 148 mm
M cage Natsume Seisakusho W × D × H = 220 × 320 × 135 mm
Whiteflake Charles River Laboratories Japan Wood-shaving chips made from spruce trees
AIN-93G Oriental Yeast purified-diet food pellets
Kimtowel Nippon Paper Crecia Co. Paper towels
open-field arena O’Hara & Co. made of gray polyvinylchloride

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References

  1. Heim, C., Binder, E. B. Current research trends in early life stress and depression: Review of human studies on sensitive periods, gene-environment interactions, and epigenetics. Exp. Neurol. 233 (1), 102-111 (2012).
  2. Whiteford, H. A., et al. Global burden of disease attributable to mental and substance use disorders: findings from the Global Burden of Disease Study 2010. Lancet. 382 (9904), 1575-1586 (2013).
  3. Ferrari, A. J., et al. The Burden Attributable to Mental and Substance Use Disorders as Risk Factors for Suicide: Findings from the Global Burden of Disease Study 2010. PLoS ONE. 9 (4), e91936 (2014).
  4. Flint, J., Kendler, K. S. The genetics of major depression. Neuron. 81 (3), 484-503 (2014).
  5. Nestler, E. J., et al. Neurobiology of Depression. Neuron. 34 (1), 13-25 (2002).
  6. Gold, P. W., Chrousos, G. P. Organization of the stress system and its dysregulation in melancholic and atypical depression: high vs low CRH/NE states. Mol. Psychiatry. 7 (3), 254-275 (2002).
  7. O'Keane, V., Frodl, T., Dinan, T. G. A review of atypical depression in relation to the course of depression and changes in HPA axis organization. Psychoneuroendocrinology. 37 (10), 1589-1599 (2012).
  8. Nestler, E. J., Hyman, S. E. Animal models of neuropsychiatric disorders. Nat. Neurosci. 13 (10), 1161-1169 (2010).
  9. Katz, R. J. Animal models and human depressive disorders. Neurosci. Biobehav. Rev. 5 (2), 231-246 (1981).
  10. Krishnan, V., Nestler, E. J. Animal models of depression: molecular perspectives. Curr. Top. Behav. Neurosci. 7, 121-147 (2011).
  11. Kudryavtseva, N. N., Bakshtanovskaya, I. V., Koryakina, L. A. Social model of depression in mice of C57BL/6J strain. Pharmacol. Biochem. Behav. 38 (2), 315-320 (1991).
  12. Miczek, K. A., Yap, J. J., Covington, H. E. 3rd Social stress, therapeutics and drug abuse: preclinical models of escalated and depressed intake. Pharmacol. Ther. 120 (2), 102-128 (2008).
  13. Goto, T., et al. Subchronic and mild social defeat stress accelerates food intake and body weight gain with polydipsia-like features in mice. Behav. Brain Res. 270, 339-348 (2014).
  14. Goto, T., Kubota, Y., Toyoda, A. Plasma and Liver Metabolic Profiles in Mice Subjected to Subchronic and Mild Social Defeat Stress. J. Proteome Res. , (2014).
  15. Iio, W., Matsukawa, N., Tsukahara, T., Kohari, D., Toyoda, A. Effects of chronic social defeat stress on MAP kinase cascade. Neurosci. Lett. 504 (3), 281-284 (2011).
  16. Iio, W., et al. Effects of chronic social defeat stress on peripheral leptin and its hypothalamic actions. BMC Neurosci. 15 (72), (2014).
  17. Iio, W., et al. Anorexic behavior and elevation of hypothalamic malonyl-CoA in socially defeated rats. Biochem. Biophys. Res. Commun. 421 (2), 301-304 (2012).
  18. Crawley, J. N. What's Wrong With My Mouse?: Behavioral Phenotyping of Transgenic and Knockout Mice. , 2nd ed, John Wiley & Sons Inc. Hoboken. 978-970 (2007).
  19. Golden, S. A., Covington, H. E. 3rd, Berton, O., Russo, S. J. A standardized protocol for repeated social defeat stress in mice. Nat. Protoc. 6 (8), 1183-1191 (2011).
  20. Miczek, K. A., Maxson, S. C., Fish, E. W., Faccidomo, S. Aggressive behavioral phenotypes in mice. Behav. Brain Res. 125, 167-181 (2001).
  21. Krishnan, V., et al. Molecular adaptations underlying susceptibility and resistance to social defeat in brain reward regions. Cell. 131 (2), 391-404 (2007).
  22. Chuang, J. C., et al. A beta3-adrenergic-leptin-melanocortin circuit regulates behavioral and metabolic changes induced by chronic stress. Biol. Psychiatry. 67 (11), 1075-1082 (2010).
  23. Warren, B. L., et al. Neurobiological sequelae of witnessing stressful events in adult mice. Biol. Psychiatry. 73 (1), 7-14 (2013).
  24. Savignac, H. M., et al. Increased sensitivity to the effects of chronic social defeat stress in an innately anxious mouse strain. Neuroscience. 192, 524-536 (2011).
  25. Green, J. G., et al. Childhood Adversities and Adult Psychiatric Disorders in the National Comorbidity Survey Replication I: associations with first onset of DSM-IV disorders. Arch. Gen. Psychiatry. 67 (2), 113-123 (2010).
  26. Miniati, M., et al. Clinical characteristics and treatment outcome of depression in patients with and without a history of emotional and physical abuse. J. Psychiatr. Res. 44 (5), 302-309 (2010).
  27. Tao, M., et al. Examining the relationship between lifetime stressful life events and the onset of major depression in Chinese women. J. Affect. Disord. 135 (1-3), 95-99 (2011).
  28. Valente, S., Fisher, D. Recognizing and managing psychogenic polydipsia in mental health. J. Nurse Pract. 6 (7), 546-550 (2010).
  29. Dundas, B., Harris, M., Narasimham, M. Psychogenic Polydipsia Review: Etiology, Differential, and Treatment. Curr. Psychiatry Rep. 9 (3), 236-241 (2007).
  30. Tsumura, K., et al. Downregulation of AQP2 expression in the kidney of polydipsic STR/N mice. Am. J. Physiol. Renal Physiol. 290 (2), F478-F485 (2006).
  31. Flores, P., et al. Schedule-Induced Polydipsia: Searching for the Endophenotype of Compulsive Behavior. World J. Neurosci. 4, 253-260 (2014).
  32. Cryan, J. F., Dinan, T. G. Mind-altering microorganisms: the impact of the gut microbiota on brain and and behaviour. Nat. Rev. Neurosci. 13 (10), 701-712 (2012).

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Verhalten Heft 105 chronische soziale Niederlage Stress Maus Polydipsie gereinigt Ernährung Sozialverhalten Gewichtszunahme Tiermodell Neurowissenschaften
Einem Mausmodell der Subchronische und Mild Social Niederlage Stress-for Understanding Stress-induzierten verhaltensmäßigen und physiologischen Defizite
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Goto, T., Toyoda, A. A Mouse ModelMore

Goto, T., Toyoda, A. A Mouse Model of Subchronic and Mild Social Defeat Stress for Understanding Stress-induced Behavioral and Physiological Deficits. J. Vis. Exp. (105), e52973, doi:10.3791/52973 (2015).

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