July 12th, 2011
Vejiga ratón inyección de pared es un enfoque útil para el estudio de células de vejiga ortotópicamente madre y la biología del cáncer. Este método de microcirugía delicada se puede dominar con una técnica cuidadosa y práctica.
El objetivo general de este procedimiento es introducir células en áreas definidas de la pared de la vejiga. Esto se logra haciendo primero una incisión abdominal para exponer la vejiga. El siguiente paso del procedimiento es insertar el bisel de la aguja intramuros.
El paso final del procedimiento es empujar el émbolo de la jeringa para inyectar las células de interés en la pared de la vejiga. El éxito de la implantación de las células se caracteriza por una ampolla bien localizada que no pierde líquido y se mantiene estable en tamaño. La principal ventaja de esta técnica sobre los métodos existentes, como la inoculación transuretral de ratones con células, es que permite determinar dónde se implantarán las células dentro de la vejiga.
La demostración visual del músculo li es fundamental, ya que la permanencia de la inyección es difícil de aprender. Conocer el ángulo correcto y la posición de entrada de la aguja en la vejiga es esencial para el éxito de la técnica. Seleccione la edad, el sexo y la cepa de ratones en función de las necesidades del experimento aquí.
Se utilizan ratones de ocho a 12 semanas de edad para comenzar a limpiar la superficie de la mesa quirúrgica con agua y jabón. A continuación, limpie la superficie de la mesa quirúrgica con toallitas laterales o toallitas antisépticas. Los instrumentos quirúrgicos deben esterilizarse en un autoclave antes de la cirugía.
Limpie los instrumentos con etanol al 70% justo antes de usarlos y vuelva a esterilizarlos con un esterilizador de perlas calientes entre cirugías individuales. Limpie una jeringa Hamilton de 100 microlitros conectada a una aguja de calibre 30 mediante aspiración repetida de alcohol absoluto, seguida de solución salina tamponada con fosfato esterilizado. Coloque un animal anestesiado en posición supina sobre una almohadilla tibia para ayudar a mantener la temperatura corporal normal.
Mantenga un nivel suficiente de anestesia colocando el hocico del animal en una boquilla que contenga isde flúor vaporizado. A continuación, retire el vello de la piel abdominal con una maquinilla. Use un paño quirúrgico estéril desechable para cubrir el ano y evitar la contaminación fecal durante la cirugía.
Coloque un segundo paño quirúrgico sobre la parte inferior del abdomen y exponga una ventana quirúrgica. Esterilice el sitio quirúrgico con aplicaciones repetidas de Betadine y alcohol usando un microscopio de disección para aumento. Haz una incisión en la línea media inferior del abdomen con unas tijeras.
Ejerza una presión suave sobre el abdomen para exponer la vejiga. Dado que la vejiga suele estar parcial o completamente llena, la presión sobre el abdomen empujará preferentemente a otros órganos y permitirá que la vejiga emerja de la incisión. Si la vejiga está llena, aplique una suave presión hacia abajo en la cúpula para descomprimirla parcialmente.
Llene la jeringa Hamilton estéril con 50 microlitros de la solución de muestra. Inserte la punta de la aguja con el bisel hacia arriba en la pared de la vejiga e inyecte la solución de muestra. Una inyección exitosa se caracteriza por una ampolla bien localizada que no pierde líquido y mantiene un tamaño estable.
Después de la inyección, cierre la incisión con pinzas para heridas. Permita que el maestro se recupere en una almohadilla térmica Un maestro. Esta técnica se puede realizar en 10 a 15 minutos si se realiza correctamente.
El éxito se puede confirmar mediante el análisis histológico de la vejiga en puntos de tiempo seriados después de la inyección.
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Este artículo discute una técnica microquirúrgica para inyectar células en la pared de la vejiga de ratón, facilitando el estudio de las células madre de la vejiga y la biología del cáncer. Este método permite una localización precisa de la implantación celular, lo cual es una ventaja significativa sobre las técnicas tradicionales.
Mouse bladder wall injection enables precise orthotopic modeling of bladder biology, supporting mechanistic studies in stem cell, smooth muscle, and cancer research. This technique enhances predictive confidence in disease-relevant systems by allowing targeted cell delivery and localized tissue interrogation. Its reproducibility and anatomical specificity position it as a critical tool for early discovery and preclinical model development in urologic disease pipelines.
This microsurgical injection method integrates into the discovery-to-preclinical continuum by enabling hypothesis-driven in vivo studies and supporting lead identification in bladder disease research.