Name: Protocolo optimizado para la transfección eficiente de células dendríticas, sin maduración de las células (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-07-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: Aprende un protocolo de nucleofección optimizado para transfectar células dendríticas humanas derivadas de monocitos con siRNA o ADN plasmídico sin inducir su maduración. Este método permite el silenciamiento génico eficiente de RIG-I para estudios de respuesta inmunitaria.

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El proyecto fue apoyado por el NIH NIAID Contrato HHSN2662000500021C N º. Damos las gracias a Ming Chen por su asistencia técnica.

1. El programa de la lanzadera de 96 Amaxa Nucleofector <ol><li> Abra un archivo nuevo parámetro. </li><li> Seleccione el número de pozos que va a utilizar para la transfección estándar arrastrando el cursor sobre el diagrama de placa de 96 pocillos. Use un mínimo de tres pozos a la piscina para cada muestra experimental. </li><li> Introduzca el código del programa: en part1 seleccione 'FF' y seleccione part2 '168 'de los menús desplegables </li><li> De 'los monocitos, humanos "Solución caja de selección </li><li> En la Opción de control, seleccione "estándar". </li><li> Haga clic en Aplicar. </li><li> Para incluir un control sin transfección, seleccione los pozos más en el diagrama de como se requiere y seleccione 'No Control de programa "de la Opción de Control y haga clic en Aplicar. </li><li> Seleccione cualquier pozos restantes no utilizados en el diagrama de la placa y haga clic en Anule. </li></ol> 2. Prepare los países en desarrollo para la transfección <ol><li> Todo el trabajo debe realizarse en condiciones estériles en una campana de cultivo celular que sea posible. Prepare la solución nucleofection mediante la adición de 96 y complemento de los monocitos humanos de 96 pozos de solución Nucleofector en la proporción de 450 a 2025. Mezclar y dejar a temperatura ambiente. Usted tendrá que 20μl de solución nucleofection por pozo. Crea un exceso de 10% para permitir la pipeta de error. </li><li> Coloque el número de módulos nucleocuvette que necesita en la placa nucleocuvette en la orientación correcta, es decir la inserción de la primera de las filas 1 y 2. </li><li> Determinar el número de centros de datos necesarios para el experimento en el cálculo de 500.000 células por pocillo y el precipitado por centrifugación a 400 g durante 10 minutos. Retire con cuidado el sobrenadante. </li><li> Resuspender las células en la solución nucleofection pipeteando suavemente hacia arriba y abajo varias veces. </li><li> Divida el volumen correcto de las células se resuspendieron en eppendorfs etiquetados para el tratamiento en particular por ejemplo, GLO y RIG-I. </li><li> Añadir siRNA 0.25μg por cada 500.000 células y mezclar con la pipeta. No uso de metas de siRNA en su muestra de control no de la transfección. </li><li> Pipeta de 20μl de la mezcla por encima a los módulos de nucleocuvette, de acuerdo a su diseño experimental, lo que garantiza que el líquido se envía al fondo del pozo. </li><li> Cubrir la placa nucleocuvette con la tapa y llave de la placa sobre una superficie dura un par de veces para ayudar a asegurar la eliminación de burbujas de aire. </li></ol> 3. Transfectar los países en desarrollo <ol><li> Inserte la placa en la bandeja de transporte Nucleofector de 96 pozos, haga clic en Upload y luego comenzar. </li><li> Seguir el progreso del proceso de transfección en la pantalla del ordenador portátil, una cruz de color negro sobre un fondo verde significa un éxito en la transfección de que así, mientras que una barra de color negro sobre un fondo rojo significa que no tuvo éxito. </li><li> Al finalizar el proceso de transfección, retire el plato y añadir 80μl de medio de cultivo DC a cada pocillo utilizando una pipeta multicanal. </li><li> Incubar la placa durante 10 minutos a 37 ° C y 5% de CO 2. </li><li> Transferir el volumen de 100μl de la nucleocuvettes en tubos matriz que contiene 100μl de pre-calentado medio de cultivo DC, mantener la orientación correcta. </li><li> Retire y deseche los tubos donde la transfección no ocurrió. </li><li> Se incuba a 37 ° C y 5% de CO 2 para el intervalo de tiempo de 24 horas o de otro tipo deseado. </li></ol> 4. Infectar a las células con NDV <ol><li> Retire los tubos de la matriz de la incubadora a la campana y los tubos de cultivo de células piscina para cada muestra experimental en eppendorfs </li><li> Que sedimenten las células suavemente al girar en una centrífuga de sobremesa durante 5 minutos y retirar el sobrenadante. </li><li> Resuspender las células en medio de cultivo libre de suero que contiene NDV en una MOI de 1 y se incuba a 37 ° C y 5% de CO 2 durante 45 minutos, con eppendorfs forrados de una manera aséptica. </li><li> Agregar 900μl de medio de cultivo DC, y volver a incubar por 80-10 h. </li></ol> 5. Las células de la cosecha <ol><li> Pellet células girando eppendorfs en una centrífuga de sobremesa y eliminar el sobrenadante. </li><li> Las células de la cosecha para el ARN o la extracción de proteínas de acuerdo con el protocolo. </li></ol> 6. Los resultados representativos: Utilizando el protocolo optimizado transfectadas países en desarrollo con RIGI de metas de siRNA durante 24 horas y luego se infectaron las células con NDV (un paramixovirus detectado por RIG-I) que estimulan la vía de la respuesta del interferón. De QRT-PCR análisis demostró que derribar del gen en un 75% en el nivel de transcripción. También se observó una reducción similar en la expresión de IFNβ, que es un efector corriente abajo de RIG-I en la cascada de señalización de IFN. Asimismo, se observó que la expresión de IFNβ en los no infectados, el control de las células transfectadas no fue detectable mientras que la de MxA, un gen IFNβ respuesta aguas abajo, fue mínima (Figura 1). Una segunda transfección de países en desarrollo con RIGI de metas de siRNA se realizó con células suficiente para incluir el análisis de Western blot. Cuando elRT-PCR resultados fueron similares a lo que vimos anteriormente (62% y 66% tumbar de RIG-I y la expresión IFNβ respectivamente) (fig. 1B), el Western blot probaron para RIG-I reveló que la expresión de este gen ha sido completamente bloqueado (fig. 1C). <img src="/files/ftp_upload/2766/2766fig1.jpg" alt="Figura 1A" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1A"> Figura 1. (A) MoDCs fueron transfectadas con siRNA dirigidos RIG-I o siRNA GLO no específica y el efecto sobre la expresión de RIG-I, IFNβ y MxA determinado por QRT-PCR. El protocolo de transfección utiliza un buffer de monocitos y un programa específico nucleoporation FF168 (Lonza Walkersville Inc.) Después de la incubación durante 24 h, las células transfectadas fueron infectadas, ya sea con NDV (+) o hacia la izquierda no infectados (-). Después de una incubación de 10 h, se recogieron las células y los niveles de transcripción de ARN extraído representan los resultados de dos experimentos de replicar. Tomado de Bowles et al 16. (B) MoDCs obtenida a partir de una diferente capa leucocitaria que se utiliza para la Figura 1 se transfectaron de nuevo con cualquiera de RIG-I de metas de siRNA o siRNA GLO no específica utilizando el protocolo de transfección igual que el anterior. Un control adicional con MoDCs untransfected fue incorporado en el experimento. Tras una incubación de 24 horas todas las células fueron infectadas con el NDV y se incubaron durante 10 h antes de ser cosechada, tanto para el ARN y extracción de proteínas. Los niveles de transcripción de RIG-I, IFNβ y MxA según lo determinado por QRT-PCR representan los resultados de dos experimentos de replicar. Tomado de Bowles et al 16. (C) lisados ​​de las células se describe en la Figura 1B anteriores fueron analizados por Western blot. Calles 1 y 2, lisados ​​de células no transfectadas, carriles 3 y 4, lisados ​​de células transfectadas siRNA GLO, carriles 5 y 6, lisados ​​de células transfectadas con RIG-I-targeting siRNA. Las muestras se probaron para la RIG-I y GAPDH (como control de carga) y se realizaron por duplicado. Tomado de Bowles et al 16.

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</ol>

Transfección eficiente de ingenuo células dendríticas primaria es importante para el análisis de alto rendimiento e ingeniería inversa de celulares vías inflamatorias en esta celda mediador clave de la transición inmune innato-adaptación. Sin embargo, la mayoría de los investigadores encuentran que estas células son difíciles de transfectar de forma eficiente y sin la maduración procedimiento de transfección de células inducen al uso de técnicas estándar de transfección. Nosotros investigamos si estas limitaciones podrí...

<table border="1"><tbody><tr><th> Equipo / Reactivo </th><th> Empresa </th><th> Catálogo # </th><th> Comentarios </th></tr><tr><td> Amaxa Nucleofector 96 y Traslados </td><td> Lonza </td><td> 108S0109 </td><td> Número de serie </td></tr><tr><td> Amaxa monocitos humanos de 96 pozos Kit Nucleofector </td><td> Lonza </td><td> VHPA-2007 </td><td> Contiene los monocitos humanos de 96 pozos de solución Nucleofector, el suplemento de 96 pozos y la Nucleocuvettes y placas </td></tr><tr><td> RIG-I siRNA </td><td> Dharmacon </td><td> L-012511-00 </td><td></td></tr><tr><td> GLO siRNA </td><td> Dharmacon </td><td> D-001600-01-20 </td><td></td></tr><tr><td> RPMI 1640 </td><td> Invitrogen </td><td> 11875 </td><td> Complementado con un 10% de FCS, 2 mM L-glutamina, 100 U / ml penicilina y 100 ug / ml de estreptomicina para el crecimiento de mediano DC </td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Invitrogen </td><td> 11965 </td><td></td></tr><tr><td> L-glutamina </td><td> Invitrogen </td><td> 25030081 </td><td></td></tr><tr><td> Penicilina / estreptomicina </td><td> Invitrogen </td><td> 15070063 </td><td></td></tr><tr><td> Suero fetal de ternero </td><td> HyClone </td><td> 3.070,03 </td><td></td></tr><tr><td> Las células dendríticas </td><td> New York Blood Center </td><td></td><td> Los países en desarrollo se purificó a partir de capas de leucocitos mediante un procedimiento estándar </td></tr></tbody></table>

protocolo optimizado para la transfección eficiente de células dendríticas, sin maduración de las células

Optimized Protocol for Efficient Transfection of Dendritic Cells without Cell Maturation

Las células dendríticas (DC) se puede considerar centinelas del sistema inmunitario que juegan un papel crítico en la iniciación y respuesta a la infección 1. La detección de antígenos patogénicos por los países en desarrollo ingenuo es a través de los receptores de reconocimiento de patrones (RRP), que son capaces de reconocer estructuras específicas de conservación conocido como patógeno de patrones moleculares asociados (PAMP). La detección de PAMP por los países en desarrollo desencadena una cascada de señalización intracelular que resulta en su activación y transformación de los países en desarrollo maduro. Este proceso se caracteriza típicamente por la producción de interferón tipo 1, junto con otras citocinas proinflamatorias, la regulación positiva de los marcadores de superficie celular, como MHCII y CD86 y la migración de las DC maduras a los ganglios linfáticos de drenaje, donde la interacción con las células T se inicia la respuesta inmune adaptativa 2, 3. Por lo tanto, los países en desarrollo enlace del sistema inmune innato y adaptativo. La capacidad de diseccionar las redes moleculares que subyacen a la respuesta de DC a varios patógenos es fundamental para una mejor comprensión de la regulación de estas vías de señalización y de sus genes inducidos. También debe ayudar a facilitar el desarrollo de la DC, las vacunas contra las enfermedades infecciosas y tumores. Sin embargo, esta línea de investigación se ha visto gravemente obstaculizada por la dificultad de la transfección de primaria DC 4. Métodos de transducción de virus, como el sistema de lentiviral, se utilizan normalmente, pero tienen muchas limitaciones, como la complejidad y la bio-peligrosos de riesgo (con los costos asociados) 5,6,7,8. Además, la entrega de los productos de los genes virales aumenta la inmunogenicidad de los países en desarrollo transducidas 9,10,11,12. La electroporación se ha utilizado con resultados mixtos 13,14,15, pero nosotros somos los primeros en reportar el uso de un protocolo de transfección de alto rendimiento y demuestran de forma concluyente su utilidad. En este informe se resume un protocolo optimizado comerciales de alto rendimiento para la transfección de los países en desarrollo humano primario, con una toxicidad celular limitado y la falta de maduración de las DC 16. Eficiencia de transfección (del plásmido GFP) y la viabilidad celular fueron más del 50% y 70% respectivamente. FACS análisis estableció la ausencia de aumento en la expresión de la maduración de los marcadores CD86 y MHCII en las células transfectadas, mientras que QRT-PCR demostró que no había regulación al alza de IFNβ. El uso de este protocolo de electroporación, aportar pruebas para la transfección exitosa de países en desarrollo con siRNA y efectiva de derribar gen diana RIG-I, un receptor clave reconocimiento viral 16,17, tanto en el mRNA y los niveles de proteína.

Presentamos nuestra optimizado de alto rendimiento protocolo nucleofection como una forma eficiente de la transfección de primaria monocitos humanos derivados de células dendríticas, ya sea con el ADN de plásmido o siRNA sin causar la maduración celular. Nos proporcionan evidencia adicional para silenciar siRNA éxito de gen diana RIG-I tanto en el mRNA y los niveles de proteína.

Protocolo optimizado para la transfección eficiente de células dendríticas, sin maduración de las células

Las células dendríticas (CD) pueden considerarse centinelas del sistema inmunitario, las cuales desempeñan un papel fundamental en su iniciación y en la respuesta a la infección1. La detección...

El objetivo general de este procedimiento es reducir la expresión del gen diana en DCS mediante la transfección con ARNip. Esto se logra primero programando el efector AM Maxin Nucleo. El segundo paso del procedimiento consiste en mezclar DCS y ARNip juntos y pipetear la solución celular resultante en los módulos Nucleo QVE.El tercer paso del procedimiento consiste en colocar la placa en la bandeja del shuttle amaxa para iniciar el proceso de transfección. El paso final del procedimiento es infectar las células con el virus para activar la respuesta de interferón. En última instancia, se pueden obtener resultados que muestren la inhibición génica mediante R-T-P-C-R cuantitativa y transferencia Western.Esta técnica es valiosa para caracterizar vías de señalización en células dendríticas y puede contribuir al desarrollo de terapias inmunitarias basadas en células dendríticas. Para programar el nucleofactor Maxon de placa de 96 pocillos para la transfección de DC, abra un nuevo archivo de parámetros. Seleccione el número de pocillos que utilizará para la transfección estándar arrastrando el cursor sobre el diagrama de la placa de 96 pocillos.Utilice un mínimo de tres pocillos para agrupar cada muestra experimental. Ahora ingrese el código del programa en la parte uno, seleccione F, F y en la parte dos, seleccione 1 68 en los menús desplegables. Luego, en el cuadro de solución, seleccione monocito humano; a continuación, en la opción de control, seleccione estándar y luego haga clic en aplicar.Para incluir un control sin transfección, es necesario seleccionar pozos adicionales del diagrama. Luego, en la opción de control, elija control sin programa y haga clic nuevamente en aplicar. Después de mezclar la solución de nucleofección, déjela calentar a temperatura ambiente.Coloque el número de módulos nucleo vete necesarios en la placa nucleo VETE en la orientación correcta, como se muestra aquí, insertando el primero en las posiciones uno y dos de color rosa, y luego así sucesivamente con todos los tubos siguientes. Transfiera suficiente DCS desde un frasco de cultivo celular a un tubo de 50 mililitros para obtener 500.000 células por pocillo para la transfección; centrifugue las células durante 10 minutos a 400 G a cuatro grados Celsius y luego retire cuidadosamente el sobrenadante. A continuación, agregue la solución de afectación nuclear al tubo y luego resuspenda el DCS pipeteando suavemente hacia arriba y hacia abajo varias veces.Ahora etiquete los tubos eppendorf DPH según el tratamiento específico que se realizará, y luego divida las células resuspendidas en los tubos etiquetados. Añada ARNsi a una concentración final de 0,25 microgramos por 500.000 células a los tubos eppendorf correspondientes, y luego mezcle las suspensiones celulares mediante pipeteo. Utilice ARNsi no dirigido para la muestra de control sin transfección.Luego, pipetee 20 microlitros de la suspensión de células SI RA DC en los módulos nucleo vete según el diseño experimental programado previamente, asegurándose de que el líquido se entregue al fondo del pocillo. Cubra la placa nucleo vete con una tapa y golpee suavemente la placa sobre una superficie dura varias veces para facilitar la eliminación de burbujas de aire para transfectar los dc. Inserte la placa nucleo Yvette preparada en la bandeja shuttle de 96 pocillos nucleo effector. A continuación, haga clic en el botón de carga e inicio.Siga el progreso del proceso de transfección en la pantalla. Una cruz negra sobre un fondo verde indica una transfección exitosa en ese pocillo, mientras que una barra negra sobre un fondo rojo significa que fue infructuosa mientras las células están siendo transfectadas. Precaliente el medio de crecimiento para DC al finalizar el proceso de transfección, retire la placa y agregue 80 microlitros del medio de crecimiento para DC precalentado a cada pocillo.Utilizando una pipeta multicanal, incube ahora la placa durante 10 minutos a 37 grados Celsius y 5% CO₂. Durante el período de incubación, agregue 100 microlitros del medio de crecimiento DC precalentado a los tubos matriz en la misma orientación que el arreglo de la placa de cubetas nucleo. Tras el período de incubación, transfiera los 100 microlitros completos de las suspensiones celulares desde las cubetas nucleo CVE a los tubos matriz previamente dispuestos.Luego retire y deseche los tubos en los que no ocurrió la transfección. Finalmente, incube los tubos de matriz durante 24 horas u otro intervalo de tiempo deseado. Etiquete los tubos einor para cada uno de los tubos de matriz en incubación.Luego, transfiera los tubos de matriz del incubador a una campana de cultivo celular y reúna los tubos de matriz para cada muestra experimental en los eend dfs previamente etiquetados. A continuación, sedimente suavemente las células girando los tubos eend DPH en una centrífuga de banco durante 10 minutos a 400 G, retire el sobrenadante y re suspenda las células en medio de crecimiento sin suero que contenga el virus de la enfermedad de Newcastle o NDV a una MOI de uno aproximadamente.Cubra los epiendorfinas de forma estéril y luego incube los tubos durante 45 minutos. Después de este período de incubación, agregue 900 microlitros de medio de crecimiento DC y vuelva a incubar los tubos durante otras ocho a 10 horas. Para recolectar las DC transfectadas e infectadas.Se pelletizaron las células mediante centrifugación de los tubos einor en una centrífuga de sobremesa como antes y se eliminó el sobrenadante. Los monocitos dcs fueron transfectados con ARNi dirigido contra RIG I o con ARNi luminiscente no específico e infectados con NDV, como indica un signo positivo, o permanecieron no infectados, como indica un signo negativo, según se detectó mediante R-T-P-C-R-A cuantitativa. Se observó una reducción del 75 % en la transcripción de R RGA. A nivel de transcripción, se observó una reducción similar en la expresión del interferón beta. También se observó la expresión de un efector downstream de RGA en la cascada de señalización del interferón. Además, la expresión de interferón beta en las células control no infectadas y transfectadas no fue detectable.Mientras que la de MXA y del gen de respuesta downstream del interferón beta fue mínima. Aquí se muestran los datos de una segunda transfección de DCS con ARNi dirigido a RIG-I realizada como en la figura anterior. Sin embargo, todas las células están infectadas con NDV y se incorporó un control adicional utilizando DCS de monocitos no resecados.Los resultados de silenciamiento génico fueron similares a los observados en la figura anterior. Un inmunotransferencia reveló que la expresión proteica de este gen había sido completamente bloqueada. Las calles uno y dos muestran datos de lisados de células no resecadas.Las calles tres y cuatro muestran lisados de células transfectadas con ARNi de luciérnaga, y las calles cinco y seis muestran lisados de células transfectadas con ARNi dirigido contra RIG I. Una vez dominada, esta técnica puede realizarse en una hora, incluyendo la inhibición simultánea de muchos genes.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Este video muestra una técnica basada en ARN interferente pequeño (siRNA) para interferir con el flujo autofágico. Un siRNA dirigido al ARNm de FIP200 se introduce en células dendríticas inmaduras (iDC) derivadas de monocitos mediante electroporación, lo que provoca la eliminación de la expresión de FIP200 y conduce a la inhibición de la disrupción de la lámina nuclear mediante autofagia. Al agregar el virus del herpes simple (VHS), la salida nuclear de la progenie viral se inhibe debido a la...

Inhibición de la autofagia basada en siRNA en células dendríticas inmaduras infectadas por el virus del herpes simple

El método más comúnmente utilizado para la generación de un gran número de células dendríticas autólogas (DC) para su uso en inmunoterapia tumoral se describe. El método utiliza la IL-4 y GM-CSF para diferenciar países en desarrollo a partir de monocitos. Las CD inmaduras son estimuladas para maduro y luego se cargan con antígenos antes de que se inyectan de nuevo en el paciente.

Preparación de las células dendríticas maduras cargadas con antígeno del tumor para inmunoterapia

Aquí, nosotros usamos la transducción retroviral y transfección concatemeric para crear una línea de células que pueden expresar las componentes de un vector lentiviral (VI) en ausencia de tetraciclina. Esta LV codifica GFP y se pseudotyped con una glicoproteína, SVGmu, que es específico para un receptor en las células dendríticas.

Una línea celular regulada por tetraciclina Produce lentiviral vectores de alta titulación que se dirigen específicamente a las células dendríticas

Este protocolo presenta un método eficiente y fiable para transfectar humanos THP-1 macrófagos con siRNA o ADN plásmido por electroporación con una alta eficiencia de transfección mientras se mantiene alta la vitalidad celular y la capacidad de los macrófagos completo para la diferenciación y polarización.

La transfección altamente eficiente de humanos THP-1 macrófagos por Nucleofection

Existen distintos subconjuntos de células dendríticas como poblaciones raras en los órganos linfoides y, por lo tanto, son difíciles de aislar en número y pureza suficientes para los experimentos inmunológicos. Aquí describimos un método de alta eficiencia y alto rendimiento para el aislamiento de todos los principales subconjuntos actualmente conocidos de células dendríticas esplénicas de ratón.

Un método de rendimiento eficiente y de alta para el aislamiento de ratón subconjuntos de células dendríticas

Las células dendríticas inmaduras pueden diferenciarse selectivamente en células dendríticas tolerogénicas o maduras para regular el equilibrio entre inmunidad y tolerancia. Este trabajo presenta un medio para generar a partir de células dendríticas inmaduras derivadas de monocitos (moDCs), in vitro tolerogénicas y moDCs maduras que difieren en fenotipos metabólicos.

Generación de inmaduras, maduras y tolerogénico células dendríticas con diferentes fenotipos metabólico

En este artículo, nos proporcionan que un protocolo detallado para la expresión de proteínas fluorescentes de fusión en médula ósea murina derivados de macrófagos y células dendríticas. El método se basa en la transducción de la médula ósea progenitores con retrovirales construcciones seguidas de diferenciación en macrófagos y dendríticas de las células en vitro.

Expresión de proteínas fluorescentes de fusión en murinas médula ósea células dendríticas y macrófagos

El dispositivo o placa de transimmunización (TI) y los protocolos relacionados se han desarrollado para replicar las características clave de la fotoquimioterapia extracorpórea (ECP), en un entorno experimental, lo que permite la producción de células (DCs) para la inmunoterapia oncológica.

Nuevo protocolo para la generación de células dendríticas inmunogénicas fisiológicas

Aquí presentamos un protocolo para el aumento in vivo de la inducción de células T reguladoras intestinales. En este protocolo, las células dendríticas están diseñadas para producir localmente altas concentraciones de la vitamina D activa (1,25-dihidroxivitamina D o 1,25[OH]2D) y la vitamina A activa (ácido retinoico o RA) de novo.

En Vivo Aumento de la Inducción de Células T Regulatorias Gut-Homing

Aquí, presentamos un método económico y eficiente para aislar y generar células dendríticas derivadas de la médula ósea de alta pureza a partir de ratones después de 7 días de cultivo con 10 ng / ml GM-CSF / IL-4.

Protocolo económico y eficiente para aislar y cultivar células dendríticas derivadas de la médula ósea de ratones

Este protocolo describe la reprogramación in vivo de células cancerosas de ratón en células dendríticas tipo 1 dentro del microambiente tumoral a través de la expresión forzada de los factores de transcripción PU.1, IRF8 y BATF3.

Reprogramación intratable in vivo de células tumorales a células dendríticas convencionales tipo 1

Aprende un protocolo de nucleofección optimizado para transfectar células dendríticas humanas derivadas de monocitos con siRNA o ADN plasmídico sin inducir su maduración. Este método permite el silenciamiento génico eficiente de RIG-I para estudios de respuesta inmunitaria.

Protocolo optimizado para la transfección eficiente de células dendríticas, sin maduración de las células

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