Método basado en ELISA para analizar las interacciones entre las proteínas de cebo y presa

0 views • 3:55 min • July 8th, 2025

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La interacción física entre dos proteínas asociadas modula los mecanismos biológicos posteriores.

Para detectar interacciones proteína-proteína utilizando el ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas, ELISA, tome una placa de inmunoensayo de pocillos múltiples. Agregue un tampón de recubrimiento que contenga una de las proteínas que interactúan, la proteína del cebo, e incube. Las proteínas del cebo se adsorben en la superficie del pozo a través de interacciones hidrofóbicas no específicas.

Deseche la solución gastada y lave la placa con un tampón para eliminar las proteínas no unidas. Agregue una solución de bloqueo e incube, permitiendo que las moléculas del agente de bloqueo de la solución bloqueen los sitios de unión no específicos en la superficie del pocillo.

Agregue la proteína asociada que interactúa, la proteína de presa, etiquetada con residuos de histidina para una fácil cuantificación. Incubar, permitiendo que la proteína de la presa se una específicamente a su compañero interactivo: el cebo. Agregue una solución de anticuerpos anti-histidina conjugados con enzimas peroxidasa de rábano picante que se unen a la presa, formando un complejo cebo-presa-anticuerpo.

Pipetear una solución que contenga el sustrato de la enzima y el peróxido de hidrógeno e incubar.

La enzima peroxidasa de rábano picante utiliza peróxido de hidrógeno para la oxidación catalítica de su sustrato, formando un producto de color azul. Agregue una solución ácida que desnaturalice la enzima para detener la reacción, formando un producto de reacción amarillo.

Con un lector de microplacas, mida la intensidad del color del producto, que es proporcional a la cantidad de proteína de presa unida e indica una interacción proteína-proteína exitosa.

Para prepararse para ELISA, dispense 100 microlitros de solución de proteína en cada pocillo de una placa de microtitulación Polysorp. Cierre las placas con la tapa y guárdelas a 4 grados centígrados durante la noche para facilitar la inmovilización de la proteína en los pocillos de la placa de microtitulación. Deseche la solución de la placa de microtitulación inclinándola boca abajo sobre el fregadero. Luego, lave los pocillos tres veces con 300 microlitros de PBS por pocillo.

Bloquee los pocillos recubiertos durante 1 hora a temperatura ambiente con PBS, que contenga 2.5 por ciento de volumen en peso de BSA. Después de retirar la solución de bloqueo, lave los pocillos tres veces con 300 microlitros de PBST por pocillo. Ahora, agregue 100 microlitros de PH marcado con His recombinante nanomolar a cada muestra. En los pocillos de control, agregue solo 100 microlitros de PBS-BSA. Incube la placa durante 1 hora a temperatura ambiente.

Después de la incubación, deseche la solución proteica y elimine las proteínas no unidas lavando los pocillos tres veces con 300 microlitros de PBST por pocillo. Luego, agregue 100 microlitros de PBS-BSA, que contiene anticuerpos policlonales anti-His conjugados con peroxidasa de rábano picante.

Después de incubar durante 1 hora a temperatura ambiente, lave los pocillos tres veces con 300 microlitros de PBST por pocillo. Detecte los complejos antígeno-anticuerpo agregando 100 microlitros de reactivo de detección ELISA a cada pocillo. Luego, agregue 50 microlitros de ácido sulfúrico 1 molar por pocillo para detener la reacción. Mida la densidad óptica de los pocillos a 450 nanómetros, utilizando un lector de microplacas.

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Last updated: 11 July 2026