Name: Un ensayo de unión de alto rendimiento MHC II para el análisis cuantitativo del péptido epítopos (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-25T13:45:00.000+00:00
Duration: 7 min 59 s
Description: Aprende a cuantificar la unión de péptidos a proteínas MHC II humanas mediante un ensayo de alta capacidad en placas de 384 pocillos. Este método acelera la identificación de epítopos inmunogénicos para el desarrollo de vacunas.

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Este trabajo fue apoyado por subvenciones del NIH R01-GM-098 977 y R21-AI-098 122 para CBK y KEG. RSS fue apoyado en parte por una beca de la Fundación Luce y en parte por una beca del Programa de Innovación Thayer de la Escuela de Ingeniería Thayer.

Cuatro actividades principales comprenden el ensayo de unión péptido-MHC II: 1-Encuadernación: péptidos de ensayo compiten con los péptidos de control marcado por la unión en fase de solución de proteínas MHC II solubles. Encuadernación se mide a través de una amplia gama de concentraciones de péptido de prueba. 2-Captura: Después de la reacción de unión se aproxima al equilibrio, los complejos de péptido-MHC II se capturan y se separan de péptido no unido y la proteína por el reconocimiento dependiente de la conformación con un anticuerpo inmovilizado. 3-Detección: péptido de control capturado se detecta cuantitativamente usando fluorescencia resuelta en el tiempo. 4-Análisis: Los datos espectroscópicos se procesan, representaron gráficamente y se analizaron para determinar propiedades de unión dependientes de la dosis de péptido de prueba y proteínas MHC II. En diversas etapas del procedimiento, se recomienda el uso de un robot de manejo de líquidos si hay alguno disponible. En particular, en un formato de 384 pocillos, de dispensación automatizada y la dilución de los líquidos minimiza el error de usuario, resultados en másconsistentes volúmenes del pozo a pozo, y los rendimientos más estrechos intervalos de confianza del 95% para los valores de CI 50 en comparación con los ensayos de 96 pozos manuales (datos no presentados). Si un robot de manejo de líquidos no está disponible, los pasos anotados con &quot;(robot de manejo de líquidos)&quot; se pueden hacer a mano. Del mismo modo, si es posible, se recomienda un lavador de placas automatizado que es compatible con el formato de 384 pocillos. Esto normaliza eficazmente el proceso de lavado de placas. Si un lavador de placas no está disponible, los pasos anotados con &quot;(lavador de placas)&quot; se pueden hacer a mano. 1. Cubra la placa ELISA (Día 1) <ol><li> Diluir anticuerpo L243 de stock (0,5 mg / ml) en tampón borato a una concentración de trabajo de 10 mg / ml. <ol><li> Para cubrir una sola placa de 384 pocillos, añadir 200 l de anticuerpo de stock a 9,8 ml de tampón borato. (Ver calculadora de hoja de cálculo complementario para escalamiento alternativa). </li></ol></li><li> Añadir 25 l de la solución de anticuerpo L243 a cada pocillo de un 384-Well alta unión a la placa ELISA blanco. (Robot de manejo de líquidos) </li><li> Sellar la placa con una lámina de poliéster y se incuba durante la noche a 4 ° C. Nota: Cada placa de ELISA de 384 pozos con capacidad para 15 péptidos de ensayo en ocho diluciones de un alelo de MHC II, así como los controles positivos y negativos. Esto producirá en última instancia, mediciones por triplicado. </li></ol> 2. Haga la prueba de péptidos diluciones (Día 1) <ol><li> A partir de un almacén 10 mM de cada péptido de ensayo en DMSO, hacer la siguiente serie de dilución en tampón de citrato-fosfato utilizando placas de polipropileno de 384 pocillos (Tabla 1). (Robot de manejo de líquidos) Nota: Un plato lleno de polipropileno de 384 pozos requiere de tres placas de ELISA separadas. Una tercera parte de una placa de polipropileno requerirá sólo una placa de ELISA (Figura 1). </li></ol><table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody align="center"><tr><td rowspan="2"> Número de dilución </td><td> Volumen to tomar desde antes de la dilución / cepa </td><td> Volumen de Tampón de Citrato añadir </td><td> Conc. de Dilución </td><td> Conc. en reacción de unión </td><td> Conc. en neutralizados ELISA </td></tr><tr><td> (L) </td><td> (L) </td><td> (M) </td><td> (M) </td><td> (M) </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 0.7 </td><td> 35.1 </td><td> 195.531 </td><td> 97.765 </td><td> 48.883 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 14.3 </td><td> 14.3 </td><td> 97.765 </td><td> 48.883 </td><td> 24.441 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 7.1 </td><td> 28.7 </td><td> 19.389 </td><td> 9.695 </td><td> 4.847 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 14.3 </td><td> 14.3 </td><td> 9.695 </td><td> 4.847 </td><td> 2.424 </td></tr><tr><td> 5 </td><td> 7.1 </td><td> 28.7 </td><td> 1.923 </td><td> 0.961 </td><td> 0.481 </td></tr><tr><td> 6 </td><td> 14.3 </td><td> 14.3 </td><td> 0.961 </td><td> 0.481 </td><td> 0.24 </td></tr><tr><td> 7 </td><td> 7.1 </td><td> 28.7 </td><td> 0.191 </td><td> 0.095 </td><td> 0.048 </td></tr><tr><td> 8 </td><td> 14.3 </td><td> 14.3 </td><td> 0.095 </td><td> 0.048 </td><td> 0.024 </td></tr><tr><td colspan="6"> Retire y deseche 7,1 l de solución de péptido de dilución número 8. </td></tr></tbody></table> Tabla 1. Preparación de prueba de péptido serie de dilución. <img alt="Figura 1" fo:content-width="5in" fo:src="/files/ftp_upload/51308/51308fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51308/51308fig1.jpg" /> Figura 1. Plate Mapa del péptido Ensayo de unión. (A) Mapa de las diluciones de péptido en polipropileno placas de 384 pocillos. Cada placa de polipropileno tiene capacidad para tres grupos de 15 péptidos en las reacciones de unión de competición contra un cantar<html> alelo le MHC II. (B) Después de la reacción de unión se aproxima al equilibrio, cada grupo de péptidos por triplicado se transfiere,, a una placa de 384 pocillos de ELISA separada que ha sido pre-revestido con anticuerpo anti-MHC II. 3. Preparar la mezcla maestra MHC II (Día 1) <ol><li> Hacer el tampón de reacción <ol><li> Añadir 80 l de 1 mM de Pefa Bloc y 60 mg de octil-β-D-glucopyranaside a 3.920 l de citrato tampón fosfato. (Ver calculadora de hoja de cálculo complementario para escalamiento alternativa). </li></ol></li><li> Diluir soluciones madre MHC II seleccionados a 101 nM en tampón de reacción utilizando un tubo cónico de 15 ml (Tabla 2). Nota: la concentración de MHC II será en última instancia 50 nM en la reacción de unión y 25 nM en el ensayo ELISA neutralizado. Las concentraciones madre MHC II variarán en función de número de lote del fabricante. (Ver calculadora de hoja de cálculo complementario). </li></ol>&quot;&gt; <tbody><tr><td> MHC II alelo DRB1 *: </td><td> 1501 </td></tr><tr><td> Concentración de la MHC II (mg / ml) </td><td> 1.3 </td></tr><tr><td> MHC II Stock Concentración (mM) </td><td> 20 </td></tr><tr><td> Vol.. II MHC Stock agregar (ml) </td><td> 14.65 </td></tr><tr><td> Vol.. Reaction Buffer agregar (ml): </td><td> 2885.35 </td></tr><tr><td> Concentración de MHC II Master Mix (nM) </td><td> 101 </td></tr></tbody></table> Tabla 2. Preparación de mezcla maestra de MHC II. 4. Preparar los controles positivos y negativos (Día 1) <ol><li> Añadir 21,5 l de citrato tampón fosfato al pozo &quot;control negativo&quot; de la placa de polipropileno de 384 pozos desde el paso 2.1 (Figura 1A). </li><li> Añadir 21,5 l de citrato tampón fosfato al pozo &quot;control positivo&quot; de la placa de polipropileno de 384 pocillos. Nota: La función &quot;Posicontrol efectivo &quot;se completará en la sección 5, a continuación. </li><li> Retire 49,5 l de la MHC II Master Mix desde el paso 3.2 y la pipeta en un tubo Eppendorf de 1,5 ml. </li><li> Añadir 0,5 l de tampón de citrato a los 49,5 l de la MHC II Master Mix desde el paso 4.3. </li><li> Añadir 21,5 l de la concentración ajustada de MHC II Master Mix de la etapa 4.4 para el bienestar &quot;control negativo&quot; de la placa de polipropileno de 384 pocillos (Figura 1A). Nota: Esta muestra representa el control negativo de la señal cero que contiene proteínas MHC II, NO péptido control, y NO péptido de prueba. </li></ol> 5. Añadir el apropiado péptido de control a la MHC II Master Mix (Día 1) <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> MHC II alelo DRB1 * </td><td> Biotinilado de control Péptido </td><td> (Residuos) </td><td> Secuencia </td></tr><tr><td> 0101 </td><td> Gripe-HA-B </td><td> (306-318) </td><td> Biotina-(Ahx) (Ahx) PRYVKQNTLKLAT-amida </td></tr><tr><td> 0301 </td><td> La mioglobina </td><td> (137-148) </td><td> Biotina-(Ahx) - (Ahx)-LFRKDIAAKYKE-OH </td></tr><tr><td> 0401 </td><td> YAR-B </td><td> (1-14) </td><td> Biotina-(Ahx) (Ahx) YARFQSQTTLKQKT-OH </td></tr><tr><td> 0701 </td><td> TetTox-B </td><td> (830-843) </td><td> Biotina-(Ahx) (Ahx) QYIKANSKFIGITE-OH </td></tr><tr><td> 1101 </td><td> Gripe-HA-B </td><td> (306-318) </td><td> Biotina-(Ahx) (Ahx) PRYVKQNTLKLAT-amida </td></tr><tr><td> 1501 </td><td> MBP-B </td><td> (84-102) </td><td> Biotina-(Ahx) (Ahx) NPVVHFFKNIVTPRTPPPS-OH </td></tr></tbody></table> * Recomendamos pedir 10 mg escala para la economía. Tabla 3. Péptidos de control para los diversos alelos de MHC II. * <ol><li> Diluir el péptido de control (almacenado a 400 mM en DMSO) 1:20 en DMSO fresco para producir una acción diluido a 20 mM. <ol><li> Añadir 25 l de 400 mM de control péptido a475 l de DMSO. Nota: este es un gran exceso, pero permite la manipulación precisa de soluciones de DMSO viscosos. </li></ol></li><li> Además diluir el péptido de control del paso 5,1 (20 mM) 1:100 en el MHC II Master Mix desde el paso 3.2. <ol><li> Añadir 28,8 l de control péptido diluido en el paso 5.2 a los 2,850.5 l restantes del MHC II Master Mix. </li></ol></li><li> Añadir 21,5 l de la mezcla maestra de MHC II con el péptido de control (paso 5.2) para el pocillo de control positivo de la placa de polipropileno de 384 pocillos (paso 4,2) (Figura 1A). Nota: Esta muestra representa el control positivo de alta señal que contiene proteínas MHC II, péptido control, y NO péptido de prueba. </li></ol> 6. Hacer la reacción de unión (Día 1) <ol><li> Añadir la mezcla maestra de MHC II que contiene péptido de control (paso 5,2) a cada una de las diluciones de prueba de péptidos (paso 2,1) en una proporción de 1:1 para crear la reacción de unión. <ol><li> Añadir 21,5 l de MHC II Master Mix que contienen de ConPéptido de control de la etapa 5,2-21,5 l de cada dilución de ensayo peptídicos desde el paso 2.1. (Robot de manejo de líquidos) </li></ol></li><li> Selle la reacción de unión con una película de poliéster e incubar 12-24 horas en una incubadora no son CO 2 a 37 ° C sin agitación. </li></ol> 7. Neutralizar y Transferencia de la reacción de unión (Día 2) <ol><li> Retire la placa de polipropileno de 384 pocillos que contiene la reacción de unión (paso 6.2) de la incubadora a 37 ° C. </li><li> Diluir la 1:01 reacción de unión con tampón de neutralización. (Robot de manejo de líquidos) <ol><li> Añadir 43 l de la Neutralization Buffer a cada reacción de unión también. </li></ol></li><li> Retire la placa de ELISA (paso 1.3) del 4 ° C y lavar 3 veces con 60 ml / pocillo de PBS-Tween 20 0,05%. (Lavador de placas) </li><li> Transferencia de 25 l de cada reacción de unión neutralizada desde el paso 7.2 en pocillos por triplicado de la 384 pocillos de placas de ELISA de anticuerpos recubiertos desde el paso 7.3. (Figura 1 </strong&gt;) (robot de manejo de líquidos) </li><li> Cubrir la placa de ELISA con una película de poliéster y el lugar en una incubadora a 37 ° durante 2,5 horas o en el refrigerador de 4 ° C durante la noche. </li></ol> 8. Desarrollo de ELISA (Día 2 o 3) <ol><li> Retire la placa de ELISA de la etapa 7.5, lavar 3 veces con 60 l / pocillo de PBS-Tween al 0,05%. (Lavador de placas) </li><li> Diluir la solución de estreptavidina europio acciones (0,1 mg / ml de estreptavidina, 7 Eu 3 + / estreptavidina) 1000 veces en el tampón de ensayo DELFIA. <ol><li> Para una placa de 384 pocillos, diluya 10 l estreptavidina-europio en 10 ml de tampón de ensayo. </li></ol></li><li> Añadir 25 l de la estreptavidina diluida-europio a cada pocillo de la placa de 384 pocillos de ELISA a partir del paso 8.1. (Robot de manejo de líquidos) </li><li> Cubrir la placa con una lámina de poliéster y el lugar en la oscuridad a temperatura ambiente durante 1 hora. Nota: Durante la incubación de 1 hora, retire la solución de mejora de la nevera y dejar de lado 10 ml / placa en la oscuridad a rotemperatura OM. </li><li> Después de la incubación de 1 hora, se lava la placa de 384 pocillos ELISA desde el paso 8.3 3 veces con 60 l / pocillo de PBS-Tween al 0,05%. (Lavador de placas) </li><li> Añadir 25 l de solución de mejora a cada pocillo de la placa de 384 pocillos de ELISA a partir del paso 8.5. (Robot de manejo de líquidos) </li><li> Cubrir la placa ELISA de 384 pozos con una película de poliéster y permita que la placa para sentarse en la oscuridad a temperatura ambiente durante 10 a 15 min. </li><li> Después de la incubación de 10 a 15 min, lee la fluorescencia de la placa de 384 pocillos ELISA desde el paso 8.7 usando un lector de tiempo resuelto fluorescente plato con configuración de europio (por ejemplo, Empezar Int.: 200, Stop Int.:. 1000, Ex. 340, Em . 615, Límite: Ninguno, PMT: Auto, Lee / Bien: 50). </li></ol> 9. Análisis de Datos <ol><li> Introducir datos en el gráfico en formato XY con 3 valores replicados en columnas de side-by-side (X = concentración de péptido de ensayo; Y = medición de fluorescencia). </li><li> Entrar a transformar los valores de X para todos los datos: X = log (X) </li><li> Montar los tra registronsformed de datos con el modelo de unión competitiva de un solo sitio para extraer el valor de CI 50. </li><li> Restringir el valor inferior al valor medio de control negativo. </li><li> A nivel mundial ajustarse el valor superior y asegurar que el parámetro de ajuste global es menor o igual que el control positivo. </li></ol>

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</ol>

Leonard Moise está empleado y tiene opciones sobre acciones en EpiVax, Inc., una compañía de biotecnología de propiedad privada con sede en Providence, RI. El trabajo contenido en este informe de investigación es libre de cualquier sesgo que podría asociarse con los objetivos comerciales de la empresa.

Biotherapeutics se han establecido como uno de los pilares de la medicina moderna, que representan cuatro de las cinco principales drogas que venden en 2012 32. El sector de la biofarmacia ha mostrado un crecimiento sostenido durante varios años y 6, y el desarrollo continuo de nuevos agentes, así como la aparición de los biosimilares se ha expandido ductos biofarmacéuticos. Mirando hacia el futuro, evaluar y mitigar la inmunogenicidad de las proteínas terapéuticas se convertirá en una parte integr...

An erratum was issued for: <a href="https://www.jove.com/video/51308/a-high-throughput-mhc-ii-binding-assay-for-quantitative-analysis">A High Throughput MHC II Binding Assay for Quantitative Analysis of Peptide Epitopes</a>.&#160; There were typos in the Protocol section and Table 2.
Step 3.1.1 in the Protocol was updated from:
Add 80 &#181;l of 1 mM Pefa Bloc and 60 mg of octyl-&#946;-D-glucopyranaside to 3,920 &#181;l of Citrate Phosphate Buffer. (See supplemental spreadsheet calculator for alternative scaling).
to:
Add 80 &#181;l of 1 mM Pefa Bloc and 60 &#181;g of octyl-&#946;-D-glucopyranaside to 3,920 &#181;l of Citrate Phosphate Buffer. (See supplemental spreadsheet calculator for alternative scaling).
Step 5.2&#160;in the Protocol was updated from:
Further dilute the Control Peptide from step 5.1 (20 mM) 1:100 into the MHC II Master Mix from step 3.2.
to:
Further dilute the Control Peptide from step 5.1 (20 &#181;M) 1:100 into the MHC II Master Mix from step 3.2.
Table 2 was updated from:
<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="376">
	<tbody>
		<tr>
			<td>MHC II Allele DRB1*:</td>
			<td>1501</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MHC II Stock Concentration (mg/ml)</td>
			<td>1.3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MHC II Stock Concentration (mM)</td>
			<td>20</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vol. MHC II Stock to Add (ml)</td>
			<td>14.65</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vol. Reaction Buffer to Add (ml):</td>
			<td>2885.35</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MHC II Master Mix Concentration (nM)</td>
			<td>101</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
to:
<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="376">
	<tbody>
		<tr>
			<td>MHC II Allele DRB1*:</td>
			<td>1501</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MHC II Stock Concentration (mg/ml)</td>
			<td>1.3</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MHC II Stock Concentration (&#956;M)</td>
			<td>20</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vol. MHC II Stock to Add (&#956;l)</td>
			<td>14.65</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Vol. Reaction Buffer to Add (&#956;l):</td>
			<td>2885.35</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MHC II Master Mix Concentration (nM)</td>
			<td>101</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

An erratum was issued for: <a href="https://www.jove.com/video/51308/a-high-throughput-mhc-ii-binding-assay-for-quantitative-analysis">A High Throughput MHC II Binding Assay for Quantitative Analysis of Peptide Epitopes</a>.&#160; There were typos in the Protocol section and Table 2.

Erratum: A High Throughput MHC II Binding Assay for Quantitative Analysis of Peptide Epitopes

Las proteínas son la clase de más rápido crecimiento de agentes terapéuticos 6, y la rápida expansión de ductos bioterapéuticos se ha centrado cada vez más atención en los retos asociados con el desarrollo y el uso de fármacos de proteínas. Una consideración único surge del hecho de que, en un sistema inmunológico saludable y en funcionamiento, todas las proteínas extracelulares son muestreadas por las células presentadoras de antígeno (APCs). Una vez internalizado por las APC, una proteína se escinde en pequeños fragmentos de péptidos, y los segmentos inmunogénicos putativos se cargan en la ranura de clase II proteínas principales complejos de histocompatibilidad (MHC II). Los complejos de péptido-MHC II se muestran entonces en la superficie de APC, y verdaderos péptidos inmunogénicos, denominados epítopos de células T, formar complejos ternarios receptor de células MHC II-péptido-T con receptores de la superficie celular T CD4 afines 7. Este evento crítico reconocimiento molecular inicia una cascada compleja de señalización, lo que resulta en la activación de células T, la liberación de citoquinas, CD4 T mediada por células B maduración de las células, y en última instancia, la producción de anticuerpos IgG circulantes que se unen y restablezcan la proteína exógena infractor. Por lo tanto, las proteínas inmunogénicas pueden ser desinmunogénico mediante la identificación de constituyentes epítopos de células T y la mutación de residuos clave responsables de la formación de complejos de MHC II. Vale la pena observar, sin embargo, que los epítopos de células T pueden ser numerosos y ampliamente distribuida en toda proteínas inmunogénicas, y la mayoría de las mutaciones epítopo borrar es probable que causen una pérdida inadvertida de la función de proteínas o la estabilidad. Por lo tanto, la ingeniería desinmunogénico bioterapias pueden ser un objetivo complejo y técnicamente difícil, pero existen varios ejemplos de éxito T epítopos de células proyectos de eliminación 3,5,8-12. A diferencia de injerto a base de &quot;humanización&quot;, que se limita en gran medida a la terapéutica de anticuerpos, eliminación epítopo se puede aplicar a esencialmente cualquier proteína objetivo, independientemente de la secuencia, estructura, función, o la disponibilidad de homólogonos andamios humanos. El primer paso para la implementación de un enfoque de este tipo es la identificación de epítopos peptídicos clave incrustados dentro de la secuencia de la proteína diana. Ensayos bioquímicos alto rendimiento usando péptidos sintéticos y moléculas recombinantes humanas MHC II pueden proporcionar rápidas penetraciones preliminares sobre identificación y mitigación epítopo 1,3-5. Estos ensayos de tipo ELISA pueden ser un poderoso complemento a otras de diseño y desarrollo de proteínas / vacunas herramientas. Por ejemplo, un método experimental bien establecido para el mapeo de epítopos se basa en el tiempo, el trabajo y muchos recursos ex vivo ensayos de proliferación celular intensivos 15. Brevemente, la secuencia primaria de una proteína diana se divide primero en un panel de péptidos solapantes, a menudo 15-meros con 12 residuos de solapamiento entre los péptidos adyacentes. El panel de péptido se sintetiza químicamente y la inmunogenicidad de cada péptido se prueba en uno de los varios inmunoensayos que emplean diferentes Bloo periféricacélulas mononucleares de d (PBMC) aisladas de donantes humanos 13,14. Para proporcionar una mayor confianza en los resultados, los péptidos se prueban típicamente por duplicado con PBMC de 50 o más donantes diferentes. En los casos en que desinmunización es el objetivo final, el trabajo se complica aún más por la necesidad de producir paneles adicionales de péptidos mutados y probar los nuevos paneles de péptidos en ensayos de PBMC antes de introducir cualquier mutación deimmunizing a la proteína de longitud completa para el análisis funcional posterior 10. Si bien estos ensayos celulares siguen siendo el estándar de oro para evaluar el potencial inmunogénico en pacientes humanos, la eficacia de este enfoque exhaustiva podría ser mejorado por prefiltrado epítopos inmunogénicos putativos utilizando un rendimiento rápido y alta ensayo de unión de MHC II-péptido. Del mismo modo, los ensayos de unión péptido-MHC II bioquímicos se pueden combinar con predictivo métodos in silico para acelerar radicalmente el proceso de identificación epítopo.Existen una variedad de herramientas computacionales para la predicción epítopo de células T, e incluye ProPred 16, MHCPred 17, SVRMHC 18, ARB 19, SMM-alinear 20, NetMHCIIpan 21, así como las herramientas propietarias como EpiMatrix por EpiVax 22. Del mismo modo, los predictores de epítopos recientemente se han combinado con otras herramientas de bioinformática y modelado molecular para producir algoritmos desinmunización proteínas integradas diseñadas para mitigar el riesgo de que las mutaciones deimmunizing pudiesen afectar a la estructura y función de proteínas 23-26. Mientras que varios predictores de epítopos han demostrado ser razonablemente exacta 27,28, resultados computacionales invariablemente requieren validación experimental. Métodos experimentales rápido, de alto rendimiento y rentables son los más adecuados como filtro preliminar para las predicciones de epítopos silico. En una línea similar, los predictores de epítopos pueden conducir la selección de antígenos para vaccinolo inversagy 29,30. Por ejemplo, los avances en la bioinformática han arrojado entero genoma pantallas que identifican rápidamente vacunas candidatas en forma de proteínas enteras o epítopos de péptidos extraídos de proteomas de agentes patógenos. Si bien esta tecnología está dando nueva forma que permite el descubrimiento y desarrollo de vacunas protectoras, introduce un nuevo reto en forma de incurablemente grandes listas de candidatos a vacunas inmunogénicas. Ensayos de unión de alto rendimiento de péptido-MHC II pueden guiar la selección epítopo mediante la cuantificación de la afinidad de unión del péptido y la promiscuidad de unión entre los múltiples alelos de MHC II. Al igual que con desinmunización proteínas, tales métodos experimentales son, en última instancia requieren para validar la predicción computacional de clientes potenciales de vacunas prometedoras. Aquí, se describe un ensayo de unión péptido-MHC II a escala al formato de 384 pocillos. El protocolo es altamente paralelizado y reduce los costes de reactivos en un 75% en comparación con el anteriormente descrito de 96 pocillos formatos de placa 1,3-5. El uso de un solo liquid robot de manipulación, este método permite a un investigador para analizar fácilmente aproximadamente noventa péptidos de ensayo por triplicado en un rango de concentraciones de ocho y cuatro tipos de alelos de MHC II en menos de 48 horas. En este artículo se describe la instalación de una placa de 384 pocillos de ELISA para el análisis de los siete péptidos experimentales contra un alelo MHC II, pero las calculadoras de hoja de cálculo se proporcionan como material complementario a fin de escalar fácilmente el experimento a cualquier número de péptidos y / o MHC deseados II moléculas.

<table><tbody><tr><td>Tetraborato de sodio Decahidrato</td><td>Sigma</td><td>221732</td><td></td></tr><tr><td>Ácido cítrico</td><td>Sigma</td><td>C1901</td><td></td></tr><tr><td>Fosfato de sodio dibásico</td><td>Sigma</td><td>S7907</td><td></td></tr><tr><td>Trizma HCl</td><td>OmniPur</td><td>9310</td><td></td></tr><tr><td>Tween-20</td><td>Sigma</td><td>P7949</td><td></td></tr><tr><td>100% DMSO</td><td>Sigma</td><td>D8418</td><td></td></tr><tr><td>Octyl-& beta;-D-Glucopiranato</td><td>Fischer</td><td>29836-26-8</td><td></td></tr><tr><td>Pefa Bloc SCF</td><td>Roche</td><td>1158591600</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' s 10x Fosfato Tamponado Solución Salina</td><td>Invitrogen</td><td>14200-166</td><td></td></tr><tr><td>DELFIA Tampón de ensayo</td><td>Perkin Elmer</td><td>4002-0010</td><td></td></tr><tr><td>DELFIA Tampón de mejora</td><td>Perkin Elmer</td><td>4001-0010</td><td></td></tr><tr><td>Europio Estreptavidina marcada con Europio</td><td>Perkin Elmer</td><td>1244-360</td><td></td></tr><tr><td>L243 anticuerpo anti-HLA-DR</td><td>Biolegend 307602</td><td></td><td></td>Biotinilado</tr><tr><td> péptidos trazadores</td><td>21st Century Biochemicals</td><td>Pedido</td><td></td>personalizado</tr><tr><td>Péptidos de prueba (1-4 mg, 85% de pureza)</td><td></td><td>Genscript Pedido</td><td></td>personalizado</tr><tr><td>Monómeros HLA-DRB1 purificados (no biotinilados)</td><td>Benaroya Research Institute*</td><td>Pedido</td><td></td>personalizado</tr><tr><td>Placa EIA/RIA blanca de 384 pocillos</td><td>Termo</td><td>460372</td><td></td></tr><tr><td>Placa de polipropileno de 384 pocillos</td><td>Costar</td><td>3656</td><td></td></tr><tr><td>Película, AxySeal, 80 y micro; m, Aplicador de ELISA&nbsp;</td><td>Axygen</td><td>Ascientific PCR-SP</td><td></td></tr><tr><td>MilliQ Water N</td><td>/A</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Epimotion Liquid Handler (o similar)</td><td>Eppendorf</td><td>5075</td><td></td></tr><tr><td>Select TS Plate Washer (o similar)</td><td>BioTek</td><td>405</td><td></td></tr><tr><td>SpectraMax Gemini Microplate Reader (o similar)</td><td>Molecular Devices</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">*Las moléculas recombinantes humanas MHC II se pueden obtener del Laboratorio Central de Tetrámeros de Benaroya. Véase: https://www.benaroyaresearch.org/our-research/core-resources/tetramer-core-laboratory</td></tr></tbody></table>

un ensayo de unión de alto rendimiento mhc ii para el análisis cuantitativo del péptido epítopos

A High Throughput MHC II Binding Assay for Quantitative Analysis of Peptide Epitopes

Ensayos bioquímicos con moléculas recombinantes humanas MHC II pueden proporcionar rápidas, ideas cuantitativos en la identificación epítopo inmunogénico, eliminación, o el diseño de 1,2. Aquí, un ensayo de unión péptido-MHC II se escala al formato de 384 pocillos. El protocolo reducido reduce los costes de reactivos en un 75% y es mayor rendimiento que se ha descrito anteriormente protocolos de 96 pocillos 1,3-5. Específicamente, el diseño experimental permite el análisis robusto y reproducible de hasta 15 péptidos contra un alelo de MHC II por 384 pocillos de placas de ELISA. El uso de un solo robot de manejo de líquidos, este método permite a un investigador para analizar aproximadamente noventa péptidos de ensayo por triplicado en un rango de concentraciones de ocho y cuatro tipos de alelos de MHC II en menos de 48 horas. Otros trabajan en los campos de la desinmunización proteína o el diseño y desarrollo de vacunas que encuentre el protocolo para ser útil en la facilitación de su propio trabajo. En particular, las instrucciones paso a paso y el formato visualde Jove debe permitir que otros usuarios establecer rápida y fácilmente esta metodología en sus propios laboratorios.

La secuencia de péptido maduro de Enterobacter cloacae P99 de beta-lactamasa (bla) (GenBank ID # X07274.1) se analizó con ProPred 16 para aglutinantes de péptidos putativos a MHC II alelo DRB1 * 1501 (Tabla 4). ProPred identificado péptidos nonamer 117 con un residuo de anclaje P1 obligatoria (es decir, un M, L, I, V, F, Y, o W en la posición 1, que se requiere para MHC II de unión 31). En el umbral del 5%, sólo los péptidos con puntajes mayores o iguales a 2.6 so...

Ensayos bioquímicos con moléculas recombinantes humanas MHC II pueden proporcionar rápidas, ideas cuantitativos en la identificación epítopo inmunogénico, eliminación o diseño. Aquí, se describe un ensayo de unión péptido-MHC II a escala para placas de 384 pocillos. Este formato rentable puede ser muy útil en los campos de desinmunización proteínas y diseño y desarrollo de vacunas.

Un ensayo de unión de alto rendimiento MHC II para el análisis cuantitativo del péptido epítopos

Biochemical assays with recombinant human MHC II molecules can provide rapid, quantitative insights into immunogenic epitope identification, deletion, or ...

El objetivo general de este procedimiento es cuantificar la unión de péptidos cortos con las proteínas inmunitarias humanas MHC clase II mediante un ensayo de alta capacidad en placas de 384 pozos. Esto se logra primero realizando ensayos de unión por competencia en fase acuosa con los péptidos de interés. En el segundo paso, los complejos péptido-MHC clase II en equilibrio se capturan mediante un anticuerpo anti-MHC clase II inmovilizado en placas ELISA de alta unión.A continuación, los complejos capturados se incuban con estreptavidina marcada con opio y luego se eliminan por lavado la estreptavidina no unida; posteriormente, se activa el opio capturado. Finalmente, se puede utilizar fluorometría de tiempo resuelto para cuantificar los niveles del péptido control capturado por MHC clase II. Este método puede proporcionar información preliminar sobre el potencial inmunogénico de las proteínas diana.Es especialmente útil para validar la salida de predictores in silico. Comience el procedimiento añadiendo 25 microlitros de una solución de anticuerpo L 2 43 recién diluida a cada pocillo de una placa ELIZA blanca de 84 pocillos de alta unión. Selle la placa con una película de poliést

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Research

Investigación

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Biology

Biología

Este protocolo describe el uso de péptido: MHC tetrámeros y microperlas magnéticas para aislar poblaciones de baja frecuencia de células T específicos para el epítopo y analizarlas por citometría de flujo. Este método permite el estudio directo de sus propias poblaciones de células T de interés...

Péptido: MHC tetrámero basado en el enriquecimiento de células T específicos para el epítopo

Este video muestra una técnica que aplica la tecnología de microarrays de péptidos para perfilar la especificidad de los anticuerpos reconociendo modificaciones postraduccionales (PTM) en péptidos de histonas. Un portaobjetos de microarray que contiene péptidos de histonas conjugados con fluoróforos inmovilizados con combinaciones conocidas de PTM se trata con anticuerpos específicos de PTM diana. Este proceso ayuda a identificar la especificidad del anticuerpo para el objetivo y su posible...

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Medición de TCR-pMHC Encuadernación<em&gt; In Situ</em&gt; Usando un ensayo de microscopía basada en FRET

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El uso de cristalografía de rayos X, Biofísica y Ensayos funcionales para determinar la célula T mecanismos que rigen el reconocimiento del receptor de antígenos del cáncer

Aquí, describimos un análisis cromatográfico juntado con la separación de movilidad de iones precursores de péptidos seguida por la alta resolución (~ 30.000) MS-detección de fragmentos de péptidos para la cuantificación de normas péptido con púas en un anticuerpo monoclonal Digest.

Un ensayo de HS-MRM para la cuantificación de las proteínas de la célula huésped en productos biofarmacéuticos de proteínas por cromatografía líquida QTOF masa espectrometría por movilidad iónica

Aquí, los autores presentan un protocolo simple y eficiente para definir un epítopo antigénico lineal utilizando un anticuerpo monoclonal purificado y escaneo de péptidos a través de hibridación dot-blot. El epítopo identificado puede utilizarse en aplicaciones terapéuticas y diagnósticas.

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QA-1 (HLA-E en humanos) pertenece a un grupo de moléculas de histocompatibilidad no clásicas complejas 1b. Inmunización con epítopos de Unión-1-control de calidad se ha demostrado para aumentar la regulación inmune del tejido específico y mejorar varias enfermedades autoinmunes. Adjunto describimos una estrategia de biblioteca de péptidos superpuestas para la identificación de los epitopos de Qa-1 en una proteína.

Biblioteca de péptido superpuestas a epitopos Qa-1 en una proteína

Aquí, presentamos un protocolo para el ex vivo cualitativamente específica de antígeno CD8+ T las células. Análisis es posible con suspensiones de la célula de órganos o de pequeñas cantidades de sangre. Una amplia gama de estudios requieren el análisis de las respuestas de la célula de T citotóxica (vacunación y estudios de inmunoterapia del cáncer).

Cuantificación simultánea de CD8 anti-vector y Anti-transgénicos-específico+ T células vía MHC Tetramer tinción después de la vacunación con un Vector Viral

Sobre la base de una matriz peptídica derivada del virus de la hepatitis B (VHB), las respuestas de las células T CD4 específicas del VHB podrían evaluarse en paralelo con la identificación de epítopos de células T CD4 específicas del VHB.

Análisis de las respuestas de las células T CD4 específicas del VHB e identificación de epítopos de células T CD4 restringidas por HLA-DR basadas en una matriz peptídica

Aquí, presentamos un protocolo para la purificación de complejos peptídicos MHC clase I y clase II a partir de líneas celulares de ratón y humanos que proporcionan datos inmunopeptidómicos de alta calidad. El protocolo se centra en la preparación de muestras utilizando anticuerpos disponibles comercialmente.

Inmunopeptidomics: Aislamiento de péptidos asociados a MHC de clase I y II de ratón y humano para el análisis de espectrometría de masas

Aprende a cuantificar la unión de péptidos a proteínas MHC II humanas mediante un ensayo de alta capacidad en placas de 384 pocillos. Este método acelera la identificación de epítopos inmunogénicos para el desarrollo de vacunas.

Un ensayo de unión de alto rendimiento MHC II para el análisis cuantitativo del péptido epítopos

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