Name: Multienzimático de detección sistemática mediante un sistema de cribado genético de la enzima de alto rendimiento (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-08-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 10 s
Description: Aprende a evaluar múltiples enzimas mediante un sistema de cribado genético de alto rendimiento que utiliza un compuesto fenileno y un reportero GFP. Este método permite identificar lipasas, celulasas y fosfatasas alcalinas de forma eficiente.

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Esta investigación fue apoyada por subvenciones del Centro de Biología Sintética Inteligente del Proyecto Global Frontier (2011-0031944), el Programa Biogreen 21 de Próxima Generación (PJ009524), NRF-2015M3D3A1A01064875 y el Programa de Iniciativa de Investigación KRIBB.

1. Preparación de la biblioteca metagenómica con PNP-GESS <ol><li> Construir una biblioteca metagenómica en E. coli con un vector fosmid utilizando un kit de producción biblioteca fosmid de acuerdo con el protocolo del fabricante 5. </li><li> Alícuota de 100 l de la biblioteca para almacenamiento a -70 ° C, que es una fuente de células de la biblioteca metagenomic. Nota: La densidad óptica de una muestra medida a una longitud de onda de 600 nm (OD 600) de esta biblioteca de valores es aproximadamente 100. </li><li> Descongelar 100 l de la biblioteca de la metagenomic en hielo y inocular en un matraz de 500 ml que contiene 50 ml de Luria-Bertani (LB) y 12,5 g de cloranfenicol / ml, seguido de 37 ° C de la incubación durante 2 hr. </li><li> Recoger las células en un tubo cónico de 50 ml mediante centrifugación a 1000 xg durante 20 min a 4 ° C. </li><li> Resuspender el precipitado rápidamente en 50 ml de agua helada-fría destilada (DW) y se centrifuga a 1000 xg durante 20 min a 4 ° C de nuevo. </li><li> Resuspend el precipitado en 50 l DW enfriado en hielo con 10% (v / v) de glicerol. Utilice 50 l de esta alícuota de células para la electroporación. </li><li> Colocar la mezcla de células electrocompetentes 50 l y pGESS (E135K) 5 de ADN (100 ng) en una cubeta de electroporación enfriada con hielo y electroporar (1,8 kV / cm, 25 mF) la mezcla. </li><li> Rápidamente añadir 1 ml de caldo súper óptima con la represión de catabolitos (SOC) a medio y volver a suspender las células suavemente. </li><li> Transferencia de las células en el tubo de 14 ml de fondo redondo con una pipeta y se incuba a 37 ° C durante 1 hr. </li><li> Extender 500 l de las células recuperadas en un LB 20 x 20 cm placa cuadrada que contiene 12,5 mg / ml de cloranfenicol y 50 mg / ml de ampicilina. Incubar la placa a 30 ° C durante 12 horas. </li><li> Raspar las colonias utilizando un rascador de células y recoger las células en un tubo cónico de 50 ml usando medios de almacenamiento de células enfriado con hielo. </li><li> Centrifugar a 1000 xg durante 20 min a 4 ° C. Resuspender el precipitado en 10 ml de medio de almacenamiento de células heladaspara llegar a un OD 600 de 100. </li><li> Alícuota de 20 l de las células para su almacenamiento a -70 ° C. </li></ol> 2. Eliminación de falsos positivos de la biblioteca metagenómica <ol><li> Descongelar las células de valores metagenomic biblioteca (del paso 1.13) que contienen ADN fosmid metagenómica y pGESS (E135K) en hielo. </li><li> Inocular 10 l de las células en 2 ml de LB que contienen 50 mg / ml de ampicilina y 12,5 mg / ml de cloranfenicol en un tubo de fondo redondo de 14 ml. Incubar a 37 ° C con agitación a 200 rpm durante 4 hr. </li><li> Mientras tanto, encender la máquina de FACS y se abra el software FACS predeterminado. Utilice los siguientes parámetros: diámetro de la punta de la boquilla, 70 micras; Área dispersión hacia adelante (FSC-A) la sensibilidad, la amplificación de 300 V-logarítmica; Área de dispersión lateral (SSC-A) la sensibilidad, la amplificación de 350 V-logarítmica; Isotiocianato de fluoresceína en la zona (A-FITC) de sensibilidad, 450 de amplificación V-logarítmica; parámetro de umbral, FSC-Un valor 5. Nota: se dan configuraciones típicaspara el dispositivo FACS mencionado en la Tabla de Materiales. Ajustar la configuración de otros dispositivos de FACS. </li><li> Diluir las células de la biblioteca de metagenomic Paso 2.2 mediante la adición de 5 l de la muestra a un tubo de fondo redondo de 5 ml que contiene 1 ml de PBS. </li><li> Coloque la muestra biblioteca diluida sobre el puerto de carga del instrumento FACS y hacer clic en el botón Cargar en el tablero de instrumentos de adquisición del software FACS. </li><li> Ajustar la tasa de eventos a 1.000 - 1.500 eventos / seg haciendo clic en los botones y el control de Velocidad de flujo en el salpicadero. </li><li> Crear registro escalado FSC-A vs log escala SSC-Un gráfico de dispersión en una hoja de trabajo mundial haciendo clic en el botón gráfico de puntos en la barra de herramientas. Ajuste la puerta de dispersión R1 para abarcar los acontecimientos singlete (población bacteriana) utilizando el botón de la puerta del polígono en la barra de herramientas. </li><li> Trazar un histograma con el recuento de células frente a log escala FITC-A en la hoja de cálculo haciendo clic en el botón Histograma. A continuación, ajuste la tensión del FITC Cytomepestaña Configuración ter en la ventana Control de Inspector de tal manera que el pico de la distribución en forma de campana es inferior al 10 2 de FITC-A. </li><li> Crear un registro de escalado FSC-A vs. el registro de FITC-Un gráfico haciendo clic en el botón gráfico de puntos en la hoja de trabajo global. Establecer una clasificación puerta R2 en el terreno mediante el botón de puerta de polígono en la barra de herramienta de manera que la puerta se encuentra entre + 5% y -5% de las células del centro de la distribución (en total 10% de células alrededor del pico de la campana curva en forma). </li><li> Colocar un tubo de recogida que contiene 1,2 ml de LB que contiene 50 mg / ml de ampicilina y 12,5 mg / ml de cloranfenicol en la salida del instrumento FACS y ordenar 10 6 células que satisfacen tanto la R1 y R2 puertas. </li><li> Retire el tubo de recogida, gorra, y suavemente vórtice. </li></ol> 3. Presentación de la Enzima Metagenomic <ol><li> Se incuban las células clasificadas (del paso 2,11) a 37 ° C con agitación a 200 rpm hasta que la DO 600 alcanza 0,5. </li><li> Añadir 1 l copiar solución de inducción para amplificar el número de copias fosmid intracelular. Se incuban las células durante 3 h más a 37 ° C con agitación a 250 rpm. </li><li> Para preparar las células para clasificar, añadir 0,5 ml de las células cultivadas y un sustrato apropiado (p-nitrofenil acetato, p-nitrofenil-β-D-celobiósido, o fosfato de fenilo) en un tubo de 14 ml de fondo redondo a una concentración final de 100 mM. <ol><li> Para una muestra de control, añadir 0,5 ml de las células cultivadas a partir del Paso 3.2 en un tubo de fondo redondo de 14 ml. Añadir el mismo volumen de PBS como el volumen de substrato en la fase 3.3. </li></ol></li><li> Se incuban las dos muestras a 37 ° C con agitación a 200 rpm durante 3 hr. </li><li> Mientras tanto, preparar la máquina FACS con las mismas configuraciones que el paso 2.3. </li><li> Añadir 5 l de las células (para la clasificación) y células de control a dos tubos de 5 ml de fondo redondo que contienen 1 ml de PBS, respectivamente. </li><li> Se coloca el tubo que contiene las células de control en tque la carga de puerto de la FACS y hacer clic en el botón Cargar en el tablero de instrumentos de adquisición del software FACS. Ajustar la tasa de eventos a 1.000 - 3.000 eventos / seg mediante el control de Caudal de botones en el tablero de instrumentos. </li><li> Crear registro de escala FSC-A vs log escala SSC-Un gráfico de dispersión haciendo clic en el botón gráfico de puntos en la hoja de cálculo global del software y ajustar la puerta de dispersión R1 para abarcar los acontecimientos singlete (población bacteriana) con el botón de la puerta en el Polígono barra de herramientas. </li><li> Crear registro de escala FSC-A vs log escala FITC Un gráfico de dispersión haciendo clic en el botón gráfico de puntos en la hoja de trabajo y establecer una clasificación de puerta de R2 en el gráfico utilizando el botón Polígono Puerta de la barra de herramienta de manera que menos del 0,1% de células negativas se detectan dentro de la puerta R2. </li><li> Vuelva a colocar el tubo de la muestra de control con el tubo de muestra de la clasificación, y ajustar la tasa de eventos a 1.000 - 3.000 eventos / seg mediante el control de los botones de Velocidad de flujo en el salpicadero. </li><li> Colocar un tubo de extracción que contiene 0,5ml de LB en la salida del instrumento FACS y ordenar a cabo 10 4 células que satisfacen tanto las puertas R1 y R2. Nota: El criterio de clasificación puede variar desde la parte superior 0,1% a 5% de FITC-A en la puerta R2. En este protocolo, se recogieron las células superiores al 1% como positivos. </li><li> Retire el tubo de recogida, gorra, y suavemente vórtice. </li><li> Extender las muestras de 0,5 ml recogidos en dos placas de agar (90 mm placas de Petri que contienen LB), 50 mg / ml de ampicilina, 12,5 mg / ml de cloranfenicol y se incuba la placa a 37 ° C durante la noche. </li><li> Si es necesario, realizar rondas adicionales de clasificación para FITC-A enriquecimiento repitiendo los pasos 3.1-3.14. </li></ol> 4. Hit Confirmación de selección y la actividad enzimática <ol><li> Citometría de flujo análisis <ol><li> De la placa se incubó a Paso 3.14, seleccione una colonia que no muestran fluorescencia utilizando un selector de colonia bajo la observación de 488 nm de longitud de onda de un iluminador LED. </li><li> Inocular la colonia seleccionada en un niño de 14 ml round de fondo tubo que contiene 2 ml de LB que contiene 50 mg / ml de ampicilina y 12,5 mg / ml de cloranfenicol a 37 ° C con agitación a 200 rpm hasta que su OD 600 alcanza 0,5. </li><li> Añadir 2 l copiar solución de inducción para amplificar el número de copias fosmid intracelular. Se incuban las células durante 3 h más a 37 ° C con agitación a 250 rpm. </li><li> Preparar un tubo de fondo redondo de 14 ml y añadir 1 ml de las células cultivadas (paso 4.1.3). Añadir un sustrato apropiado (acetato de p-nitrofenil, p -nitrophenyl- β-D-celobiósido, o fosfato de fenil) a una concentración final de 100 mM. <ol><li> Para un control, añadir 1 ml de células cultivadas a partir del paso 4.1.3 en un tubo de 14 ml de fondo redondo y añadir el mismo volumen de PBS como el volumen de sustrato en el paso 4.1.4. </li></ol></li><li> Se incuban las dos muestras a 37 ° C con agitación a 200 rpm durante 3 hr. </li><li> Mientras tanto, preparar la máquina FACS con las mismas configuraciones que el paso 2.3. </li><li> Añadir 5 l de las células de control y sustrato tratado a tubos de 5 ml de fondo redondo que contienen 1 ml de PBS, respectivamente. </li><li> Se coloca el tubo que contiene las células de control en el puerto de carga del dispositivo FACS y hacer clic en el botón Cargar en el tablero de instrumentos de adquisición del software FACS. Ajustar la tasa de eventos a 1.000 - 3.000 eventos / seg Velocidad de flujo utilizando los botones en el salpicadero. </li><li> Haga clic en el botón Adquisición de medir FITC-A. </li><li> Sustituir el tubo de muestra de control con el tubo de muestra tratada sustrato. Ajustar la tasa de eventos a 1.000 - 3.000 eventos / seg Velocidad de flujo utilizando los botones en el salpicadero. </li><li> Haga clic en el botón Adquisición de medir FITC-A. </li><li> Comparación de la fluorescencia de los dos grupos de células por el trazado de un histograma de recuento de células frente al log escala FITC-A. </li></ol></li><li> Otros ensayos para confirmar la actividad de la enzima <ol><li> Para mayor identificación de los candidatos seleccionados de enzimas, extraer el ADN usando fosmid Pro estándar de extracciónprocedimientos de los kits de extracción comerciales y analizar la secuencia de nucleótidos, o probar la actividad enzimática in vitro de 6,7. </li></ol></li></ol>

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<li>Uchiyama, T., Abe, T., Ikemura, T., Watanabe, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Substrate-induced+gene-expression+screening+of+environmental+metagenome+libraries+for+isolation+of+catabolic+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Substrate-induced gene-expression screening of environmental metagenome libraries for isolation of catabolic genes.</a> Nat. Biotechnol. 23 (1), 88-93 (2005).</li>
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<li>Tang, S. Y., Cirino, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+application+of+a+mevalonate-responsive+regulatory+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Angew+Chem.+Int.+Ed%22%5BJournal%5D)">Design and application of a mevalonate-responsive regulatory protein.</a> Angew Chem. Int. Ed. 50 (5), 1084-1086 (2011).</li>
<li>Jha, R. K., Kern, T. L., Fox, D. T., Strauss, C. E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Engineering+an+Acinetobacter+regulon+for+biosensing+and+high-throughput+enzyme+screening+in+E.+coli+via+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Engineering an Acinetobacter regulon for biosensing and high-throughput enzyme screening in E. coli via flow cytometry.</a> Nucleic Acids Res. 42 (12), 8150-8160 (2014).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El aumento de la eficiencia de producción de biocatalizadores es una clave para el éxito de la bio-químico basado en la industria de metagenome 9 y está considerada como una de las mejores fuentes de enzimas naturales. En este sentido, es esencial para el cribado de nuevas enzimas metagenoma donde la mayoría de los recursos genéticos no se han explorado 10. Varios métodos de detección se han desarrollado que detectan directamente los productos de enzimas utilizando activadores de la transcripción <...

Un alto rendimiento de técnica de ensayo de una sola célula recientemente desarrollado permite nuevas enzimas que se proyectarán partir de una biblioteca genética a gran escala en base a sus actividades funcionales 1. En el nivel de células individuales, se emplean las proteínas que regulan la transcripción para activar la expresión de genes reportero mediante la detección de moléculas pequeñas que se producen como resultado de una actividad de la enzima objetivo. Un enfoque temprano implicado el aislamiento de un operón de fenol-degradante de Ralstonia eutropha E2 utilizando la expresión genética sustrato inducida método (SIGEX), en el que el sustrato induce la expresión de una proteína indicadora 2 de cribado. Nhar de Pseudomonas putida se utilizó para seleccionar benzaldehído deshidrogenasa 3, y LysG de Corynebacterium glutamicum se utilizó para el cribado de alto rendimiento de una nueva cepa L-lisina productoras de diversas bibliotecas mutantes 4. Anteriormente, una enzima genética screeniSe propuso sistema ng (GESS) como una plataforma de cribado de aplicación general 5. Este sistema utiliza el regulador dimetilfenol fenol-reconocer, DMPR, de P. putida. DMPR (E135K), y un mutante de DMPR, también se pueden emplear en GESS (PNP-GESS) para la detección de nitrofenol p (PNP). En presencia de enzimas objetivo la producción de compuestos fenólicos, GESS en E. células de E. coli emite una señal de fluorescencia, lo que permite el aislamiento rápido de células individuales utilizando un clasificador de células activadas por fluorescencia (FACS). Sin embargo, la expresión de la enzima metagenomic parece ser más débil que la de las enzimas recombinantes convencionales; Por lo tanto, GESS fue diseñado para detectar compuestos fenólicos con la máxima sensibilidad mediante la investigación de la combinación de sitio de unión ribosomal (RBS) y las secuencias de terminación junto con condiciones de funcionamiento óptimas 5. Una de las ventajas fundamentales de GESS es que este único método permite, teóricamente, la proyección de over de 200 tipos diferentes de enzimas en la base de datos BRENDA (Tabla 1, http: // www.brenda-enzymes.info, 2013.7) simplemente empleando diferentes sustratos. Se demostró que la celulasa, lipasa, y hidrolasa metil paratión (MPH) se puede detectar usando PNP-GESS con sustratos apropiados de p-nitrofenil butirato, p-nitrofenil-cellotrioside, y metil paratión, respectivamente 5. Recientemente, se demostró que una fosfatasa alcalina (AP), que es una de las nuevas enzimas identificadas usando PNP-GESS, es la primera AP termolábil que se encuentra en metagenomes marinos adaptados al frío 6. Aquí, los detalles del proceso de selección se presenta con PNP-GESS detectar las actividades de tres diferentes tipos de lipasa enzymes-, celulasa, y fosfatasa alcalina -y la identificación de nuevas enzimas candidatos a partir de una biblioteca metagenómica 5,6 rápidamente. Los procesos incluyen metagenoma procesamiento previo con PNP-GESS y operar un flclasificador de flujo citometría. Mientras que los éxitos obtenidos tendrán que ser secuenciado para su posterior identificación, este protocolo cubre el procedimiento hasta los pasos de confirmación de la actividad enzimática mediante citometría de flujo.

<table><tbody><tr>Kit de producción de la biblioteca <td>CopyControl</td><td>Epicentre</td><td>CCFOS110</td><td>Fosmid&nbsp;</td></tr><tr><td>Solución de inducción CopyControl</td><td>Epicentre</td><td>CCIS125</td><td>Fosmid Solución de inducción de copia</td></tr><tr><td>EPI300</td><td>Epicentro</td><td>EC300110</td><td>Célula electrocompetente</td></tr><tr><td>pCC1FOS</td><td>Epicentro</td><td>CCFOS110</td><td>vector Fosmid</td></tr><tr><td>Gene Pulser Mxcell</td><td>Bio-Rad</td><td></td><td>Sistema de electroporación y electroporación</td></tr><tr><td>FACSAria III</td><td>Becton Dickinson</td><td></td><td>Citometría de flujo (máquina FACS)</td></tr><tr>Microscopio <td>Nikon</td><td></td> <td>AZ100M</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>UltraSlim&nbsp;</td><td>Iluminador LED</td> <td>Maestrogen</td><td></td></tr><tr><td>tubo cónico de 50 ml</td><td>BD Falcon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>tubo de fondo redondo de 14 ml&nbsp;</td><td>BD Falcon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tubo de 5 ml de fondo redondo</td><td>BD Falcon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>p-nitrofenilo fosfato</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N7653</td><td>Sustrato</td></tr><tr><td>p-nitrofenilo &beta;-D-celobiósido</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N5759</td><td>Sustrato</td></tr><tr><td>p-butilato de nitrofenilo</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N9876& nbsp;</td><td>sustrato</td></tr><tr><td>Luria-Bertani (LB)</td><td>BD Difco</td><td>244620</td><td>Triptona 10 g/L, Extracto de levadura 5 g/L, Cloruro de sodio 10 g/L</td></tr><tr><td>Caldo súper óptimo (SOB)</td><td>BD Difco</td><td>244310</td><td>Triptona 20 g/L, Extracto de levadura 5 g/L, Cloruro de sodio 0,5 g/L, Sulfato de magnesio 2,4 g/L, Cloruro de potasio 186 mg/L</td></tr><tr><td>Caldo súper óptimo con represión de catabolito (SOC)</td><td></td><td>SOB, 0,4 % de glucosa</td><td></td></tr><tr><td>2x Extracto de levadura Triptona (2xYT)</td><td>BD Difco</td><td>244020</td><td>Digestión pancreática de caseína 16 g/L, Extracto de levadura 10 g/L, Extracto de levadura 5 g/L</td></tr><tr><td>Medios</td><td></td><td></td> de almacenamiento celular <td>2x Caldo YT, 15% Glicerol, 2% Glucosa</td></tr><tr><td>pGESS(E135K)</td><td></td><td></td><td>Un vector de ADN que contiene dmpR, genes egfp con sus promotores apropiados, RBS y terminator. Véase la referencia 5 en el manuscrito para Más detalles.</td></tr><tr><td>Cloranfenicol</td><td>Sigma</td><td>C0378</td><td></td></tr><tr><td>Ampicilina</td><td>Sigma</td><td>A9518</td><td></td></tr><tr><td>BD FACSDiva</td><td>Becton Dickinson</td><td></td><td>Software de citometría de flujo versión 7.0</td></tr><tr><td>PBS</td><td>Gibco</td><td>70011-044</td><td>0,8 % NaCl, 0,02 % KCl, 0,0144 % Na2HPO4, 0,024 % KH2OP4, pH 7,4</td></tr></tbody></table>

multienzimático de detección sistemática mediante un sistema de cribado genético de la enzima de alto rendimiento

Multi-enzyme Screening Using a High-throughput Genetic Enzyme Screening System

El reciente desarrollo de una técnica de ensayo unicelular de alto rendimiento permite el cribado de nuevas enzimas basadas en actividades funcionales a partir de una biblioteca metagenómica a gran escala1. Anteriormente propusimos un sistema de cribado genético de enzimas (GESS) que utiliza un regulador de dimetilfenol activado por fenol o p-nitrofenol. Dado que una gran cantidad de reacciones enzimáticas naturales producen estos compuestos fenólicos a partir de sustratos derivados del fenol, este sistema de cribado genético único puede aplicarse teóricamente para cribar más de 200 enzimas diferentes en la base de datos BRENDA. A pesar de la aplicabilidad general de GESS, la aplicación del proceso de cribado requiere un procedimiento específico para alcanzar las máximas señales de citometría de flujo. Aquí, detallamos el proceso de cribado desarrollado, que incluye el preprocesamiento del metagenoma con GESS y el funcionamiento de un clasificador de citometría de flujo. Se utilizaron tres sustratos fenólicos diferentes (acetato de p-nitrofenilo, p-nitrofenil-β-D-celobiósido y fosfato de fenilo) con GESS para el cribado y la identificación de tres enzimas diferentes (lipasa, celulasa y fosfatasa alcalina), respectivamente. Las actividades enzimáticas metagenómicas seleccionadas se confirmaron solo con la citometría de flujo, pero la secuenciación del ADN y diversos análisis in vitro se pueden utilizar para una mayor identificación de genes.

Se examinaron los tres sustratos fenólicos para identificar nuevas enzimas metagenomic de una biblioteca de metagenome de sedimentos planas de alta mar de las mareas en Taean, Corea del Sur, siguiendo el protocolo propuesto. Para la construcción de la biblioteca, promedio 30 - 40 kb secuencias metagenome se insertaron en fosmids, que se basan en la E. coli F factor de replicón y se presenta como una sola copia en una celda. Tenga en cuenta que fosmids han sido ampliamente utiliz...

Este trabajo presenta un método de cribado de alto rendimiento utilizando un sistema universal de cribado genético de enzimas que teóricamente puede aplicarse a más de 200 enzimas. En este caso, el sistema de cribado único identifica tres enzimas diferentes (lipasa, celulasa y fosfatasa alcalina) simplemente cambiando el sustrato utilizado (acetato de p-nitrofenilo, p-nitrofenil-β-D-celobiósido y fosfato de fenilo).

Multienzimático de detección sistemática mediante un sistema de cribado genético de la enzima de alto rendimiento

The recent development of a high-throughput single-cell assay technique enables the screening of novel enzymes based on functional activities from a ...

El objetivo general de esta metodología consiste en evaluar múltiples enzimas utilizando un único sistema de cribado de alto rendimiento. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de microorganismos e ingeniería bioquímica sobre cribado metagenómico e ingeniería de enzimas. Hemos desarrollado un sistema genético de cribado de enzimas que incluye un mutante MPL sensible a compuestos fenilenos y un gen reportero GFP en su región downstream.Una vez que cualquier gen metagenómico muestre la actividad enzimática de nuestro interés al reaccionar con el sustrato proporcionado, un compuesto fenilenato del producto de reacción activa al mutante Dmp y desencadena la expresión del reportero GFP, que puede detectarse fácilmente mediante un medidor de fluorescencia. La principal ventaja de esta técnica es que, a diferencia de las técnicas convencionales de cribado, este único método es aplicable para cribar múltiples tipos de enzimas diferentes utilizando el sustrato adecuado. Quien demostrará este procedimiento será Kil Koang Kwon, un estudiante de posgrado en nuestro laboratorio.Después de construir una biblioteca metagenómica en E. coli con un vector fósido utilizando un kit de producción de bibliotecas fósido, transporte el ADN pGESS(E135K) hacia las células de la biblioteca metagenómica. Luego, almacene las células transformadas de la biblioteca a menos 70 grados Celsius en alícuotas de 20 microlitros. Para eliminar los falsos positivos, primero descongele una alícuota de células de la biblioteca metagenómica sobre hielo.Luego, inocule diez microlitros de las células descongeladas en dos mililitros de caldo lisogénico que contenga ampicilina y cloranfenicol en un tubo redondo de 14 mililitros a 37 grados Celsius y 200 RPM durante cuatro horas. Mientras tanto, configure los parámetros adecuados en la máquina de FACS para leer las células de la biblioteca metagenómica en el software predeterminado de FACS. Al final de la incubación, transfiera cinco microlitros de células a un mililitro de PBS en un tubo redondo de cinco mililitros.Luego, cargue la muestra de la biblioteca diluida y ajuste la tasa de eventos a entre 1000 y 1500 eventos por segundo. Para generar un gráfico de dispersión de área de dispersión frontal escalada logarítmicamente versus área de dispersión lateral escalada logarítmicamente en una hoja de trabajo global, cree un gráfico de puntos y dibuje una puerta poligonal alrededor de los eventos de singletes que contienen la población bacteriana. Para trazar un histograma de recuento celular versus área FITC escalada logarítmicamente, abra un histograma y ajuste el voltaje FITC de modo que el pico de la distribución con forma de campana sea inferior a diez elevado a dos del área FITC.A continuación, abra otro diagrama de dispersión para crear un gráfico de área de dispersión directa en escala logarítmica versus área log FITC y establezca una puerta de ordenación R2 entre más cinco y menos cinco por ciento de las células desde el centro de la distribución. Una vez establecidas todas las puertas, coloque un tubo de recolección que contenga 1.2 mililitros de caldo lisogénico suplementado con antibiótico en la salida del equipo de citometría FACS y ordene un por diez a la sexta de las células seleccionadas hacia el caldo. Al finalizar la ordenación, tape el tubo de recolección y vortexee suavemente las células.Para analizar en pantalla las enzimas metagenómicas de interés, incubar las células seleccionadas a 37 grados Celsius y 200 RPM hasta que la DO600 alcance 0,5, luego agregar un microlitro de solución inductora de copia para amplificar el número de copias del fósmino intracelular. Después de tres horas a 37 grados Celsius y 250 RPM, combinar 0,5 mililitros de las células con el sustrato adecuado en un tubo redondo de 14 mililitros hasta una concentración final de 100 micromolar. A continuación, incubar las muestras control y experimentales a 37 grados Celsius y 200 RPM durante otras tres horas.Mientras las muestras se agitan, configure los parámetros del equipo de citometría de flujo tal como se acaba de demostrar. Luego, agregue cinco microlitros de células de cada muestra en tubos individuales de fondo redondo de cinco mililitros que contengan un mililitro de PBS. A continuación, cargue las células de la muestra y ajuste la tasa de eventos a entre 1000 y 3000 eventos por segundo.Cree un gráfico de dispersión de área de dispersión directa en escala logarítmica versus área de dispersión lateral en escala logarítmica y ajuste la compuerta de dispersión R1 para incluir las células bacterianas de eventos singletes. Luego, cree un gráfico de dispersión de dispersión directa en escala logarítmica versus área de FITC en escala logarítmica y establezca una compuerta de clasificación R2 de modo que menos del 0,1 % de las células negativas sean detectadas. Ahora, cargue el tubo de muestra y reajuste la tasa de eventos a entre 1000 y 3000 eventos por segundo, según sea necesario.Luego, coloque un tubo de recolección que contenga 0,5 mililitros de caldo lisogénico en la salida del instrumento FACS y recolecte una vez diez a la cuarta de las células dentro de las puertas R1 y R2. Cuando todas las células hayan sido aisladas, tape el tubo de recolección y vortexe suavemente las células. A continuación, distribuya 0,5 mililitros de las muestras recolectadas en dos placas de agar de 90 milímetros que contengan caldo lisogénico suplementado con antibióticos, e incube las placas durante la noche a 37 grados Celsius.En esta figura, se ilustra el protocolo de cribado demostrado, que incluye la eliminación de falsos positivos mediante clasificación negativa y la selección de aciertos positivos utilizando las compuertas de clasificación R1 y R2. Luego, los aciertos pueden evaluarse comparando la fluorescencia de la muestra con y sin el sustrato. En este cribado representativo mediado por acetato de p-nitrofenilo, la fluorescencia de las células tratadas con el sustrato fue mayor que la de las células de control, confirmando cinco candidatos a lipasa en este experimento.A pesar de las amplias distribuciones de estos tres candidatos de celulosa, se observan diferencias claras en la intensidad media de FITC de las poblaciones. Estos cuatro candidatos de fosfatasa también demuestran niveles altos de fluorescencia en comparación con las células de control. Además, la actividad de fosfatasa alcalina de los vectores con inserción de orf puede confirmarse mediante citometría de flujo, con una señal de fluorescencia más intensa observada para el enzima activo que para las células que portan el plásmido vacío.Es importante recordar que esta técnica puede aplicarse al cribado de una amplia variedad de enzimas mediante la selección de un sustrato y una concentración de ración adecuados. Tras este procedimiento, se pueden realizar otros métodos como la secuenciación de nueva generación para responder preguntas adicionales sobre la identificación y caracterización del candidato enzimático de manera de alto rendimiento. Tras su desarrollo, esta técnica de cribado enzimático de alto rendimiento allanó el camino para que los investigadores en el campo de la ingeniería enzimática exploraran diversas enzimas metagenómicas sin necesidad de una especificidad enzimática previa.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo utilizar el sistema de cribado de alto rendimiento basado en circuitos metogénicos con una amplia gama de dianas enzimáticas.

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Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

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Cribado de alto rendimiento de la actividad endoglucanasa por hongos en Escherichia coli</em

Fuente: Kim, H. et al., Cribado Multienzimático usando un sistema de cribado enzimático genético de alto consumo. J. Vis. Exp. (2016)Este vídeo demuestra un método de cribado genético para detectar la expresión enzimática utilizando bibliotecas metagenómicas de fosmid y sustratos cromogénicos. La citometría de flujo identifica y aísla células individuales que producen productos coloreados, permitiendo la selección de alto rendimiento de células activas que expresan enzimas.

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La selección de alto rendimiento de los hidratos de carbono-El uso de enzimas que degradan la novela insoluble cromogénico sustrato de ensayo Kits

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