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L’interaction physique entre deux partenaires protéiques module les mécanismes biologiques en aval.
Pour détecter les interactions protéine-protéine à l’aide du test immuno-enzymatique ELISA, prenez une plaque d’immunodosage multipuits. Ajoutez un tampon d’enrobage contenant l’une des protéines en interaction – la protéine d’appât – et incuber. Les protéines de l’appât sont adsorbées sur la surface du puits via des interactions hydrophobes non spécifiques.
Jetez la solution épuisée et lavez la plaque avec un tampon pour éliminer les protéines non liées. Ajoutez une solution bloquante et incuber, permettant aux molécules d’agent bloquant de la solution de bloquer les sites de liaison non spécifiques à la surface du puits.
Ajoutez le partenaire protéique en interaction – la protéine de proie – marqué avec des résidus d’histidine pour une quantification facile. Incuber, ce qui permet à la protéine de la proie de se lier spécifiquement à son partenaire interactif, l’appât. Ajoutez une solution d’anticorps antihistidiniques conjugués à des enzymes peroxydase de raifort qui se lient à la proie, formant un complexe appât-proie-anticorps.
Pipetez une solution contenant le substrat de l’enzyme et du peroxyde d’hydrogène et incuberez.
L’enzyme peroxydase de raifort utilise du peroxyde d’hydrogène pour l’oxydation catalytique de son substrat, formant un produit de couleur bleue. Ajoutez une solution acide qui dénature l’enzyme pour arrêter la réaction, formant un produit de réaction jaune.
À l’aide d’un lecteur de microplaques, mesurez l’intensité de la couleur du produit, qui est proportionnelle à la quantité de protéines de proie liées et indique une interaction protéine-protéine réussie.
Pour se préparer à l’ELISA, versez 100 microlitres de solution protéique dans chaque puits d’une plaque de microtitration Polysorp. Fermez les plaques avec le couvercle et conservez-les à 4 degrés Celsius pendant la nuit pour faciliter l’immobilisation des protéines sur les puits de la plaque de microtitration. Jetez la solution de la plaque de microtitration en la basculant à l’envers au-dessus de l’évier. Ensuite, lavez les puits trois fois avec 300 microlitres de PBS par puits.
Bloquez les puits enrobés pendant 1 heure à température ambiante avec du PBS, contenant 2,5 % en poids de BSA. Après avoir retiré la solution de blocage, lavez les puits trois fois avec 300 microlitres de PBST par puits. Maintenant, ajoutez 100 microlitres de 50 nanomolaires de PH recombinant marqué His-tag à chaque échantillon. Dans les puits de contrôle, ajoutez seulement 100 microlitres de PBS-BSA. Incuber la plaque pendant 1 heure à température ambiante.
Après l’incubation, jeter la solution protéique et éliminer les protéines non liées en lavant les puits trois fois avec 300 microlitres de PBST par puits. Ensuite, ajoutez 100 microlitres de PBS-BSA, contenant des anticorps polyclonaux anti-His conjugués à la peroxydase de raifort.
Après 1 heure d’incubation à température ambiante, laver les puits trois fois avec 300 microlitres de PBST par puits. Détectez les complexes antigène-anticorps en ajoutant 100 microlitres de réactif de détection ELISA dans chaque puits. Ensuite, ajoutez 50 microlitres d’acide sulfurique 1 molaire par puits pour arrêter la réaction. Mesurer la densité optique des puits à 450 nanomètres, à l’aide d’un lecteur de microplaques.