14 באפריל 2010
הליך זה מתאר את זרימת עבודה קלה ומהירה להציג siRNA לתוך קשה transfect שורות תאים ופעל ביטוי גנים על ידי ה-PCR בזמן אמת. שימוש נגד תא אוטומטי, רב גם צלחת electroporation, ותחנת אלקטרופורזה אוטומטיות לספק תוצאות מהיר ואמין ללא צורך בטיפול רובוטית יקר.
המטרה הכוללת של הליך זה היא להשתמש באלקטרופורציה כדי להחדיר siRNAs לתאים קשים להעברה על מנת לחקור ביטוי גנים. זה מושג על ידי קביעת כמות תרחיף תאי האווה הדרושה באמצעות ה-TC 10. לאחר מכן מתווסף אירנה אוטומטי של מונה תאים לתרחיף התאים והתאים נוצרים אלקטרו.
באמצעות מערכת האלקטרופורציה MXL התאים מודגרים למשך 24 שעות לאחר האלקטרופורציה. לאחר מכן מתווסף IL ארבע כדי לגרום לשעתוק גנים בתאי ניסוי. לבסוף, מופק RNA ונעשה שימוש ב-PCR בזמן אמת למדידת רמות ביטוי הגנים.
בסופו של דבר, ניתן להשיג תוצאות המראות את ההשפעה של siRNAs ספציפיים על מסלולי ביטוי גנים. היי, אני אדם מקוי, מדען בכיר בחטיבת ביטוי הגנים של מעבדות Bio Rad. היום נראה לך נוהל להכנסת RNA לקווי תאים קשים להעברה על ידי אלקטרופורציה ולאחר מכן נבחן את ההשפעות על ביטוי גנים.
אנו משתמשים בהליך זה במעבדה שלנו כדי לנתח ביטוי גנים של גנים בודדים או לחקור מסלולי גנים על ידי חיסול גן אחד וחיפוש השפעות במורד הזרם. אז בואו נתחיל. בעבודה מתחת למכסה המנוע של תרבית תאים, הסר את התאים מבקבוק תרבית.
התאים המשמשים בפרוטוקול זה הם תאי השעיה. אם אתה משתמש בתאים דביקים, תצטרך לנסח את עיני הטריפסין לפני הסרתם. צנטריפוגה את התאים כדי לגלול אותם.
לאחר שהתאים סובבו כלפי מטה, הסירו את הסופרנטנט והשעו מחדש את התאים ב-PBS. כדי לקבוע את מספר התאים החיים, קחו מנה של תרחיף התאים והוסיפו כתם כחול טריאן ביחס של אחד לאחד כדי להכתים את התאים המתים. טריאן כחול נדרש להערכת תאים מתים חיים, אך לא לספירת התאים הכוללת.
צנר רק את התערובת על פתח שקופית ספירה חד פעמית והכנס אותה לדלפק התאים האוטומטי TC 10. ה-TC 10 יתמקד תחילה באופן אוטומטי כדי להבטיח את הספירה המדויקת ביותר ולאחר מכן נתחיל לספור את התאים. מוצג מספר התאים החיים וסך הכל למיליליטר במדגם.
בחר תמונת תצוגה כדי להציג את התאים במסך התצוגה. לאחר מכן באמצעות החצים למעלה או למטה. התקרב או הקטן לפי הצורך כדי לחשב את כמות תרחיף התאים הדרושה לניסויים, בחר מחשבון דילול.
הזן את הריכוז הרצוי וערכי הנפח הסופיים לניסוי זה. יוכנו 16 דגימות בסך הכל, כולל כפילויות לכל טיפול. כך שיהיה צורך בסך הכל ב -3.6 מיליליטר של חמישה כפול 10 מתוך ששת התאים למתלה מיליליטר.
לאחר מכן, מונה התאים ידווח על נפח תרחיף התאים הדרוש על סמך ספירת התאים החיים וערכי היעד שהוזנו. אם נעשה שימוש בכחול TRIAM, המונה יתאים אוטומטית לדילול אחד לאחד בו נעשה שימוש. עכשיו מתחת למכסה המנוע, העבירו את הנפח המחושב של תרחיף התאים לצינור חדש.
לאחר מכן סובב את תערובות התאים כדי לגלול את התאים בזמן שהתאים מסתובבים כלפי מטה. הכן צינורות מיקרו פוגה לאלקטרופורציה על ידי הוספת SIR A לכל צינור. לניסוי זה, אחד מבקרי irna שני stat 6 siRNAs ספציפיים ויוכנו בקרות לא כריתה לאחר הצנטריפוגה, הסר את ה-PBS והשהה מחדש את התאים ב-3.6 מיליליטר של מאגר אלקטרופורציה של פולסר מעביר 800 מיקרוליטר aliquots לתוך צינורות המכילים את ה-IRNA המתאים ומערבב בעדינות.
התאים מוכנים כעת לאלקטרופורציה כדי לאכול את כל הדגימות בו זמנית. באמצעות מערכת האלקטרופורציה MXL העבירו 150 מיקרוליטר מכל תרחיף תאים לבארות המתאימות של צלחת אלקטרופורציה של 96 בארות. לאחר מכן, הכניסו את הצלחת לתא הצלחת של מערכת האלקטרופורציה MXL וסגרו את המכסה.
בחר את פרוטוקול האלקטרופורציה הרצוי ולחץ על הדופק כדי לאכול את התאים לאחר השלמת האלקטרופורציה, הסר את הצלחת מהמכשיר והעביר את התאים לצלחת תרבית רקמה חדשה המכילה טרום חם עד בינוני. לאחר מכן, העבירו 150 מיקרוליטר של תאי בקרה לא מדורגים עבור כל דגימה למנה החדשה. לאחר מכן הניחו את התאים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס, 5% פחמן דו חמצני למשך הלילה.
לאחר 24 שעות, השתמש ב-IL ארבע כדי לגרום לשעתוק גנים בקבוצה אחת של תאים ולהוסיף מדיום רק לקבוצה השנייה. IL ארבע אחד מתווסף לתאים. דגירה של 24 שעות נוספות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס ו-5% פחמן דו חמצני לאחר סה"כ 48 שעות של צמיחה.
יכולים להיות הבדלים גדולים בצפיפות התאים אם הטיפול הניסיוני משפיע על חלוקת התאים. לכן מומלץ להשתמש במונה התאים האוטומטי TC 10 כדי לספור במהירות את התאים שוב על סמך ספירת התאים. מעבירים אליקוט אחד מכל באר לצינור מיקרו פוגה למיצוי RNA והקפאה.
תוספת שנייה לכתמים מערביים או ניתוח חלבון אחר. היום יוצג רק זרימת העבודה של RNA. צנטריפוגה את הדגימות כדי לגלול את התאים.
לאחר מכן הסר והשליך את ה-SUP natin מכל צינור. המשך במיצוי ה-RNA באמצעות ערכת ה-RNA הכוללת של אורום. לאחר מיצוי ה-RNA, המשך מיד בניתוח, תוך שמירה על הדגימות על הקרח.
כדי לאמת את איכות וכמות ה-RNA בשלב אחד, השתמש בחום של תחנת האלקטרופורזה האוטומטית של Experian כדי לנטרל את הדגימות ואת סולם ה-RNA של Experian ולהניח על קרח. הוסף תערובת מוכנה של הג'ל והכתם לתחול. ובכן על שבב RNA, הגדר את קוד ההתחלה בתחנת ההתחלה.
הנח את השבב בתחנת ההתחלה האוטומטית ולחץ על התחל. הסר את השבב מתחנת ההתחלה וטען את השבב. מערבל את השבב כדי לערבב דגימות עם מאגר טעינה.
הנח את השבב בתחנת האלקטרופורזה והתחל בריצה. תוכנת Experian תציג תוצאות באופן אוטומטי בצורה של אלקטרופרוגרמה, טבלת תוצאות המציגה את היחס הריבוזומלי של ריכוז ה-RNA, ומספר מחוון איכות ה-RNA וג'ל וירטואלי, שנראה דומה לג'ל RNA מסורתי. דגימות RNA כוללות באיכות גבוהה יהיו בדרך כלל בעלות RQI של שמונה עד 10.
לאחר אימות איכות ה-RNA, הכן את תגובות ה-CD NA כאן. תסריט IS ONEstep R-T-P-C-R מיקס משמש לשילוב סינתזת CD NA ו-PCR בזמן אמת. בתגובה אחת, הכינו תערובת מאסטר המכילה את כל מרכיבי התגובה למעט תבניות ה-RNA עבור כל ערכת פריימר.
לאחר מכן מחלקים את התערובת לבארות של צלחת PCR. לאחר דילול ה-RNA לריכוז אחיד, הוסיפו את הדגימות לבארות המתאימות ושילשו. אטום את הצלחת, הנח אותה במכונת ה-PCR בזמן אמת, ולאחר מכן בחר את הפרוטוקול המתאים והתחל את הריצה לאחר השלמת הריצה, השתמש בעקבות בזמן אמת כדי לקבוע את רמות הביטוי.
התוכנה מחשבת ביטוי גנים מנורמל מהנתונים על סמך ביטוי יחסי של גנים ניסיוניים וגנים ייחוס בתאים מטופלים ומבוקרים. איור זה מציג סקירה כללית של קשירת מסלול האיתות IL 4 של IL 4 לקולטן שלו. מוביל לדיאאריזציה והפעלה של STAT שש, STAT שש מופעל מעביר טרנסלוקציה לגרעין ומפעיל שעתוק של המטרה שלו.
גנים כגון CCL 17 ללא IL 4 שעתוק אינדוקציה של CCL 17 יישארו ברמות מכוננות נמוכות לאחר השתקה בתיווך אירנה של הגן STAT six. טיפול ב-IL 4 אמור להוביל לעלייה מועטה או ללא עלייה בביטוי CCL 17. השראת CCL 17 על ידי IL 4 נמדדה בתנאים שונים בזמן אמת כמותני.
דגימות PCR שגדלו ללא IL 4 היו בעלות רמת ביטוי מכוננת נמוכה. ללא קשר לאדוני, A שנמסר כפי שמוצג בדגימות ביקורת ירוקות וכחולות הגיב כרגיל לטיפול ב-IL 4 עם אינדוקציה של פי שמונה עד עשרה של CCL 17. עם זאת, תאים שהועברו עם siRNAs המכוונים ל-STAT 6 המוצגים באדום וורוד הפחיתו את ביטוי CCL L 17 בתגובה ל-IL 4 התומכים ברעיון ש-STAT 6 ממלא תפקיד בביטוי המושרה של IL 4 של CCL 17.
זה עתה הראינו לכם כיצד לנקב siRNAs לקו תאי השעיה קשה להעברה וכיצד לעקוב אחר ביטוי גנים בתאים אלה. בעת ביצוע הליך זה, חשוב לזכור לשמור על עקביות ככל האפשר בכל הדגימות. אז זהו.
תודה על הצפייה ובהצלחה בניסויים שלך.
הליך זה מתאר זרימת עבודה להכנסת siRNA לקווי תאים קשים לטרנספקציה ולניתוח ביטוי גנים באמצעות PCR בזמן אמת. השימוש במערכות אוטומטיות משפר את היעילות והדיוק בתהליך.
This workflow enables efficient siRNA delivery into difficult-to-transfect suspension cells, supporting target validation in gene expression studies. Automated cell counting and electroporation improve reproducibility and throughput in early discovery workflows. The approach facilitates mechanistic de-risking of signaling pathways such as IL-4/STAT6 in oncology models.
This method fits within the discovery continuum from target validation to lead optimization by providing reliable gene modulation and quantification.