Name: RIP-チップを用いた細胞抽出物からmRNAを、マイクロRNAとリボ核タンパク質複合体のタンパク質成分の分離と同定するための方法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-29T14:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 34 s
Description: 学ぶRIP-チップを用いたリボ核タンパク質複合体の分離とmRNA同定法。免疫沈降技術で細胞抽出物からRNA結合タンパク質と関連mRNAを特定し、転写後制御機構の理解に貢献します。

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実験の準備実験を開始する前に、それはすべての試薬、容器や調理器具RNaseフリーを持っていることが重要です。 DEPC処理水ですすぎ、続いてRNaseインヒビター（RNaseZAP、Ambion社）を用いてガラス器具を扱う。すべての試薬はRNaseフリーであることが確認されていることを確認します。 1。 mRNPライセートを調製<ol><li>成長し、各RIPの総タンパク質の2-5 mgの間に生成するために指数関数的に成長している組織細胞を収穫します。 <ol class="lalpha"><li>二つP150の培養皿で十分です。 </li><li>調査されて各RBPは、総細胞数と蛋白質の量は、適切な標的mRNAとRBPの相互作用を最大化するために最適化する必要があります。 </li><li>定量RT-PCR分析のために、RIPは、特に、HuRの、AUF1、TIARとして高いアバンダンスRBPs向けの増幅及び検出方法によるより少ない細胞溶解物（約400μgの総タンパク質）が必要な場合があります。 </li></ol> &lt;/ LI&gt; <li> 4 8〜10分間、200×gで℃で遠心分離によって細胞をペレット化し、次に、氷冷PBSで3回洗浄する。 </li><li>最後の洗浄の後、静かにRNaseおよびプロテアーゼ阻害剤を用いてプリペアドポリソーム溶解バッファー（PLB）の等量チューブの底を再懸濁し、細胞ペレットをはじく。 <ol class="lalpha"><li>それは、細胞ペレットの正確な体積を測定することをお勧めします。 </li></ol></li><li>氷上で5分間インキュベートした細胞溶解物の塊を分解するために静かにピペット混合（ボルテックスしないでください）​​。 </li><li> 4℃で20分間13000×gで遠心℃の破片のライセートをクリアする。 </li><li>直ちに予冷微量遠心チューブに上清クリア移す。 </li><li> -80℃で氷とストアを続ける℃まで<ol class="lalpha"><li>即時凍結は細胞の適切な溶解が完了し、不要な結合を防ぐことができます。 RIPは直ちに次のサンプル雪解けを進め、RNAの分解を避けるために、サンプルを氷上で保管してください。&lt;/ LI&gt; <li>この溶解物を、-80℃で最大6ヶ月間℃に保存することができるこれはタンパク質および/またはmRNAの分解につながることができるように繰り返し凍結融解の繰り返しは避けてください。 </li></ol></li><li>標準Bradfordタンパク質アッセイを用いてライセート中のタンパク質濃度を定量する。 </li></ol> 2。抗体およびウォッシュ付きコートタンパク質は、セファロースビーズ<ol><li> 5％BSAでNT2バッファー（3-4巻）中で一晩プレうねりプロテインAセファロース（PAS）をビーズ。 4℃で保存する<ol class="lalpha"><li> 4℃で数ヶ月までの長期貯蔵℃の0.1％アジ化ナトリウムを補充した場合に可能です。 </li><li>プロテインAセファロースビーズをターゲットRBP抗体のアイソタイプに基づいて選択されるべきである。タンパク質は、GおよびA / Gは、すべての特定のアイソタイプの目標を持ち、目標親和性が異なります。プロテインAセファロースビーズをHuRのタンパク質抗体のアイソタイプ特異性と親和性に基づいて使用されていました。 </li></ol></li><li>ご使用の前に、そう、過剰NT2バッファを削除バッファーの比率への最終的なビーズは1:1である。 </li><li> 1.5ミリリットルRNaseフリーのマイクロチューブを使用して、PASスラリー液100μlを削除して、個々のIP反応（ すなわち 、特定のRBPとアイソタイプコントロール）に対する抗体の30μgを追加します。 </li><li>抗体ビーズミックスにNT2バッファ100〜200μlを添加する。 <ol class="lalpha"><li>混合物を4℃で数週間保存可能℃の0.1％アジ化ナトリウムを補充したとき。 </li><li>同じ種からのアイソタイプをマッチさせた抗体または全部正常血清は、バックグラウンド·RNAに対する抗体対照として並行して使用されるべきである。 </li></ol></li><li>ビーズミックスに適切な抗体を加え、一晩インキュベートし、4℃で端の上の端を、タンブリング℃に<ol class="lalpha"><li> （抗体の1、5、10または30μgの通常十分です）を調べている特定のタンパク質に対する抗体価を最適化します。 </li></ol></li><li> 1mlで洗浄することにより、使用直前に抗体被覆ビーズを準備氷冷NT2バッファー5回。 <ol class="lalpha"><li> 4℃で1〜2分℃、13,000 xgで遠心分離することによりビーズミックスを洗う</li><li>慎重に手ピペッターまたはアスピレーターでsupernantantの最大量を削除するが、ペレットの中断を回避するように注意してください。 </li><li>洗濯は、抗体混合物から未結合の抗体と同様のRNase汚染物質を除去するのに役立ちます。 </li></ol></li><li>最後の洗浄が完了した後、氷冷NT2バッファは100mMの10μlを、40 U /μLでRNaseを10μlの外を含む、標的mRNAを保護するためのさまざまなRNase阻害剤を用いた治療が続くの700μlのビーズを再懸濁DTTおよび15μlのEDTA（15 mM）を。 NT2のバッファーで1,000μlにボリュームを持ってきて。 <ol class="lalpha"><li>バナジルリボヌクレオシド複合体は、EDTAの抑制効果があるため、使用されていません。 </li></ol></li></ol> 3。免疫沈降およびRNA沈殿<ol><li>オプションのプリ·クリアーの手順：<ol class="lalpha"><li>バックグラウンドを低減するために、ビーズとコントロール抗体を事前クリアライセートに使用されるかもしれません。これにより、出力の信号を減​​少させることができる。 </li><li>このステップでは、マイクロアレイに続くIPを実行するときにバックグラウンドを低減する必要があるかもしれません。これは、一般的に定量RT-PCRに続いてIPアドレスは必要ありません。 </li><li>末に比べ30分/ 4℃タンブリングエンドのアイソタイプコントロール15μgの持つプリ·クリアー。 </li><li>ステップ2.1から抗体と非被覆予め膨潤PASビーズの50μlを添加する。 </li><li>末に比べ30分/ 4℃で回転端とをインキュベート</li><li> 4℃、10,000×gで遠心分離しますIPのための上澄み保存します。 </li></ol></li><li>調製した抗体ミックスに隔離された清澄化ライセート（約2〜5 mg）の100μlを添加する。 <ol class="lalpha"><li>ライセートを希釈して、バックグラウンドや非特異的結合を低減するのに役立ちます。 </li><li>ライセート入力の量は検出方法及びRBP oの豊富さによって異なりますステップ1.1.c.で述べたように、RBP抗体のr効率</li></ol></li><li> （オプション）直ちに静かに4℃、10,000×gで短時間の遠心分離に続いて数回タッピングしてチューブを混ぜ℃でペレットビーズへと直ちに標準RNA単離技術を用いた定量PCR解析のための総入力mRNAの表現として100μlの上清を除去します。 <ol class="lalpha"><li>このステップでは、入力ライセートRNAがIPのための最適であり、唯一のチェックステップとして、または貧しいRNAの結果でRIPは、次のトラブルシューティングの手順として実行する必要があることを確認するためのものである。 </li></ol></li><li>パラフィルムでラップ管端の上の端を、タンブリング、2から4時間、4℃で密封し、インキュベート℃を確保する。 <ol class="lalpha"><li>インキュベーション上のタイミングは、ターゲット豊富に基づいて最適化されるべきであり、複雑な転位または分解を避けるために、最小化されるべきである。一部RBPsに短いインキュベーションは、より最適かもしれません。 </li></ol></li><li> 5000 XGFでペレットビーズまたは4°Cで5分とウェスタンブロット法によって潜在的な分析のために上澄み保存。 -80℃でアリコート℃で保存し<ol class="lalpha"><li>残留標的タンパク質の多量と上清のアリコートは、セファロースビーズにより沈殿するタンパク質の障害を示すことがあります。 </li></ol></li><li>前述したように、氷冷NT2バッファと遠心分離（4℃で5分間5000 xgで℃）1mlのビーズを5回洗い、次にハンドピペッターまたはアスピレーターで上清を除去します。 <ol class="lalpha"><li>より厳格な洗浄方法はデオキシコール酸ナトリウム、尿素やSDSとNT2のバッファを補充することにより、バックグラウンドを低減するために使用されるかもしれません。 </li><li>できるだけサンプルを氷上で維持し、標的mRNAの分解を最小限に抑えるために迅速に作業。 </li></ol></li><li>オプション：ウェスタンブロット解析を用いた標的タンパク質のIP効率を確認するためのビーズミックスの少量（10％）を保存したり並列に追加のサンプルを実行します。</li></ol> 4。 DNaseおよびプロテイナーゼKトリートメント<ol><li> RNaseフリーのDNase 1（2 U /μl）を5μlのを補足したNT2の100μlの緩衝液で洗浄した後、再懸濁したビーズ。 </li><li> 5〜10分間37℃で保管してください。 NT2緩衝液1mlを加え、室温で1分間5000 xgで遠心分離します。 <ol class="lalpha"><li>ビーズの小（〜10％）のアリコートをSDS-PAGE分析することによって、IP効率を確認するために用いることができる。 </li></ol></li><li> 100μlのNT2バッファーに再懸濁し、PASペレットを、5μlのプロテ​​イナーゼK（10 mg / ml）を、および1μlの10％SDS。 </li><li>穏やかに10分ごとにフリック、55℃の水浴中で30分間再懸濁したビーズ混合物をインキュベートする。 <ol class="lalpha"><li>プロテイナーゼKは、RNPの成分の放出に役立ちます。 </li></ol></li><li>ペレットは、室温で5分間5000 xgで（RT）でビーズと（〜100μl）の上清を回収する。 </li><li>遠心、ビーズに200μlのNT2のバッファを追加室温で2分間フーガ5000 XGは、上清（約200μl）を、廃棄ビーズを収集します。 </li><li>上清（100μlと200μl）を組み合わせると酸フェノール- CHCl 3を 300μlの下位層を追加します。 </li><li>渦、1分間RT（または37℃シェーカーのC）と1分間室温で16000×gで遠心分離してください。 </li><li>上位層250μlの（インターフェイスを妨害することはありません）を採取し、pHは5.2、625μlの100％エタノールおよび5μlのglycoblueで25μlの酢酸ナトリウムを加え、よく混ぜる。 </li><li> -20℃で一晩保存する<ol class="lalpha"><li> RNAの適切な復旧を保証するために、glycoblueの添加は担体分子として作用することにより、RNAペレットの視認性を向上します。 </li></ol></li><li>反転による翌日、混合管3-5回、4で12,000 xgでスピン℃で30分間、上清を捨てる。 </li><li>青いペレットと反転またはボルテックスに70％エタノール1 mlを加える。 </li><li> 2分間4℃で12,000×gで遠心します。 </li><li> D上清をiscardと4℃で1分間、12,000×gで遠心する℃、 </li><li>室温で5分間ピペットて空気乾燥してペレットと残留し、70％EtOHを削除します。 </li><li>のRNase / DNaseフリー水または必要に応じて他の適切な体積の20〜40μlに再懸濁する。 <ol class="lalpha"><li>サンプルは現在、そのような定量RT-PCRやマイクロアレイなどのさらに下流のアプリケーションの準備ができています。 </li><li>光度計分光光度計は、試料濃度を評価する際に使用されるかもしれませんが、貴重なサンプルと、それはそれは無駄が多く、相対的に不正確になることができるようnanodroppingサンプルを回避するために有益であるかもしれません。我々は貴重なまたは低収量サンプルの純度およびIP効率を評価するために、ハウスキーピング遺伝子の転写産物に正規化サンプルを示唆している。 </li></ol></li></ol> 5。代表的な結果手順が最適化され、正しく実行されている場合は、免疫沈降は、標的mRNAの有意な富が得られるはずです。一般的に定量RT-PCRによって評価した場合、50倍に - 、RBPとそのmRNA標的（複数可）に応じて、我々は、約10の濃縮を参照してください。 RBPsの多くのターゲットは、マイクロアレイ解析を用いて一斉に発見することができます。しかし、この方法は、定量RT-PCRに比べて劣化の影響を受けやすくなります。 RBPは、ターゲットの数と反応の効率に応じて、マイクロアレイは、新規ターゲットの数百人を明らかにすることができ、または任意の場合にのみ、いくつかが明らかになることがあります。例えば、より良い特徴RNA結合タンパク質HuRのの一つは、転写後に多くの重要な生理的遺伝子1,2の発現および翻訳を調節する。乳癌細胞株において、RIP-チップ経由HuRの-ribonucleo複合体の分離は、例えば、 図1に示すように、定量RT-PCRを用いたβ-アクチンを含むいくつかの重要な既知のHuRのターゲット、の富を明らかにした。癌細胞株のβ-アクチンの両方に12を豊かにします - 15倍に。一般的に、適切に実行したとき、我々はかなりのENRを参照してください細胞株の様々なβ-アクチンのichment。 RIPは、β-アクチンの任意の有意な富を明らかにしない場合は、これは、RIPの問題を示していると手順を繰り返す必要があります。 図2 1に示されるように、さらに、これらの細胞株からの免疫沈降サンプルのマイクロアレイ解析は、異なるエストロゲン受容体におけるHuRのターゲット（ER）陽性のMCF-7癌細胞に対するER陰性のMB-231乳癌細胞株の異なる表現のサブセットを明らかにした。どちら関連や癌に関連付けられていない既知および未知のHuRのターゲット：これらのターゲットは、いくつかのカテゴリに分類されます。たとえば、CALM2とCD9は以前HuRのターゲットとして同定されなかった両方の癌遺伝子である。 HuRのタンパク質およびこれらの標的遺伝子との間に顕著な相互作用を示すHuRのペレットに富んで180倍に - マイクロアレイを使用しており、定量RT-PCRで確認し、CALM2とCD9は5であることがわかった。 <iMG SRC = &quot;/ files/ftp_upload/3851/3851fig1.jpgの&quot; alt = &quot;図1&quot; /&gt; 図1。免疫沈降およびMB-231でRIP（ER）およびMCF-7（ER +）乳癌細胞。免疫沈降は抗HuRのモノクローナル抗体（3A2）とIgG1アイソタイプコントロールを使用して、MB-231またはMCF-7細胞ライセートから行った。 3A2によって検出されるようなフルのA. IPウエスタン予想されるサイズのバンドを明らかにした。右側のパネルには、ローディングコントロールとして、β-チューブリンと、両細胞株から使用ライセート入力でHuRの量を明らかにする。定量的RT-PCR法によるBの検証はそれぞれMB-231およびMCF-7、3A2からIPSで、β-アクチンの15と11倍濃縮、既知HuRの目標を示した。すべてΔΔCT値をGAPDHに対して標準化した。実験は（n = 2）を二重に行った。 <img src="/files/ftp_upload/3851/3851fig2.jpg" alt="図2" /> 図2。 HuRのRIP-CHIPはER +とER-乳癌細胞内での個別の遺伝的プロファイルを識別します。HuRのの免疫沈降は、MB-231またはHuRの抗体とイルミナSentrixアレイ（47000遺伝子）にハイブリダイズしたIgG1アイソタイプコントロールを使用して、MCF-7細胞ライセートから行った。制御信号は差し引いた。結果は、12の異なるアレイからの累積データを表します。実験が一致するコントロールと各セルラインの三連（n = 3）の中で行った。スケールは、log2です。

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</ol>

著者らは、彼らが競合する利益を持っていないことを宣言します。

この実験では、最適化と経験の性質のために正常意図した結果を取得するための唯一の保証された方法になります。この手順の多くの手順では、温度及び試薬や製品の効率的な処理が非常に重要です。適切な計画と技術の実行は、実験が推奨される最適な温度で適切な時間枠内で行われたことを保証するのに役立ちます。 RNA分離実験との大きな問題は、RNアーゼによる分解に対するRNAの感度である。全ての試薬は、RNaseフリー、RNaseフリーのコンテナで保管または使用する必要があります。これはあなたのmRNAサンプルの完全性を確保する上で重要なステップです。実験が適切に行われている場合であっても、しかし、望ましい結果はRBPとその標的mRNA間の相互作用の性質によって達成されない場合があります。 一つの潜在的な問題は、RIP-チップによって単離されたRNAからの低あるいは無信号を抱えている。全RNAからの信号があるかもしれませんが、これはビーズでプルダウンされている不適切な結合タンパク質の結果であるかもしれません。トラブルシューティングの最初のステップは、使用されている細胞溶解物は、特定のRBPの適切な表現を持っていることを確認することです。確認後、タンパク質は最終NT2洗浄後に単離することができるとLaemmli緩衝液または他の適当な変性緩衝液に再懸濁し、95℃で加熱し5分間インキュベートする。ウェスタンブロット分析を十分に関与するタンパク質のプルダウンを保証するために、入力ライセートならびに陰性コントロールと連携してこれらのサンプルで使用されるかもしれません。 さらに、細胞を溶解すると、これらのコンポーネントにアクセスする必要があるため、通常は分離されたタンパク質とmRNAの間の異常や望ましくない相互作用の可能性を導入することができる。これらの相互作用は、潜在的に結合し、非特異的な相互作用を介して標的mRNAまたは結合タンパク質を &quot;吸い取る&quot;ことができる。これらの様々な共同でさらに、タンパク質nditionsは、複数のバリエーションで折り畳むことができ、それらの結合モチーフは、それらの相互作用を防止し、それらの標的mRNAへアクセスできなくなる場合があります。これらの両方が効率的に働くだけでなく、これらの不要な相互作用を制限することが記載されている最適な温度を利用することの重要性を強化する。さらに、それぞれの特定の標的タンパク質のための条件を洗浄の最適化は、相互作用の純度を最大化するために重要になるでしょう。より厳格な洗浄条件が必要になることがあります。例えば、洗浄緩衝液を、SDSまたはあなたの信号出力に非特異的な相互作用およびバックグラウンドを低減する尿素の適切な量を補充することができる。これは、実験者のターゲットRBPと同様、独自の生理的条件下で標的mRNAに完全に依存するようになるでしょう。いくつかの条件は、試料の調製に留意すべきである特定のmRNA解析ツールには適していないでしょう。 最後に、RIPは、RNAの濃縮に成功しているものの-RBPの相互作用は、RIP（CHIP）メソッドを使用してよく知られている問題は、一時的なmRNA標的にRBPの特異的結合ドメインを同定することができないことである。いくつかの架橋技術はユニーク配列ターゲットを隔離するためにRIPに続いて使用することができるが、短波長紫外線の使用は、核酸の損傷につながる傾向があります。 PAR-CLIPとして知られている新しいメソッド、または光活性リボ架橋およびimmuoprecipitationは、安定性と過渡両方RNA相互作用からのユニークな結合部位の同定を可能にする新生RNAにチオウリジンを組み込むために長波紫外線を採用しています。 全体的に、RIP-Chipは私たちのグループだけでなく、他の多くの研究グループによってRNA結合タンパク質とその標的mRNAとの間の相互作用を分離して研究するために使用される優れたツールとして確立されている。自然と実際に敏感ですが、この手順を適切に実行するには、最近まで、inaccされているこれらのRNP複合体の単離を、得られます発見と分析のためのessible。

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td> カタログ番号 </td><td> 注釈 </td></tr><tr><td> 1 Mジチオスレイトール</td><td>フィッシャー</td><td> BP172-5 </td><td> DTT </td></tr><tr><td> DNaseを1 </td><td>アンビオン</td><td> 2235 </td><td> RNaseフリー</td></tr><tr><td> Tetraccetic酸をエチレンジアミン</td><td>フィッシャー</td><td> BP118-500 </td><td> EDTAを</td></tr><tr><td>グリコーゲン</td><td>アンビオン</td><td> 9516 </td><td></td></tr><tr><td> 1 HEPES </td><td>シグマ</td><td> H3375-100G </td><td> pH 7.0の</td></tr><tr><td> IGEPALノニデットP-40 </td><td> USB </td><td> 78641 </td><td> NP40 </td></tr><tr><td> 1 M KClを</td><td>フィッシャー</td><td> BP366-500 </td><td></td></tr><tr><td> 1 M MgCl 2を </td><td>フィッシャー</td><td> BP214-500 </td><td></td></tr><tr><td> NT2のバッファ</td><td> *下記を参照</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ポリソーム溶解バッファー</td><td> *下記を参照</td><td></td><td></td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤カクテル錠</td><td>ロッシュ</td><td> 11873580001 </td><td></td></tr><tr><td>プロテインAセファロースビーズ</td><td>シグマ</td><td> P3391 </td><td></td></tr><tr><td>プロテイナーゼK </td><td>フィッシャー</td><td> BP1700-100 </td><td></td></tr><tr><td> RNase阻害剤RNaseのアウト</td><td>インビトロジェン</td><td> 10777-019 </td><td> 40 U /μlの</td></tr><tr><td> 1MのNaCl </td><td>フィッシャー</td><td> BP358-212 </td><td></td></tr><tr><td>ドデシル硫酸ナトリウム</td><td>フィッシャー</td><td> BP166-500 </td><td> SDS </td></tr><tr><td>の1M Tris-HCl </td><td>フィッシャー</td><td&gt; BP153-500 </td><td> pH7.4の</td></tr><tr><td>トリゾール</td><td>インビトロジェン</td><td> 15596-026 </td><td></td></tr><tr><td>リボバナジル錯体</td><td>ニューイングランド研究所</td><td> S1402S </td><td> VRC </td></tr></tbody></table> <table border="1"><tbody><tr><td> 試薬精査 </td></tr><tr><td>のRNase / DNaseフリー、DEPC処理したガラス製品の試薬を準備</td></tr><tr><td> ポリソーム溶解バッファー </td></tr><tr><td> 100mMのKCl </td></tr><tr><td> 5mMのMgCl 2 </td></tr><tr><td> 10mMのHEPES（pH7.0）を</td></tr><tr><td> 0.5％NP40 </td></tr><tr><td> 1mMのDTT </td></tr><tr><td> 100単位/ mlのRNaseアウト</td></tr><tr><td> 400μMのVRC </td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤カクテル錠</td></tr><tr><td> ポリソーム溶解バッファー5mlの </td></tr><tr><td> 1MのHEPES緩衝液（pH7.0）50μlを追加</td></tr><tr><td> 1 M KClの500μlの</td></tr><tr><td> 1 M MgCl 2を 25μlの</td></tr><tr><td> NP40の25μl </td></tr><tr><td> 4.7ミリリットルのRNase DNaseフリーH 2 O </td></tr><tr><td> 1 MのDTTを50μl </td></tr><tr><td> 100 U / mlのRNase12.5μlのアウト</td></tr><tr><td> 200μlのプロテ​​アーゼ阻害剤カクテル（メーカーによると溶解） </td></tr><tr><td> 10μlの200mMのVRC（使用時） </td></tr><tr><td> NT2のバッファ </td></tr><tr><td> 50mMのトリス-HCl（pH7.4） </td></tr><tr><td> 150mMのNaCl </td></tr><tr><td> 1mMのMgCl 2 </td></tr><tr><td> 0.05パーセントのNP40 </td></tr><tr><td> NT2緩衝液1L </td></tr><tr><td> 50ミリリットルトリス（pH 7.4） </td></tr><tr><td> 30ミリリットルの5 M NaCl </td></tr><tr><td> 1ミリリットルの1M塩化マグネシウム<sub&gt;の2 </td></tr><tr><td> 500μlのNP40 </td></tr><tr><td> 820ミリリットルのRNase DNaseフリーH 2 O </td></tr></tbody></table>

rip-チップを用いた細胞抽出物からmrnaを、マイクロrnaとリボ核タンパク質複合体のタンパク質成分の分離と​​同定するための方法

Method for the Isolation and Identification of mRNAs, microRNAs and Protein Components of Ribonucleoprotein Complexes from Cell Extracts using RIP-Chip

ハイスループットシーケンシングおよび効率的なマイクロアレイ解析の開発の結果として、全体的な遺伝子発現解析は、データの収集を簡単かつ容易に利用できる形になっています。しかし、多くの研究や疾患モデルでは、標的遺伝子のmRNAの定常状態レベルは常に直接定常状態タンパク質レベルと相関しない。転写後の遺伝子発現制御には、2つの間の相違の可能性のある説明です。 RNA結合タンパク質（RBP）に結合することによって駆動され、転写後調節は、標的mRNAとリボ（RNP）複合体を形成することによりmRNA局在、安定性や翻訳に影響を与えます。 RNP複合体中の細胞抽出物からこれらの未知のde novo mRNA標的を同定することはご理解のメカニズムとRBPの機能とタンパク質の出力にそれらの結果として得られた効果に極めて重要である。このプロトコルは、sの識別を可能にRNPを免疫沈降マイクロアレイRIP（チップ）と呼ばれる方法を概説さらに、個々の研究者のための実験を​​最適化するためのオプションと共にpecific mRNAは、変化の実験条件下で、リボ核タンパク質複合体に関連する。この重要な実験的なツールを使用すると、研究者らは、転写後遺伝子調節だけでなく、他のリボ核相互作用に関連する複雑なメカニズムを探索することができます。

RIP-チップを介したRNA関連した複合体を単離および同定するためのステップバイステップのプロトコル。

RIP-チップを用いた細胞抽出物からmRNAを、マイクロRNAとリボ核タンパク質複合体のタンパク質成分の分離と​​同定するための方法

ハイスループットシーケンシングの開発と効率的なマイクロアレイ解析により、グローバルな遺伝子発現解析は簡便かつ...

このビデオの目的は、免疫沈降法を用いて細胞抽出物からリボ核タンパク質複合体のRNAおよびタンパク質成分を単離し、同定する方法を実演することです。こんにちは、私はミズーリ大学の分子微生物学・免疫学部でEli sso博士の下で研究している大学院生のGarrett Domです。ハイスループットシーケンシングの進歩と効率的なマイクロアレイ解析により、多くの研究および疾患モデルにおいて、包括的な遺伝子発現解析が容易かつ即座に利用可能なデータ収集手法となりました。しかしながら、標的遺伝子のmRNAの定常状態レベルは、必ずしもタンパク質の定常状態レベルと直接的に相関するとは限りません。この両者の乖離は、RNA結合タンパク質の相互作用による転写後遺伝子制御で説明できると考えられます。転写後調節は、標的mRNAとリボ核タンパク質複合体を形成することで、mRNAの局在、安定性、および翻訳に影響を与えます。細胞抽出物中のこの複合体から未知のde novo mRNA標的を特定することは、RNA結合タンパク質のメカニズムと機能、およびその結果としてタンパク質産出に及ぼす影響を理解する上で極めて重要です。本プロトコールでは、リボタンパク質免疫共沈降（RIP）と呼ばれる、リボ核タンパク質複合体に関連する特定のmRNAを特定するための手法について説明します。実験を開始する前に、すべての試薬、容器、器具を揃えておくことが極めて重要です。ガラス器具は、Ambion社のRNA ZAPなどのRNase阻害剤で処理し、その後DEPC処理水で洗浄してRNaseフリーの状態にし、すべての試薬がRNaseフリーであることを確認してください。手順の最初のステップは、細胞溶解物からリボ核タンパク質複合体を回収することです。各サンプルに使用する総タンパク質を2～5 mg生産できるよう、対数増殖期の組織細胞を回収します。通常、150 mmの培養皿2枚で十分です。ここでは、ヒト乳がん細胞株MB 231およびMC sevenを回収し、RNA結合タンパク質のリボ核酸相互作用を調査します。調査対象となる各RNA結合タンパク質について、標的mRNAとRNA結合タンパク質の適切な相互作用を最大化させるため、総細胞数とタンパク質量を最適化する必要があることに注意してください。4°Cで1000 RPMにて約8～10分間遠心分離して細胞をペレット化し、氷冷PBSで3回洗浄します。最後の洗浄後、チューブの底を軽く叩き、RNaseおよびプロテアーゼ阻害剤を含む調製済みのポリソーム溶解バッファーと同量で細胞ペレットを再懸濁します。細胞ペレットの正確な容量を測定し、ピペットで緩やかに混合して細胞の凝集体を分散させた後、ライセートを氷上で5分間インキュベートすることを推奨します。13,000 Gで20分間、4 °Cで遠心分離してライセートからデブリを除去し、清澄化した上清を直ちに、あらかじめ冷却したRNaseフリーのマイクロ遠心チューブに移し、氷上に保持して-80 °Cで保存してください。このライセートは、-80 °Cで最大6ヶ月間保存可能です。タンパク質やmRNAの分解につながるため、凍結融解の繰り返しは避けてください。IPは直ちに行うことが最適です。標準的なブラッドフォード法を用いて、タンパク質濃度およびライセートの定量分析を迅速に行います。次に、目的の特定タンパク質を単離するための材料を準備します。まず、タンパク質のプレスウェル（事前膨潤）を行います。Spheroビーズを、5% BSAを添加したNT2バッファー中で一晩、4 °Cで保存します。PASビーズに対してNT2バッファーを4:1の比率で使用してください。4 °Cで最大数ヶ月間の長期保存が可能です。使用前に0.1% sodium aziを添加し、最終的なビーズとバッファーの比率が1:1になるように、過剰なNT two bufferを除去します。1.5 mLのRNA freeマイクロ遠心チューブを用い、SRO speed slurryを100 µL取り出し、個々のIP反応につき30 µgの抗体を添加します。例えば、本実験ではマウスIgG1抗体であるwho are抗体を使用しています。したがって、コントロール抗体としてもIgGを使用します。次に、抗体ビーズ混合液に100から200 µLのNT 2バッファーを添加します。さらに、バックグラウンドRNAに対する抗体コントロールとして、同種のアイソタイプ一致抗体または正常全血清を並行して使用する必要があります。適切な抗体をビーズミックスに加え、4°Cでオーバーエンドミキサーを用いて一晩回転混合しながらインキュベートします。使用直前に、氷冷した1 mLのNT2バッファーで5回洗浄して抗体コートビーズを調製します。ビーズの洗浄は、4°Cで13,000 Gにて1〜2分間遠心分離して行います。上清をハンドピペッターまたはアスピレーターで慎重に除去します。この洗浄により、抗体混合物から未結合の抗体およびRNA汚染物質を除去できます。最終洗浄が完了したら、ビーズを再懸濁し、氷冷したNT2バッファーを700 µL加えた後、標的mRNAを保護するために、RNase阻害剤（RNase OUT 10 µL、100 mM DTT 10 µL、EDTA 15 µLを含む）で処理します。NT2バッファーを用いて、全量を900 µLに調整します。次に、標的複合体を免疫沈降させます。RIP手順後のRNA解析におけるバックグラウンドシグナルを低減させるため、プレクリアンスステップを行うことを強く推奨します。15 µgのアイソタイプコントロールを用いて、4 °Cで30分間プレクリアンスを行います。抗体でコーティングされていない、あらかじめスウェルさせたPASビーズを50 µL加えます。4°Cで30分間、回転混和しながらインキュベートし、その後、遠心分離機を用いて4°C、10,000 Gで遠心分離します。ペレットを回収し、免疫沈降（ip）のために上清を保存してください。次に、約2〜5 mgのタンパク質を含む、単離・精製済みの溶解液100 µLを、調製した抗体ミックスに加えます。溶解液を希釈することで、バックグラウンドを低減させることができます。チューブをラップで包み、密閉を確認して、4 °Cで4時間転倒混和しながらインキュベートします。その後、ビーズを4 °Cで5,000 G、5分間遠心分離してペレット化し、上清は前述の方法に従い-80 °Cで保存して、後の解析に備えます。ビーズを1 mLの氷冷したT2バッファーで5回洗浄し、遠心分離します。次に、ハンドピペッターまたはアスピレーターを用いて上清を除去します。バックグラウンドを低減させるために、NT2バッファーにデオキシコール酸ナトリウム、尿素、またはSDSを添加した、より厳格な方法を用いる場合もあります。標的mRNAの分解を最小限に抑えるため、サンプルは可能な限り氷上に保持し、迅速に操作を行ってください。最後に、DNaseおよびプロテイナゼK処理に続き、RNA沈殿を行うことで、リボ核タンパク質RNAを単離します。洗浄後、5 µLのRNase-free DNase Iを添加した100 µLのNNT2バッファーでビーズを再懸濁します。サンプルを37 °Cで5〜10分間保持します。1 mLのNNT2バッファーを加え、5,000 ×gで5分間遠心分離します。上清を廃棄し、SROsペレットを100 µLのNT2バッファー、5 µLのProteinase K（10 mg/mL）、および1 µLの10% SDSで再懸濁する。再懸濁したビーズ混合物を55 °Cのウォーターバスで30分間インキュベートし、10分ごとに軽くタッピングする。Proteinase Kはリボ核タンパク質成分の放出を促進する。ビーズを遠心分離してペレットにする。室温で5,000 Gで5分間遠心分離し、約100 µLの上清を回収します。次に、ビーズに200 µLのNT2バッファーを加え、5,000 Gで2分間遠心分離します。約200 µLの上清を回収し、ビーズは廃棄します。上清を合わせ、300 µLの下層用酸性フェノールを加えてボルテックスします。室温で1分間撹拌した後、室温で最大速度で1分間遠心分離します。上層を250 µL回収します。界面を乱すと汚染の原因となるため、細心の注意を払ってください。RNAサンプルに、pH 5.2の酢酸ナトリウム25 µL、冷却した100%エタノール625 µL、およびGlycoBlue Mix 5 µLを加えてください。その後、-20 °Cで一晩保存します。さらに、RNAを適切に回収するために、GlycoBlueを添加します。GlycoBlueはキャリア分子として機能し、翌日のRNAペレットの視認性を向上させます。チューブを3〜5回反転させて混ぜ合わせた後、4 °Cで12,000 Gにて30分間遠心分離し、上清を捨てます。青色のペレットに、あらかじめ冷却した70%エタノールを1 mL加え、反転混和またはボルテックスミキサーで混ぜてから遠心分離します。4 °Cで12,000 Gにて2分間遠心分離します。上清を捨て、4 °Cで12,000 Gにて1分間さらに遠心分離します。残った70% ethanolをピペットで取り除き、ペレットを風乾させます。室温で5分間静置します。20〜40 µLのRNaseおよびDNaseフリー水で再懸濁します。これで、NanoDrop分光光度計による定量、および定量リアルタイムPCRやマイクロアレイ解析などの後続アプリケーションにサンプルを使用できるようになります。RNA抽出後、マイクロアレイおよび定量リアルタイムPCRを行い、RNA結合タンパク質WHOのmRNA標的および免疫沈降による濃縮度を明らかにしました。ウェスタンブロットによる確認で、リボヌクレオプロテインのクリーンな単離が明らかになりました。定量PCRでは、IgGコントロールと比較して、標的mRNAであるbeta actinの濃縮倍率が示されています。マイクロアレイ解析により、乳がん細胞株であるMCF7とMDA-MB-231の間で固有の遺伝子プロファイルが明らかになりましたが、全体として、リボヌクレオプロテイン免疫沈降法は、RNA結合タンパク質とそのmRNA標的との相互作用を単離し研究するための優れたツールであることが、当グループおよび他の多くの研究グループによって確立されています。本手法はその性質上および実践において繊細ですが、正しく実行することで、最近まで発見や解析が困難であったこれらのリボヌクレオプロテイン複合体を単離することが可能になります。

method-for-isolation-identification-mrnas-micrornas-protein

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

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雄マウスの生殖細胞におけるリボタグ免疫沈降

学ぶRIP-チップを用いたリボ核タンパク質複合体の分離とmRNA同定法。免疫沈降技術で細胞抽出物からRNA結合タンパク質と関連mRNAを特定し、転写後制御機構の理解に貢献します。

RIP-チップを用いた細胞抽出物からmRNAを、マイクロRNAとリボ核タンパク質複合体のタンパク質成分の分離と​​同定するための方法

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