Name: 増殖に基づく決定とタンパク質分解に対する遺伝的要件の生化学的確認でサッカロマイセス·セレビシエ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-02-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 57 s
Description: 学ぶ 酵母を用いた増殖ベースアッセイでタンパク質分解の遺伝的要件を決定する方法です。Saccharomyces cerevisiaeで不安定タンパク質の安定化を評価し、ウエスタンブロットで生化学的に確認できます。

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私たちは、協力的かつ熱狂的な研究環境を提供するためのルーベンラボの現在および過去のメンバーに感謝。私たちは、プロトコルの最適化の支援のためにライアンT.ギブソンに感謝。我々は、酵母株およびプラスミドのためにマークHochstrasser（エール大学）とディーター·ウルフ（シュトゥットガルト大学）を感謝。我々は、この原稿の明快さと実用性の改善に彼らの助けのために私たちの匿名の査読者に感謝。この作品は、ボール州立大学からEMR、EMRにボール州立大学ASPIRE研究賞、および資金にSGWにシグマXIのボール州立大学の章から研究賞、国立衛生研究所の助成金（R15 GM111713）によってサポートされていました学長のOfficeと生物学科。

タンパク質分解に欠陥候補突然変異体を同定する1.酵母増殖アッセイ<ol><li>レポーター代謝酵素と、フレームで融合された不安定なタンパク質をコードするプラスミドを、野生型および突然変異体酵母細胞を形質転換する。 </li><li>プラスミド分子を保有する細胞に対して選択的である合成に定義（SD）最小培地5ml中の形質転換体を接種する。回転、30℃で一晩インキュベートする。 </li><li>各一晩培養物を600nm（OD 600）での光学密度を測定します。 注：一晩のインキュベーション後、培養中の細胞のいずれか、対数または定常増殖期にあってもよいが、0.2の最小限のOD 600に達している必要があります。経験的に決定されるような非常に成長の遅い酵母株は、1晩、または細胞のより多くの接種より長いインキュベーション時間が必要な場合があります。 </li><li>に希釈した細胞をはじめとする無菌の96ウェルプレート中で形質転換された酵母細胞の六倍連続希釈液を調製するN OD 0.2の600。 96ウェルプレート内の異なる行でアッセイされる各酵母形質転換体を配置します。 <ol><li>各形質転換のために、200μlの最終容量で0.2のOD 600に細胞を希釈するために必要な一晩培養の体積を計算。コラム1に対応するウェルに一晩培養のこのボリュームを追加200μlにボリュームをもたらすために滅菌水の適切な量を追加します。 </li><li>酵母の各行について、列2、3、および4のウェルに滅菌水125μlを添加する。 注：個別に包装された無菌の96ウェルプレートは、滅菌蓋でパッケージされてもよい。蓋は、このステップで配布され、滅菌水のリザーバとして使用することができる。これはマルチチャンネルピペッターに与えられた列のすべてのウェルに滅菌水の同時転送を可能にする。 </li><li>ピによってマルチチャンネルピ ​​ペッターを下の最初の列（OD 0.2の600に希釈した酵母）の内容を混ぜる。 </li><li> TRANSFマルチチャンネルピペッターを使用して列2に列1から酵母25μlの、えー。ピペッティングにより混和する。転送列3の列2から25μL、列3から列4に25μL（各ステップでよく混合）。 </li></ol></li><li>マルチチャンネルピペッターで各サンプルを混ぜる。最も希薄から出発すると、少なくとも適切な選択培地を含む2プレートに酵母、ピペット各サンプルの4μlの列を希釈する。プラスミド選択を（このプレートは酵母スポッティングと成長制御となります）維持培地で一つのプレートを使用してください。プラスミド維持とレポー​​ター酵素に融合された不安定なタンパク質の発現のために選択した媒体と第二のプレートを使用してください。酵母は、急速に沈降し、一定の間隔で上下にピペッティングして細胞を混ぜているため。 注：乾燥機のプレートをより容易に、新たに調製したプレートよりも液体吸収し、したがって、これらの実験のために推奨されている。湿ったプレートを見よ中、室温でインキュベートすることによって乾燥させることができる層流フード中で2日またはより短いインキュベーション - 1ワット湿度。層流ベンチに対して平行である場合、プレートを不均一に乾燥することができる。テンプレートの使用は、簡単に正規の距離で酵母細胞を発見することができる。 2つのサンプルテンプレートが図1に提供される。これらは、印刷された切り出し、ペトリ皿の蓋の内側に取り付けることができる。 </li><li>プレートが作業台の上に乾燥することができます。 </li><li> 6日 - 2、30℃でプレートをインキュベートする。 </li><li>インキュベーション後に各プレートを撮影。 </li></ol><img alt="図1" src="/files/ftp_upload/52428/52428fig1large.jpg" width="650" /> 100mmの寒天プレート上の酵母細胞をスポッティングするための図1のテンプレート。これらのテンプレートは、マルチチャンネルピ ​​ペッターを持つ通常の距離で酵母をスポッティング容易にすることができる。テンプレートは、印刷された切り出し、ペトリ皿の蓋の内側に取​​り付けることができる。成長にシャーレを置きテンプレートとメディア内部の蓋が固定された。テンプレートは、向きを追跡するためにノッチが付いています。これは、成長アッセイで使用したプレートは、同様に方向性を追跡するためにノッチでマークすることをお勧めします。 4（A）または5（B）酵母細胞の連続希釈が提供されてスポッティングためのテンプレート。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/52428/150126 Fig 1.pdf" target="_blank">100 mmのテンプレートと、この図の印刷可能バージョンを表示するには、こちらをクリックしてください。</a> 酵母増殖アッセイの2生化学確認<ol><li>酵母細胞およびポストアルカリ性タンパク質抽出の成長（31から変更） <ol><li>不安定なタンパク質をコードするプラスミドを、野生型および突然変異体酵母細胞を形質転換する。 </li><li>プラスミド分子を保有する細胞に選択的であるSD培地5ml中で形質転換体を接種する。回転、30℃で一晩インキュベートする。 </li><li>各一晩、CuのOD 600を測定しますlture。 注：一晩のインキュベーション後に、細胞を、対数または定常増殖期にあってもよいが、0.2 10ミリリットルで新鮮な選択培地（ステップ2.1.4）のOD 600に希釈を可能にするOD 600に達している必要があります。経験的に決定されるような非常に成長の遅い酵母株は、1晩、または細胞のより多くの接種より長いインキュベーション時間が必要な場合があります。 </li><li> 0.2mlの10の新鮮な選択培地のOD 600に酵母細胞を希釈する。 </li><li> （中期対数増殖しているIE）培養物は0.8と1.2の間のOD 600に到達するまで、回転または振盪、30℃で細胞をインキュベートし続けます。 注：関心のある不安定なタンパク質は、調節可能なプロモーターの制御下にある場合には、タンパク質の発現および細胞収穫の誘導の最適なタイミングは、以前の研究又は経験的観察に応じて変化し得る。 </li><li> 15 mlの円錐での培養の2.5 OD 600単位を収集室温で5分間、5000×gでの遠心分離によってらチューブ。ペッティングまたは吸引により上清を除去します。 注：One OD 600単位を1.0のOD 600での培養液1ml中に存在する酵母の量として定義される。 V = 2.5 OD 600単位/測定OD 600：2.5のOD 600単位（V）を収穫するために必要な（ミリリットル）の培養物の容量は、以下の式を用いて決定することができる</li><li> 1ミリリットル中に細胞を再懸濁し、水を蒸留した。マイクロ遠心チューブに懸濁した細胞を転送します。 </li><li>室温で30秒間、6500×gでの遠心分離によって細胞をペレット。ペッティングまたは吸引により上清を除去します。 </li><li> 100μl中に細胞を再懸濁がダウンしているかボルテックスピペッティングして蒸留水を、そして100μl、0.2MのNaOHを追加します。ピペッティングにより混和する。室温で5分間、サンプルをインキュベートする。 </li><li> 18000 xでの遠心分離により細胞をペレット化（そのほとんどはまだタンパク質をリリースし、まだ生存しているしていない）5分間のグラム。ペッティングまたは吸引により上清を除去します。 </li><li>上下にピペッティングまたはボルテックスによって、細胞を溶解します100μlの1×Laemmliサンプルバッファー、 - 50でペレットを再懸濁。 NOTE：Laemmliサンプル緩衝液中で遠心分離し、細胞のその後の再懸濁以下アルカリ上清の除去はトリス - グリシンランニング緩衝系およびウェスタンブロッティングを使用して、ドデシル硫酸ナトリウム - ポリアクリルアミドゲル電気泳動（SDS-PAGE）と互換性のpHでタンパク質を抽出する。 </li><li>完全にタンパク質を変性させ、5分間95℃で溶解物をインキュベートする。 注：95℃でインキュベートしたときに凝集しやすいタンパク質（いくつかの膜貫通セグメントを持つ例えば、タンパク質）が不溶性になることがあります。経験的にこのようなタンパク質の分析のために、決定されるように、30分- 10について-このため、溶解物は、より低い温度（70℃、 例えば 37℃）でインキュベートされるべきである。 </li><li>氷上で5分間置くことによって溶解物を冷却する。 </li><li>室温で1分間、18000×gで遠心分離溶解物の不溶性物質をペレット化する。事前のその後のウエスタンブロット分析（セクシ​​ョン2.2）に、SDS-PAGEにより上清（可溶化抽出したタンパク質）を分離。また、-20℃で保存溶解物。 </li></ol></li><li>代表ウェスタンブロッティングプロトコル<ol><li> SDS-PAGEゲルで溶解物の実験的に決定されたボリュームをロードします。 </li><li>色素フロントがゲルの底に到達するまで200Vでゲルを実行します。 </li><li> 4℃で90分間 - 60 20 Vでウェット移送によりポリフッ化ビニリデン（PVDF）膜にゲルからタンパク質を移す。 </li><li> 4℃で一晩、室温で1時間、揺動または、トリス緩衝生理食塩水（TBS）中の5％スキムミルク中でインキュベートすることによりブロック膜。 </li><li>ブロッキング溶液デカントします。 </li><li>室温テで1時間、0.1％のTween-20（TBS / T）を含むTBS中の1％スキムミルク中の目的のタンパク質（またはそのエピトープタグ）に特異的な一次抗体で膜をインキュベートするmperature、ロッキング。 </li><li>抗体溶液をデカントし、そして室温でTBS / Tで膜3×5分間洗浄し、ロッキング。 </li><li>ロッキング、室温で1時間、TBS / T中の1％スキムミルク中の適切なフルオロフォア結合二次抗体で膜をインキュベートする。 注：蛍光団は光に敏感であるため、フォア標識抗体の希釈は暗闇の中で準備する必要があります。さらに、フォア標識抗体の存在下での膜のインキュベーションは、遮光容器内に発生する必要があります。これはアルミ箔でインキュベーショントレイをラップすることによって達成することができる。 </li><li>抗体溶液をデカントし、そして室温でTBS / Tで膜3×5分間洗浄し、ロッキング。 </li><li>製造業者の推奨に従って、LI-CORオデッセイCLxのを用いた膜と画像Studioソフトウェア（または同等の画像機器およびソフトウェア）の画像を取得する。 </li><li>膜を画像化した後、ロード用の具体的な一次抗体で膜をインキュベートロッキング、室温で1時間、TBS / T中の1％スキムミルクで制御タンパク質る。 </li><li>抗体溶液をデカントし、そして室温でTBS / Tで膜3×5分間洗浄し、ロッキング。 </li><li>ロッキング、室温で1時間、TBS / T中の1％スキムミルク中の適切なフルオロフォア結合二次抗体で膜をインキュベートする。 </li><li>抗体溶液をデカントし、そして室温でTBS / Tで膜3×5分間洗浄し、ロッキング。 </li><li>製造業者の推奨に従って、LI-CORオデッセイCLxのを用いた膜と画像Studioソフトウェア（または同等の画像機器およびソフトウェア）の画像を取得する。 </li></ol></li></ol>

著者らは、開示することは何もない。

ここで紹介する方法は、迅速な決定と酵母細胞内のタンパク質分解のための遺伝的要件の生化学的に確認することができます。これらの実験は、モデル真核生物として酵母の有用性とパワーを強調（処理するための酵母生物学およびプロトコルのコンピレーションのいくつかの優れたレビューは、保管、および酵母細胞を操作する（ 例えば 41-44）生物に新たな研究者のために利用可能です）。技術は、容易にタンパク質のクラスの様々な分解および存在量を調査するために適用することができる。例えば、他のものは不安定な細胞質ゾル、核、およびER内腔と貫通タンパク質45-49の劣化メカニズムを特徴づけるためにこの戦略を採用している。 いくつかの要因が不安定なタンパク質に融合するために、代謝酵素の選択において考慮されなければならない。まず、遺伝子の機能的バージョンはない酵素をコードすることが必須である宿主ゲノム中に存在する。 （不安定なタンパク質が実際に分解されるとき、選択的条件下すなわち成長）偽陽性の結果を最小限にするためには、レポーター遺伝子の...

選択的なタンパク質分解は、真核生物の生活のために不可欠であり、変化したタンパク質分解は、数種類の癌、神経変性疾患、心血管疾患、および嚢胞性線維症1-5を含む医学的状態の数に寄与する。選択的なタンパク質分解を触媒するユビキチン-プロテアソーム系（UPS）は、これらの条件6-10のための新たな治療標的である。ユビキチンリガーゼは共有結合したタンパク質11に76アミノ酸ユビキチンのポリマーを添付してください。ポリユビキチン鎖でマークされたタンパク質は、12プロテアソーム 〜2.5メガダルトン26Sによって認識され、タンパク質分解されている。モデル真核生物サッカロミセス·セレビシエ （出芽酵母）で開始研究は、真核細胞におけるタンパク質分解メカニズムの解明における基礎となっている。 UPSの最初の実証生理的基質は、酵母転写抑制因子MATα213だった、UPSの14、および多くの高度に保存されたコンポーネントは、最初に同定されたか（ 例えば 15-26）酵母特徴。この汎用性と遺伝的に扱いやすいモデル生物で行われた発見は、ユビキチン媒介分解の保存されたメカニズムに重要な洞察を提供し続ける可能性が高い。 認識とほとんどのUPSの基質の分解は、複数のタンパク質の協調行動が必要です。したがって、与えられた不安定なタンパク質の調節された劣化を特徴付ける重要な目標は、タンパク質分解のための遺伝的要件を決定することです。哺乳動物または酵母細胞におけるタンパク質分解を監視するための古典的なアプローチ（ 例えば 、パルスチェイスとシクロヘキシミドチェイス実験27）は、面倒で時間がかかる。方法のこれらのタイプのタンパク質分解を検出するための高感度の手段を提供するが、それらは、タンパク質分解または大規模screeniの迅速な分析には適していないタンパク質分解を防ぐ突然変異についてngの。ここでは、不安定なタンパク質の分解のための遺伝的要件の迅速な同定のための酵母増殖に基​​づくアッセイが提示されている。 タンパク質分解を分析するための酵母の増殖に基づく方法では、対象（または劣化信号）の不安定なタンパク質は、特定の状況下での酵母の増殖に必要とされるタンパク質を、インフレームで融合されている。結果は、関心のある不安定なタンパク質のタンパク質分解の遺伝的要件を決定するための強力なツールとして機能することができる人工的な基質である。好都合なことに、最も一般的に使用される実験室酵母株は、特定のアミノ酸または窒素含有塩基（ 例えば、20,28-30）の生合成に関与する代謝酵素をコードする遺伝子における変異のパネルを保有する。これらの酵素は、合成酵素が参加する中で、外因的に提供代謝物の非存在下での細胞増殖のために必須である。このような代謝酵素は、従って、それらが融合されるため、不安定なタンパク質の分解のための増殖に基づくレポーターとして機能することができる。タンパク質分解を防ぐ変異が劣化レポーターを有する細胞が選択的条件下で成長することができますので、タンパク質分解のための遺伝的要件は容易に解明することができます。 増殖の利点は、特定の変異が、目的のタンパク質の存在量を増加させる間接的な指標である。しかし、直接生化学分析は、変異が増加したタンパク質のレベルを介してではなく、間接的または人為的な原因を経由して成長を可能することを確認する必要がある。タンパク質存在量における変異の効果を行い、特定の変異を保有しない細胞における定常状態タンパク質レベルのウェスタンブロット分析によって確認することができる。適した形態の酵母タンパク質（水酸化ナトリウムおよびサンプル緩衝液を用いて酵母細胞の逐次インキュベーション）の迅速かつ効率的に抽出するための方法ウェスタンブロッティングによる分析のためにも31を提示する。一緒に、これらの実験は、タンパク質分解の候補調節因子の迅速な同定を容易にする。

<table><tbody><tr><td>所望の酵母株、プラスミド、標準培地および緩衝成分</td><td></td><td></td><td>所望の変異を有する酵母株は、研究者の研究室で生成することができる。野生型酵母および種々の変異体も市販されている（GEヘルスケアから例:)。融合タンパク質をコードするプラスミドは、研究者の研究室で生成できます。</td></tr><tr><td>3-アミノ-1H-1,2,4-トリアゾール</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>AC264571000</td><td>His3酵素の競合阻害剤。His3レポーターコンストラクトを用いた成長アッセイのストリンジェンシーを高めるために、培地に含めることができる。</td></tr><tr><td>エンドグリコシダーゼH(Streptomyces plicatus)</td><td>Roche</td>からの組換え形態 <td>11088726001</td>タンパク質<td>のN-グリコシル化の評価に使用できる;1x Laemliサンプルバッファーに見られるSDSおよびβ-メルカプトエタノール濃度に適合します。</td></tr><tr><td>使い捨てホウケイ酸ガラス管</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>14-961-32</td> さまざまな<td>メーカーから入手可能</td></tr><tr><td>温度調整インキュベーター (例えば Heratherm インキュベーターモデル IMH180)</td><td>ドットサイエンティフィ</td>ック <td>51028068</td><td>さまざまなメーカーから入手可能</td></tr><tr><td>ニューブランズウィック 18mmチューブ用交換ドラム (チューブローラー)</td><td>ニューブランズウィック</td><td>M1053-0450</td><td>チューブローラーは、懸濁液中の酵母細胞の酵母スターター培養を一晩維持するために推奨されます。プラットフォームシェーカーまたはチューブローラーを使用して、より大きな培養物を懸濁液に保持することができます。</td></tr><tr><td>ニューブランズウィックTC-7ローラードラム120V 50/60 H</td><td>ニューブランズウィック</td><td>M1053-4004</td>チューブ<td>ローラーSmartSpec</td></tr>プラス<tr><td>分光光度計</td><td>で使用するためバイオラッド</td><td>170-2525</td>さまざまな<td>メーカーから入手可能</td></tr><tr><td>滅菌96ウェル平底マイクロテストプレート蓋付き個別に包装</td><td>Sarstedt</td><td>82.1581.001</td>さまざまな<td>メーカーから入手可能</td></tr><tr><td>Pipetman Neo P8x20N、2-20 &ミュー;l</td><td>Gilson</td><td>F14401</td><td>さまざまなメーカーから入手可能 &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;</td></tr><tr><td colspan="4">[ヘッダー]</td></tr><tr><td>Pipetman Neo P8x200N, 20-200 &mu;l</td><td>Gilson</td><td>F14403</td><td>シングルチャンネルおよびマルチチャンネルピペッターは、プロトコルのさまざまな段階で使用されます。マルチチャンネルピペッターはいくつかのステップでピペッティングの負担を軽減しますが、シングルチャンネルピペッターはプロトコル全体で使用できます。さまざまなメーカーから入手可能です。</td></tr><tr><td>遠心分離機 5430</td><td>エッペンドルフ</td><td>5427 000.216</td><td>ユニットで販売されているローターは、1.5mlと2.0mlの微量遠心チューブを保持します。ローターは、15mlと50mlのコニカルチューブを保持するものと交換できます。</td></tr><tr><td>プレートイメージングシステム (例: Gel Doc XR+ System)</td><td>Bio-Rad</td><td>170-8195</td><td>プレートのイメージングには、高度なイメージングシステム、コンピュータスキャナ、カメラ付き電話機など、さまざまなシステムを使用できます。</td></tr><tr><td>固定角ローター F-35-6-30 遠心分離機用蓋とアダプター付き モデル 5430/R、15/50 ml 円錐管、6 場所</td><td>エッペンドルフ</td><td>F-35-6-30</td><td></td></tr><tr><td>15 ml スクリーン印刷スクリューキャップチューブ 17 x 20 mm 円錐形、ポリプロピレン</td><td>Sarstedt</td><td>62.554.205</td><td>さまざまなメーカーから入手可能</td></tr><tr><td>1.5 ml フレックスチューブ、PCR クリーン、天然微量遠心チューブ</td><td>エッペンドルフ</td><td>22364120</td><td>さまざまなメーカー</td></tr><tr><td>アナログ Dri-Bath Heater</td> フィ<td>ッシャー サイエンティフィ</td>ック <td>1172011AQ</td><td>ホットプレート付き沸騰水浴は、タンパク質</td></tr><tr><td>SDS-PAGE の実行および転送装置、電源、およびイメージング機器または暗室 SDS-PAGE および膜</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>への転送を変性するためにも使用できますウェスタンブロットイメージングシステム (例 Li-Cor Odyssey CLx スキャナーおよび Image Studio ソフトウェア)</td> <td>Li-Cor</td><td>9140-01</td><td>ラボおよびアプリケーションによって異なります</td></tr><tr><td>EMD Millipore Immobilon PVDF トランスファーメンブレン</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>IPFL00010</td><td>ラボおよびアプリケーションによって異なります</td></tr><tr><td>一次抗体 (例 ホスホグリセリン酸キナーゼ (Pgk1) モノクローナル抗体、 マウス (クローン 22C5D8))</td><td>Life Technologies</td><td>459250</td><td>ラボとアプリケーションによって異なります</td></tr><tr><td>二次抗体 (例 Alexa-Fluor 680 ウサギ 抗マウス IgG (H+L))</td><td>ライフ テクノロジー</td><td>ズ A-21065</td> ラボ<td>とアプリケーションによって異なります</td></tr></tbody></table>

増殖に基​​づく決定とタンパク質分解に対する遺伝的要件の生化学的確認で<em&gt;サッカロマイセス·セレビシエ</em

Growth-based Determination and Biochemical Confirmation of Genetic Requirements for Protein Degradation in Saccharomyces cerevisiae

安定化されたタンパク質分解は、事実上すべての細胞機能のために重要である。真核生物のタンパク質分解のための分子機構と遺伝的要件について知られていることの多くは、最初は出芽酵母に設立されました。タンパク質分解の古典の分析は、生化学的なパルスチェイスとシクロヘキシミドチェイスの方法論に依存してきた。これらの技術は、タンパク質の分解を観察するための高感度の方法を提供するが、それらは、面倒で時間がかかり、低スループットである。これらのアプローチは、タンパク質の分解を防ぐ変異についての迅速なまたは大規模なスクリーニングに適していない。ここでは、タンパク質分解のための遺伝的要件の容易な同定のための酵母の増殖に基づくアッセイが記載されている。このアッセイでは、特定の選択条件下で増殖に必要なレポーター酵素は不安定なタンパク質に融合される。細胞の内因性レポーター酵素を欠いているが、融合タンパク質を発現するセレ下で成長することができ融合タンパク質が安定化されるだけctive条件（ すなわちタンパク質分解が損なわれている場合）。ここに記載の増殖アッセイにおいて、野生型および融合タンパク質をコードするプラスミドを有する変異体酵母細胞の段階希釈物を選択的および非選択培地上にスポットされる。選択条件下で成長が所定の変異による分解障害と一致する。増加したタンパク質存在量は、生化学的に確認すべきである。電気泳動及びウエスタンブロッティングに適した形態の酵母タンパク質の迅速な抽出のための方法も示されている。生化学分析のためのタンパク質抽出のための単純なプロトコルと組み合わせたタンパク質の安定性のための成長ベースの読み出しは、タンパク質分解のための遺伝的要件の迅速な同定を容易にします。これらの技術は、短命の種々のタンパク質の分解を監視するように適合させることができる。示した例では、ヒスチジン生合成に必要とされるのHis3酵素は、融合したそれが異常に小胞体トランスロコンに係合後にDeg1に-Sec62。Deg1 -Sec62は分解の標的とされている。 Deg1 -Sec62-のHis3を保有する細胞は、タンパク質が安定した時に選択的条件下で増殖することができた。

この方法論を説明するために、のHis3酵素はモデル小胞体（ER）関連分解のカルボキシ末端に融合されている（ERAD）基板、Deg1 -Sec62（ 図2A）Deg1 -Sec62-のHis3を作成する（ 図3） 。Deg1 -Sec62はロコンとの永続的な、異常な関連付けを次のターゲットとしているERAD基質の新規クラスの創立メンバーを表し、ER膜32-34間でタンパク質を移動するための主に担当チャンネル。このような不安定なタンパク質は、暫定的に基質（トランスロコン関連用）ERAD-Tと呼ばれています。以前の研究では、異常なロコン係合すると、Deg1 -Sec62がHRD1ユビキチンリガーゼ（ 図2B-D）32、34、35で分解の標的された、ことを示している。他のHRD1基質の分解に必要な因子がために不要であると思われる&lt;em&gt;のDeg1 -Sec62劣 ​​化、小説の劣化機構32を示唆し...

この記事では、タンパク質分解の遺伝的要件を決定するための酵母増殖ベースのアッセイについて説明します。また、ウェスタンブロッティングに適した酵母タンパク質の迅速な抽出方法を示し、分解要件を生化学的に確認します。これらの技術は、さまざまなタンパク質の分解を監視するために適応させることができます。

Regulated protein degradation is crucial for virtually every cellular function. Much of what is known about the molecular mechanisms and genetic ...

次の実験の全体的な目標は、Croce Visierの不安定なタンパク質の分解のための遺伝的要件を迅速に決定することです。これは、特定の選択条件下での増殖に必要なレポーター酵素を目的の不安定なタンパク質に融合させることによって達成されます。次に、融合タンパク質を発現する野生型または変異型細胞の両方を、選択的な培地寒天プレート上で培養します。このプレーティングアッセイは、酵母細胞の増殖に基づくタンパク質の安定化の便利な指標を提供し、タンパク質の存在量の違いを生化学的に確認すると同時に、融合タンパク質を保有する変異細胞のタイプをウェスタンブロット分析のための迅速で非効率的なタンパク質抽出法で溶解します。その結果、分解に必要な遺伝子に変異がある細胞では、不安定なタンパク質の存在量が増加することが示されています。逆に、分解能力のある野生型株には当てはまります。パルスチェイス解析やサイクハイデチェイス解析などの既存の方法と比較した場合、この手法の主な利点は、労働集約的で時間がかからず、タンパク質分解の遺伝的要件を迅速かつ高スループットで決定できることです。しかし、この方法では、さまざまな不安定なタンパク質の分解要件に関する洞察を得ることができます。また、転写や翻訳など、遺伝子発現の他の側面の調節因子を特定するためにも使用できます。手順を実演するのは、シェルドン・ワッツとジャスティン・クラウダーです。私の研究室の学生は、アッセイに先立って、不安定なタンパク質と代謝レポーター酵素からなる融合タンパク質をコードするプラスミドを変異酵母株に変換します。コントロールとしてタンパク質分解の制御に関する遺伝的欠陥が疑われる場合、同じプラスミドを野生型酵母株に形質転換する。形質転換体を、プラスミド分子を保有する細胞を選択する最小培地の5ミリリットルに接種します。試験管を傾斜したローテーターに入れ、翌日に摂氏30度で一晩インキュベートします。一晩培養した培養液の光学密度を測定し、新鮮な培地と滅菌済みの個々の1.5ミリリットル遠心分離管で各培養物をOD 600 0.2に希釈することにより、すべての細胞の細胞濃度を均等化します。メインアッセイを開始するには、まず、OD 600 0.2 の 0.2 から開始して、各予め希釈された株の 200 マイクロリットルを滅菌 96 ウェルプレートの指定ウェルに移し、その後の希釈に備えて 6 倍希釈シリーズマトリックスを設定し、マルチチャンネルピペットを使用して 125 マイクロリットルの滅菌水を列 2 の空のウェルに追加します。 3つ、そして4つ。次に、25マイクロリットルの酵母をカラム1からカラム2に移し、ピペットを数回上下させて細胞を均一に混合し、カラム2からカラム3に25マイクロリットルの細胞を移します。カラム4のウェルが細胞スポッティングの視覚的補助として十分に混合されるまで、連続希釈ステップを繰り返します。グリッドテンプレートを印刷し、ペトリ皿の蓋の内側にテープで貼り付けます(段階希釈マトリックスの最も低濃度のカラムから順に)。各カラムから4マイクロリットルの細胞を移します。96ウェルプレート上で、細胞内プラスミドの維持を選択するコントロール最小培地寒天プレートに 各カラムからさらに4マイクロリットルの細胞を、両方の細胞内プラスミドを選択する別々の最小培地寒天プレートにスポットします。不安定な融合タンパク質の維持と発現。両方のプレートをベンチで5〜10分間乾燥させます。脱水症状を防ぐために蓋をパラムで密封し、細胞を摂氏30度で2〜6日間インキュベートします。最も急速に成長している培養物のコロニーが、特定のプレートの最も希薄な場所に最初に見えるようになったら、プレートをインキュベーターから取り出し、成長の程度を記録します。写真を撮ることで、異なる日に異なるプレートを撮影したり、同じプレートを複数の日に撮影したりする必要がある場合があります。増殖速度の範囲が広い異なる酵母株の場合、生化学的に確認された成長アッセイで同定された遺伝子がタンパク質の存在量を調節していることを生化学的に確認した野生型および変異酵母株を前述の融合タンパク質をコードするプラスミドで形質転換し、細胞内プラスミドの維持を選択する最小培地5ミリリットルで形質転換体を接種し、チューブを摂氏30度の傾斜回転子で一晩インキュベートします。翌日、各一晩の培養物の600で光学密度を測定します。すべての菌株が0.4以上のOD 600に達したら、各菌株の最終容量が10ミリリットルになるように、すべての培養物を新鮮な培地で0.2に希釈します。すべての培養物が中期対数期成長OD 600(0.8〜1.2)に達するまで、摂氏30度のプラットフォームシェーカーで細胞をインキュベートします。合計2.5個のOD単位の細胞を新鮮な15ミリリットルの円錐管に移すことにより、細胞を採取します。細胞を室温で5分間遠心分離し、S上清を除去します。次に、1ミリリットルの蒸留水ボルテックスまたはピペットを上下に追加して口蓋を再懸濁し、細胞懸濁液を新鮮な1.5ミリリットルのチューブに移します。室温で30秒間の2回目の遠心分離で細胞を分離し、スナットを取り外し、細胞を100マイクロリットルの蒸留水に再懸濁します。細胞懸濁液に100マイクロリットルの0.2モル水酸化ナトリウムを加え、数回上下にピペットでサンプルを混合し、室温で5分間インキュベートして、早期の細胞溶解を避ける。セルをボルテックスしないでください。3回目の遠心分離で30秒間、細胞を再度単離します。室温で、細胞から上清を取り除き、ペレットを50〜100マイクロリットルの1×ランビーサンプルバッファーに懸濁させて細胞を溶解し、懸濁液を摂氏95度で5分間インキュベートすることによりすべてのタンパク質を変性させ、次いで全細胞ライセートを氷上で5分間冷却する。複数の膜貫通セグメントを持つタンパク質など、凝集しやすいタンパク質の存在量をアッセイするために、摂氏95度で5分間ではなく、摂氏70度で10分間開始することにより、最適な変性インキュベーション、温度、および時間を経験的に決定します。最後に、ライセートを室温で1分間遠心分離して可溶性画分を単離し、スナットを新しいチューブに移し、不溶性ペレット画分を廃棄します。可溶性画分は、SDSページやゲルに直接ロードしたり、酵母増殖ベースのタンパク質分解アッセイを設定する際にマイナス20°Cで保存することができます。不安定な三重融合タンパク質は、同じ代謝遺伝子を欠く酵母株の背景を補完する追加の代謝酵素と融合しています。融合タンパク質が酵母で発現すると、小胞体膜で不毛の転座イベントが発生しやすくなります。この異常な転座は、代謝酵素を含むタンパク質全体のユビキチンを介した分解を引き起こし、細胞増殖を防ぎます。しかし、ユビキチンリガーゼを欠く酵母株では、融合タンパク質は分解から保護され、細胞の増殖を可能にする平均的な転座でも保護されます。したがって、ユビキチンリガーゼの存在下では、細胞内で起こるタンパク質分解と、代謝物が枯渇した寒天プレート上で酵母細胞が増殖しないこととの間には対応関係があります。一方、ユビキチンリガーゼ細胞増殖に欠陥があるか、または存在しない状況では、融合タンパク質がバックグラウンドまたは偽の増殖を減少させ、このアッセイのストリンジェンシーを高めるために分解から保護されていたことを示しています。代謝酵素の競合阻害剤を増殖培地に添加して、酵母増殖アッセイで観察された結果を確認することができます。融合タンパク質の分解の直接的な証拠は、ウェスタンブロットでも確認することができます。ユビキチンリガーゼの存在下または非存在下では、融合タンパク質はそれぞれ分解されるか、または破壊を免れます。これらの手順は、目的のタンパク質の定常状態の存在量に最も直接的に報告することを覚えておくことが重要です。これらの手順を実施した後、パルスまたはシクロヘキシミドチェイス分析を実施して、タンパク質分解速度論および研究状態のタンパク質レベルを増加させることが判明した突然変異の存在を直接分析することができます。

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学ぶ 酵母を用いた増殖ベースアッセイでタンパク質分解の遺伝的要件を決定する方法です。Saccharomyces cerevisiaeで不安定タンパク質の安定化を評価し、ウエスタンブロットで生化学的に確認できます。

増殖に基​​づく決定とタンパク質分解に対する遺伝的要件の生化学的確認で

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