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화학유전학적으로 조작된 피질 인터뉴런 선조를 출생 후 마우스 뇌로 이식
화학유전학적으로 조작된 피질 인터뉴런 선조를 출생 후 마우스 뇌로 이식
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JoVE Journal Neuroscience
Transplantation of Chemogenetically Engineered Cortical Interneuron Progenitors into Early Postnatal Mouse Brains

화학유전학적으로 조작된 피질 인터뉴런 선조를 출생 후 마우스 뇌로 이식

Full Text
6,450 Views
06:09 min
August 26, 2019

DOI: 10.3791/59568-v

Myrto Denaxa1,2, Guilherme Neves3, Juan Burrone3, Vassilis Pachnis1

1Nervous System Development and Homeostasis Laboratory,The Francis Crick Institute, 2Neuroscience Centre,Biomedical Sciences Research Centre "Al. Fleming", 3Centre for Developmental Neurobiology,King's College London

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Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This study presents a protocol to manipulate the activity of cortical interneuron progenitors using chemogenetic tools in early postnatal mice. The method allows researchers to explore the effects of intrinsic activity on the maturation of these interneuron precursors, contributing to a deeper understanding of cortical function.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Cortical development
  • Chemogenetics

Background

  • Cortical interneurons play critical roles in brain function.
  • Understanding their maturation can inform neurological research.
  • Chemogenetics offers precise control of neuronal activity.
  • Postnatal mice serve as relevant models for studying cortical development.

Purpose of Study

  • To manipulate the activity of transplanted cortical interneuron progenitors.
  • To examine intrinsic activity effects on interneuron maturation.
  • To provide a widely accessible protocol for researchers.

Methods Used

  • Ex vivo brain slices were prepared from early postnatal mice for the manipulations.
  • The biological model involved transplanted cortical interneuron progenitors.
  • Critical steps included tissue embedding in agarose and targeted DNA injection followed by electroporation.
  • Post-manipulation, slices were cultured and analyzed for neuron activity responses.

Main Results

  • Approximately 50% of neurons displayed co-expression of GFP and RFP, indicating successful manipulation.
  • Clozapine and oxide treatments enhanced the activity of RFP-positive cells, with increased c-Fos expression.
  • This method provides insights into how grafted interneurons affect host brain function.

Conclusions

  • This study demonstrates an effective protocol for manipulating interneuron progenitors, enabling further investigation of their roles in cortical plasticity.
  • Understanding the mechanisms of activity-modulated interneurons can advance knowledge in neuroscience.

Frequently Asked Questions

What are the advantages of using chemogenetics in this study?
Chemogenetics allows for precise control over neuronal activity, enabling targeted manipulations of cortical interneuron progenitors and providing insights into their developmental processes.
How is the biological model implemented in this protocol?
The model involves transplanting cortical interneuron progenitors into early postnatal mice, followed by manipulation of their activity through chemogenetic tools.
What types of data are obtained from this method?
The method yields molecular readouts of neuronal activity, including co-expression of proteins and activity markers such as c-Fos, indicating changes in excitability and function.
How can this protocol be adapted for different experimental needs?
The protocol can be modified for varying types of interneurons or treatments, allowing flexibility in studying specific developmental processes and responses in cortical circuits.
What limitations should researchers consider when using this method?
Researchers should be aware of potential variations in graft success and the specificity of the chemogenetic tools used, which may affect experimental outcomes.
What key insights does this study provide into cortical function?
The study highlights the crucial role of intrinsic activity in the maturation of cortical interneurons, which is essential for understanding cortical circuit function and plasticity.

여기에서 우리는 초기 출생 후 마우스의 피질로 이식된 피질 interneuron 선조의 활동을 조작하기 위하여 화학유전학 공구를 이용하기 위하여 디자인된 프로토콜을 제시합니다.

이 방법을 사용하면 피질 인터뉴런 전구체의 성숙에 대한 본질적인 활동의 효과를 연구할 수 있습니다. 이 기술은 대부분의 과학 공동체에 접근 할 수있는 피질 인터뉴런 전구의 세포 특성을 타겟팅하고 조작하기위한 효율적인 방법을 제공합니다. 이 프로토콜은 샘플 과 장비의 세심한 처리를 포함, 그것은 가장 시각적 데모에 의해 평가 될 수있다.

방수 펜을 사용하여 6개의 35mm 페트리 접시의 하단 면 의 중간을 가로질러 직선으로 그립니다. PBS에 액체 4% 낮은 겔화 아가로즈 10밀리터를 35mm 페트리 접시 2개에 넣고 각 샘플 사이에 3~5밀리미터의 공간을 남기고 후각 전구가 있는 아가로즈에 3~4개의 해부된 두뇌를 포함시합니다. 모든 뇌가 내장되었을 때, 아가로즈가 아가로즈를 한 블록에 매립시키고 조각할 수 있도록 섭씨 4도에 접시를 놓고 샘플 가장자리 주위에 약 3밀리미터의 젤을 남깁니다.

마이크로톤베이스의 표면에 블록을 접착하고 수술용 블레이드를 사용하여 각 조직 샘플 사이의 블록 의 바닥을 끝까지 잘라 세 개의 독립적인 블록을 얻습니다. 다음으로, 진동 블레이드 마이크로톤을 사용하여 얼음 차가운 크렙스 용액의 블록을 250마이크로미터 두께의 슬라이스로 분할하고, 구부러진 평평한 마이크로스patula를 사용하여 내측 또는 caudal ganglionic 저울을 함유한 조각만 수집합니다. 그런 다음 각 섹션을 개별 13 마이크로미터 직경, 8 마이크로미터 모공 크기 필터 멤브레인을 개별 폴리스티렌 센터에서 최소한의 필수 배지에 띄우는 개별 폴리스티렌 센터웰 장기 배양 접시에 놓습니다.

모든 구간을 수득하면 1시간 동안 37°C의 이산화탄소 조직 배양배인 인큐베이터에 접시를 놓습니다. 초점 DNA 주입 전에, 얼음 차가운 크렙스 용액에 유리 225 밀리미터 길이, 2 밀리리터 용량 유리 파이펫으로 펀치 10 밀리미터 긴 아가로즈 컬럼, 10 밀리미터 긴 아가로즈 컬럼을 배치합니다. 수술용 블레이드를 사용하여, 전포 전극의 표면에 맞게 아가로즈의 작은 조각 1 개와 초점 DNA 주사의 기초로 사용되는 하나의 더 큰 조각을 잘라.

그런 다음 아가로즈 블록을 얼음 차가운 크렙스 솔루션에 넣습니다. 주사를 위해, 각 벡터에 대한 마이크로리터 농도당 1마이크로그램에 발현 및 제어 벡터 DNA를 혼합하고 1-10 희석에서 빠른 녹색 스톡 용액을 추가한다. 0.5밀리미터 의 내경, 1밀리리터 외경 유리 마이크로파이프를 DNA 혼합물의 10마이크로리터로 채우고 마이크로파이프를 공압 피코펌프 인젝터에 넣습니다.

스테레오 현미경 아래에 아가로즈의 더 큰 블록을 배치하고 아가로즈 의 조각에 주입 할 슬라이스를 배치합니다. 이어서, 슬라이스의 선택된 내측 간리온 또는 카우달 신경절 저명 부위에 25~50나노리터 부피를 주입한다. 주입 직후, 페트리 접시 전극에 작은 아가로즈 블록을 놓고 평평한 마이크로스파툴라를 사용하여 아가로즈 컬럼을 모바일 커버 전극에 부착합니다.

주입된 슬라이스를 지지막으로 아가로즈 블록에 옮기고 선택한 부위 위에 아가로즈 컬럼이 있는 상부 전극을 놓습니다. 그런 다음 125볼트의 5밀리초 펄스 2개, 500밀리초 간격으로 영역을 전기화합니다. 전기 기화 후, 그 지지 막으로 슬라이스를 다시 보유 접시에 넣고 조직 배양 인큐베이터로 접시를 반환합니다.

1 시간 후, 기본 신경 배양에 적합한 기본 매체로 최소한의 필수 매체를 교체하고 하룻밤 인큐베이터에 조각을 반환합니다. 이러한 전기기 실험에서, GFP 양성 뉴런의 약 50%가 RFP 양성 주입 단백질을 공동 발현한 결과, GFP 양성 RFP 음성 집단은 주입된 DNA 리간드의 효과에 대한 내부 통제역할을 하였다. 클로자핀 및 산화물 투여는 이러한 신생아 관상 조직 섹션에서 활성 의존성 단백질 c-Fos의 발현에 의해 입증된 바와 같이, 전감염된 RFP 양성 세포의 활성을 선택적으로 증가시킨다.

클로자핀 및 산화물 처리는 또한 차량 투여 된 쓰레기류에 비해 GFP 양성 RFP -음수 세포의 수에 비해 GFP 양성 RFP 양성 세포의 비율의 증가를 초래한다. 이 절차는 호스트의 순환 가소성과 두뇌 기능에 활동 변조 접목 된 인터뉴런의 효과를 연구하는 데 사용할 수 있습니다.

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