Funkcjonalizowana izolacja komórek docelowych na bazie drutów: technika ex vivo izolowania komórek rakowych z wzbogaconej krwi obwodowej

0 wyświetleń4:08 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Cząsteczki adhezyjne komórek nabłonkowych lub EpCAM to powierzchniowe glikoproteiny transbłonowe, których nadmierna ekspresja występuje w szybko proliferujących komórkach nabłonkowych w rakach prostaty. Aby wyizolować komórki wykazujące ekspresję EpCAM, zacznij od drutu klasy medycznej z funkcjonalizowaną końcówką pokrytą złotem. Funkcjonalizacja polega na warstwach polimerowego żelu zawierającego kowalencyjnie związane przeciwciała specyficzne dla EpCAM.

Zanurz drut w obwodowej zawiesinie krwi zawierającej fluorescencyjnie znakowane komórki rakowe. Upewnij się, że funkcjonalizowana część pozostaje zanurzona w zawiesinie krwi. EpCAMy na komórkach nowotworowych rozpoznają i wiążą się z ich specyficznymi przeciwciałami funkcjonalizowanymi na przewodzie.

Umyj buforem, aby usunąć wszelkie niezwiązane komórki z powierzchni drutu. Zegnij drut i zamontuj go na szklanym szkiełku zawierającym bufor, z funkcjonalizowaną częścią zanurzoną w buforze. Użyj mikroskopu fluorescencyjnego, aby sprawdzić jasną fluorescencję z cytoplazmy i jąder komórkowych oraz potwierdzić obecność przechwyconych komórek na przewodzie.

Potraktuj drut buforem zwalniającym. Enzymy proteolityczne w buforze rozszczepiają żel polimerowy, uwalniając kompleksy przeciwciało-komórki rakowe do buforu. Odwirować zespół drutów, aby zebrać uwolnione kompleksy przeciwciało-komórki w osadzie. Usunąć drut i supernatant zawierający enzym. Zawiesić osad zawierający komórkę docelową w odpowiednim podłożu.

W 5 mililitrach krwi obwodowej dodaj około 500 do 500 000 komórek, a następnie wymieszaj, odwracając probówkę. Po wyjęciu drutu ze schowka zdejmij gumową nasadkę, która przytrzymuje drut i umyj drut w 1x soli fizjologicznej buforowanej fosforanem i zamontuj go w nasadce rurki. Następnie inkubować probówkę na przechylonym mieszadle rolkowym z prędkością 5 obrotów na minutę przez 30 minut w temperaturze pokojowej. Po inkubacji trzykrotnie przepłukać drut w 1x buforowanym fosforanem roztworze soli fizjologicznej. Następnie przechowuj drut w 15-mililitrowej probówce zawierającej 1x sól fizjologiczną buforowaną fosforanami w ciemności.

Narysuj prostokątny obszar na szkiełku za pomocą pisaka do smaru i dodaj do niego 500 mikrolitrów 1x soli fizjologicznej buforowanej fosforanami. Aby zanurzyć funkcjonalną część drutu w 1x soli fizjologicznej buforowanej fosforanem, zegnij niedziałającą część drutu i umieść ją na szklanym szkiełku. Aby policzyć liczbę przechwyconych komórek, sprawdź wzrokowo obie strony drutu. Po sprawdzeniu przenieś drut z powrotem do 15-mililitrowej probówki z 1x solą fizjologiczną buforowaną fosforanem i trzymaj w ciemności.

W 1 mililitrze 1x soli fizjologicznej buforowanej fosforanem rozpuść 4 miligramy składnika buforowego o uwalnianiu. Następnie przefiltruj roztwór przez sterylny filtr o średnicy 0,2 mikrometra, aby uzyskać gotowy do użycia bufor. Następnie podgrzej bufor uwalniający w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 5 minut. Po podgrzaniu przenieś 1,6 mililitra buforu uwalniającego, aby całkowicie napełnić 1,5-mililitrową probówkę reakcyjną. Następnie inkubuj funkcjonalną część drutu w buforze uwalniającym w temperaturze 37 stopni Celsjusza w łaźni wodnej przez 20 minut.

Po inkubacji umieść drut na wytrząsarce z prędkością 500 obrotów na minutę przez 15 minut. Następnie odwiruj drut o masie 300 x g przez 10 minut. Po zakończeniu wirowania należy wysunąć drut z probówki, zamknąć nakrętkę i ponownie odwirować probówkę o masie 300 x g przez 10 minut.

10:56

Charakterystyka komórek nowotworowych za pomocą przewodu medycznego do wychwytywania krążących komórek nowotworowych: podejście 3D oparte na immunofluorescencji i DNA FISH

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:35

Test krwi do wykrywania transkryptów fuzji ROS1 i RET z krążącego kwasu rybonukleinowego przy użyciu cyfrowej reakcji łańcuchowej polimerazy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:33

Celowanie w agregaty alfa synukleiny w obwodowych włóknach nerwowych skóry za pomocą swobodnego testu immunofluorescencji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:32

Szybka izolacja żywotnych krążących komórek nowotworowych z próbek krwi pacjenta

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:32

Test immunofluorescencyjny: metoda identyfikacji komórek nowotworowych wychwyconych na przewodzie medycznym

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:06

Negatywna selekcja immunomagnetyczna: metoda oczyszczania limfocytów B z komórek jednojądrzastych krwi obwodowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:40

Metoda celowanej izolacji komórek poprzez funkcjonalizację powierzchni szkła

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:12

Wstępne wzbogacanie komórek docelowych i amplifikacja całego genomu w celu dalszej charakterystyki pojedynczej komórki

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:17

Mikromanipulacja krążącymi komórkami nowotworowymi w celu dalszej analizy molekularnej i oceny potencjału przerzutowego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:08

Izolowanie ludzkich komórek jednojądrzastych krwi obwodowej i limfocytów T CD4+ od pacjentów z zespołem Sézary'ego w celu profilowania transkryptomicznego

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026