Modelowanie raka prostaty w genetycznie modyfikowanych modelach mysich: technika zlokalizowanej edycji genów za pośrednictwem CRISPR/Cas9 w komórkach przedniego płata prostaty myszy

0 views • 4:40 min • April 30th, 2023

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od znieczulonego i przygotowanego mysiego modelu knock-in CRISPR/Cas9 z genomem zmodyfikowanym do ekspresji endonukleaz Cas9 i białek zielonej fluorescencji lub GFP przez silny promotor upstream. Kaseta floxed-STOP lub LSL włożona bezpośrednio za promotorem blokuje transkrypcję Cas9 i GFP w normalnych warunkach.

Naciąć ścianę brzucha myszy, aby odsłonić jej przedni płat prostaty przyczepiony do pęcherzyka nasiennego. Wstrzyknąć pożądaną zawiesinę adenowirusową do płata przedniego, aby ułatwić celowe dostarczanie genomu wirusa do komórek. Umieść płat prostaty z powrotem w jamie brzusznej i zszyj nacięcie.

W komórkach zakażonych wirusem genom wirusa wykazuje ekspresję enzymów rekombinazy Cre i przewodników RNA ukierunkowanych na gen, który ma zostać zmutowany. Enzymy Cre rozpoznają kasetę LSL i wycinają bloker transkrypcji z floksem. Ten krok pozwala promotorowi sterować ekspresją endonukleaz Cas9 i GFP.

Następnie endonukleazy Cas9 tworzą kompleksy z kodowanymi przez wirusa przewodnikami RNA, które kierują te kompleksy do sekwencji docelowej w genie, który ma zostać zmutowany. Ta lokalizacja pozwala endonukleazie Cas9 na rozszczepienie genomowego DNA w genie docelowym, co prowadzi do zmian genetycznych.

Zmiana onkogenna powoduje, że zmutowane komórki przekształcają się w rakowe. Koekspresja białek reporterowych GFP w zmutowanych komórkach ułatwia identyfikację i śledzenie progresji raka.

Aby dostarczyć wirusa do prostaty, po znieczuleniu 8-tygodniowego samca myszy zgodnie z protokołem tekstowym, zbadaj głębokość znieczulenia, oceniając rozluźnienie mięśni, wycofanie pedału i odruchy powiekowe. Gdy zaobserwuje się utratę odruchów, ogol dolną część brzucha zwierzęcia. Za pomocą sterylnego bawełnianego wacika ostrożnie zakryj oczy zwierzęcia weterynaryjną maścią okulistyczną, aby zapobiec ślepocie spowodowanej kseroftalmią. Następnie użyj 70% etanolu i 10% jodowidonu, aby przetrzeć ogolony brzuch, aby zdezynfekować obszar operacyjny.

Następnie za pomocą sterylnych nożyczek chirurgicznych wykonaj około 1-centymetrowe pionowe nacięcie skóry w dolnej linii środkowej brzucha. Następnie za pomocą cienkich kleszczy punktowych podnieś otrzewną, aby zapobiec uszkodzeniu narządów leżących pod spodem, i użyj nożyczek chirurgicznych, aby ostrożnie wykonać 8-milimetrowe lub krótsze nacięcie przez otrzewną. Delikatnie odsuń tkankę tłuszczową na bok, aby odsłonić pęcherzyk nasienny. Następnie za pomocą kleszczy z pierścieniami ostrożnie podnieś pęcherzyk nasienny, aż będzie można zidentyfikować przednią część prostaty.

Teraz, za pomocą strzykawki insulinowej o pojemności 0,5 mililitra i igły o wymiarach 30 G x 8 milimetrów, wstrzyknij łączną objętość 30 mikrolitrów roztworu wirusa do przedniego nabłonka prostaty. Zminimalizuj wyciek i upewnij się, że płyn został wchłonięty w tkance, tworząc mały pęcherzyk. Następnie umieść pęcherzyk nasienny z powrotem w jamie brzusznej.

Aby upewnić się, że płyn zostanie wchłonięty w tkance w postaci małego pęcherzyka i bez wycieków, należy wstrzykiwać go równolegle do pęcherzyka nasiennego i zgodnie z kształtem przedniego płata prostaty.

Za pomocą igły stożkowej i koła o średnicy 13 milimetrów i średnicy 3/8 zszyj otrzewną dwoma do trzech prostych przerywanych szwów wchłanialnego szwu 6-0. Następnie, unosząc skórę kleszczami, aby uniknąć uszkodzenia otrzewnej, zszyj skórę trzema sterylnymi klipsami o wymiarach 4,8 x 6,5 milimetra.

Aby uzyskać lepszą rekonwalescencję po operacji, użyj sterylnej strzykawki o pojemności 1 mililitra i igły 27 G x 1/2 cala do podania antidotum na znieczulenie w dawce 0,1 mililitra na gram masy ciała we wstrzyknięciu dootrzewnowym. Następnie ostrożnie umieść zwierzę z powrotem w klatce.

11:37

Mapowanie QTL i edycja CRISPR/Cas9 w celu identyfikacji genu oporności na leki w Toxoplasma gondii

Related Videos

0 Views

11:53

Protokół wielokrotnego nokautu genów w organoidach jelita cienkiego myszy przy użyciu konkategomera CRISPR

Related Videos

0 Views

09:25

Testowanie przeciwciał przeciwko receptorom anty-RDL i anty-mGlutR1 w skrawkach mózgu pszczoły miodnej przy użyciu CRISPR-Cas9

Related Videos

0 Views

05:07

Wstrzyknięcie komórek rakowych do gruczołu krokowego: technika dostarczania komórek rakowych w celu ustalenia ortotopowego modelu myszy raka prostaty

Related Videos

0 Views

06:48

Ortotopowy mysi model przerzutów ludzkiego raka prostaty

Related Videos

0 Views

08:49

Mysia mikropreparacja prostaty i kastracja chirurgiczna

Related Videos

0 Views

07:01

Przedkliniczny ortotopowy mysi model ludzkiego raka prostaty

Related Videos

0 Views

07:25

Bioluminescencyjny i fluorescencyjny, ortotopowy, syngeniczny mysi model androgenowego i opornego na kastrację raka gruczołu krokowego

Related Videos

0 Views

06:21

Dostarczanie wirusów z przewodników CRISPR do mysiej prostaty w celu zmiany genów

Related Videos

0 Views

08:43

Identyfikacja, charakterystyka histologiczna i sekcja płatów prostaty myszy dla modeli hodowli sferoidalnych 3D in vitro

Related Videos

0 Views

Last updated: 18 July 2026