JoVE Encyclopedia of Experiments
Immunologia
0 wyświetleń • 3:01 min • July 8th, 2025
Na podstawie receptorów powierzchniowych komórek, ludzkie krążące limfocyty B są klasyfikowane jako naiwne komórki B CD19-dodatnie, komórki B pamięci CD19 i CD27-dodatnie oraz komórki plazmatowe plazmablastów CD19, CD27 i CD38-dodatnie.
Aby posortować te populacje komórek, weź oczyszczoną zawiesinę limfocytów B. Inkubować z ludzkimi przeciwciałami immunoglobuliny G. Przeciwciała blokują receptory Fc limfocytów B, zapobiegając wiązaniu przeciwciał nieswoistych.
Dodaj znakowane fluorescencyjnie przeciwciała skierowane przeciwko CD19, CD27 i CD38.
Przeciwciała anty-CD19 wiążą się z receptorami CD19 powszechnie ulegającymi ekspresji na komórkach B.
Przeciwciała anty-CD27 wiążą się z receptorami CD27 ulegającymi ekspresji na komórkach B pamięci i komórkach plazmatycznych plazmablastów.
Przeciwciała anty-CD38 wiążą się z receptorami CD38 ulegającymi ekspresji na komórkach plazmablastowych.
Dodaj fluorescencyjny barwnik wiążący DNA jako marker martwych komórek.
Martwe komórki wykazują utratę integralności błony, co pozwala na wejście barwnika do komórki i wiązanie się z dwuniciowym DNA; żywe komórki pozostają niezabarwione.
Odwirować w celu usunięcia niezwiązanych przeciwciał i barwników oraz ponownie zawiesić komórki w buforze FACS. Przefiltruj komórki przez sitko, aby uzyskać jednorodną zawiesinę i wyeliminować grudki.
Za pomocą cytometru przepływowego posortuj martwe komórki od żywych. W żywych komórkach ekspresja CD19, CD27 i CD38 odróżnia naiwne komórki B, komórki B pamięci i komórki plazmatyczne plazmablastów.
Po wykonaniu nieswoistego blokowania, dodać 1 mikrogram każdego przeciwciała selekcyjnego na 1 x 106 komórek do probówki, delikatnie mieszając przez 30-minutową inkubację na lodzie. W ciągu ostatnich pięciu minut inkubacji dodaj do komórek 5 mikrolitrów 7-AAD. Następnie dodaj 2 mililitry świeżego PBS do komórek i zwiruj przed odwirowaniem.
Ponownie zawiesić granulat w świeżym buforze do sortowania w stężeniu 1 do 5 x 107 komórek na mililitr i przefiltrować komórki przez sitko do komórek o średnicy 40 mikronów do nowej 5-mililitrowej rurki polistyrenowej. Następnie posortuj komórki za pomocą cytometrii przepływowej do trzech 15-mililitrowych probówek zawierających 5 mililitrów świeżego podłoża RPMI, aby zebrać naiwne komórki B, komórki B pamięci i komórki plazmatyczne plazmablastów.
Niniejszy artykuł szczegółowo opisuje klasyfikację i sortowanie krążących limfocytów B człowieka w oparciu o receptory powierzchniowe komórek. Przedstawia on metodologię izolacji naiwnych limfocytów B, limfocytów B pamięci oraz plazmablastów i plazmocytów z wykorzystaniem cytometrii przepływowej.
Sortowanie subpopulacji krążących limfocytów B metodą cytometrii przepływowej umożliwia precyzyjną izolację naiwnych limfocytów B, komórek pamięci oraz plazmablastów z ludzkiej krwi obwodowej. Możliwość ta wspiera walidację celów w immunologii, dostarczając systemów istotnych dla przebiegu chorób, co pozwala na mechanistyczne ograniczanie ryzyka w badaniu ścieżek odporności humoralnej. Metoda ta zwiększa pewność prognostyczną na wczesnym etapie odkryć, dostarczając oczyszczonych, funkcjonalnie zdefiniowanych populacji komórek do dalszego opracowywania testów i przeprowadzenia przesiewu.
Metoda ta wpisuje się w kontinuum procesów odkrywczych, dostarczając zwalidowane populacje limfocytów B do testowania hipotez, przygotowania analiz oraz uzyskiwania wyników analitycznych, które stanowią podstawę decyzji w procesie identyfikacji wiodących związków.
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Powiązane filmy
0 Wyświetlenia
Ostatnia aktualizacja: 29 sierpnia 2026