Izolowanie i hodowla neuronów embrionalnych piskląt na matrycy wieloelektrodowej

0 wyświetleń5:06 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weź zapłodnione jajo kurze zawierające zarodek we wczesnym stadium rozwoju.

Wysterylizuj skorupę i ostrożnie ją otwórz.

Usuń zarodek. Rozciąć głowę i przenieść ją na płytkę hodowlaną zawierającą bufor. Usuń gałkę oczną.

Wykonaj nacięcie i usuń warstwy skóry, odsłaniając przodomózgowie i śródmózgowie.

Usuń wewnętrzną warstwę błoniastą i naczynia krwionośne. Wypreparuj i przenieś przodomózgowie na płytkę hodowlaną z buforem.

Pokrój tkankę na mniejsze fragmenty i przenieś je do stożkowej rurki. Gdy fragmenty osiądą, usuń bufor.

Dodaj roztwór enzymu proteolitycznego. Inkubuj w celu strawienia macierzy zewnątrzkomórkowej tkanki i rozluźnienia neuronów.

Usuń pożywki bogate w enzymy, przemyj pożywką neuropodstawną, usuwając wszelkie pozostałe enzymy.

Dodaj podłoże neuropodstawne. Mechanicznie dysocjuj tkankę, aby uzyskać zawiesinę neuronalną.

Zasiej te neurony w systemie wieloelektrodowym pokrytym macierzą zewnątrzkomórkową. Dodaj pożywkę neurobazalną i inkubuj.

Neurony przyłączają się i wydłużają projekcje, tworząc sieć neuronalną.

W dniu posiewu neuronów wyjmij fiolkę z macierzą zewnątrzkomórkową z zamrażarki o temperaturze -20 stopni Celsjusza. Spryskaj 70% etanolem i umieść na lodzie. Pamiętaj, aby rozmrozić macierz zewnątrzkomórkową na lodzie. Nie rozmrażać w temperaturze pokojowej, ponieważ ECM polimeryzuje w temperaturze powyżej 0 stopni Celsjusza.

Pracuj w okapie BSL-2, aby rozcieńczyć macierz zewnątrzkomórkową do 25%, dodając 300 mikrolitrów zimnej pożywki neuropodstawowej do podwielokrotności 100 mikrolitrów. Następnie za pomocą pipety P200 dodaj 100 mikrolitrów 25% roztworu macierzy zewnątrzkomórkowej do środka układu wieloelektrodowego, uważając, aby nie dotknąć elektrod. Natychmiast wyjmij ECM, pozostawiając cienką warstwę na powierzchni.

Przykryj układ wieloelektrodowy i umieść w inkubatorze do hodowli tkankowych, aż będzie gotowy do płytki neuronów. Rozpocznij izolację neuronu pisklęcia od sterylizacji zewnętrznej skorupy jaja E7 70% etanolem. Ważne jest, aby od tego momentu utrzymywać sterylne warunki. Upewnij się, że wszystkie narzędzia są wysterylizowane 70% etanolem, a roztwory są sterylne. Pomocne jest użycie kaptura preparacyjnego, ale nie jest to absolutnie konieczne w przypadku sekcji, jeśli jest wykonywane szybko.

Następnie, po pobraniu i odcięciu głowy zarodka, naciąć okolice oczu i usunąć gałki oczne. Następnie użyj cienkich kleszczyków Dumont numer 5 i nożyczek sprężynowych, aby wykonać nacięcie po stronie brzusznej i usunąć zewnętrzne warstwy skóry, aby odsłonić przodomózgowie i osłonę wzrokową. Ostrożnie obierz i usuń błonę peel

.

Przenieś przodomózgowie na inną szalkę Petriego zawierającą HBS i pokrój ją na małe kawałki o wielkości około 2 milimetrów za pomocą nożyczek sprężynowych. Użyj sterylnej pipety transferowej, aby przenieść kawałki przodomózgowia do 50-mililitrowej probówki wirówkowej. Po tym, jak kawałki przodomózgowia opadną na dno probówki wirówkowej, usuń jak najwięcej HBS.

Następnie dodaj 1 mililitr podgrzanej 0,5% trypsyny-EDTA i inkubuj w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez 15 minut. Użyj pipety Pasteura, aby ostrożnie usunąć trypsynę, nie naruszając kawałków tkanki. Dodaj 1 mililitr pożywki neuropodstawowej i pozwól, aby kawałki tkanki opadły na dno. Po usunięciu pożywki i powtórzeniu prania dodaj 2 mililitry pożywki neuropodstawowej i delikatnie rozcieraj, aż nie będzie widać więcej kawałków tkanki.

Rozcieńczyć zawieszone komórki od 1 do 10 pożywką neurobazalną i policzyć żywe komórki za pomocą barwnika błękitu trypanowego i hemocytometru. Po zliczeniu umieść powiązane ogniwa na matrycach wieloelektrodowych pokrytych ECM z gęstością 2 200 ogniw na milimetr kwadratowy.

11:16

Izolacja i hodowla zdysocjowanych neuronów czuciowych z zarodków piskląt

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:51

Hodowla eksplantatów neuronów zwojów spiralnych i elektrofizjologia na układach wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:26

Przygotowanie i analiza morfologiczna kultur komórek grzebienia nerwowego czaszki piskląt

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:27

Jak hodować, rejestrować i stymulować sieci neuronowe na matrycach mikroelektrod (MEA)

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:39

Budowa trójwymiarowych sieci neuronowych sprzężonych z układami mikroelektrod

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:35

Hodowla eksplantatów neuronów spiralnych myszy na matrycach wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:07

Ocena wpływu toksyn na rozwój sieci neuronowej zarodka pisklęcia przy użyciu układów wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:47

Łączenie kultur neuronalnych 3D z matrycami mikroelektrod: innowacyjny model eksperymentalny in vitro

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:25

Badanie regeneracji funkcjonalnej w organotypowych kokulturach rdzenia kręgowego hodowanych na matrycach wieloelektrodowych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:45

Zależny od czasu wzrost odpowiedzi sieci na stymulację kultur komórek neuronalnych na układach mikroelektrod

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026